Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Федоренко В.А.

ГБУЗ МО «Московский областной научно-исследовательский институт акушерства и гинекологии» Минздрава Московской области

Мельников А.П.

ГБУЗ МО «Московский областной научно-исследовательский институт акушерства и гинекологии» Минздрава Московской области

Нарушения фибринолиза в акушерско-гинекологической практике

Авторы:

Федоренко В.А., Мельников А.П.

Подробнее об авторах

Прочитано: 4039 раз


Как цитировать:

Федоренко В.А., Мельников А.П. Нарушения фибринолиза в акушерско-гинекологической практике. Российский вестник акушера-гинеколога. 2022;22(6):18‑26.
Fedorenko VA, Me’lnikov AP. Fibrinolysis disorders in obstetric and gynecologic practice. Russian Bulletin of Obstetrician-Gynecologist. 2022;22(6):18‑26. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/rosakush20222206118

Рекомендуем статьи по данной теме:
О мо­ле­ку­ляр­но-ге­не­ти­чес­ких пре­дик­то­рах пре­эк­лам­псии. Рос­сий­ский вес­тник аку­ше­ра-ги­не­ко­ло­га. 2024;(6):26-34

Введение

Гомеостаз человека поддерживается многими системами организма. Система гемокоагуляции — одна из основных, изменяющихся при беременности, и является ключевой при развитии ряда патологических состояний. Она включает звено белков-прокоагулянтов, активаторов и ингибиторов свертывания крови и фибринолиза, тромбоцитарно-сосудистое и фибринолитическое звенья.

Цель публикации — ознакомление практикующих акушеров-гинекологов со структурой системы фибринолиза в организме человека, современными методами лабораторной диагностики нарушений ее функционирования и возможностями использования полученных сведений в клинической практике для улучшения результатов лечения.

В физиологических условиях фибринолиз активируется после того, как сформируется остановивший кровотечение тромб. Клетки эндотелия, находящиеся в соприкосновении с границей тромба, вырабатывают активаторы фибринолиза, что приводит к лизису лишних тромботических масс, кроме места повреждения сосуда, восстановлению проходимости сосуда (при закупорке его просвета) [1].

При избыточном поступлении тромбина в кровоток система фибринолиза является «последним редутом» для восстановления проходимости сосуда и жидкого состояния крови после перенесенной несостоятельности систем активации белков-антикоагулянтов: гепаран сульфат-антитромбин-гепарина, тромбомодулинактивированного протеина C и системы активации тромбоцитов с образованием тромбоцитарных тромбов в микроциркуляторном русле.

Фибринолиз наряду с функцией клеток эндотелия, тромбоцитов, коагуляционной системы является одной из ключевых систем для поддержания гемостатического баланса. Изучение активации системы фибринолиза имеет большое значение, так как вносит вклад в изучение и коррекцию геморрагических и тромботических осложнений в клинической практике [2].

Физиология системы фибринолиза представлена на рисунке.

Система фибринолиза [3].

Ключевой реакцией является переход неактивного белка плазминогена в плазмин, который расщепляет фибриноген и фибрин до продуктов деградации фибрина (ПДФ)/фибриногена. Активаторами указанной реакции служат фактор Хагемана (FXII), калликреин (внутренняя активация), тканевой активатор плазминогена (ТПА, t-PA), преимущественно из эндотелиальных клеток, урокиназный активатор плазминогена (УПА). Ингибируют реакцию следующие факторы: ингибитор фибринолиза, активируемый тромбином (thrombin-activatable fibrinolysis inhibitor, TAFI), который действует на фибрин, уменьшая количество локусов связывания плазминогена; гликопротеин, богатый гистидином, ингибитор тканевого активатора плазминогена (plasminogen activator inhibitor, PAI) — PAI-1 и PAI-2 и прямые ингибиторы плазмина [3]. Существуют следующие естественные ингибиторы плазмина: α1-антитрипсин, α2-антиплазмин, С1-ингибитор, α2-макроглобулин. Избыточная продукция плазмина ингибируется TAFI. Плазмин участвует в ангиогенезе, опухолевом росте и системном воспалении за счет способности к расщеплению внеклеточных матричных белков, активации металлопротеиназ и проурокиназы, связываясь с рецепторами и локализуя свое действие на поверхности клеток, способствуя миграции клеток и преодолению тканевых барьеров [4].

Экспрессия эндогенного ТПА эндотелием — основной механизм активации эндогенного фибринолиза. Экспериментально показано, что уменьшение скорости нарушенного ламинарного потока снижало экспрессию мРНК ТПА эндотелия и приводило к отложению фибрина в отсутствие повреждения эндотелия [5]. Имеются данные, что фрагментированные β2GP1 могут быть чувствительным маркером активации фибринолиза in vivo; они могут связываться с плазминогеном и замедлять его превращение в плазмин под действием ТПА [6].

Следует помнить, что активность плазминогена возрастает в 100—1000 раз при наличии фибрина, поэтому плазмин активен в местах образования фибринового сгустка. Урокиназный активатор плазминогена активируется через рецептор — урокиназный рецептор активатора плазминогена, который находится на иммунных, эндотелиальных клетках, мегакариоцитах; этот рецептор не требует присутствия фибрина для выполнения своей функции — активации плазминогена [7].

Трудная задача состоит в диагностике нарушений фибринолиза, поскольку в норме фибринолиз in vitro происходит в течение суток. К тестам, позволяющим оценить активность фибринолитической системы, относятся определение содержания плазминогена, α2-антиплазмина, гликопротеина, богатого гистидином, антигена PAI-1, определение активности PAI-1, тест 10-минутной венозной окклюзии с определением антигена ТПА и времени лизиса эуглобулинового сгустка [8].

Большой клинический и научный интерес представляет использование глобальных коагулологических тестов при тяжелых акушерских осложнениях [9]. Глобальными тестами, позволяющими оценить, в том числе фибринолитическую активность являются тромбоэластография (ТЭГ), ротационная тромбоэластометрия (ROTEM) [10], тест генерации тромбина (ТГТ) [11], тест определения общего гемостатического потенциала (ОГП) [12], тест Sonoclot1 (оценка процесса коагуляции по вызванным ультразвуком резонансным колебаниям сгустка крови, характеристика которых зависит от плотности сгустка) [13]. Тест ОГП определяет суммарный эффект действия прокоагулянтов и антикоагулянтов, а также фибринолитических факторов в плазме, обедненной тромбоцитами, дополняя показатели, получаемые в лаборатории коагулологии. Это объективный и малозатратный тест [14]. Тотальным тестом определения состояния гемокоагуляции и фибринолиза является соноклот, который представляет информацию о скорости образования фибрина и его полимеризации, взаимодействия с тромбоцитами, оценивает функцию тромбоцитов и фибринолиз [13].

