Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Рустам Наилевич Мустафин

ФГБОУ ВО «Башкирский государственный медицинский университет» Минздрава России, Уфа, Россия

Роль компонентов питания в профилактике и лечении рака молочной железы

Авторы:

Мустафин Р.Н.

Подробнее об авторах

Прочитано: 111 раз


Как цитировать:

Мустафин Р.Н. Роль компонентов питания в профилактике и лечении рака молочной железы. Профилактическая медицина. 2026;29(4):76‑82.
Mustafin RN. The role of nutritional components in the breast cancer prevention and treatment. Russian Journal of Preventive Medicine. 2026;29(4):76‑82. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/profmed20262904176

Рекомендуем статьи по данной теме:
Сов­ре­мен­ные ас­пек­ты фун­кци­ональ­ной ги­по­та­ла­ми­чес­кой аме­но­реи. Рос­сий­ский вес­тник аку­ше­ра-ги­не­ко­ло­га. 2025;(2):55-60

Введение

По данным Международного агентства по изучению рака (International Agency for Research on Cancer, https://gco.iarc.who.int/), рак молочной железы (РМЖ) занимает первое место по распространенности среди всех злокачественных новообразований (ЗНО) в мире, независимо от пола [1]. Около 10% случаев РМЖ обусловлены герминальными мутациями в генах-супрессорах опухолей (BRCA1, BRCA2, ATM, BARD1, CHEK2, RAD51D, RAD51C, PALB2) и относятся к моногенным заболеваниям с аутосомно-доминантным типом наследования [2]. В 90% случаев РМЖ — многофакторная болезнь, на развитие которой, помимо наследственной предрасположенности, влияют модифицируемые факторы [1], например пищевые вещества, стимулирующие [3, 4] и подавляющие РМЖ.

Цель исследования — описать молекулярные и эпигенетические механизмы влияния компонентов питания на развитие РМЖ.

Материалы и методы

Поиск публикаций осуществлен в базах данных eLibrary, Scopus, PubMed за период 2003—2025 гг. по ключевым словам: «breast cancer», «food», «diet», «epigenetics», «miRNA».

Результаты

Согласно данным метаанализов, риск РМЖ снижается при потреблении омега-3-полиненасыщенных жирных кислот (ЖК) [5], витамина D [6], зеленого чая [7], пищевых волокон [8], каротиноидов [9], фруктов и овощей, соевого белка [10]. Потребление красного мяса [3], фастфуда и ультрапереработанных продуктов (УПП) [4], транс-изомеров ЖК повышает риск развития РМЖ [11]. Снижает риск возникновения РМЖ использование вегетарианской [12] и средиземноморской диет [13] (рис. 1).

Рис. 1. Схема перспективных путей изучения роли пищевых веществ в профилактике и лечении рака молочной железы.

Компоненты питания, предотвращающие рак молочной железы

Для оценки влияния компонентов питания на развитие РМЖ используются линии клеток РМЖ человека MCF-7, SK-BR-3, T-47D, MDA-MB-231, MDA-MB-453 [14].

Растительные продукты богаты полифенолами [14], содержащимися в винограде [15], фасоли и соевых бобах [16], зеленом чае [17], петрушке и сельдерее [18] (рис. 2). В соевых бобах содержится изофлавон генистеин, селективный модулятор эстрогеновых рецепторов, который связывается с бета-рецептором эстрогена ERβ [16], а также ингибирует выработку циклооксигеназы-2, простагландина E2, матриксной металлопротеиназы-9, фактора роста эндотелия сосудов (VEGF) и трансформирующего фактора роста β1(TGF-β1), подавляет ангиогенез [19]. Эпигаллокатехин стимулирует апоптоз и останавливает клеточный цикл [17], подавляет миграцию клеток и образование сфероидов клеток РМЖ [20]. Апигенин оказывает антипролиферативное действие на клетки MCF-7 путем ингибирования Akt/FOXM1 и стимуляции апоптоза [18]. Апигенин (флавоноид петрушки) усиливает экспрессию белка p53 и расщепление PARP [21], потенцируя влияние доксорубицина на клетки MCF-7 [22]. Ресвератрол стимулирует SIRT-зависимое ацетилирование белка p53 [23], влияет на TGF-β и E-кадгерин [24]. Плоды индийского крыжовника индуцируют апоптоз клеток РМЖ [25].

