Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Скрипченко Е.Ю.

ФГБУ «Детский научно-клинический центр инфекционных болезней» ФМБА России;
ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Железникова Г.Ф.

ФГБУ «Детский научно-клинический центр инфекционных болезней» ФМБА России

Алексеева Л.А.

ФГБУ «Детский научно-клинический центр инфекционных болезней» ФМБА России

Скрипченко Н.В.

ФГБУ «Детский научно-клинический центр инфекционных болезней» ФМБА;
ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Астапова А.В.

ФГБУ «Детский научно-клинический центр инфекционных болезней» ФМБА России

Горелик Е.Ю.

ФГБУ «Детский научно-клинический центр инфекционных болезней» ФМБА России

Вильниц А.А.

ФГБУ «Детский научно-клинический центр инфекционных болезней» ФМБА России;
ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Герпесвирусы и биомаркеры при диссеминированном энцефаломиелите и рассеянном склерозе у детей

Авторы:

Скрипченко Е.Ю., Железникова Г.Ф., Алексеева Л.А., Скрипченко Н.В., Астапова А.В., Горелик Е.Ю., Вильниц А.А.

Подробнее об авторах

Прочитано: 1736 раз


Как цитировать:

Скрипченко Е.Ю., Железникова Г.Ф., Алексеева Л.А., Скрипченко Н.В., Астапова А.В., Горелик Е.Ю., Вильниц А.А. Герпесвирусы и биомаркеры при диссеминированном энцефаломиелите и рассеянном склерозе у детей. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2021;121(3):138‑145.
Skripchenko EYu, Zheleznikova GF, Alekseeva LA, Skripchenko NV, Astapova AV, Gorelik ЕYu, Vilnits AA. Herpesviruses and biomarkers in disseminated encephalomyelitis and multiple sclerosis in children. S.S. Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry. 2021;121(3):138‑145. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/jnevro2021121031138

Рекомендуем статьи по данной теме:
Хи­рур­ги­чес­кое ле­че­ние вто­рич­ной три­ге­ми­наль­ной нев­рал­гии. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(11):203-209
Ка­чес­тво жиз­ни па­ци­ен­тов с рас­се­ян­ным скле­ро­зом в Смо­лен­ской об­лас­ти. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(12):36-40
Проб­ле­мы ока­за­ния сто­ма­то­ло­ги­чес­кий по­мо­щи дет­ско­му на­се­ле­нию на при­ме­ре г. Ча­па­евск Са­мар­ской об­лас­ти. Опе­ра­тив­ная хи­рур­гия и кли­ни­чес­кая ана­то­мия (Пи­ро­гов­ский на­уч­ный жур­нал). 2024;(4):35-42
Сов­ре­мен­ный взгляд на эти­оло­гию жел­чно­ка­мен­ной бо­лез­ни у де­тей. До­ка­за­тель­ная гас­тро­эн­те­ро­ло­гия. 2024;(4):59-68

Среди демиелинизирующих заболеваний ЦНС у детей и подростков, объединенных термином «ADS» (acquired demyelinating syndromes) [1, 2], особое внимание исследователей привлекают острый диссеминированный энцефаломиелит (ОДЭМ) и рассеянный склероз (РС), требующие тщательной дифференцировки для своевременного назначения адекватной иммунотерапии [3, 4].

ОДЭМ представляет собой острое иммуноопосредованное заболевание ЦНС, характеризующееся демиелинизацией и полифокальными неврологическими симптомами с проявлениями энцефалопатии (изменением поведения или сознания). В 70—90% случаев развивается через 1—4 нед после перенесенной инфекции (чаще респираторно-вирусной), преимущественно у детей младше 10 лет [5—8].

РС — это хроническое иммуноопосредованное заболевание, чаще поражающее подростков и молодых взрослых. Среди вариантов течения РС основным, охватывающим >80% пациентов, является редицивирующе-ремиттирующий РС (РРРС).

Особые трудности диагностики представляют редкие случаи острого начала РС, клинически сходные с ОДЭМ [1, 9]. Предложены критерии дифференциальной диагностики ОДЭМ и РС по результатам МРТ [8, 10]. Однако окончательный диагноз возможен только при втором или даже третьем эпизоде демиелинизации, когда уже упущено время для начала долговременного курса иммунотерапии, рекомендуемого при РС [4].

Многолетний опыт авторов свидетельствует о том, что на трансформацию хронического течения ОДЭМ в РС также влияет тактика терапии [11]. При подтверждении связи частоты обострений ОДЭМ с активацией герпесвирусных инфекций эффективны курсы специфической противовирусной терапии, а также патогенетическая терапия, направленная на коррекцию эндотелиальной дисфункции [12]. Предполагается, что одним из компонентов патогенеза ОДЭМ и РС является васкулопатия с поражением преимущественно мелких сосудов, нарушением перфузии отдельных участков мозговой ткани и накоплением контраста в очагах воспаления в T1-взвешенных изображениях МРТ. Известно, что выраженность клинических проявлений и их особенности при ОДЭМ и РС определяются локализацией и объемом поражения ЦНС, а также степенью воспалительно-деструктивных изменений в очагах. При этом наряду со специфическими этиопатогенетическими механизмами важное значение на уровне клетки приобретают и неспецифические процессы. Так, гипоксия, сопровождающаяся снижением поступления кислорода в митохондрии, является универсальным патологическим процессом, характерным для различных неврологических и нейроинфекционных заболеваний.

Недостаток надежных критериев дифференциальной диагностики ОДЭМ и РС явился толчком к поиску дополнительных критериев в виде факторов патогенеза, включая инфекционные агенты и биомаркеры воспаления и повреждения ткани мозга [2, 6—8].

Вирусы группы герпеса в патогенезе ОДЭМ и РС у детей

У детей с ОДЭМ предшествующая инфекция, чаще вирусная, может быть идентифицирована в 64—96% случаев [7]. По данным разных авторов, развитию ОДЭМ могут предшествовать корь, паротит, краснуха, грипп, ветряная оспа и острый инфекционный мононуклеоз. С ОДЭМ ассоциированы также вирус простого герпеса (HSV), цитомегаловирус (CMV), энтеровирус, коронавирус, вирусы иммунодефицита человека и гепатита A [6]. Роль инфекции в патогенезе РС менее очевидна, однако большое количество исследований демонстрирует участие возбудителей инфекций и в этой патологии [13, 14]. По-видимому, оба заболевания связаны с процессом демиелинизации вследствие аутоиммунного ответа против антигенов миелина, однако конкретные механизмы этого ответа неизвестны. Вирусы могут вызывать процесс воспаления в ЦНС с выходом антигенов миелина в циркуляцию и активацией миелинреактивных T-клеток или запускать перекрестный иммунный ответ в случае сходства вирусных белков с нейроантигенами (молекулярная мимикрия) [6]. В одном из последних обзоров еще раз суммированы возможные механизмы участия вирусов в патогенезе РС. Это прямая цитотоксичность, молекулярная мимикрия, наличие T-клеток с TCR (T-cell receptor) двойной специфичности (к антигенам миелина и вирусным протеинам), побочная активация и расширение эпитопов [15].