В связи со сложным взаимодействием и регулированием активаторов и ингибиторов плазмин-плазминогеновой системы определение отдельных ее компонентов не может дать четкого представления о состоянии этой системы. Пример: высокое содержание плазминогена может свидетельствовать о следующем: 1) в организме имеется мало плазмина, поскольку плазминоген не израсходован; 2) высокое содержание плазминогена свидетельствует о возможности образования большого количества плазмина [3].

Кроме того, важно учитывать, что компоненты гемокоагуляции и фибринолитической системы подвержены изменениям согласно циркадному ритму. M. Budkowskaa и соавт. [15] установлено, что в 14:00 наблюдаются повышение числа тромбоцитов, увеличение концентрации ТПА, D-димеров и увеличение протромбинового времени (ПТВ); максимальная активация фибринолиза отмечается после полудня. Концентрация PAI-1 максимальна в 7:00, минимальна в 16:00; концентрация ТПА максимальна в 14:00, а минимальна в 8:00. Концентрация D-димеров максимальна в 14:00, минимальна в 2:00; концентрация комплексов плазмин-α2-антиплазмин (PAP) максимальна в 8:00, минимальна в 20:00. Колебания содержания компонентов систем фибринолиза в зависимости от времени суток могут иметь клиническое значение, приводя то к гиперкоагуляции в утренние часы, то к увеличению риска кровотечений во второй половине дня. Поэтому в трудных клинических наблюдениях кровотечения у пациенток следует быть уверенным, что оно не вызвано чрезмерной активацией фибринолитической системы [15].

N. Siddqui и соавт. [16] установлено, что на компоненты фибринолитической системы влияют половая принадлежность, масса тела, уровень физической активности, фаза менструального цикла. При оценке состояния этой системы по данным теста времени лизиса эуглобулинового сгустка (ВЛЭС) установлено, что, если оценивать общую фибринолитическую активность по тесту ВЛЭС, то можно констатировать достоверную разницу между мужчинами и женщинами (у женщин фибринолиз замедлен), между пациентами с разной массой тела (при высоком индексе массы тела фибринолиз замедлен), в различные фазы менструального цикла, когда максимальный фибринолиз наблюдается во время менструации (ВЛЭС составляет 259±93,5 мин), промежуточное состояние занимает фолликулярная фаза (ВЛЭС 308±167 мин), наименьшие показатели — в лютеиновую фазу (ВЛЭС 384±150 мин) [16].

Закономерно изменение системы гемокоагуляции в течение нормально протекающей беременности: в норме в концевых отделах спиральных артерий вблизи клеток трофобласта фибринолитическая активность замедлена [17]; достоверно увеличивается содержание фибриногена, антигена к тканевому активатору плазминогена (АГ-ТПА), повышается активность PAI-1 и повышается содержание D-димера из фибрина [18].

Нормальная беременность сопровождается повышением концентрации PAI-2 и PZP (pregnancy zone protein). Синонимами PZP являются α2-прегноглобулин и α2-гликопротеин, связанные с беременностью [19]. PAI-2 — специфический белок беременности, почти не определяется вне этого состояния. Он экспрессируется плацентарными трофобластами, эндотелиальными клетками, моноцитами, макрофагами. Как высоко-, так и низкомолекулярный PAI-2 являются эффективными ингибиторами УПА, превращая плазминоген в плазмин. Функция PAI-2 — защита от преждевременной отслойки нормально расположенной плаценты (ПОНРП) и поддержание гемокоагуляции, контролируя локальный протеолиз, регулируя активность УПА и ТПА [9]. Отмечено увеличение роста концентрации продуктов деградации фибрина, снижение фибринолитической активности, замедление времени лизиса сгустка, увеличение содержания α1-антитрипсина, снижение содержания α2-макроглобулина. По тесту ВЛЭС в I триместре медиана (Me) составляет 98 мин, интерквартильный интервал [25-й и 75-й перцентили] от 90 до 111 мин, во II триместре Me составляет 110 мин, интерквартильный интервал — от 99 до 124 мин, в III триместре Me составляет 127 мин, интерквартильный интервал от 107 до 171 мин. Тест нормализуется в первые сутки после родов и Me составляет 92 мин, интерквартильный интервал — от 80 до 99 мин [20].

При осложненном течении беременности происходит изменение компонентов фибринолитической системы, что имеет диагностическое, клиническое и терапевтическое значения.

Акушерская и гинекологическая патология, связанная с нарушениями системы фибринолиза

1. Антифосфолипидный синдром

Важную клиническую задачу представляет ведение беременности у пациенток с антифосфолипидным синдромом (АФС). У пациенток с акушерскими потерями в анамнезе отмечено нарушение фибринолитической системы при наличии волчаночных антител в связи с повышенным содержанием PAI-1 [21]. Липопротеин А имеет сходство с плазминогеном и ингибирует фибринолитическую активность, подавляя ТПА и увеличивая экспрессию PAI-1 эндотелием [22]. При обследовании пациенток с синдромом потери плода в случае планирования беременности целесообразно использовать современные методы общей оценки гемостатического потенциала: ТЭГ, ROTEM, Sonoclot, данные которых свидетельствуют, что у пациентов с наличием волчаночных антител имеется снижение активности фибринолиза наряду с формированием состояния гиперкоагуляции [23].

Одним из патофизиологических механизмов при АФС является нарушение фибринолиза, поскольку антифосфолипидные антитела могут нарушать нормальный механизм фибринолиза. У пациенток с волчаночными антителами отмечается снижение фибринолитической активности при наличии венозной окклюзии, что служит показателем дисфункции эндотелиальных клеток [24]. IgG, полученные от пациенток с АФС, замедляют растворение фибрина плазмином [25].

Антитела против аннексина II у пациенток с АФС могут вносить вклад в нарушение процесса фибринолиза на поверхности клеток эндотелия [26]. В случае сочетания АФС и тромбофилии PAI-1 с аллелем 4G отмечается бо́льшая экспрессия PAI-1, что сопровождается замедлением фибринолиза и формированием протромботического состояния [27].