Рис. 2. Полифенолы, содержащиеся в пищевых веществах.

В кунжуте содержится жирорастворимый фурофуран-лиганд сезамин [26], который ингибирует образование комплекса бета-катенин/Tcf4, подавляя развитие ЗНО [26], оказывает антиангиогенное действие. На клетках MCF-7 сезамин стимулировал апоптотические маркеры Bax, p53, каспазу-3 и киназы контрольной точки 2 [27]. Фасоль, соя, горох, чечевица, а также томаты, пшеница, кукуруза, картофель, рис, грибы, бананы содержат растительные лектины, которые связываются с мембранами клеток ЗНО, способствуя апоптозу. Лектины изменяют выработку специфических интерлейкинов и активируют протеинкиназы [28]. Они взаимодействуют с аномально гликозилированными остатками углеводов в клетках РМЖ, вызывая цитотоксический эффект. Это связано с важной ролью аномального гликозилирования в развитии и метастазировании РМЖ и в процессе химиотерапии [29].

В грибах, водорослях, зернах овса и дрожжах содержатся растворимые пищевые волокна, бета-глюканы, влияющие на РМЖ. Карбоксиметилированный β-глюкан грибов ингибирует рост и размножение клеток MCF-7 путем подавления экспрессии циклинов E и D1 [30]. Из гриба шиитаке выделен бета-глюкан, ингибирующий РМЖ путем подавления экспрессии HIF-1α, угнетая ангиогенез ангиогенез [31]. Бета-глюкан из вешенки устричной у больных РМЖ повышал абсолютное количество CD3+, CD19+, CD4+ и CD8+ T-лимфоцитов, усиливая противоопухолевый иммунитет [32].

Корица (Cinnamonum Cassia) содержит в своем составе коричный альдегид, оказывающий противоопухолевое действие на клетки РМЖ MDA-MB-231 посредством влияния на 59 молекулярных мишеней, индуцируя апоптоз и подавляя миграцию и инвазию клеток [33]. Сульфорафан ингибирует пути бета-катенина и снижает экспрессию онкогенов CR1, CR3, ALDH1A1, Wnt3, Notch4 [34]. В оранжевых овощах и фруктах содержатся каротиноиды, которые стимулируют иммунитет и межклеточные коммуникации, направленные на ЗНО, оказывают противовоспалительное действие [35].

Льняное масло и рыба являются источниками омега-3 ЖК и протекторами в отношении развития ЗНО [36]. Уровни витамина D в крови ассоциированы с низким риском РМЖ [6]. Витамин D останавливает клеточный цикл в фазе G0/G1 путем прямого подавления циклин-зависимых киназ CDK6, CDK4, ингибирования генов, кодирующих циклины C и D1 (CCND1, CCNC), и генов CDKN1A, CDKN1B, CDKN2D [37]. Активация рецептора VDR стимулирует транскрипцию генов — супрессоров опухолей CDKN1A, CDH1, C-MYC, LRP6, FOXM1, DKK4 [38]. На рис. 3 представлены содержащиеся в пищевых веществах компоненты и механизмы их действия на РМЖ.

Рис. 3. Пищевые вещества и содержащиеся в них компоненты, влияющие на патогенез рака молочной железы.

Эпигенетические механизмы противоопухолевого действия компонентов питания на рак молочной железы

К эпигенетическим факторам относятся метилирование ДНК, модификации гистонов и РНК-интерференция с участием некодирующих РНК. Их изменения являются обратимыми, поэтому перспективен поиск новых препаратов, воздействующих на эпигенетические факторы. В качестве субстратов для создания новых лекарств могут служить компоненты растительных пищевых веществ [39]. Так, в клеточных линиях MDA-MB-231 и MCF-7 генистеин ингибировал ДНК-метилтрансферазы DNMT1, что способствовало активации генов — супрессоров опухолей APC, ATM, PTEN, SERPINB5 [40], BRCA1 и BRCA2 [41]. За счет воздействия на модификации гистонов H3K4me3 и H3Ac генистеин стимулировал промоторы генов p16 и p21 [42]. В клетках MDA-MB-231 апигенин подавлял экспрессию онкогенной miR-21 и активировал онкосупрессорную miR-200b, усиливая противоопухолевый эффект вориностата [43]. Ресвератрол в клетках РМЖ индуцировал miR-34a, miR-424, miR-503 через сигнальный путь p53 путем подавления HNRNPA1 [15]; стимулировал экспрессию ряда онкосупрессорных и подавлял транскрипцию онкогенных микроРНК [44].