D. Smyk и соавт. [16] подняли вопрос о наличии общих инфекционных триггеров ОДЭМ и РС. Были сопоставлены сведения разных авторов о возбудителях инфекций, повышающих риск развития ОДЭМ или РС. Как с ОДЭМ, так и с РС могут быть связаны вирус Эпштейна—Барр (EBV), CMV, VZV (varicella-zoster virus), вирус кори и коронавирус. Авторы обзора предположили, что именно эти возбудители способствуют конверсии ОДЭМ в РС. Особое внимание в этом аспекте привлекают вирусы группы герпеса и в первую очередь EBV. Роль этого герпесвируса как фактора риска РС в последние годы становится все более доказанной, что отражено в обзорах [17—19]. Большой интерес вызывают сообщения об особенностях иммунного ответа против EBV в ассоциации с РС [20]. К примеру, инфекционный мононуклеоз как мощный ответ иммунной системы подростков на первичную инфекцию EBV служит фактором наибольшего риска развития РС, что подтверждено и в России [21].

Участие EBV, как и других герпесвирусов, в патогенезе ОДЭМ изучено недостаточно. Тем не менее отдельные случаи развития ОДЭМ после перенесенного инфекционного мононуклеоза описаны в ряде публикаций. Сообщают о развитии ОДЭМ через 2 мес после острой EBV-инфекции (инфекционный мононуклеоз) у 17-летней девочки, через 10 дней после инфекционного мононуклеоза у 14-летнего мальчика и на 8-й день от начала инфекционного мононуклеоза у 36-летнего мужчины [22—24]. Вторым по частоте упоминаний в связи с РС является еще один герпесвирус — HHV-6 [18, 19]. Однако в доступной литературе мы не нашли сообщений о развитии ОДЭМ непосредственно после острой инфекции, связанной с этим герпесвирусом.

Ранее уже высказывалась мысль об одновременном участии в патогенезе РС более чем одного инфекционного агента [14], в частности нескольких герпесвирусов [15]. Особое внимание в данном аспекте привлекало сочетание 2 герпесвирусов — EBV и HHV-6 [20]. Более того, W. Fierz [25] выдвинул гипотезу о том, что взаимодействие EBV и HHV-6 является фундаментальным механизмом патогенеза РС. Доминирование при педиатрическом РС микст-инфекции EBV и HHV-6 нашло подтверждение и в наших исследованиях [26—28]. ДНК герпесвирусов была выявлена в крови 27 (69%) из 39 детей с РС. Чаще всего (в 93% случаев) была определена EBV-инфекция, но в большинстве (81%) случаев — в сочетании с HHV-6. Частота выявления обоих герпесвирусов в фазе обострения нарастала (относительно ремиссии) более чем вдвое, а в ЦСЖ — втрое. Кроме того, сочетание более чем 2 герпесвирусов (EBV+HHV-6 и HSV-1,2 или CMV) обнаружено у всех 5 детей с прогрессирующим РС по сравнению с 4 (18%, p<0,01) из 34 пациентов с РРРС. По-видимому, реактивация персистирующей герпесвирусной (EBV+HHV-6) микст-инфекции ассоциирована с обострением РРРС, а сочетание 3—4 герпесвирусов — с прогрессирующим течением болезни [26]. Далее сравнение данных у детей с диссеминированным энцефаломиелитом (ДЭМ) (n=46) и РС (n=40) показало, что возбудители инфекций выявляются в ЦСЖ у 85% пациентов с ДЭМ и 45% — с РС [27]. Из всех инфекционных агентов, выявленных в ЦСЖ пациентов при поступлении, EBV определен в 23% случаев при ДЭМ и 89% — при РС, а HHV-6 — в 8% при ДЭМ и 72% при РС. Среди инфекционных триггеров ДЭМ в 23% случаев выявлен также VZV [27]. Позднее было проведено наблюдение в течение 3—5 лет за 100 детьми с хроническим течением ДЭМ, из которых у части пациентов позднее был диагностирован РС. Разделение детей на две группы — без конверсии ДЭМ в РС (n=73) и с конверсией (n=27) — позволило выявить особенности спектра герпесвирусов, ассоциированные с конверсией. У пациентов первой группы (без перехода в РС) в большинстве (76%) случаев выявлена герпесвирусная микст-инфекция с сочетанием EBV+HHV-6+HSV-1,2. В то же время у большинства (78%) пациентов с переходом в РС выявлены два варианта герпесвирусной микст-инфекции: EBV+HHV-6 (41%) или EBV+HHV-6+VZV (37%) [28]. Вероятно, присоединение разных герпесвирусов (HSV или VZV) к патогенному сочетанию EBV+HHV-6 может по-разному влиять на течение ДЭМ. С учетом данных литературы можно высказать предположение, что HSV скорее противодействует, а VZV, напротив, способствует трансформации ДЭМ в РС [29, 30]. В самом деле, E. Waubant и соавт. [29] ранее установили, что инфекция HSV-1 снижает риск развития РС у детей, несущих главный аллель риска РС DRB1*15 в HLA-генотипе. Напротив, VZV-инфекция, персистирующая с обострениями в виде опоясывающего лишая, в 4 раза повышает риск развития РС [30]. Высказано предположение, что разный характер взаимодействия герпесвирусов между собой и с иммунной системой, а также генетическими и внешними факторами, в совокупности определяет гетерогенность клинических проявлений и течения процесса демиелинизации [15].

Иммунные клетки и цитокины при РС и ОДЭМ

Следует подчеркнуть, что иммунные факторы стали предметом исследований гораздо раньше и намного полнее изучены при РС, чем при ОДЭМ. В первой декаде века клеткам системного и локального иммунитета при РС посвящена целая серия публикаций, представленных в обзоре [31]. Установлена патогенетическая роль ряда субпопуляций CD4+ T-хелперов (Th1, Th17) и CD8+T-клеток, обладающих эффекторными или регуляторными свойствами за счет продуцируемых ими цитокинов: интерферона-γ (IFN-γ) и интерлейкинов (IL) — IL-17, IL-6, IL-10. Со временем была обозначена доминирующая роль Th17, CD8+T-клеток и B-лимфоцитов в процессе демиелинизации при РС. К примеру, A. Mouzaki и соавт. [32] показали, что у взрослых пациентов в ранней стадии РС (не более 2 мес от начала симптомов) Th17 превалируют над Th1, тогда как интратекальный синтез иммуноглобулинов G (IgG) отражает вклад B-лимфоцитов в развивающийся процесс.