2. Преэклампсия

В патогенезе преэклампсии (ПЭ) участвуют системная воспалительная реакция, нарушение фибринолиза и появление белков с нарушенной конфигурацией. Нарушение фибринолиза при ПЭ характеризуется изменением уровней PAI-1, PAI-2 [28], PZP [19], в 2 раза увеличивается количество АГ-ТПА, содержание D-димера; содержание ТПА положительно и достоверно коррелирует со степенью протеинурии у пациенток с ПЭ [19], что отражает необходимость исследования этого показателя при развитии ПЭ с протеинурией. Показано применение теста генерации тромбина (ТГТ) [11] и исследование ОГП [12]. У пациенток с ПЭ установлено снижение общего фибринолитического потенциала при ОГП-тесте, а показатели теста ВЛЭС достоверно увеличиваются. В послеродовом периоде, по данным ТГТ, растет высота пика формирования тромбина и укорачивается время до достижения пика — тесты, характеризующие гиперкоагуляцию; одновременно снижается общая фибринолитическая активность по данным ОГП [12]. Современные методы исследования системы гемокоагуляции — определение эндогенного тромбинового потенциала и исследование общего гемостатического потенциала — свидетельствуют о замедлении фибринолиза и более плотном формировании структуры сгустка у пациенток с ПЭ, что способствует блокаде микроциркуляции и формированию полиорганной недостаточности при этом акушерском осложнении [29]. Таким образом, пациентки с ПЭ характеризуются состоянием гиперкоагуляции с нарушением процесса фибринолиза во время беременности и особенно после родов, наличием мультиорганной дисфункции, например, почечной, что может быть связано с повышением выработки тромбина и замедлением фибринолиза [30]. Дополнительным фактором, влияющим на снижение фибринолитической активности, может служить избыточное образование тромбина, приводящее к активации TAFI [31].

При тяжелой ПЭ, по данным B. Sheppard и J. Bonnar [17], имеется значительное угнетение фибринолитической активности плазмы: увеличение времени лизиса эуглобулинового сгустка, повышенные уровни ингибитора УПА, повышенные уровни ПДФ в сыворотке крови, снижение числа тромбоцитов.

3. Эмболия околоплодными водами

К редким, и зачастую фатальным осложнениям беременности относится эмболия околоплодными водами (ЭОВ), которая возможна при беременности, в родах и в послеродовом периоде, где активация фибринолиза играет ключевую роль, как и при синдроме внутриутробной гибели плода и ПОНРП [32].

При ЭОВ процесс нарушения гемокоагуляции — формирование коагулопатии и ДВС-синдрома происходит очень быстро, поэтому велика роль лабораторных экспресс-методик, дающих быстрый ответ, например, ТЭГ, использование которой позволило поставить диагноз гиперфибринолиза до развития коагулопатии [33].

При ЭОВ возможно формирование двух видов коагулопатии: потребления и дилютационной. Первая возникает раньше, подходы к лечению этих состояний различны. При ЭОВ отмечаются повышенные уровни ПДФ, D-димера, ТПА, комплекс плазмин-а2—ингибитор плазмина (plasmin-a2-plasmin inhibitor complex, PIC), что может предполагать состояние гиперфибринолиза [34].

Исследования амниотической жидкости in vitro показало увеличение продукции тромбина и активации агрегации тромбоцитов без формирования гиперфибринолиза цельной крови, по данным T. Oda и соавт. [35]. Эти данные, безусловно, нельзя экстраполировать на процессы, происходящие in vivo, когда блокада микроциркуляции приводит к активации процесса фибринолиза [35].

L. Schröder и соавт. за 10 лет [36] приводят описание трех случаев ЭОВ, все пациентки выжили. Критериями активного фибринолиза авторы считают снижение концентрации фибриногена и FV, высокое содержание D-димера [36].

4. Послеродовые кровотечения

В настоящее время акушерские послеродовые кровотечения служат общеизвестной ведущей причиной материнской смертности. При профилактике и лечении массивных акушерских кровотечений широко используется транексамовая кислота [37]. Особенностью механизма массивных послеродовых кровотечений является присоединение коагулопатических нарушений, включая гиперфибринолиз [38].

Массивное акушерское кровотечение часто сочетается с формированием приобретенной коагулопатии, в процессе лечения требует активного массивного кровезамещения для восполнения объема циркулирующей крови и восстановления баланса свертывающей и противосвертывающей систем у пациентки. В настоящее время актуален вопрос контроля проводимого лечения с целью его оптимизации [39]. Возможно применение глобальных тестов исследования гемостаза, особенно, когда результаты повседневных лабораторных исследований не могут объяснить причину кровотечения: ротационной тромбоэластометрии, теста генерации тромбина, времени лизиса сгустка плазмы [40], параметров, которые дают возможность оценить состояние как коагуляции, так и фибринолиза в организме пациентки быстрее, чем общепринятые лабораторные тесты [39].

При наличии послеродового кровотечения тромбоэластографическими показателями, характеризующими гиперфибринолиз, по мнению D. Arnolds и соавт. [41], являются лизис сгустка более 3% через 30 мин (LY 30) при использовании ТЭГ с применением коалина. Авторы предостерегают от неправильной трактовки гиперфибринолиза, поскольку полученные данные обусловлены влиянием тромбоцитов, которые способствуют ретракции сгустка. При оценке 118 наблюдений послеродовых кровотечений показатель LY30 был у 15 (12,7%) человек, однако исследование функционального фибриногена не выявило изменений, что позволило авторам сделать вывод об отсутствии гиперфибринолиза у пациенток с послеродовым кровотечением [41]. Приведенная информация свидетельствует о возможном ложном заключении о гиперфибринолизе без учета феномена ретракции.

5. Нарушение фибринолиза в гинекологической практике

В ряде наблюдений в основе гиперполименореи могут лежать нарушения фибринолиза. Повышенная кровопотеря при менструации может быть обусловлена избытком содержания ТПА [42]. Гиперполименорея может возникать при дисфункциональных маточных кровотечениях, фибромиоме, врожденной коагулопатии, использовании внутриматочной спирали [43].

У женщин с эндометриозом с большим объемом гетеротопии (более 100 см3) меноррагия может быть объяснена избыточным фибринолизом после активации коагуляции в очагах эндометриоза [44]. Звеном патогенеза эндометриоза служит местный внеклеточный протеолиз (включая гиперфибринолиз). Это обстоятельство влияет на начало заболевания и его распространение [45].