Дииндолилметан, содержащийся в капусте брокколи, в клетках MCF-7 способствовал транскрипции miR-21, останавливая клеточный цикл и ингибируя онкогены CDK1/2/4/6, циклин B1 и Cdc25a [45]. Дииндолилметан усиливал эффект моноклонального антитела (действующего на HER2-neu-рецепторы) герцептина на клетки SKBR3 РМЖ за счет активации miR-200a, miR-200b, miR-200c, тем самым подавляя NFκB p65, pAKT, FoxM1 [46]. В клетках MCF-7, MB-231, SK-BR-3, MDA-MB-231 сульфорафан подавлял DNMT1, DNMT3B, активируя 60 онкосупрессорных микроРНК и подавляя 32 онкогенных микроРНК, стимулируя экспрессию CDKN1A и TGFB2 [47]. Эпигаллокатехин в клетках MCF-7 изменял экспрессию 23 микроРНК, подавляя пролиферацию клеток [48], снижал экспрессию онкогенной miR-25 с повышением уровней белка PARP, стимулируя апоптоз [17].

Куркумин в клетках MCF-7 подавлял miR-19, реактивируя p53 и PTEN [50], активируя онкосупрессорные miR-15a и miR-16, подавляя онкоген Bcl-2 [51]. Полифенолы манго (галловая кислота) ингибировали ксенотрансплантированные мышам BT474-клетки, подавляя гены NFκB, VEGF, p85, AKT путем активации let-7a, let-7b, miR-15b, miR-31, miR-126, miR-155, miR-193a-5p, miR-196b, miR-221, miR-483, miR-494, miR-539, miR-708, miR-885-5p [52]. В таблице представлены компоненты питания и их влияние на эпигенетические факторы развития РМЖ [15, 17, 44—57].

Эпигенетические эффекты действия компонентов питания на развитие рака молочной железы

Пищевые вещества

Активный компонент

Эпигенетический механизм действия

Соя, бобовые

Генистеин

Влияние на DNMT1 (активация генов APC, ATM, PTEN, SERPINB5 [53], BRCA1 и BRCA2 [54]), H3K4me3 и H3Ac (активация генов p16 и p21) [55]

Петрушка, сельдерей

Апигенин

Активация miR-200b, ингибирование miR-21 [57]

Арахис, виноград, ягоды

Ресвератрол

Активация miR-34a, miR-424, miR-503 [15], miR-26a, miR-34a, miR-125a-3p, miR-126, miR-128, miR-185, miR-193b, miR-195, miR-196a, miR-200c, miR-340, miR-497, ингибирование miR-10b, miR-132, miR-222, miR-378*(miR-378a-5p) [44]

Брокколи

Дииндолилметан

Активация miR-21 [45], miR-200a, miR-200b, miR-200c [46, 56]

Сульфорафан

Ингибирование DNMT1, DNMT3B, miR-23b, miR-92b, miR-381, miR-382 [47]

Зеленый чай

Эпигаллокатехин

Активация miR-7a, miR-107, miR-548m, miR-720, miR-1826, miR-1978, miR-1979, ингибирование miR-21, miR-27 [48], miR-25 [17, 49]

Куркума

Куркумин

Ингибирование miR-19 [50], активация miR-15a, miR16 [51]

Манго

Галловая кислота

Активация let-7a, let-7b, miR-15b, miR-31, miR-126, miR-155, miR-193a-5p, miR-196b, miR-221, miR-483, miR-494, miR-539, miR-708, miR-885-5p [52]