В последние годы возникло понимание ключевой роли B-лимфоцитов в патогенезе РС, связанное с неожиданным успехом эмпирического способа лечения болезни с помощью анти-CD20 антител, ведущего к быстрой деплеции пула CD20+B-лимфоцитов с последующим клиническим улучшением у пациентов с РС. С учетом того, что 99,5% больных РС инфицированы EBV, рассматривается возможность положительного эффекта деплеции B-клеток, инфицированных EBV, основным резервуаром которого служат долгоживущие B-клетки памяти. Участие B-клеток в патофизиологии РС может быть связано с их функцией антигенпредставляющих клеток, а также способностью к продукции как воспалительных, так и противовоспалительных цитокинов [33].

Отдельные исследования посвящены изучению субпопуляций T-клеток циркулирующего пула при РС у детей. B. Balint и соавт. [34] сравнили пропорции «наивных» T-клеток и T-клеток памяти, а также функции регуляторных T-клеток (Treg) у детей (n=30) и взрослых (n=26) с РС. У детей с РС при более высоком, чем у взрослых, общем количестве (%) наивных T-клеток в субпопуляции недавних эмигрантов из тимуса (RTE) обнаружили диспропорцию с ростом количества T-клеток памяти при снижении доли наивных T-клеток. Кроме того, обнаружена сниженная супрессорная активность Treg наряду с редукцией среди них количества (%) RTE. По мнению авторов, это признаки ранней инволюции тимуса, вносящей свой вклад в патогенез детского РС. D. Vargas-Lowy и соавт. [35] обнаружили, что гораздо большее количество CD4+T-лимфоцитов пролиферирует в ответ на пептиды миелина у детей с РС (n=10), чем здоровых детей (n=10) или взрослых (n=10) с РС. Кроме того, у детей с РС оказалось повышенным количество Th17 среди T-клеток фенотипа центральной памяти.

Различия между детьми и взрослыми с РС найдены и в отношении субпопуляционного состава пула B-клеток крови или ЦСЖ [35]. Авторы сравнили соотношение «наивных» CD27–B-клеток и CD27+B-клеток памяти (Bm) разной степени дифференцировки, а также плазмобластов и плазматических клеток у детей (n=25) и взрослых (n=40) с РС при наличии контроля (n=66) с двумя возрастными подгруппами. В циркулирующем пуле B-лимфоцитов частота (%) наивных B-клеток и Bm у детей и взрослых с РС была сходной, с одинаковой тенденцией к росту доли наивных B-клеток и снижению количества CS (class-switched) Bm (дифференцированных B-клеток памяти с переключением на определенный класс Ig) в периоде обострения РС относительно ремиссии. Однако при обострении РС в ЦСЖ у детей значительно нарастала частота UCS (nonswitched) Bm и плазмобластов, тогда как у взрослых превалировали CS Bm и плазматические клетки. Кроме того, только у детей с РС количество (%) плазмобластов в крови было в 1,5—2 раза выше, чем в группе контроля, что можно объяснить активацией B-клеток с их трансформацией в плазмобласты уже на периферии до рекрутирования в ЦНС. Авторы считают накопление плазмобластов в крови важным биомаркером ранней фазы педиатрического РС [36].

На примере РС выделены 2 варианта развития демиелинизации, ассоциированных с разным состоянием гематоэнцефалического барьера (ГЭБ). Первый вариант обусловлен массовым вторжением в ЦНС T- и B-лимфоцитов при глубоком повреждении ГЭБ, с формированием классических бляшек демиелинизации преимущественно в белом веществе мозга. Второй вариант характеризуется постепенным накоплением T- и B-клеток (без значительного повреждения ГЭБ) в местах соединительной ткани мозга (например, в мозговых оболочках), где они становятся резидентными клетками и образуют структуры, напоминающие третичные лимфоидные фолликулы [37].

В обзоре D. Pilli с соавт. [38] рассмотрено участие различных субпопуляций T-клеток в патогенезе ряда аутоиммунных заболеваний ЦНС, включая РС и ОДЭМ. Авторы выделяют Th17 и CD8+T-клетки как вносящие наиболее весомый вклад в процесс демиелинизации при РС, отмечая черты функционального сходства между этими клетками. Клетки обеих субпопуляций способны экспрессировать маркер цитотоксичности гранзим B и продуцировать IL-17. Важно отметить, что T-клетки обеих субпопуляций в разных условиях продуцируют также IFN-γ, что ранее было неоднократно показано при РС [31]. В то же время, по имеющимся данным, в патогенезе ОДЭМ участвуют все 3 субпопуляции Th: Th1, Th2 и Th17 [30]. J. Machado-Santos и соавт. [39] в образцах аутопсии мозга 35 пациентов с РС (включая 11 случаев острого РС) изучили субпопуляционный состав лимфоцитов в очагах поражения. В группе сравнения (другие воспалительные заболевания ЦНС) был 1 случай ОДЭМ с летальным исходом через 2 дня. Во всех очагах РС доминировали CD8+T-клетки при значительном количестве CD20+B-лимфоцитов. Обнаружили ряд особенностей, отличающих ОДЭМ от острого РС: значительно большее количество T-клеток с маркерами пролиферации, а также CD8+T-клеток, экспрессирующих гранзим B, при отсутствии CD8+CD103+T-клеток памяти и гораздо меньшем количестве B-лимфоцитов.

В одной из ранних работ у детей с ОДЭМ (n=4) в сравнении с другими воспалительными заболеваниями ЦНС (n=3) и здоровыми детьми (n=10) было установлено значительное повышение в крови количества Th1 — CD3+T-клеток, продуцирующих IFN-γ, но не IL-4, в ранней фазе болезни [40]. Совсем недавно I. Mexhitaj и соавт. [41] предприняли комплексное исследование субпопуляций эффекторных и регуляторных T-клеток (Teff и Treg) в крови 23 детей с РС, 26 детей с монофазным синдромом демиелинизации (включая 6 детей с ОДЭМ) и 22 здоровых. У детей с РС оказалось значительно повышенным количество (%) CD4+Teff, а также CD8+CD161+MAIT (mucosal-associated invariant TCR) Teff-клеток относительно показателей в обеих группах сравнения. Клетки обеих субпопуляций Teff у детей с РС в ответ на активацию in vitro сильнее экспрессировали IFN-γ и IL-17, тогда как Treg проявляли сниженную супрессорную активность в отношении Teff, при повышенной резистентности последних. Частота (%) T-клеток, экспрессирующих CD161 (лектиноподобный рецептор клеток-киллеров), у пациентов с РС была повышена и среди CD4+T-лимфоцитов, особенно CD4+Teff, несущих рецепторы к хемокинам CCR2 и CCR5. По мнению авторов, выявленные особенности субпопуляционного состава T-клеток крови и особенно соотношение Teff/Treg могут быть использованы как дополнительные диагностические критерии дифференцировки между РС и ОДЭМ у детей.

