Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Мельников М.В.

ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» Федерального медико-биологического агентства России;
ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России;
ФГБУ ГНЦ «Институт иммунологии» Федерального медико-биологического агентства России

Свиридова А.А.

ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» ФМБА России

Роговский В.С.

ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» Федерального медико-биологического агентства России;
ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Бойко А.Н.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России;
ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» Федерального медико-биологического агентства России

Пащенков М.В.

ФГБУ ГНЦ «Институт иммунологии» ФМБА России

Роль макрофагов в развитии нейровоспаления при рассеянном склерозе

Авторы:

Мельников М.В., Свиридова А.А., Роговский В.С., Бойко А.Н., Пащенков М.В.

Подробнее об авторах

Прочитано: 2499 раз


Как цитировать:

Мельников М.В., Свиридова А.А., Роговский В.С., Бойко А.Н., Пащенков М.В. Роль макрофагов в развитии нейровоспаления при рассеянном склерозе. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2022;122(5):51‑56.
Melnikov MV, Sviridova AA, Rogovskii VS, Boyko AN, Pashenkov MV. The role of macrophages in the development of neuroinflammation in multiple sclerosis. S.S. Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry. 2022;122(5):51‑56. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/jnevro202212205151

Рекомендуем статьи по данной теме:
Хи­рур­ги­чес­кое ле­че­ние вто­рич­ной три­ге­ми­наль­ной нев­рал­гии. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(11):203-209
Ка­чес­тво жиз­ни па­ци­ен­тов с рас­се­ян­ным скле­ро­зом в Смо­лен­ской об­лас­ти. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(12):36-40
Гор­мо­наль­ные ме­то­ды кон­тра­цеп­ции и рас­се­ян­ный скле­роз. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(1):24-30
Эпи­де­ми­оло­гия рас­се­ян­но­го скле­ро­за в Но­во­си­бир­ске. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(1):119-127
Ла­зер­ная те­ра­пия при рас­се­ян­ном скле­ро­зе: обос­но­ва­ние и оп­ти­ми­за­ция ме­то­дик при­ме­не­ния. (Об­зор ли­те­ра­ту­ры). Воп­ро­сы ку­рор­то­ло­гии, фи­зи­оте­ра­пии и ле­чеб­ной фи­зи­чес­кой куль­ту­ры. 2024;(5):45-56

Рассеянный склероз (РС) — аутоиммунное демиелинизирующее заболевание центральной нервной системы (ЦНС) с ранним началом нейродегенеративных изменений [1]. РС является одной из наиболее сложных и социально значимых проблем в современной неврологии, что связано с постоянной тенденцией к росту заболеваемости, а также с инвалидизацией больных РС, представляющих собой преимущественно молодых людей [2].

Основной гипотезой иммунопатогенеза РС является положение о нарушении иммунологической толерантности и активном проникновении через гематоэнцефалический барьер (ГЭБ) в ткань мозга аутореактивных эффекторных иммунных клеток, сенсибилизированных к антигенам миелина. Показано критическое патогенетическое значение при экспериментальном аутоиммунном энцефаломиелите (ЭАЭ) и РС Th1- и Th17-клеток, вырабатывающих провоспалительные цитокины интерферон-γ (ИФН-γ) и интерлейкин-17 (ИЛ-17) [3]. Патогенетическая роль Th17-клеток при РС обусловлена их способностью мигрировать из периферии в ЦНС посредством экспрессии хемокиновых рецепторов (CCR-6 [CD196]) и продукции провоспалительного ИЛ-17, дестабилизирующего ГЭБ [4, 5]. Показано, что большинство препаратов патогенетической терапии РС подавляет функции Th17-клеток [6].

Также установлена важная роль гуморального звена иммунного ответа в иммунопатогенезе РС, на что указывают высокая диагностическая ценность определения олигоклональных иммуноглобулинов и свободных легких k- и λ-цепей иммуноглобулинов в цереброспинальной жидкости, а также клиническая эффективность анти-B-клеточной терапии при РС [7, 8]. Участие B-клеток в патогенезе РС многофакторное и связано не только с продукцией аутоантител, но также с секрецией цитокинов и презентированием антигенов [9]. При РС B-лимфоциты могут локализоваться в оболочках головного мозга и формировать эктопические лимфоидные фолликулы. Более того, именно с формированием таких лимфоидных фолликулов связывают развитие кортикальной демиелинизации и прогрессирование заболевания [10, 11].