Одним из механизмов действия пищевых веществ на РМЖ является эпигенетическое подавление мобильных элементов (МЭ) генома человека, которые играют важную роль в канцерогенезе. Такой эффект обусловлен транспозициями МЭ в области протоонкогенов с формированием химерных онкогенов, а также инактивацией генов — супрессоров опухолей [53]. Ресвератрол блокирует ретротранспозиции LINE1 путем активации сиртуина-6 и транскрипционного фактора PPAR [54]. Вероятно, сходное действие оказывают и другие полифенолы, вызывающие эпигенетический эффект при развитии РМЖ. Об этом свидетельствует роль генистеина [40, 42] и сульфорафана [47] в регуляции HDAC и DNMT, которые контролируют экспрессию ретроэлементов (РЭ) [53]. В лейкоцитах крови женщин, придерживающихся средиземноморской диеты, определено усиленное метилирование LINE1 [55], что согласуется с противоопухолевым влиянием этой диеты [13]. Введение в питание мышей транс-изомеров ЖК и канцерогена 7,12-диметилбензантрацена вызывало гипометилирование LINE1 путем ингибирования DNMT [56]. Определено происхождение от от мобильных генетических элементов (МГЭ) miR-378a-5p и miR-340 [57], экспрессия которых повышается под влиянием ресвератрола [44]. Произошедшая от МЭ miR-548m [57] активируется эпигаллокатехином [49], а галловая кислота стимулирует экспрессию miR-708 [52], возникшую в процессе эволюции от МЭ. Это указывает на перспективы использования пищевых веществ, оказывающих многостороннее действие на различные механизмы канцерогенеза РМЖ.

Компоненты питания, стимулирующие рак молочной железы

Увеличение доли УПП в рационе даже на 10% повышает риск развития РМЖ [58]. К ультрапереработанным относятся продукты, прошедшие несколько стадий промышленной обработки и содержащие пищевые добавки. Примерами являются промышленно производимый хлеб, выпечка и мороженое, фруктовые йогурты, сухие завтраки, конфеты, безалкогольные напитки и красное мясо [58]. Значительно повышает риск развития РМЖ потребление алкоголя [10] и транс-изомеров ЖК [11].

При жарке красного мяса образуются полициклические ароматические углеводороды (ПЦАУ), в том числе бензапирен, которые определены как факторы риска развития РМЖ. Доказано, что ПЦАУ гидролизуются до дигидродиолов и диолэпоксидов, вызывающих образование ДНК-аддуктов и мутаций генов. В процессе метаболизирования ПЦАУ до ортохинонов происходит генерирование активных форм кислорода, повреждающих ДНК, изменяющих уровни прогестерона, 17β-эстрадиола и тестостерона, экспрессию метаболизирующих эстрогены ферментов, что способствует развитию РМЖ [59]. При жарке на растительных маслах также образуются ПЦАУ [60].

Обсуждение

На развитие РМЖ существенно влияют факторы окружающей среды, в том числе особенности питания. Согласно результатам метаанализов исследований на людях, риск РМЖ может снижаться или повышаться при потреблении ряда перечисленных выше пищевых веществ. Генистеин соевых бобов оказывает эстрогеноподобный эффект [16], воздействует на сигнальные пути воспаления и пролиферации РМЖ [19], ингибирует DNMT1, активируя гены-супрессоры опухолей [40—42]. Эпигаллокатехин, апигенин, ресвератрол, сезамин, лектины, сульфорафан, коричный альдегид, куркумин, каротиноиды, омега-3 ЖК, витамин D подавляют развитие РМЖ как на молекулярном, так и на эпигенетическом уровне. Растворимые пищевые волокна ингибируют рост и размножение клеток РМЖ [30], ангиогенез [31] и стимулируют противоопухолевый иммунитет [32]. Показано потенцирование противоопухолевой терапии апигенином [22] и дииндолилметаном [46]. Определено влияние пищевых веществ на эпигенетическую активацию ретроэлементов, вовлеченных в канцерогенез РМЖ [53]. Описана стимуляция развития РМЖ при потреблении УПП, красного мяса [58], алкоголя [10], транс-изомеров ЖК [11], ПЦАУ [59].

Заключение

Анализ научной литературы свидетельствует о достоверном влиянии потребляемых пищевых веществ на риск развития рака молочной железы. Это позволяет рекомендовать ограничение приема фастфуда, ультрапереработанных продуктов, красного мяса, транс-изомеров жирных кислот, а также увеличить потребление соевого белка, овощей и фруктов, пищевых волокон, зеленого чая, витамина D и омега-3-полиненасыщенных жирных кислот. Экспериментальные исследования подтвердили противоопухолевую роль данных пищевых веществ, а также показали влияние специфических компонентов растительных продуктов на патогенез рака молочной железы. Более того, описанные эпигенетические механизмы влияния генистеина, апигенина, ресвератрола, дииндолилметана, сульфорафана, эпигаллокатехина, куркумина и галловой кислоты могут стать основой для разработки новых способов таргетной терапии рака молочной железы. Использование специфической диеты с включением в нее описанных в статье противоопухолевых препаратов может не только предотвратить развитие данной патологии, но также повысить эффективность лечения.