В первой декаде XXI века активно продолжались исследования системной и локальной продукции цитокинов и ХК (цитокин-хемоаттрактантов) при РС (в основном у взрослых) [42, 43]. Было подтверждено накопление в крови и ЦСЖ пациентов IL-6 и ХК CXCL8 (IL-8), а также основных цитокинов Th1 и Th17 (IFN-γ и IL-17) при обострениях РС в корреляции с тяжестью и активностью процесса. Показано, что сходные процессы, связанные с миграцией в ЦНС разных субпопуляций иммунных клеток, происходят при РС и нейроинфекциях. В общей группе пациентов с РС и нейроинфекциями (n=75) обнаружено накопление в ЦСЖ 26 цитокинов/ХК. При этом у пациентов с поврежденным ГЭБ уровень 22 из них прямо коррелировал с количеством натуральных киллеров, тогда как содержание ХК CXCL13 коррелировало с количеством B-клеток независимо от состояния ГЭБ [43].

В отношении оценки уровня цитокины/ХК в ЦСЖ при воспалительных заболеваниях ЦНС у детей следует учитывать, что и в «нормальной» (без признаков воспаления) ЦСЖ детей присутствуют в значительном количестве ХК CXCL10 и CCL2 — хемоаттрактанты для T-клеток и макрофагов соответственно [44, 45]. Лишь в единичных работах был изучен ответ цитокины/ХК при РС у детей. В нашем исследовании у детей с РРРС (n=34) в периоде обострения был обнаружен (относительно ремиссии) рост в крови уровней IL-8, IL-10 и IL-6, а в ЦСЖ — IFN-γ, IL-6 и IL-10 в зависимости от тяжести обострения и в связи с реактивацией герпесвирусной инфекции [27]. C. Cala и соавт. [46] определили концентрации 25 цитокинов/ХК в сыворотке крови 40 детей с РРРС, в фазе ремиссии (n=26) или обострения (n=14). Группу контроля составили 11 здоровых детей. С обострением был связан рост уровня 16 цитокинов, ассоциированных с Th1, Th2, Th17 и др. В фазе ремиссии были повышены уровни 8 цитокинов и ХК CCL20. Методом мультивариантного дискриминационного анализа выделено 4 цитокина (IL-10, IL-21, IL-23 и IL-27), достоверно ассоциированных с диагнозом РС и обладающих прогностической ценностью в отношении развития обострения. Авторы полагают, что этот кластер цитокинов отражает существенную роль Th17 в патогенезе педиатрического РС, так как известно, что воспалительные цитокины IL-21 и IL-23 участвуют в дифференцировке Th17, а противовоспалительные IL-10 и IL-27 — в подавлении их эффекторных функций.

Ответ цитокины/ХК у детей с ОДЭМ изучался еще в самом начале XXI века. T. Ichiyama и соавт. [47] методом иммуноферментного анализа (ИФА) определили концентрации IL-1β, IL-6, IL-10, IFN-γ, фактора некроза опухолей-α (TNF-α) и sTNFR1 (мембранный белок, рецептор TNF 1) в ЦСЖ у 18 детей с ОДЭМ и группы контроля (25 детей с невоспалительными заболеваниями ЦНС). В острой фазе болезни обнаружили подъем уровней IL-6, IL-10 и sTNFR1 у 16, 13 и 11 детей соответственно, тогда как TNF-α — только у 3, а IL-1β и IFN-γ — ни у одного пациента. Авторы предположили, что в острой фазе ОДЭМ IL-6 и TNF-α ассоциированы с воспалением в ЦНС, тогда как IL-10 и sTNFR1 действуют как факторы его ограничения. В подтверждение роли IL-6 в патологии ОДЭМ другие авторы изучили его содержание в крови и ЦСЖ детей с ОДЭМ (n=14), другими воспалительными заболеваниями (n=13) и невоспалительными заболеваниями ЦНС (n=10) [48]. Концентрации IL-6 в ЦСЖ оказались достоверно выше у детей с ОДЭМ, чем с другими или невоспалительными заболеваниями. Выше оказался также индекс ЦСЖ/кровь, что, по-видимому, связано с интратекальной продукцией IL-6. J. Leake и соавт. [49] измерили содержание 3 цитокинов (IL-12, IFN-γ и IL-10) в ЦСЖ 11 детей с ОДЭМ в сравнении с контролем (образцы ЦСЖ детей без плеоцитоза, n=28). Статистически значимых различий концентраций всех 3 цитокинов в 2 группах не обнаружили, но у 2 из 3 детей с последующей конверсией ОДЭМ в РС изначальныйй уровень IFN в 10 раз превышал показатели в группе с монофазным ОДЭМ. T. Ishizu и соавт. [50] сравнили концентрации 16 цитокинов/ХК в ЦСЖ детей с ОДЭМ (n=14) и невоспалительными заболеваниями ЦНС (n=20), определенные мультиплексным методом CBA (Cytometric Bead Array). Средние значения концентраций 5 цитокинов врожденного иммунитета, а также цитокины Th1 (IFN-γ, IL-2, TNF-α) и Th2 (IL-4, IL-5, IL-10) оказались значительно выше при ОДЭМ, чем при невоспалительных заболеваниях, тогда как уровни IL-17 не различались. По мнению авторов, полученные результаты свидетельствуют об активации нейтрофилов, макрофагов/микроглии, Th1 и Th2 (но не Th17) при монофазном ОДЭМ у детей.

Во второй декаде века K. Kothur и соавт. [51] определили (методом мультиплексного CBA) концентрации 32 цитокинов/ХК в ЦСЖ детей с иммуно-опосредованными энцефалитами, включая ОДЭМ (n=16) и анти-NMDAR (anti-N-methyl-D-aspartate receptor) энцефалит (n=11), в сравнении с инфекционным (энтеровирусным, n=16). Группу контроля составили 20 детей с невоспалительными заболеваниями ЦНС. У детей с ОДЭМ значительно выше контроля оказался гораздо больший спектр цитокинов/ХК, чем у детей с анти-NMDAR или энтеровирусным. Более того, концентрации в ЦСЖ цитокинов/ХК, относящихся к Th1 (IFN-γ, CXCL9), Th2 (IL-4, IL-13, CCL17), Th17 (IL-17A, IL-21) и B-лимфоцитам (CXCL13, CCL19), были статистически значимо выше при ОДЭМ, чем энтеровирусных или анти-NMDAR энцефалитах. Иные результаты получили другие авторы, определив (методом ИФА) концентрации 2 ХК Th1 (CXCL10 и CXCL11) и ХК B-клеток CXCL13 в сыворотке крови и ЦСЖ у 23 детей с ОДЭМ и группы контроля (20 детей с острой инфекцией без признаков поражения ЦНС) [52]. Уровень в крови CXCL10 у детей с ОДЭМ был в среднем заметно ниже, чем в группе контроля, тогда как в ЦСЖ различий не было, как и уровней CXCL11 и CXCL13 в обеих средах.