В целом эффекторная фаза патогенеза РС к настоящему моменту достаточно подробно изучена, о чем свидетельствуют успехи современной патогенетической терапии заболевания. Однако этиология РС, а также механизмы, способствующие срыву иммунологической толерантности и развитию аутоиммунного ответа в отношении антигенов ЦНС, нуждаются в уточнении. Согласно современным представлениям, ключевое значение в развитии аутоиммунного ответа может принадлежать антигенпрезентирующим клеткам, способным активировать T-клетки, а также направлять их дифференцирование. Из числа антигенпрезентирующих клеток наибольшее внимание привлекают дендритные клетки и макрофаги. Известно, что макрофаги имеют ключевое значение как в индукции аутоиммунного воспаления, так и в поддержании иммунологической толерантности в ЦНС.

Участие макрофагов в иммунопатогенезе экспериментального аутоиммунного энцефаломиелита и рассеянного склероза

Макрофаги занимают центральное место среди клеток врожденного иммунитета и в зависимости от фенотипа обладают как про-, так и противовоспалительными свойствами (M1- и M2-макрофаги соответственно). В ЦНС макрофаги присутствуют в периваскулярном пространстве, сосудистых сплетениях и мягкой мозговой оболочке. Важно, что резидентные макрофаги ЦНС формируют микроглию, способную продуцировать цитокины, презентировать антигены и, таким образом, участвовать в запуске/поддержании локального аутоиммунного воспаления или, напротив, поддерживать иммунологическую толерантность по отношению к антигенам ЦНС. Установлено, что как в острых, так и в хронических очагах демиелинизации при РС макрофаги присутствуют в значительно большем количестве по сравнению с T- и B-лимфоцитами [12—14]. При этом в составе очагов демиелинизации обнаруженные макрофаги представляют собой несколько клеточных популяций: резидентные глиальные клетки ЦНС, а также моноциты, которые мигрируют через ГЭБ из периферии в ЦНС и дифференцируются в макрофаги, что является характерной особенностью при ЭАЭ и РС, так как в норме такие инфильтрирующие макрофаги в ткани мозга отсутствуют [12—14].

Важно, что критическое патогенетическое значение при РС могут иметь как клетки микроглии, так и макрофаги, мигрирующие из периферии. Так, было установлено, что активация клеток микроглии предшествует развитию клинических симптомов, а также инфильтрации миелоидных клеток из периферии в ЦНС при ЭАЭ. В то же время на пике заболевания клетки микроглии составляют не более 37% от общего количества макрофагов и CD11c+-дендритных клеток, обнаруженных в очагах демиелинизации, что может указывать на участие микроглии и макрофагов на разных стадиях патологического процесса. Вполне вероятно, что активация клеток микроглии происходит на ранней стадии нейровоспаления [15]. Эти данные подтверждаются и другими исследованиями. Так, при гистологическом исследовании ткани мозга больных РС была выявлена активация клеток микроглии в нормально выглядящем белом веществе (до клеточной инфильтрации из периферии и повреждения миелина), что также указывает на раннюю активацию микроглии [16].

Напротив, в эффекторную фазу происходит вовлечение именно макрофагов с периферии, с миграцией которых связано клиническое прогрессирование заболевания. В исследовании B. Ajami и соавт. [17] было показано уменьшение выраженности клинических симптомов ЭАЭ на фоне блокады рецепторов CCL2 и CCR2 на моноцитах, необходимых для их миграции через ГЭБ. В ряде других исследований было установлено, что деплеция циркулирующих в крови моноцитов до индукции ЭАЭ приводит к его более позднему развитию и последующему мягкому течению. Кроме того, было показано, что деплеция моноцитарных клеток у животных с воспроизведенным ЭАЭ замедляет прогрессирование клинической симптоматики [18—20].

Участие макрофагов в патогенезе РС может заключаться не только в развитии и поддержании аутоиммунного воспаления с последующей демиелинизацией. При ЭАЭ было установлено, что макрофаги также способны опосредовать и нейродегенеративные нарушения (аксональная дегенерация), преобладающие при прогрессирующих формах заболевания и являющиеся основной причиной развития стойкого неврологического дефицита [21]. Эти данные также подтверждаются и при РС. В нескольких исследованиях у больных как ремиттирующим, так прогрессирующими формами РС (первично- и вторично-прогрессирующий РС) была выявлена корреляция между накоплением белка-предшественника β-амилоида (маркер аксонального повреждения) в поврежденных аксонах и количеством макрофагов в месте повреждения [22—24]. Обнаружение участия макрофагов в развитии аксонального повреждения при РС также обусловливает большой практический интерес к патогенетической роли макрофагов при данном заболевании, так как среди более десяти препаратов патогенетической терапии ремиттирующего РС лишь часть обладает низкой эффективностью при прогрессирующих формах РС [25].