Автор заявляет об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Xiong X, Zheng LW, Ding Y, et al. Breast cancer: pathogenesis and treatments. Signal Transduction and Targeted Therapy. 2025;10(1):49.  https://doi.org/10.1038/s41392-024-02108-4
  2. Sokolova A, Johnstone KJ, McCart Reed AE, et al. Hereditary breast cancer: syndromes, tumour pathology and molecular testing. Histopathology. 2023;82(1):70-82.  https://doi.org/10.1111/his.14808
  3. Kazemi A, Barati-Boldaji R, Soltani S, et al. Intake of Various Food Groups and Risk of Breast Cancer: A Systematic Review and Dose-Response Meta-Analysis of Prospective Studies. Advances in Nutrition. 2021;12(3): 809-849.  https://doi.org/10.1093/advances/nmaa147
  4. Karimi M, Rabiee R, Hooshmand F, et al. Consumption of fast foods and ultra-processed foods and breast cancer risk: a systematic review and meta-analysis. Global Health Research and Policy. 2025;10(1):25.  https://doi.org/10.1186/s41256-025-00425-x
  5. Zheng JS, Hu XJ, Zhao YM, et al. Intake of fish and marine n-3 polyunsaturated fatty acids and risk of breast cancer: meta-analysis of data from 21 independent prospective cohort studies. BMJ. 2013;346:f3706. https://doi.org/10.1136/bmj.f3706
  6. Kim Y, Je Y. Vitamin D intake, blood 25(OH)D levels, and breast cancer risk or mortality: a meta-analysis. British Journal of Cancer. 2014;110(11):2772-2784. https://doi.org/10.1038/bjc.2014.175
  7. Wang Y, Zhao Y, Chong F, et al. A dose-response meta-analysis of green tea consumption and breast cancer risk. International Journal of Food Science and Nutrition. 2020;71(6):656-667.  https://doi.org/10.1080/09637486.2020.1715353
  8. Xu K, Sun Q, Shi Z, et al. A Dose-Response Meta-Analysis of Dietary Fiber Intake and Breast Cancer Risk. Asia Pacific Journal of Public Health. 2022;34(4):331-337.  https://doi.org/10.1177/10105395211072997
  9. Dehnavi MK, Ebrahimpour-Koujan S, Lotfi K, et al. The Association between Circulating Carotenoids and Risk of Breast Cancer: A Systematic Review and Dose-Response Meta-Analysis of Prospective Studies. Advances in Nutrition. 2024;15(1):100135. https://doi.org/10.1016/j.advnut.2023.10.007
  10. Shin S, Fu J, Shin WK, et al. Association of food groups and dietary pattern with breast cancer risk: A systematic review and meta-analysis. Clinical Nutrition. 2023;42(3):282-297.  https://doi.org/10.1016/j.clnu.2023.01.003
  11. Anjom-Shoae J, Sadeghi O, Larijani B, et al. Dietary intake and serum levels of trans fatty acids and risk of breast cancer: A systematic review and dose-response meta-analysis of prospective studies. Clinical Nutrition. 2020;39(3): 755-764.  https://doi.org/10.1016/j.clnu.2019.03.024
  12. Watling CZ, Schmidt JA, Dunneram Y, et al. Risk of cancer in regular and low meat-eaters, fish-eaters, and vegetarians: a prospective analysis of UK Biobank participants. BMC Medicine. 2022;20(1):73.  https://doi.org/10.1186/s12916-022-02256-w
  13. Chen G, Leary S, Niu J, et al. The Role of the Mediterranean Diet in Breast Cancer Survivorship: A Systematic Review and Meta-Analysis of Observational Studies and Randomised Controlled Trials. Nutrients. 2023;15(9):2099. https://doi.org/10.3390/nu15092099
  14. Sichetti M, Giuseffi M, Giglio E, et al. Effect of Natural Polyphenols on Breast Cancer Chemoprevention and Treatment. Molecular Nutrition and Food Research. 2025;69(16):e70055. https://doi.org/10.1002/mnfr.70055
  15. Otsuka K, Yamamoto Y, Ochiya T. Regulatory role of resveratrol, a microRNA-controlling compound, in HNRNPA1 expression, which is associated with poor prognosis in breast cancer. Oncotarget. 2018;9(37):24718-24730. https://doi.org/10.18632/oncotarget.25339