Особый интерес представляют сравнительные исследования с определением цитокинов/ХК в биосредах пациентов 2 групп — с РС и ОДЭМ. Еще в 2006 г. D. Franciotta и соавт. [53] сообщили о различиях концентраций ХК в ЦСЖ взрослых пациентов с РС (n=14) и ОДЭМ (n=17). Тестируя с помощью ИФА 8 цитокинов Th1/Th2-типов и 18 ХК, авторы не обнаружили различий их концентраций в сыворотке пациентов трех групп (включая группу здорового контроля). Только в ЦСЖ у пациентов с ОДЭМ оказались значительно выше уровни ХК для нейтрофилов (CXCL7) и Th2 (CCL1, CCL17 и CCL22), чем у больных РС. Позднее было проведено сравнение концентраций цитокинов/ХК в ЦСЖ детей с разными неврологическими заболеваниями, в том числе РС и ОДЭМ [54, 55]. P. Horellou и соавт. [54] определили уровни 7 цитокинов (IL-2, IL-4, IL-6, IL-10, TNF-а, IFN-γ и IL-17A) в ЦСЖ 17 детей с монофазным ОДЭМ и 17 детей с РС при первом эпизоде демиелинизации до начала терапии. Группу контроля составили 12 детей с невоспалительными заболеваниями ЦНС. Цитокины IFN-γ и IL-10 были обнаружены у 2 детей, а IL-17A — у 2 детей с ADS, но ни у одного с РС или невоспалительными заболеваниями. IL-2, IL-4 и TNF-а не найдены ни в одном из 46 образцов ЦСЖ. Только уровень IL-6 оказался значительно выше при ADS, чем РС или невоспалительных заболеваниях (66±24 пг/мл по сравнению с 14,8±9,4 и 2,2±1,0 пг/мл, p<0,005). Недавно Z. Liba и соавт. [55] в поиске дополнительных биомаркеров воспаления мозга изучили, используя технологию Luminex multiple bead, содержание 7 цитокинов и 4 ХК в ЦСЖ 87 детей: с иммуноопосредованными энцефалитами (n=27) — основная группа, включающая ОДЭМ (n=8), анти-NMDAR энцефалит (n=8) и другие иммуноопосредованные энцефалиты, а также группы детей с КИС (n=25), РС (n=17), нейроборрелиозом (n=11) и группа контроля (дети с невоспалительными заболеваниями, n=12). Уровни 6 цитокинов (IL-4, IL-7, IL-10, IL-15, IL-17A и IFN-γ) в большинстве образцов ЦСЖ были ниже порога чувствительности метода, тогда как концентрации 4 ХК (CCL2, CXCL8, CXCL10, CXCL13) и цитокина IL-6 в основной группе были значительно выше, чем в контрольной (p<0,001). Уровень ХК для B-лимфоцитов CXCL13 (>11 пг/мл) был определен как наилучший критерий нейровоспаления для всех образцов ЦСЖ основной группы, а CXCL8 (IL-8) и CXCL13 — для образцов ЦСЖ без плеоцитоза. Обнаружены некоторые различия в содержании IL-6, CXCL13 и CXCL10 в зависимости от конкретного диагноза. Например, пороговый уровень хемоаттрактанта для Th1 CXCL10 (317 пг/мл) оказался превышен у большинства (18 из 27, 66%) пациентов с иммуноопосредованными энцефалитами, но только у 5 (24%) из 17 детей с РС и 1 из 25 (4%) — с КИС. По-видимому, в перспективе рост в ЦСЖ ряда конкретных цитокинов/ХК (IL-6, CXCL13, CXCL8, CXCL10) может служить не только общим диагностическим маркером нейровоспаления, но и вспомогательным критерием дифференциальной диагностики различных воспалительных заболеваний мозга у детей [55].

Заключение

В качестве одного из общих факторов патогенеза РС и ОДЭМ обсуждается триггерная роль инфекции, очевидная при ОДЭМ и обоснованная многими фактами при РС [6, 7, 14, 15]. Наиболее доказана связь между РС и EBV инфекцией [17—21]. Ряд вирусов (в основном герпесвирусы) связан как с РС, так и с ОДЭМ, и, возможно, способствует конверсии ОДЭМ в РС [16]. У большинства детей с хроническим течением ДЭМ выявлена герпесвирусная микст-инфекция с различным сочетанием герпесвирусов у пациентов с последующей конверсией в РС и без конверсии [28].

Обнаружены некоторые различия состава иммунных клеток — главных участников патогенеза РС и ОДЭМ [32, 33, 38]. Установлены особенности соотношения Teff/Treg в крови детей с РС и острым синдромом демиелинизации, которые могут быть использованы в целях дифференциальной диагностики [41]. Содержание цитокинов/ХК в крови и ликворе детей с РС или ОДЭМ малоизучено, а прямое сравнение ответа цитокины/ХК при РС и ОДЭМ проведено лишь в единичных работах [53—55]. Следует отметить неоднозначность результатов оценки уровня цитокинов (в частности, цитокина Th17) при ОДЭМ у детей [47—51], что могло быть обусловлено различиями групп контроля и метода определения. Тем не менее многие авторы отмечают патогенетическую значимость уровня IL-6 в ЦСЖ детей как с РС, так и с ОДЭМ [26, 47—49, 55], а концентрации IL-6 в ЦСЖ детей с монофазным ОДЭМ оказались значительно выше, чем с РС [54]. Предполагают, что подъем в ЦСЖ уровня IL-6 и трех ХК (CXCL8/IL-8, CXCL10 и CXCL13) в дальнейшем может быть использован для дифференцировки различных воспалительных заболеваний мозга у детей [55]. Сообщение [49] привлекает внимание к экстремально высокому уровню IFN-γ в ЦСЖ детей с последующей конверсией ОДЭМ в РС. Не вызывает сомнения, что адекватное патогенетическое лечение также влияет на возможность трансформации ОДЭМ в РС [12, 28]. При этом препарат Цитофлавин за счет комплексного действия (антиоксидантного, антигипоксантного, антиапоптотического, ремиелинизирующего, антикоагулянтного, эндотелийпротективного, противовоспалительного) может изменить характер течения демиелинизирующих заболеваний при условии своевременного его включения в терапию [27].

Наиболее доказанным биомаркером РС (у взрослых и детей) являются олигоклональные полосы, присутствие которых в ЦСЖ (но не сыворотке крови) свидетельствует об интратекальном синтезе Ig [33, 56—58]. Интратекальные олигоклональные полосы редко обнаруживаются при ОДЭМ, что может быть использовано в дифференциальной диагностике ОДЭМ и РС [27]. Однако у большинства детей с ОДЭМ находят «отраженные» олигоклональные полосы IgG [27, 48] в ассоциации с выраженностью воспалительного процесса [48], которые могут быть использованы в прогнозе дальнейшего течения болезни. Независимым маркером интратекального синтеза Ig у взрослых и детей с КИС или РС считают также свободные легкие каппа-цепи, накопление которых в ЦСЖ не только подтверждает диагноз, но и предсказывает конверсию КИС в РС [59—61]. По-видимому, интратекальный синтез свободных легких каппа-цепей нехарактерен для монофазного ОДЭМ [60].