При синдроме поликистозных яичников (СПКЯ) наблюдаются активация гемокоагуляции, повышение агрегации тромбоцитов и снижение фибринолитической активности плазмы, что может сопровождаться повышенным риском развития тромбоэмболических осложнений у пациенток [46].

Пациентки с экстрагенитальной патологией, связанной с нарушением фибринолиза

Экстрагенитальная патология, при которой возможно нарушение системы фибринолиза, может иметься как у беременных, так и у гинекологических пациенток.

Различные патологические состояния, включающие онкологические заболевания, ишемическую болезнь сердца (ИБС), тромбоз глубоких вен, диссеминированное внутрисосудистое свертывание (ДВС) изменяют уровень ингибитора фибринолиза TAFI. Его уровень повышается при тромбозе глубоких вен, ИБС, состояниях, связанных с повышением уровня коагуляционных факторов и ускоренным образованием фибриновых сгустков; снижение уровня TAFI отмечено при ДВС и сепсисе, что также является важным фактором формирования этих состояний. Экспериментальное увеличение содержания TAFI способствовало выживанию животных [47]. Для клинического применения важно измерение изомеров TAFI, в частности для прогноза исхода сепсиса [48].

При ожирении, повышенном содержании глюкокортикоидов (СПКЯ, метаболический синдром, синдром инсулинорезистентности), имеется хроническое воспаление с повышенным образованием цитокинов: TNFα (фактор некроза опухоли альфа), TGFβ1 (трансформирующий фактор роста β1), происходит увеличение активности PAI-1, замедляя фибринолиз, что способствует атеротромбозу [4] и играет важную роль в формировании метаболического синдрома и ИБС [4, 8]. Метаболический синдром проявляется в виде центрального ожирения, высокого артериального давления, повышенного содержания липопротеидов высокой плотности (ЛПВП). Данные проявления коррелируют с содержанием PAI-1 и АГ-ТПА, они приняты в качестве маркеров атеротромбоза [49].

В продукции фибринолитических факторов большая роль принадлежит эндотелиальным клеткам [18]. Изменение показателей исследуемых компонентов системы фибринолиза может быть проявлением дисфункции эндотелия при этой патологии.

Инсульт. Риск развития ишемического инсульта при беременности возрастает пропорционально увеличению доли пациенток с ожирением, артериальной гипертензией и сердечно-сосудистой патологией. Как известно, гиперкоагуляция при беременности обусловлена повышением содержания фактора Виллебранда, VIII фактора, фибриногена, повышением резистентности к активированному протеину C, снижением концентрации протеина S, повышением содержания PAI-1 и PAI-2, снижением активности фибринолитической системы [50, 51].

По результатам исследования C. Jaigobin [52], причинами геморрагического инсульта у 30% беременных служат разрывы аневризмы, у 50% — артериовенозные мальформации, а также геморрагии при развитии синдрома ДВС [52], поэтому при проведении дифференциального диагноза следует учитывать изменение фибринолитических компонентов системы гемокоагуляции.

Цирроз. Гиперфибринолитическое состояние, часто наблюдаемое при циррозе, может быть объяснимо дефицитом TAFI. Измерение отдельных компонентов системы фибринолиза не может дать четкого представления об этой системе из-за сложного взаимодействия активаторов и ингибиторов, участвующих в превращении плазминогена в плазмин [53]. Поэтому важно проведение тотальных аппаратных тестов, характеризующих гемокоагуляцию для диагностики и правильной медикаментозной коррекции возможных осложнений.

Лечебным мероприятием при циррозе печени является трансплантация печени. Операция часто сопровождается гиперфибринолизом. S. Roullet и соавт. [18] предложили оценивать общую фибринолитическую активность с использованием ROTEM для выявления состояния системы фибринолиза и оценки эффекта применяемых лекарственных средств. Гиперфибринолиз определялся при результатах теста ВЛЭС меньше 60 мин, а оценка общей фибринолитической активности в цитратной плазме меньше 31-й минуты. Следует отметить, что первый тест был высокоспецифичен для гиперфибринолиза, а второй имел бо́льшую чувствительность [18].

Сепсис. В современной клинической практике большую трудность представляет диагностика и лечение септических состояний. При сепсисе необходимо наличие двух и более критериев синдрома системного воспалительного ответа: лихорадка, тахикардия, гипервентиляция, лейкоцитоз, подозрение на наличие инфекции, признаки органной дисфункции [7].

Нарушение гемокоагуляции характерно для септического состояния: активация тромбоцитов, влияние бактерий и иммунных клеток, провоспалительных цитокинов и нейтрофильные внеклеточные ловушки (NET), повышенная экспрессия тканевого фактора, приводящая к избыточному образованию тромбина, способствует образованию тромбоцитарно-фибриновых микротромбов. Кроме того, уровни антикоагулянтных белков — антитромбина, протеина C, протеина S снижаются из-за потребления и расщепления эластазой нейтрофилов, снижения продукции в печени; активация клеток эндотелия приводит к высвобождению фактора Виллебранда, что усиливает адгезию тромбоцитов и образование микротромбов; гепаран-сульфаты смываются с поверхности клеток эндотелия, уменьшая тем самым антикоагулянтные свойства эндотелиальной поверхности [7].

Изменения фибринолиза при сепсисе включают активацию эндотелиальных клеток в связи с гипоксией тканей, что приводит к увеличению синтеза ТПА и PAI-1 с преобладанием последнего. Повышение образования тромбина увеличивает активность TAFI, что также снижает активность фибринолитической системы. Выделяемая в большом количестве эластаза нейтрофилов может оказывать как активирующее, так и ингибирующее действие на фибринолиз [7].

Соотношение активаторов и ингибиторов TAFI может служить показателем септического процесса, поскольку увеличивается в 4 раза по сравнению с таковыми у здоровых людей. TAFI модулирует систему фибринолиза; его активация возможна тромбином и плазмином — белками, концентрация которых при сепсисе изменяется. Поэтому возможно отслеживать патологические процессы в зависимости от активации или ингибирования этой системы [54].

Маркерами фибринолитической активности при сепсисе служат определение плазминогена, плазминоген-антиплазминовых комплексов (ПАП) и ТПА: отмечается низкий уровень плазминогена, высокий уровень ПАП комплексов. Увеличение ТПА, которое происходит в связи с активацией эндотелиальных клеток, а не является признаком гиперфибринолиза, увеличение УПА, PAI-1, α2-антиплазмина, а также тотальных тестов определения состояния фибринолитической системы (увеличение времени образования сгустка и его лизиса и показатели фибринолитической активности в тестах ТЭГ и ROTEM) [7].