  16. Messina M. Impact of Soy Foods on the Development of Breast Cancer and the Prognosis of Breast Cancer Patients. Forschende Komplementarmedizin. 2016;23(2):75-80.  https://doi.org/10.1159/000444735
  17. Zan L, Chen Q, Zhang L, et al. Epigallocatechin gallate (EGCG) suppresses growth and tumorigenicity in breast cancer cells by downregulation of miR-25. Bioengineered. 2019;10(1):374-382.  https://doi.org/10.1080/21655979.2019.1657327
  18. Pham TH, Page YL, Percevault F, et al. Apigenin, a Partial Antagonist of the Estrogen Receptor (ER), Inhibits ER-Positive Breast Cancer Cell Proliferation through Akt/FOXM1 Signaling. International Journal of Molecular Sciences. 2021;22(1):470.  https://doi.org/10.3390/ijms22010470
  19. Konstantinou EK, Gioxari A, Dimitriou M, et al. Molecular Pathways of Genistein Activity in Breast Cancer Cells. International Journal of Molecular Sciences. 2024;25(10):5556. https://doi.org/10.3390/ijms25105556
  20. Santos RA, Pessoa HR, Daleprane JB, et al. Comparative Anticancer Potential of Green Tea Extract and Epigallocatechin-3-gallate on Breast Cancer Spheroids. Foods. 2023;13(1):64.  https://doi.org/10.3390/foods13010064
  21. Shendge AK, Chaudhuri D, Basu T, et al. A natural flavonoid, apigenin isolated from Clerodendrum viscosum leaves, induces G2/M phase cell cycle arrest and apoptosis in MCF-7 cells through the regulation of p53 and caspase-cascade pathway. Clinical and Translational Oncology. 2021;23(4):718-730.  https://doi.org/10.1007/s12094-020-02461-0
  22. Korga-Plewko A, Michalczyk M, Adamczuk G, et al. Apigenin and Hesperidin Downregulate DNA Repair Genes in MCF-7 Breast Cancer Cells and Augment Doxorubicin Toxicity. Molecules. 2020;25(19):4421. https://doi.org/10.3390/molecules25194421
  23. Howitz KT, Bitterman KJ, Cohen HY, et al. Small molecule activators of sirtuins extend Saccharomyces cerevisiae lifespan. Nature. 2003;425(6954): 191-196.  https://doi.org/10.1038/nature01960
  24. Ji Q, Liu X, Han Z, et al. Resveratrol suppresses epithelial-to-mesenchymal transition in colorectal cancer through TGFβ1/Smads signaling pathway mediated Snail/E-cadherin expression. BMC Cancer. 2015;15:97. 
  25. Ngamkitidechakul C, Jaijoy K, Hansakul P, et al. Antitumour effects of Phyllanthus emblica L.: induction of cancer cell apoptosis and inhibition of in vivo tumour promotion and in vitro invasion of human cancer cells. Phytotherapy Research. 2010;24(9):1405-1413. https://doi.org/10.1002/ptr.3127
  26. Cavuturu BM, Bhandare VV, Ramaswamy A, et al. Molecular Dynamics of Interaction of Sesamin and Related Compounds with the Cancer Marker Beta-Catenin: An in Silico Study. Journal of Biomolecular Structure and Dynamics. 2019;37:877-891.  https://doi.org/10.1080/07391102.2018.1442250
  27. Siao AC, Hou CW, Kao YH, et al. Effect of sesamin on apoptosis and cell cycle arrest in human breast cancer mcf-7 cells. Asian Pacific Journal of Cancer Prevention. 2015;16(9):3779-3783. https://doi.org/10.7314/apjcp.2015
  28. De Mejía EG, Prisecaru VI. Lectins as bioactive plant proteins: a potential in cancer treatment. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 2005; 45(6):425-445.  https://doi.org/10.1080/10408390591034445
  29. Bektas S, Kaptan E. Therapeutic potential of lectins in the treatment of breast cancer: A review. International Journal of Biological Macromolecules. 2023; 249:126073. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2023.126073