В целом поиск достоверных биологических критериев диагностики и прогноза течения РС и ОДЭМ у детей только начинается, но уже можно выделить ряд биомаркеров, заслуживающих внимания при дальнейших сравнительных исследованиях патогенеза этих демиелинизирующих заболеваний: связь с герпесвирусной инфекцией, спектр субпопуляций иммунных клеток, концентрации IL-6, IFN-γ и ряда ХК, олигоклональные полосы Ig и свободные легкие каппа-цепи, уровень АТ к нативному MOG, тау-протеин и другие нейроспецифические белки (например, нейрофиламенты), малоизученные при РС и ОДЭМ у детей. Представляется важным оценить значимость всех этих факторов не только для дифференцировки между ОДЭМ и острым ОДЭМ-подобным началом педиатрического РС, но и для разграничения монофазного ОДЭМ и хронического ДЭМ с риском последующей конверсии в РС.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

The authors declare no conflicts of interest.

Литература / References:

  1. Rostasy K, Bajer-Kornek B, Venkateswaran S, Hemingway C, Tardieu M. Differential diagnosis and evaluation in pediatric inflammatory demyelinating disorders. Neurology. 2016;87(9 suppl 2):28-37.  https://doi.org/10.1212/WNL.0000000000002878
  2. Matricardi S, Farello G, Savasta S, Verrotti A. Understanding childhood neuroimmune diseases of the central nervous system. Front Pediatr. 2019;7:511.  https://doi.org/10.3389/fped.2019.00511
  3. Быкова О.В., Платонова А.Н., Гольцова Н.В., Кузнецова Г.В., Кузенкова Л.М., Бойко А.Н. Ранняя дифференциальная диагностика и длительная иммуномодулирующая терапия хронических воспалительных демиелинизирующих заболеваний центральной нервной системы у детей и подростков. Вопросы современной педиатрии. 2009;8:6:139-145. 
  4. Brenton J, Banwell B. Therapeutic approach to the management of pediatric demyelinating disease: multiple sclerosis and acute disseminated encephalomyelitis. Neurotherapeutics. 2016;13:1:84-95.  https://doi.org/10.1007/s13311-015-0396-0
  5. Чередниченко О.А., Карнаух В.Н. Острый диссеминированный энцефаломиелит Сибирское медицинское обозрение. 2019;6:15-23.  https://doi.org/10.20333/2500136-2019-6-15-23
  6. Esposito S, Di Pietro G, Madini B, Mastrolia M, Rigante D. A spectrum of inflammation and demyelination in acute disseminated encephalomyelitis (ADEM) of children. Autoimmun Rev. 2015;14:10:923-929.  https://doi.org/10.1016/j.autrev.2015.06.002
  7. Gray M, Gorelick M. Acute disseminated encephalomyelitis. Pediatric Emergency Care. 2016;32:6:395-400.  https://doi.org/10.1097/PEC.0000000000000825
  8. Pohl D, Alper G, Van Haren K, Kornberg A, Lucchinetti C, Tenembaum S, Belman A. Acute disseminated encephalomyelitis: Updates on an inflammatory CNS syndrome. Neurology. 2016;87:9(suppl 2):38-45.  https://doi.org/10.1212/WNL.0000000000002825
  9. Мельников М.В., Бойко О.В., Лащ Н.Ю., Попова Е.В., Мартынов М.Ю., Бойко А.Н. Острый рассеянный энцефаломиелит и рассеянный склероз: открытые вопросы дифференциальной диагностики на примере клинического случая. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. Спецвыпуск. 2012;112:9:52-58. 
  10. Krupp L, Tardieu M, Amato M, Banwell B, Chitnis T, Dale R, Ghezzi A, Hintzen R, Kornberg A, Pohl D, Rostasy K, Tenembaum S, Wassmer E. International Pediatric Multiple Sclerosis Study Group criteria for pediatric multiple sclerosis and immune-mediated central nervous system demyelinating disorders: revisions to the 2007 definitions. Mult Scler. 2013;19:10:1261-1267. https://doi.org/10.1177/1352458513484547
  11. Скрипченко Е.Ю., Иванова Г.П., Скрипченко Н.В., Карев В.Е., Егорова Е.С., Железникова Г.Ф., Суровцева А.В., Мурина Е.А. Инфекционные васкулиты в патогенезе демиелинизирующих заболеваний ЦНС у детей. Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2018;3:63:76-82.  https://doi.org/10.21508/1027-4065-2018-63-3-76-83
  12. Скрипченко Н.В., Иванова Г.П., Скрипченко Е.Ю., Суровцева А.В. Демиелинизирующие заболевания нервной системы у детей. Этиология, клиника, патогенез, диагностика, лечение. М.: Комментарий; 2016.
  13. Lassmann H. Acute disseminated encephalomyelitis and multiple sclerosis. Brain. 2010;133(Pt 2):317-319.  https://doi.org/10.1093/brain/awp342
  14. Libbey J, Cusick M, Fujinami R. Role of pathogens in multiple sclerosis. Int Rev Immunol. 2014;33:4:266-283.  https://doi.org/10.3109/08830185.2013.823422
  15. Donati D. Viral infections and multiple sclerosis. Drug Discov Today: Dis Model. 2020;32:27-33.  https://doi.org/10.1016/j.ddmod.2020.02.003
  16. Smyk D, Alexander A, Walker M, Walker M. Acute disseminated encephalomyelitis progressing to multiple sclerosis: are infectious triggers involved? Immunol Res. 2014;60:1:16-22.  https://doi.org/10.1007/s12026-014-8499-y
  17. Попова Е.В., Бойко А.Н., Хачанова Н.В., Шаранова С.Н. Вирус Эпштейна—Барр в патогенезе рассеянного склероза (обзор). Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2014;2:2:29-34. 
  18. Железникова Г.Ф., Скрипченко Н.В., Иванова Г.П., Суровцева А.В., Скрипченко Е.Ю. Герпесвирусы и рассеянный склероз. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2016;9:133-143.  https://doi.org/10.17116/jnevro201611691133-143
  19. Tarlinton R, Khaibullin T, Granatov E, Martynova E, Rizvanov A, Khaiboullina S. The Interaction between viral and environmental risk factors in the pathogenesis of multiple sclerosis. Int J Mol Sci. 2019;20:2:E303. https://doi.org/10.3390/ijms20020303
  20. Железникова Г.Ф., Скрипченко Н.В., Алексеева Л.А., Скрипченко Е.Ю. Иммунный ответ на герпесвирусы и рассеянный склероз. Рос Иммунол журн. 2019;13(22):4:15-30. 