Методики, оценивающие как коагуляционную, так и фибринолитическую активность у септических больных, проведенные в цельной крови, являются более перспективными [7].

Медикаментозное лечение нарушений фибринолиза в акушерской практике

Гиперфибринолиз во всех клинических проявлениях сочетается с кровотечением, поэтому, если он выявлен, следует применять антифибринолитические препараты.

При кровотечении у пациентки с сепсисом, обусловленным гиперфибринолизом, диагностированным с помощью ТЭГ или ROTEM, применяются транексамовая и эпсилонаминокапроновая кислоты [7].

В случае избыточной потери крови при менструации могут быть использованы ингибиторы фибринолиза, аминокапроновая кислота, транексамовая кислота 3—6 г/сут в течение 4 дней с начала менструации.

Использование транексамовой кислоты в 16—37 нед гестации приводит к улучшению акушерских исходов, поскольку патология сосудов и дефект отложения фибрина в маточно-плацентарных сосудах может быть причиной кровотечения [55].

L. Schröder и соавт. [36] полагают, что гиперфибринолиз имеется в коагулопатии при ЭОВ, поэтому раннее использование транексамовой кислоты наряду с переливанием эритроцитарной массы, свежезамороженной плазмы и при необходимости фибриногена, способствуют выживанию больных.

При массивном послеродовом кровотечении использовалось болюсное введение 4 г транексамовой кислоты с последующей постоянной инфузией 1 г/ч, что приводило к достоверному снижению объема кровопотери. Высокие дозы транексамовой кислоты вызывали тошноту, нарушения зрения, но не было случаев острого повреждения почек, судорог или тромбоэмболий. Целесообразно использование транексамовой кислоты с начала кровотечения [56].

При инсультах системный тромболизис противопоказан при беременности и в послеродовом периоде, однако имеются сообщения об успешности его применения [57]. Этот метод лечения (включая интраартериальный способ введения) не должен быть отвергнут при беременности [54, 58]. К тому же, следует отметить, что внутричерепное кровоизлияние, вызванное разрывом церебральных сосудов, не служит противопоказанием к лечению гепарином, который активирует систему фибринолиза [59].

Данные R. Park и соавт. [54] свидетельствуют, что при тяжелых септических поражениях применение TAFI как лечебного препарата может давать терапевтический эффект, который осуществляется за счет предотвращения патогенного влияния липополисахаридов на эндотелиальные клетки по аналогии с действием активированного протеина C [54].

Использование в динамике тестов генерации тромбина и плазмина, анализа фибринолитической деградации сгустка и ротационной тромбоэластометрии у пациенток с миелоидной лейкемией, обильным носовым кровотечением, ДВС-синдромом и гиперфибринолизом показало благоприятный терапевтический эффект применения транексамовой кислоты [60].

Использование глобальных коагулологических тестов, в частности теста образования тромбина и плазмина, целесообразно для подбора адекватной дозировки транексамовой кислоты [61].

К побочным эффектам использования ингибиторов фибринолиза относятся тошнота, рвота, дискомфорт в животе, головная боль, нарушения равновесия, диарея.

Использование рекомбинантного ТПА возможно для растворения фибриновых отложений, так как исследование компонентов фибринолитической системы и характера кровотока с использованием УЗИ выявило, что нарушение ламинарного кровотока уменьшает экспрессию ТПА клетками эндотелия и способствует отложению фибрина внутри сосудов. Количество ТПА служит лимитирующим фактором для эффективного фибринолиза в местах нарушения ламинарного кровотока [10, 14].

Воздействие на компоненты фибринолиза при эндометриозе может служить точкой приложения лекарственных препаратов [45].

Перспективы лабораторной диагностики и лечения нарушений фибринолиза

Патогенетически фибринолиз активируется при избыточном образовании тромбина. Диагностика нарушений гемокоагуляции в виде гиперкоагуляции и гиперфибринолиза целесообразна с использованием современных объективных аппаратных методик, повышающих точность лабораторной диагностики: ТЭГ [62], ROTEM [10], Sonoclot [13], оценки общего гемостатического потенциала, тестов генерации тромбина и их модификаций.

Использование анализатора Sonoclot с добавлением тканевого активатора плазминогена позволило Y. Buriko и соавт. [63] установить уровень гиперфибринолиза по времени фибринолиза (fibrinolysis time, FTi) — 42 мин для использования в клинической практике с целью диагностики и контроля эффективности применяемых препаратов при гиперфибринолизе.

В клиническую практику внедряются новые методы исследования системы фибринолиза. В частности, исследование для определения общей фибринолитической активности крови [61], компьютеризированное аппаратное полуавтоматическое определение теста ВЛЭС [64].

Разработан новый прибор для определения времени лизиса фибринового сгустка с возможностью компьютерного анализа полученных результатов [31].

D. Rijken и соавт. [70] разработали тест глобальной фибринолитической активности крови, позволяющий оценить общую фибринолитическую активность крови).

По данным T. Bonnard и соавт. [65], перспективным методом исследования фибринолиза для оценки действия коагулологически активных лекарств является исследование фибринолиза в цельной крови на пластинах для выявления гипо- и гиперфибринолиза. Основными параметрами, характеризующими фибринолиз, служат максимальная деградация, время активации и максимальная скорость лизиса сгустка [65].

Такие факторы, как ТГТ, ТЭГ, скорость свертывания при определении активированного частично протромбированного времени (АЧТВ), позволяют определять кинетику образования сгустков и могут служить для точной оценки гемостатического гомеостаза пациентки in vivo и демонстрировать ответ на применение лечебных препаратов. Особенно ценна возможность оценки вклада клеток организма в гемокоагуляцию [66].

Еще одним тотальным тестом определения состояния гемостатического баланса между коагуляцией и фибринолизом является тест CloFAL — определение формирования сгустка и его лизиса (Clot Formation and Lysis assay). Исследование представляет собой мониторирование спектрофотометрических данных изменений, происходящих в сгустке с расчетом индекса коагуляции и различных фибринолитических индексов. Указанные новые методики помогают оценить влияние применяемых коагулологически активных средств и индивидуализировать лечение сложных больных [66].