  30. Zhang M, Cheung PCK, Chiu LCM, et al. Cell-cycle arrest and apoptosis induction in human breast carcinoma MCF-7 cells by carboxymethylated β-glucan from the mushroom sclerotia of Pleurotus tuber-regium. Carbohydrate Polymers. 2006;66(4):455-462. 
  31. Zhang X, Li T, Liu S, et al. β-glucan from Lentinus edodes inhibits breast cancer progression via the Nur77/HIF-1α axis. Bioscience Reports. 2020; 40(12):BSR20201006. https://doi.org/10.1042/BSR20201006
  32. Spacek J, Vocka M, Zavadova E, et al. Immunomodulation with β-glucan from Pleurotus ostreatus in patients with endocrine-dependent breast cancer. Immunotherapy. 2022;14(1):31-40.  https://doi.org/10.2217/imt-2021-0069
  33. Liu Y, An T, Wan D, et al. Targets and Mechanism Used by Cinnamaldehyde, the Main Active Ingredient in Cinnamon, in the Treatment of Breast Cancer. Frontiers in Pharmacology. 2020;11:582719. https://doi.org/10.3389/fphar.2020.582719
  34. Castro NP, Rangel MC, Merchant AS, et al. Sulforaphane Suppresses the Growth of Triple-negative Breast Cancer Stem-like Cells In vitro and In vivo. Cancer Prevention Research. 2019;12(3):147-158.  https://doi.org/10.1158/1940-6207.CAPR-18-0241
  35. Tanaka T, Shnimizu M, Moriwaki H. Cancer chemoprevention by carotenoids. Molecules. 2012;17(3):3202-3242. https://doi.org/10.3390/molecules17033202
  36. Liput KP, Lepczyński A, Ogłuszka M, et al. Effects of Dietary n-3 and n-6 Polyunsaturated Fatty Acids in Inflammation and Cancerogenesis. International Journal of Molecular Sciences. 2021;22(13):6965. https://doi.org/10.3390/ijms22136965
  37. Vanhevel J, Verlinden L, Doms S, et al. The role of vitamin D in breast cancer risk and progression. Endocrine-Related Cancer. 2022;29:R33-R55.  https://doi.org/10.1530/ERC-21-0182
  38. Wu X, Hu W, Lu L, et al. Repurposing vitamin D for treatment of human malStępignancies via targeting tumor microenvironment. Acta Pharmaceutica Sinica B. 2019;9:203-219.  https://doi.org/10.1016/j.apsb.2018.09.002
  39. Shukla S, Penta D, Mondal P, et al. Epigenetics of Breast Cancer: Clinical Status of Epi-drugs and Phytochemicals. Advances in Experimental Medicine and Biology. 2019;1152:293-310.  https://doi.org/10.1007/978-3-030-20301-6_16
  40. Xie Q, Bai Q, Zou LY, et al. Genistein inhibits DNA methylation and increases expression of tumor suppressor genes in human breast cancer cells. Genes, Chromosomes and Cancer. 2014;53(5):422-431.  https://doi.org/10.1002/gcc.22154
  41. Bosviel R, Dumollard E, Déchelotte P, et al. Can soy phytoestrogens decrease DNA methylation in BRCA1 and BRCA2 oncosuppressor genes in breast cancer? OMICS. 2012;16(5):235-244.  https://doi.org/10.1089/omi.2011.0105
  42. Li Y, Chen H, Hardy TM, et al. Epigenetic regulation of multiple tumor-related genes leads to suppression of breast tumorigenesis by dietary genistein. PLoS One. 2013;8(1):e54369. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0054369
  43. Nimal S, Kumbhar N, Saruchi, et al. Apigenin and its combination with Vorinostat induces apoptotic-mediated cell death in TNBC by modulating the epigenetic and apoptotic regulators and related miRNAs. Scientific Reports. 2024;14(1):9540. https://doi.org/10.1038/s41598-024-60395-x
  44. Hagiwara K, Kosaka N, Yoshioka Y, et al. Stilbene derivatives promote Ago2-dependent tumour-suppressive microRNA activity. Scientific Reports. 2012; 2:314.  https://doi.org/10.1038/srep00314
  45. Jin Y. 3,3’-Diindolylmethane inhibits breast cancer cell growth via miR-21-mediated Cdc25A degradation. Molecular and Cellular Biochemistry. 2011;358(1-2):345-354.  https://doi.org/10.1007/s11010-011-0985-0