Важно, что при РС макрофаги способны оказывать и противовоспалительный эффект, связанный, прежде всего, с функциями M2-макрофагов, способных продуцировать противовоспалительные факторы и участвовать в поддержании иммунологической толерантности как на периферии, так и в ЦНС [16]. Было показано, что адаптивный перенос M2-макрофагов оказывает не только профилактический, но и терапевтический эффект при ЭАЭ [26, 27]. У больных РС противовоспалительный эффект M2-макрофагов также подтверждается их обнаружением в бляшках РС в фазе ремиелинизации, наступающей после разрешения в них воспаления [28].

В целом важное патогенетическое значение макрофагов в патогенезе РС не вызывает сомнений. Наряду с Th17-клетками и B-лимфоцитами модуляция функций макрофагов рассматривается как одна из ключевых задач патогенетической терапии РС.

Новые методы модуляции функций макрофагов и микроглии: роль биогенных аминов

Несмотря на достигнутые в последние годы успехи в патогенетическом лечении, терапия больных РС остается важной проблемой практической неврологии. В настоящее время одобрено более десяти препаратов для лечения различных форм РС. Все они объединены в одну группу — препараты, изменяющие течение РС (ПИТРС). На основании эффективности выделяют несколько линий ПИТРС. Для большинства ПИТРС T- и B-лимфоциты являются ключевыми мишенями (хотя каждый препарат обладает собственным уникальным механизмом действия). Также показано влияние ПИТРС на дендритные клетки. В частности, основной механизм действия препарата глатирамера ацетат связан с модуляцией функций дендритных клеток [43]. В то же время эффект ПИТРС на функции макрофагов и моноцитов менее изучен, хотя и показан для большинства из них (см. таблицу).

Влияние ПИТРС, на функции моноцитов и/или макрофагов при ЭАЭ и РС

Препарат

Заболевание

Влияние на моноциты/макрофаги

Глатирамера ацетат

Усиливает фагоцитарную активность микроглии крыс и снижает продукцию ФНО-α клетками микроглии крыс [29]

РС

Повышает продукцию ИЛ-10 моноцитами и снижает продукцию ИЛ-12p70 ЛПС-стимулированными моноцитами [30]

ИФН-β

ЭАЭ

Подавляет трансэндотелиальную миграцию макрофагов в ЦНС [31]

РС

Повышает на моноцитах экспрессию Ig-подобного транскрипта-3, ингибирующего активацию и пролиферацию T-клеток [32]

Диметилфумарат

ЭАЭ

Подавляет миграцию макрофагов в ЦНС и индуцирует развитие M2-моноцитов [33, 34]

РС

Подавляет уровень экспрессии CD40 и CD150 на моноцитах [35]

Терифлунамид

ЭАЭ

Ингибирует миграцию макрофагов в ЦНС [36]

РС

Направляет дифференцирование моноцитов в сторону M2-фенотипа [37]

Финголимод

ЭАЭ

Снижает экспрессию CD40 и продукцию ФНО-α моноцитами мышей [38]

РС

Подавляет продукцию моноцитами ФНО-α [39]

Натализумаб

ЭАЭ

Подавляет активацию микроглии и миграцию в ЦНС активированных макрофагов [40]

РС

Подавляет активацию микроглии в белом веществе [41]

Ритуксимаб*

РС

Подавляет активацию моноцитов за счет истощения B-клеток памяти, продуцирующих гранулоцитарно-макрофагальный колониестимулирующий фактор [42]

Примечание. * — не зарегистрирован для терапии РС.

В последние годы интерес к макрофагам как ключевым игрокам в патогенезе РС существенно возрос. Прогрессирование РС все больше связывают с наличием локального воспаления в ЦНС (нейровоспаления), в развитии которого микроглия может иметь критическое значение. Как уже отмечалось, существующие ПИТРС обладают ограниченным эффектом на нейровоспаление (в связи с их низкой проницаемостью через ГЭБ), и, как следствие, низкой эффективностью при прогрессирующих формах РС [25, 44]. В связи с этим исследование механизмов, позволяющих модулировать функции макрофагов/микроглии в ЦНС, является важной задачей.

С этой точки зрения наибольшее внимание привлекают биогенные амины, в частности дофамин, норадреналин и серотонин, рецепторы к которым экспрессируются клетками как нервной, так и иммунной систем [45]. Серотонин является одним из ключевых нейротрансмиттеров и опосредует множество эффектов в ЦНС. С другой стороны, серотонин участвует и в регуляции иммунного ответа. При РС показано прямое участие серотонина как в развитии нейропсихологических нарушений, так и в иммунопатогенезе заболевания [46]. Исследования последних лет показали, что серотонин, а также серотонинергическая терапия способны модулировать функции клеток как врожденного, так и адаптивного иммунного ответа. Показано, что рецепторы к серотонину экспрессируют T- и B-лимфоциты, нейтрофилы, моноциты, макрофаги, дендритные клетки [47].