Заключение

Таким образом, знание врачами особенностей функционирования параметров системы фибринолиза поможет выбрать информативные современные лабораторные тесты для установления/подтверждения диагноза при различной терапевтической, акушерской и гинекологической патологии, проконтролировать эффективность применяемых лекарственных препаратов и улучшить клинические исходы при заболеваниях, в патогенезе которых нарушения фибринолиза играют важную роль.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования — А.П. Мельников

Сбор и обработка материала — В.А. Федоренко, А.П. Мельников

Написание текста — В.А. Федоренко, А.П. Мельников

Редактирование — А.П. Мельников

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Participation of the authors:

Concept and design of the study — A.P. Mel’nikov

Data collection and processing — V.A. Fedorenko, A.P. Mel’nikov

Text writing — V.A. Fedorenko, A.P. Mel’nikov

Editing — A.P. Mel’nikov

Authors declare lack of the conflicts of interests.


1Англ. sono — звук; clot — сгусток крови.

Литература / References:

  1. Lippi G, Favaloro EJ. Laboratory hemostasis: from biology to the bench. Clin Chem Lab Med. 2018;56:7:1035-1045. https://doi.org/10.1515/cclm-2017-1205
  2. Jespersen J. Pathophysiology and clinical aspects of fibrinolysis and inhibition of coagulation. Experimental and clinical studies with special reference to women on oral contraceptives and selected groups of thrombosis prone patients. Dan Med Bull. 1988;35:1:1-33. 
  3. Tripodi A. Tests of coagulation in liver disease. Clin Liver Dis. 2009;13:55-61.  https://doi.org/10.1016/j.cld.2008.09.002
  4. Alessi MC, Morange P, Juhan-Vague I. Fat cell function and fibrinolysis. Horm Metab Res. 2000;32:504-508.  https://doi.org/10.1055/s-2007-978677
  5. Glise L, Larsson P, Jern S, Borén J, Levin M, Ny T, Fogelstrand P, Bergh N. Disturbed laminar blood flow causes impaired fibrinolysis and tndothelial fibrin deposition in vivo. Thromb Haemost. 2019;119:2:223-233.  https://doi.org/10.1055/s-0038-1676638
  6. Horbach DA, van Oort E, Lisman T, Meijers JC, Derksen RH, de Groot PG. β2-glycoprotein I is proteolytically cleaved in vivo upon activation of fibrinolysis. Thromb Haemost. 1999;81:87-95.  https://doi.org/10.1055/s-0037-1614424
  7. Larsen JB, Hvas AM. Fibrinolytic alterations in sepsis: biomarkers and future treatment targets. Semin Thromb Hemost. 2021;47:5:589-600.  https://doi.org/10.1055/s-0041-1725096
  8. Clare E Hyatt, Benjamin M Brainard. Point-of-care assessment of coagulation. Top Companion Anim Med. 2016;31:1:11-17.  https://doi.org/10.1053/j.tcam.2016.05.002
  9. Ekelund K, Hanke G, Stensballe J, Wikkelsoe A, Krebs Albrechtsen C, Afshari A. Hemostatic resuscitation in postpartum hemorrhage — a supplement to surgery. Acta Obstet Gynecol Scand. 2015;94:7:680-692.  https://doi.org/10.1111/aogs.12607
  10. Colin Longstaff. Measuring fibrinolysis: from research to routine diagnostic assays. J Thromb Haemost. 2018;16:4:652-662.  https://doi.org/10.1111/jth.13957
  11. Hemker HC, Giesen P, Al Dieri R, Regnault V, de Smedt E, Wagenvoord R, Lecompte T, Béguin S. Calibrated automated thrombin generation measurement in clotting plasma. Pathophysiol Haemost Thromb. 2003;33:4-15.  https://doi.org/10.1159/000071636
  12. He S, Antovic A, Blomback M. A simple and rapid laboratory method for determination of haemostasis potential in plasma. II. Modifications for use in routine laboratories and research work. Thromb Res. 2001;103:5:355-361.  https://doi.org/10.1016/s0049-3848(01)00332-2
  13. Hellgren M. Hemostasis during normal pregnancy and puerperium. Thrombosis and Hemostasis. 2003,29:2:125-130.  https://doi.org/10.1055/s-2003-38897
  14. Curnow J, Favaloro EJ, Lippi G. The overall hemostatic potential (OHP) assay. Methods Mol Biol. 2017;1646:523-531.  https://doi.org/10.1007/978-1-4939-7196-1_38
  15. Budkowskaa M, Lebieckab A, Marcinowskac Z, Woźniakd J, Jastrzębskaa M, Dołęgowskae B. The circadian rhythm of selected parameters of the hemostasis system in healthy people. Thrombosis Research. 2019;182:79-88.  https://doi.org/10.1016/j.thromres.2019.08.015
  16. Siddqui N, Shoeb M, Bose S. Fibrinolytic activity of blood and its determinants in healthy medical students. J Clin Diagn Res. 2015;9:6:CC05-7.  https://doi.org/10.7860/JCDR/2015/12483.6017
  17. Sheppard BL, Bonnar J. Fibrinolysis in decidual spiral arteries in late pregnancy. Thromb Haemostas. 1978;39:751-758. 
  18. Roullet S, Labrouche S, Mouton C, Quinart A, Nouette-Gaulain K, Laurent C, Freyburger G. Lysis timer: a new sensitive tool to diagnose hyperfibrinolysis in liver transplantation. J Clin Pathol. 2019;72:1:58-65.  https://doi.org/10.1136/jclinpath-2018-205280
  19. Boncela J, Przygodzka P, Wyroba E, Papiewska-Pajak I, Cierniewski CS. Secretion of serpinB2 from endothelial cells activated with inflammatory stimuli. Exp. Cell Res. 2013;319:1213-1219. https://doi.org/10.1016/j.yexcr.2013.02.018
  20. Pavord EdS, Hunt B, Ramsay M. Normal hematological changes during pregnancy and the puerperium. The Obstetric hematology manual. Cambridge university press. Cambridge. 2010;3-11. 
  21. Ferro D, Violi F, Quintarelli, C, Sebastianelli A, D’Amelio R, Zichella L, Balsano F. Fibrinolytic balance and lupus anticoagulant in patients with repeated spontaneous fetal loss. Br Med J. 1992;305:504-505.  https://doi.org/10.1136/bmj.305.6852.504