  46. Ahmad A, Ali S, Ahmed A, et al. 3, 3’-Diindolylmethane enhances the effectiveness of herceptin against HER-2/neu-expressing breast cancer cells. PLoS One. 2013;8(1):e54657. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0054657
  47. Lewinska A, Adamczyk-Grochala J, Deregowska A, et al. Sulforaphane-Induced Cell Cycle Arrest and Senescence are accompanied by DNA Hypomethylation and Changes in microRNA Profile in Breast Cancer Cells. Theranostics. 2017;7(14):3461-3477. https://doi.org/10.7150/thno.20657
  48. Meeran SM, Patel SN, Li Y, Shukla S, Tollefsbol TO. Bioactive dietary supplements reactivate ER expression in ER-negative breast cancer cells by active chromatin modifications. PLoS One. 2012;7(5):e37748. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0037748
  49. Fix LN, Shah M, Efferth T, et al. MicroRNA expression profile of MCF-7 human breast cancer cells and the effect of green tea polyphenon-60. Cancer Genomics and Proteomics. 2010;7(5):261-277. 
  50. Li X, Xie W, Xie C, et al. Curcumin modulates miR-19/PTEN/AKT/p53 axis to suppress bisphenol A-induced MCF-7 breast cancer cell proliferation. Phytotherapy Research. 2014;28(10):1553-1560. https://doi.org/10.1002/ptr.5167
  51. Yang J, Cao Y, Sun J, et al. Curcumin reduces the expression of Bcl-2 by upregulating miR-15a and miR-16 in MCF-7 cells. Medical Oncology. 2010;27(4):1114-1118. https://doi.org/10.1007/s12032-009-9344-3
  52. Banerjee N, Kim H, Krenek K, et al. Mango polyphenolics suppressed tumor growth in breast cancer xenografts in mice: role of the PI3K/AKT pathway and associated microRNAs. Nutrition Research. 2015;35(8):744-751.  https://doi.org/10.1016/j.nutres.2015.06.002
  53. Мустафин Р.Н. Влияние ретроэлементов на онкогены и онкосупрессоры в канцерогенезе. Современная онкология. 2021;23(4):666-673.  https://doi.org/10.26442/18151434.2021.4.201199
  54. Okudaira N, Ishizaka Y, Tamamori-Adachi M. Resveratrol blocks retrotransposition of LINE-1 through PPAR α and sirtuin-6. Scientific Reports. 2022;12(1):7772. https://doi.org/10.1038/s41598-022-11761-0
  55. Maugeri A, Barchitta M, Magnano San Lio R, et al. Adherence to the Mediterranean diet partially mediates socioeconomic differences in leukocyte LINE-1 methylation: evidence from a cross-sectional study in Italian women. Scientific Reports. 2020;10(1):14360. https://doi.org/10.1038/s41598-020-71352-9
  56. Szabo L, Molnar R, Tomesz A, et al. Olive Oil Improves While Trans Fatty Acids Further Aggravate the Hypomethylation of LINE-1 Retrotransposon DNA in an Environmental Carcinogen Model. Nutrients. 2022;14(4):908.  https://doi.org/10.3390/nu14040908
  57. Park EG, Ha H, Lee DH, et al. Genomic Analyses of Non-Coding RNAs Overlapping Transposable Elements and Its Implication to Human Diseases. International Journal of Molecular Sciences. 2022;23(16):8950. https://doi.org/10.3390/ijms23168950
  58. Isaksen IM, Dankel SN. Ultra-processed food consumption and cancer risk: A systematic review and meta-analysis. Clinical Nutrition. 2023;42(6):919-928.  https://doi.org/10.1016/j.clnu.2023.03.018
  59. Gamboa-Loira B, López-Carrillo L, Mar-Sánchez Y, et al. Epidemiologic evidence of exposure to polycyclic aromatic hydrocarbons and breast cancer: A systematic review and meta-analysis. Chemosphere. 2022;290:133237. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2021.133237
  60. Ma JK, Li K, Li X, et al. Levels of polycyclic aromatic hydrocarbons in edible and fried vegetable oil: a health risk assessment study. Environmental science and pollution research international. 2021;28(42):59784-59791. https://doi.org/10.1007/s11356-021-14755-z

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.