  21. Гусев Е.И., Бойко А.Н., Ходова М.А., Смирнова Н.Ф., Сиверцева С.А., Смирнов А.В. Роль инфекционных заболеваний в развитии рассеянного склероза в республике Северная Осетия — Алания. Детские инфекции. 2014;1:19-25. 
  22. Bahadori H, Williams V, Turner R, Rumboldt Z, Reigart J, Fowler S, Chavis P, Maria B. Acute disseminated encephalomyelitis following infectious mononucleosis. J Child Neurol. 2007;22:3:324-328.  https://doi.org/10.1177/0883073807300534
  23. Mohsen H, Abu Zeinah G, Elsotouhy A, Mohamed K. Acute disseminated encephalomyelitis following infectious mononucleosis in a toddler. BMJ Case Rep. 2013, published online jul 10 2013. pii: bcr2013010048. https://doi.org/10.1136/bcr-2013-010048
  24. Nakamura Y, Nakajima H, Tani H, Hosokawa T, Ishida S, Kimura F, Kaneko K, Takahashi T, Nakashima I. Anti-MOG antibody-positive ADEM following infectious mononucleosis due to a primary EBV infection: a case report. BMC Neurol. 2017;17:1:76.  https://doi.org/10.1186/s12883-017-0858-6
  25. Fierz W. Multiple sclerosis: an example of pathogenic viral interaction? Virol J. 2017;14:42.  https://doi.org/10.1186/s12985-017-0719-3
  26. Железникова Г.Ф., Скрипченко Н.В., Иванова Г.П., Суровцева А.В., Монахова Н.Е. Цитокины и герпесвирусы при рассеянном склерозе у детей. Инфекция и иммунитет. 2015;5:4:349-358.  https://doi.org/10.15789/2220-7619-2015-4-349-358
  27. Скрипченко Н.В., Иванова Г.П., Скрипченко Е.Ю., Суровцева А.В., Мурина Е.А., Железникова Г.Ф., Алексеева Л.А. Клинико-лабораторная дифференциальная диагностика энцефалитов, диссеминированных энцефаломиелитов и рассеянного склероза у детей. Педиатрия. Журнал им. Г.Н. Сперанского. 2017;96:4:34-42. 
  28. Скрипченко Е.Ю., Лобзин В.Ю., Астапова А.В., Лобзин Ю.В., Скрипченко Н.В., Вильниц А.А., Горелик Е.Ю., Пульман Н.Ф., Алексеева Л.А., Климкин А.В., Мурина Е.А., Войтенков В.Б., Голева О.В. Способ прогнозирования трансформации хронических диссеминированных энцефаломиелитов в рассеянный склероз у детей. Приоритетная справка на изобретение №2020109805 от 05.03.20. Ссылка активна на 10.02.21.  https://findpatent.ru/patent/274/2740243.html
  29. Waubant E, Mowry E, Krupp L, Chitnis T, Yeh E, Kuntz N, Ness J, Chabas D, Strober J, McDonald J, Belman A, Milazzo M, Gorman M, Weinstock-Guttman B, Rodriguez M, Oksenberg J, James J. Common viruses associated with lower pediatric multiple sclerosis risk. Neurology. 2011;76:23:1989-1995. https://doi.org/10.1212/WNL.0b013e31821e552a
  30. Kang J, Sheu J, Kao S, Lin H. Increased risk of multiple sclerosis following herpes zoster: a nationwide, population-based study. J Infect Dis. 2011;204:2:188-192.  https://doi.org/10.1093/infdis/jir239
  31. Железникова Г.Ф., Скрипченко Н.В., Иванова Г.П., Суровцева А.В., Скрипченко Е.Ю. Факторы иммунопатогенеза рассеянного склероза. Рос иммунол журн. 2015;9:3:261-282. 
  32. Mouzaki A, Rodi M, Dimisianos N, Emmanuil A, Kalavrizioti D, Lagoudaki R, Grigoriadis N, Papathanasopoulos P. Immune parameters that distinguish multiple sclerosis patients from patients with other neurological disorders at presentation. PLoS One. 2015;10:8:e0135434. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0135434
  33. Lehmann-Horn K, Kinzel S, Weber M. Deciphering the role of B cells in multiple sclerosis — towards specific targeting of pathogenic function. Int J Mol Sci. 2017;18:10:2048. https://doi.org/10.3390/ijms18102048
  34. Balint B, Haas J, Schwarz A, Jarius S, Fürwentsches A, Engelhardt K, Bussmann C, Ebinger F, Fritzsching B, Friedemann P, Seidel U, Vlaho S, Huppke P, Gärtner J, Wildemann B. T-cell homeostasis in pediatric multiple sclerosis: old cells in young patients. Neurology. 2013;81:9:784-792.  https://doi.org/10.1212/WNL.0b013e3182a2ce0e
  35. Vargas-Lowy D, Kivisäkk P, Gandhi R, Raddassi K, Soltany P, Gorman M, Khoury S, Chitnis T. Increased Th17 response to myelin peptides in pediatric multiple sclerosis. Clin Immunol. 2013;146:3:176-184.  https://doi.org/10.1016/j.clim.2012.12.008
  36. Schwarz A, Balint B, Korporal-Kuhnke M, Jarius S, von Engelhardt K, Fürwentsches A, Bussmann C, Ebinger F, Wildemann B, Haas J. B-cell populations discriminate between pediatric and adult onset multiple sclerosis. Neurol Neuroimmunol Neuroinflamm. 2016;4:1:e309. https://doi.org/10.1212/NXI.0000000000000309
  37. Lassmann H. Pathogenic mechanisms associated with different clinical courses of multiple sclerosis. Front Immunol. 2019;9:art. 3116. https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.03116
  38. Pilli D, Zou A, Tea F, Dale R, Brilot F. Expanding role of T cells in human autoimmune diseases of the central nervous system. Front Immunol. 2017;8:art. 652.  https://doi.org/10.3389/fimmu.2017.00652
  39. Machado-Santos J, Saji E, Tröscher A, Paunovic M, Liblau R, Gabriely G, Bien C, Bauer J, Lassmann H. The compartmentalized inflammatory response in the multiple sclerosis brain is composed of tissue-resident CD8+ T lymphocytes and B cells. Brain. 2018;141:7:2066-2082. https://doi.org/10.1093/brain/awy151
  40. Yoshitomi T, Matsubara T, Nishikawa M, Katayama K, Ichiyama T, Hayashi T, Furukawa S. Increased peripheral blood interferon gamma-producing T cells in acute disseminated encephalomyelitis. J Neuroimmunol. 2000;111:1-2:224-228.  https://doi.org/10.1016/s0165-5728(00)00358-1
  41. Mexhitaj I, Nyirenda M, Li R, O’Mahony J, Rezk A, Rozenberg A, Moore C, Johnson T, Sadovnick D, Collins D, Arnold D, Gran B, Yeh E, Marrie R, Banwell B, Bar-Or A. Abnormal effector and regulatory T cell subsets in paediatric-onset multiple sclerosis. Brain. 2019;142:3:617-632.  https://doi.org/10.1093/brain/awz017
  42. Железникова Г.Ф., Скрипченко Н.В., Алексеева Л.А., Скрипченко Е.Ю. Цитокины адаптивного иммунитета в патогенезе рассеянного склероза. Росс иммунол журн. 2017;11(20):1:13-25. 