  22. Atsumi T, Khamashta, MA, Andujar, C, Leandro MJ, Amengual O, Ames PR, Hughes GR. Elevated plasma lipoprotein(a) level and its association with impaired fibrinolysis in patients with antiphospholipid syndrome. J Rheumatol. 1998;25:69-73. 
  23. Curnow JL, Morel-Kopp, MC, Roddie C, Aboud M, Ward CM. Reduced fibrinolysis and increased fibrin generation in hypercoagulable patients using the overall hemostatic potential assay. J Thromb Haemost. 2007;5:528-534.  https://doi.org/10.1111/j.1538-7836.2007.02362.x
  24. Nilsson TK, Lofvenberg E. Decreased fibrinolytic capacity and increased von Willebrand factor levels as indicators of endothelial cell dysfunction in patients with lupus anticoagulants. Clin Rheumatol. 1989;8:58-63.  https://doi.org/10.1007/BF02031071
  25. Kolev K, Gombas, J, Varadi B, Skopál J, Mede K, Pitlik E, Nagy Z, Machovich R. Immunoglobulin G from patients with antiphospholipid syndrome impairs the fibrin dissolution with plasmin. Thromb Haemost. 2002;87:502-508.  https://doi.org/10.1055/S-0037-1613031
  26. Cesarman-Maus G, Rios-Luna NP, Deora AB, Huang B, Villa R, del Carmen Cravioto M, Alarcón-Segovia D, Sánchez-Guerrero J, Hajjar KA. Autoantibodies against the fibrinolytic receptor, annexin 2, in antiphospholipid syndrome. Blood. 2006;107:4375-4382. https://doi.org/10.1182/blood-2005-07-2636
  27. Tassies D, Espinosa G, Munoz-Rodriguez F, Freire C, Cervera R, Monteagudo J, Maragall S, Escolar G, Ingelmo M, Ordinas A, Font J, Reverter JC. The 4G/5G polymorphism of the type 1 plasminogen activator inhibitor gene and thrombosis in patients with antiphospholipid syndrome. Arthritis Rheum. 2000;43:2349-2358. https://doi.org/10.18097/pbmc20146001072
  28. Pinheiro MB, Gomes KB, Dusse LM. Fibrinolytic system in preeclampsia. Clin Chim Acta. 2013;416:67-71.  https://doi.org/10.1016/j.cca.2012.10.060
  29. Lalic-Cosic S, Dopsaj V, Kovac M, Pruner I, Littmann K, Mandic-Markovic V, Mikovic Z, Antovic A. Evaluation of global haemostatic assays and fibrin structure in patients with pre-eclampsia. Int J Lab Hematol. 2020;00:1-9.  https://doi.org/10.1111/ijlh.13183
  30. Mansouritorghabeh H, de Laat B, Roest M. Current methods of measuring platelet activity: pros and cons. Blood Coagul Fibrinolysis. 2020;31:7:426-433.  https://doi.org/10.1097/MBC.0000000000000941
  31. Martínez-Zamora MA, Tassies D, Carmona F, Espinosa G, Cervera R, Reverter JC, Balasch J. Clot lysis time and thrombin activatable fibrinolysis inhibitor in severe preeclampsia with or without associated antiphospholipid antibodies. J Reprod Immunol. 2010;86:2:133-140.  https://doi.org/10.1016/j.jri.2010.05.002
  32. Annecke T, Geisenberger T, Kürzl R, Penning R, Heindl B. Algorithm-based coagulation management of catastrophic amniotic fluid embolism. Blood Coagul Fibrinolysis. 2010;21:95-100.  https://doi.org/10.1097/MBC.0b013e328332cfe2
  33. Fudaba M, Tachibana D, Misugi T, Nakano A, Koyama M. Excessive fbrinolysis detected with thromboelastography in a case of amniotic fuid embolism: fbrinolysis may precede coagulopathy. J Thromb Thrombolysis. 2021;51:3:818-820.  https://doi.org/10.1007/s11239-020-02237-x
  34. Oda T, Tamura N, Ide R, Itoh T, Horikoshi Y, Matsumoto M, Narumi M, Kohmura-Kobayashi Y, Furuta-Isomura N, Yaguchi C, Uchida T, Suzuki K, Itoh H, Kanayama N. Consumptive coagulopathy involving amniotic fluid embolism: the importance of earlier assessments for interventions in critical care. Critical Care Med. 48:12:e1251-e1259. https://doi.org/10.1097/CCM.0000000000004665
  35. Oda T, Tamura N, Shen Y, Kohmura-Kobayashi Y, Furuta-Isomura N, Yaguchi C, Uchida T, Suzuki K, Itoh H, Kanayama N. Amniotic fluid as a potent activator of blood coagulation and platelet aggregation: Study with rotational thromboelastometry Thrombosis Res. 2018;172:142-149.  https://doi.org/10.1016/j.thromres.2018.11.001
  36. Schröder L, Hellmund A, Gembruch U, Merz W. Amniotic fuid embolism-associated coagulopathy: a single-center observational study. Arch Gynecol Obstet. 2020;301:4:923-929.  https://doi.org/10.1007/s00404-020-05466-w
  37. Butwick AJ. Postpartum hemorrhage: wherefore art thou, hyperfibrinolysis? Anesth Analg. 2020;131:5:1370-1372. https://doi.org/10.1213/ANE.0000000000004881
  38. McLintock C. Prevention and treatment of postpartum hemorrhage: focus on hematological aspects of management. Hematol Am Soc Hematol Educ Program. 2020;2020;1:542-546.  https://doi.org/10.1182/hematology.2020000139
  39. Karlsson O, Jeppsson A, Hellgrenc M. Major obstetric haemorrhage: monitoring with thromboelastography, laboratory analyses or both? Int J Obstet Anesthes. 2014;23:10-17.  https://doi.org/10.1016/j.ijoa.2013.07.003
  40. Veen CSB, Huisman EJ? Cnossen MH, Kom-Gortat R, Rijken DC, Leebeek FWG, Maat MPM, Kruip MJHA. Evaluation of thromboelastometry, thrombin generation and plasma clot lysis time in patients with bleeding of unknown cause: A prospective cohort study. Haemophilia. 2020;26:3:e106-e115. https://doi.org/10.1111/hae.13991
  41. Arnolds DE, Scavone BM. Thromboelastographic assessment of fibrinolytic activity in postpartum hemorrhage: a retrospective single-center observational study. Anesth Analg. 2020;131:5:1373-1379. https://doi.org/10.1213/ANE.0000000000004796
  42. Rybo G. Plasminogen activators in the endometrium. II. Clinical aspects. Acta Obst et Gynec Scand. 1966;45:429-450.  https://doi.org/10.3109/00016346609158461