Влияние серотонина на функции макрофагов недостаточно изучено. Известно, что в моноцитах человека экспрессируется мРНК генов-рецепторов серотонина, в частности 5-HT1E, 5-HT2A, 5-HT3, 5-HT4 и 5-HT7, в макрофагах — 5-HT1A, 5-HT2A, 5-HT2B, 5-HT2C, 5-HT3 и 5-HT7 [48, 49]. Также была установлена экспрессия в макрофагах транспортера серотонина [50]. В то же время способность макрофагов продуцировать серотонин, а также значение активации или блокады различных рецепторов серотонина на макрофагах предстоит уточнить. Немногочисленные данные указывают, что активация 5-HT2B-рецепторов может быть связана с M2-поляризацией макрофагов [49, 51]. Схожие результаты были получены при исследовании влияния агониста 5-HT2B-рецепторов на функции дендритных клеток. Так, A. Szabo и соавт. [52] установили, что стимуляция 5-HT2B-рецепторов с использованием агониста 5-HT2B-рецепторов BW 723C86 подавляет активацию CD1a+-дендритных клеток человека и снижает продукцию ими ИЛ-6, -8 и -12. Также была обнаружена сниженная способность таких дендритных клеток индуцировать Th1- и Th17-иммунный ответ.

Частично эти данные согласуются с результатами недавнего исследования, в котором было установлено, что флуоксетин оказывает ингибирующий эффект на продукцию ИЛ-6 и ИЛ-1β стимулированными дендритными клетками больных ремиттирующим РС и здоровых доноров. При этом блокада 5-HT2B-рецепторов специфическим антагонистом RS 127445 снижала выраженность ингибирующего эффекта флуоксетина на продукцию ИЛ-1β в обеих группах и ИЛ-6 в группе здоровых доноров. Активация 5-HT2B-рецепторов специфическим агонистом (BW 723C86), напротив, усиливала ингибирующий эффект флуоксетина на продукцию дендритными клетками ИЛ-6 в обеих группах, но не изменяла эффект флуоксетина на продукцию ИЛ-1β. Блокада 5-HT1A- и 5-HT2A-рецепторов специфическими антагонистами (NAD 299 и MDL 100907 соответственно) не оказывала какого-либо влияния на ингибирующий эффект флуоксетина на продукцию цитокинов [53]. В целом имеющиеся к настоящему моменту данные позволяют предположить противовоспалительный эффект активации 5-HT2B-рецепторов как на дендритных клетках, так и на макрофагах, что тем не менее нуждается в уточнении.

Влияние селективных ингибиторов обратного захвата серотонина на функции макрофагов также мало изучено. В экспериментах на грызунах было обнаружено, что терапия флуоксетином или флувоксамином оказывает ингибирующий эффект на цитотоксическую активность макрофагов. В то же время в экспериментах in vitro эти данные не подтвердились [54]. В другом исследовании было показано влияние флуоксетина на NLRP3-инфламмасому: флуоксетин подавлял активацию NLRP3-инфламмасомы, расщепление каспазы-1 и секрецию ИЛ-1β инфильтрирующими макрофагами, а также клетками микроглии [55].

В нескольких исследованиях также изучалось влияние дофамина на функции макрофагов и микроглии. В частности, было показано, что дофамин подавляет продукцию провоспалительных цитокинов ИЛ-6 и ИЛ-1β липополисахарид (ЛПС)-стимулированными клетками микроглии грызунов путем подавления NF-kB-сигнального пути. В то же время рецепторы, способные опосредовать ингибирующий эффект дофамина на клетки микроглии, не были установлены: блокада или активация D1- и D2-рецепторов дофамина специфическими антагонистами/агонистами не влияла на ингибирующий эффект дофамина [56].

В другом исследовании было показано влияние дофамина на макрофаги посредством подавления NLRP3-инфламмасомы. Дофамин снижал активацию NLRP3-зависимой каспазы-1, а также продукцию ИЛ-1β и ИЛ-18 клетками микроглии, стимулированными ЛПС и аденозинтрифосфатом. Было установлено, что данный эффект дофамина может быть опосредован D1-рецептором дофамина: выключение D1-рецепторов дофамина блокировало ингибирующий эффект дофамина на активацию NLRP3-инфламмасомы, тогда как агонист D1-рецептора дофамина (A-68930), напротив, оказывал сопоставимый с дофамином ингибирующий эффект [57].