  43. Железникова Г.Ф., Скрипченко Н.В., Алексеева Л.А., Скрипченко Е.Ю. Хемокины в патогенезе рассеянного склероза. Росс иммунол журн. 2017;11(20):4:15-29. 
  44. Lepennetier G, Hracsko Z, Unger M, Van Griensven M, Grummel V, Krumbholz M, Berthele A, Hemmer B, Kowarik M. Cytokine and immune cell profiling in the cerebrospinal fluid of patients with neuro-inflammatory diseases. J Neuroinflammation. 2019;16:1:219.  https://doi.org/10.1186/s12974-019-1601-6
  45. Pranzatelli M, Tate E, McGee N, Colliver J. Pediatric reference ranges for proinflammatory and anti-inflammatory cytokines in cerebrospinal fluid and serum by multiplexed immunoassay. J Interferon Cytokine Res. 2013;33:9:523-528.  https://doi.org/10.1089/jir.2012.0132
  46. Cala C, Moseley C, Steele C, Dowdy S, Cutter G, Ness J, DeSilva T. T cell cytokine signatures: biomarkers in pediatric multiple sclerosis. J Neuroimmunol. 2016;297:1-8.  https://doi.org/10.1016/j.jneuroim.2016.04.015
  47. Ichiyama T, Shoji H, Kato M, Sawaishi Y, Ozawa H, Matsubara T, Furukawa S. Cerebrospinal fluid levels of cytokines and soluble tumour necrosis factor receptor in acute disseminated encephalomyelitis. Eur J Pediatr. 2002;161:3:133-137.  https://doi.org/10.1007/s00431-001-0888-2
  48. Dale R, Morovat A. Interleukin-6 and oligoclonal IgG synthesis in children with acute disseminated encephalomyelitis. Neuropediatrics. 2003;34:3:141-145.  https://doi.org/10.1055/s-2003-41281
  49. Leake J, Albani S, Kao A, Senac M, Billman G, Nespeca M, Paulino A, Quintela E, Sawyer M, Bradley J. Acute disseminated encephalomyelitis in childhood: epidemiologic, clinical and laboratory features. Pediatr Infect Dis J. 2004;23:8:756-764.  https://doi.org/10.1097/01.inf.0000133048.75452.dd
  50. Ishizu T, Minohara M, Ichiyama T, Kira R, Tanaka M, Osoegawa M, Hara T, Furukawa S, Kira J. CSF cytokine and chemokine profiles in acute disseminated encephalomyelitis. J Neuroimmunol. 2006;175:1-2:52-58.  https://doi.org/10.1016/j.jneuroim.2006.03.020
  51. Kothur K, Wienholt L, Mohammad S, Tantsis E, Pillai S, Britton P, Jones C, Angiti R, Barnes E, Schlub T, Bandodkar S, Brilot F, Dale R. Utility of CSF cytokine/chemokines as markers of active intrathecal inflammation: comparison of demyelinating, anti-NMDAR and enteroviral encephalitis. PLoS One. 2016;11:8:e0161656. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0161656
  52. Maric L, Lepej S, Gorenec L, Grgic I, Trkulja V, Rode O, Roglic S, Grmoja T, Barisic N, Tesovic G. Chemokines CXCL10, CXCL11, and CXCL13 in acute disseminated encephalomyelitis, non-polio enterovirus aseptic meningitis, and neuroborreliosis: CXCL10 as initial discriminator in diagnostic algorithm? Neurol Sci. 2018;39:3:471-479.  https://doi.org/10.1007/s10072-017-3227-8
  53. Franciotta D, Zardini E, Ravaglia S, Piccolo G, Andreoni L, Bergamaschi R, Romani A, Tavazzi E, Naldi P, Ceroni M, Marchioni E. Cytokines and chemokines in cerebrospinal fluid and serum of adult patients with acute disseminated encephalomyelitis. J Neurol Sci. 2006;247:2:202-207.  https://doi.org/10.1016/j.jns.2006.05.049
  54. Horellou P, Wang M, Keo V, Chrétien P, Serguera C, Waters P, Deiva K. Increased interleukin-6 correlates with myelin oligodendrocyte glycoprotein antibodies in pediatric monophasic demyelinating diseases and multiple sclerosis. J Neuroimmunol. 2015;289:1-7.  https://doi.org/10.1016/j.jneuroim.2015.10.002
  55. Liba Z, Nohejlova H, Capek V, Krsek P, Sediva A, Kayserova J. Utility of chemokines CCL2, CXCL8, 10 and 13 and interleukin 6 in the pediatric cohort for the recognition of neuroinflammation and in the context of traditional cerebrospinal fluid neuroinflammatory biomarkers. PLoS One. 2019;14:7:e0219987. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0219987
  56. Schwenkenbecher P, Wurster U, Konen F, Gingele S, Sühs K, Wattjes M, Stangel M, Skripuletz T. Impact of the McDonald criteria 2017 on early diagnosis of relapsing-remitting multiple sclerosis. Front Neurol. 2019;10:188.  https://doi.org/10.3389/fneur.2019.00188
  57. Magliozzi R, Cross A. Can CSF biomarkers predict future multiple sclerosis disease activity and severity? Mult Scler. 2020;8: 43-48.  https://doi.org/10.1177/1352458519871818
  58. Reiber H, Teut M, Pohl D, Rostasy K, Hanefeld F. Paediatric and adult multiple sclerosis: age-related differences and time course of the neuroimmunological response in cerebrospinal fluid. Mult Scler. 2009;15:12:1466-1480. https://doi.org/10.1177/1352458509348418
  59. Presslauer S, Milosavljevic D, Huebl W, Aboulenein-Djamshidian F, Krugluger W, Deisenhammer F, Senel M, Tumani H, Hegen H. Validation of kappa free light chains as a diagnostic biomarker in multiple sclerosis and clinically isolated syndrome. A multicenter study. Mult Scler. 2016;22:502-510.  https://doi.org/10.1177/1352458515594044
  60. Тотолян Н.А., Готовчиков А.А., Лапин С.В., Максимов И.В., Кодзаева А.Ю., Прахова Л.Н., Ильвес А.Г., Скоромец А.П., Тотолян А.А., Скоромец А.А. Интратекальный синтез иммуноглобулинов в диагностике и дифференциальной диагностике рассеянного склероза. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2012;112:9(2):73-86. 
  61. Назаров В.Д., Макшаков Г.С., Мазинг А.В., Суркова Е.А., Краснов В.С., Шумилина М.В., Тотолян Н.А., Евдошенко Е.П., Лапин С.В., Эмануэль В.Л., Скоромец А.А. Роль определения свободных легких цепей иммуноглобулинов в диагностике дебюта рассеянного склероза. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2017;117:2(2):60-65.  https://doi.org/10.17116/jnevro20171172260-65

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.