  43. Микович Д, Мельников А.П. Врожденные дефекты факторов свертывания крови и акушерские осложнения. Клиническая медицина. 2020;98:11-12:729-738. 
  44. Yamanaka A, Kimura F, Yoshida T, Kita N, Takahashi K, Kushima R, Murakmai T. Dysfunctional coagulation and fibrinolysis systems due to adenomyosis is a possible cause of thrombosis and menorrhagia. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2016;204:99-103.  https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2016.07.499
  45. Zorio E, Gilabert-Estellés J, España F, Ramón L, Cosín R, Estellés A. Fibrinolysis: the key to new pathogenetic mechanisms. Curr Med Chem. 2008;15:9:923-929.  https://doi.org/10.2174/092986708783955455
  46. Targher G, Zoppini G, Bonora E, Moghetti P. Hemostatic and fibrinolytic abnormalities in polycystic ovary syndrome. Semin Thromb Hemost. 2014;40:5:600-618.  https://doi.org/10.1055/s-0034-1384512
  47. Binette TM, Taylor FB Jr, Peer G, Bajzar L. Thrombin-thrombomodulin connects coagulation and fibrinolysis: more than an in vitro phenomenon. Blood. 2007;110:3168-3175. https://doi.org/10.1182/blood-2007-03-078824
  48. Armando Tripodi. Hemostasis abnormalities in cirrhosis. Curr Opin Hematol. 2015;22:5:406-412.  https://doi.org/10.1097/MOH.0000000000000164
  49. Juhan-Vague I, Alessi MC, Joly P, Thirion X, Vague P, Declerck PJ, Serradimigni A, Collen D. Plasma plasminogen activator inhibitor I in angina pectoris. Influence of plasma insulin and acute-phase response. Arteriosclerosis. 1989;9:362-367.  https://doi.org/10.1161/01.atv.9.3.362
  50. Liu Z, Liu C, Zhong M, Yang F, Chen H, Kong W, Lv P, Chen W, Yao Y, Cao Q, Zhou H. Changes in coagulation and fibrinolysis in post-cesarean section parturients treated with low molecular weight heparin. Clin Appl Thromb Hemost. 2020;26.  https://doi.org/10.1177/1076029620978809
  51. Moatti Z, Gupta M, Yadava R, Thamban S. A review of stroke and pregnancy: incidence, management and prevention. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2014;181:20-27.  https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2014.07.024
  52. Jaigobin C. Stroke and pregnancy. Stroke. 2000;31:12:2948-2951. https://doi.org/10.1161/01.str.31.12.2948
  53. Whiting P, Al M, Westwood M, Corro Ramos I, Ryder S, Armstrong N, Misso K, Ross J, Severens J, Kleijnen J. Viscoelastic point-of-care testing to assist with the diagnosis, management and monitoring of haemostasis: a systematic review and cost-effectiveness analysis. Health Technol Assess. 2015;19:58:1-228, v-vi.  https://doi.org/10.3310/hta19580
  54. Park R, Song J, Soo SA. Elevated levels of activated and inactivated thrombin-activatable fibrinolysis inhibitor in patients with sepsis. An. Korean J Hematol. 2010;45:264-268.  https://doi.org/10.5045/kjh.2010.45.4.264
  55. Bonnar J, Guillebaud J, Kasonde JM, Sheppard BL. Clinical applications of fibrinolytic inhibition in gynaecology. J Clin Pathol. 33, Suppl (Roy Coll Path). 1980;14:55-59. 
  56. Ducloy-Bouthors A-S, Jude B, Duhamel A, Broisin F, Huissoud C, Keita-Meyer H, Mandelbrot L, Tillouche N, Fontaine S, Le Goueff F, Depret-Mosser S, Vallet B, EXADELI Study Group; Sophie Susen. High-dose tranexamic acid reduces blood loss in postpartum haemorrhage. Crit Care Lond Engl. 2011;15:R117. https://doi.org/10.1186/cc10143
  57. Leonhardt G. Thrombolytic therapy in pregnancy. J Thromb Thrombolysis. 2006;21:3:271-276.  https://doi.org/10.1007/s11239-006-5709-z
  58. Demchuk AM. Yes, intravenous thrombolysis should be administered in pregnancy when other clinical and imaging factors are favorable. Stroke. 2013;44:3:864-865.  https://doi.org/10.1161/STROKEAHA.111.000134
  59. Einhaupl K. EFNS guideline on the treatment of cerebral venous and sinus thrombosis. Eur J Neurol. 2006;13:553-559.  https://doi.org/10.1111/j.1468-1331.2010.03011.x
  60. Ishihara T, Nogami K, Onishi T, Ogiwara K, Ochi S, Yamazaki M, Shima M. Hemostatic function on hyper-fibrinolytic disseminated intravascular coagulation. Pediatr Int. 2019;61:9.  https://doi.org/10.1111/ped.13919
  61. Rijken DC, Hoegee-de NE, Jie AF, Atsma DE, Schalij MJ, Nieuwenhuizen W. Development of a new test for the global fibrinolytic capacity in whole blood. J Thromb Haemost. 2008;6:1:151-157.  https://doi.org/10.1111/j.1538-7836.2007.02816.x
  62. Баринов С.В., Долгих В.Т., Медянникова И.В. Патогенетически обоснованная профилактика неблагоприятных исходов беременности у женщин с гестационными коагулопатиями. Вестник РАМН. 2014;5-6:102-106. 
  63. Buriko Y, Hess RS, Pfeifer JM, Silverstein DC. Utility of the Sonoclot analyzer to assess hyperfibrinolysis in dogs. Vet Clin Pathol. 2021;50:178-183.  https://doi.org/10.1111/vcp.12953
  64. Andrew G. Burton, Karl E. Jandrey. Use of Thromboelastography in Clinical Practice. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 2020 Nov;50:6:1397-1409. https://doi.org/10.1016/j.cvsm.2020.08.001
  65. Bonnard T, Law LS, Tennant Z, Hagemeyer CE. Development and validation of a high throughput whole blood thrombolysis plate assay. Sci Rep 2017;7:1:2346. https://doi.org/10.1038/s41598-017-02498-2
  66. Chitlur M. Challenges in the laboratory analyses of bleeding disorders. Thromb Res. 2012;130:1:1-6.  https://doi.org/10.1016/j.thromres.2012.03.011

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.