Заключение

Таким образом, существующие данные указывают на ключевую роль макрофагов в патогенезе РС. Важно, что макрофаги/микроглия могут выступать в качестве инициаторов аутоиммунного воспаления непосредственно в ЦНС и далее в наибольшей степени опосредовать нейровоспаление, лежащее в основе прогрессирования РС. Дальнейшее изучение новых механизмов модуляции функций макрофагов в ЦНС, в частности посредством таргетирования рецепторов биогенных аминов, возможно, позволит разработать дополнительные методы терапии РС.

Исследование выполнено при финансовой поддержке РФФИ и Правительства Москвы в рамках научного проекта №21-315-70014.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Absinta M, Lassmann H, Trapp BD. Mechanisms underlying progression in multiple sclerosis. Curr Opin Neurol. 2020;33(3):277-285.  https://doi.org/10.1097/WCO.0000000000000818
  2. Boyko A, Kesselring J, Paty DW, et al. Multiple sclerosis and public health. Educational and management implications. World Health Organization, Department of Mental Health, Neuroscience and Neurological Disorders. 1999;(2):1-11. 
  3. Singh RP, Hasan S, Sharma S, et al. Th17 cells in inflammation and autoimmunity. Autoimmun Rev. 2014;13(12):1174-1181. https://doi.org/10.1016/j.autrev.2014.08.019
  4. Reboldi A, Coisne C, Baumjohann D, et al. C-C chemokine receptor 6-regulated entry of TH-17 cells into the CNS through the choroid plexus is required for the initiation of EAE. Nat Immunol. 2009;10(5):514-523.  https://doi.org/10.1038/ni.1716
  5. Sallusto F, Impellizzieri D, Basso C, et al. T-cell trafficking in the central nervous system. Immunol Rev. 2012;248(1):216-227.  https://doi.org/10.1111/j.1600-065X.2012.01140.x
  6. Moser T, Akgün K, Proschmann U, et al. The role of TH17 cells in multiple sclerosis: Therapeutic implications. Autoimmun Rev. 2020;19(10):102647. https://doi.org/10.1016/j.autrev.2020.102647
  7. Ziemssen T, Akgün K, Brück W. Molecular biomarkers in multiple sclerosis. J Neuroinflammation. 2019;16(1):272.  https://doi.org/10.1186/s12974-019-1674-2
  8. Kemmerer CL, Pernpeintner V, Ruschil C, et al. Differential effects of disease modifying drugs on peripheral blood B cell subsets: A cross sectional study in multiple sclerosis patients treated with interferon-β, glatiramer acetate, dimethyl fumarate, fingolimod or natalizumab. PLoS One. 2020;15(7):e0235449. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0235449
  9. Sospedra M. B cells in multiple sclerosis. Curr Opin Neurol. 2018;31(3):256-262.  https://doi.org/10.1097/WCO.000000000000563
  10. Negron A, Stüve O, Forsthuber TG. Ectopic Lymphoid Follicles in Multiple Sclerosis: Centers for Disease Control? Front Neurol. 2020;11:607766. https://doi.org/10.3389/fneur.2020.607766
  11. Bell L, Lenhart A, Rosenwald A, et al. Lymphoid Aggregates in the CNS of Progressive Multiple Sclerosis Patients Lack Regulatory T Cells. Front Immunol. 2020;10:3090. https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.03090
  12. Polman CH, Dijkstra CD, Sminia T, Koetsier JC. Immunohistological analysis of macrophages in the central nervous system of Lewis rats with acute experimental allergic encephalomyelitis. J Neuroimmunol. 1986;11(3):215-222.  https://doi.org/10.1016/0165-5728(86)90005-6
  13. Brück W, Sommermeier N, Bergmann M, et al. Macrophages in multiple sclerosis. Immunobiology. 1996;195(4-5):588-600.  https://doi.org/10.1016/S0171-2985(96)80024-6
  14. Henderson AP, Barnett MH, Parratt JD, Prineas JW. Multiple sclerosis: distribution of inflammatory cells in newly forming lesions. Ann Neurol. 2009;66(6):739-753.  https://doi.org/10.1002/ana.21800
  15. Ponomarev ED, Shriver LP, Maresz K, Dittel BN. Microglial cell activation and proliferation precedes the onset of CNS autoimmunity. J Neurosci Res. 2005;81(3):374-389.  https://doi.org/10.1002/jnr.20488
  16. Nally FK, De Santi C, McCoy CE. Nanomodulation of Macrophages in Multiple Sclerosis. Cells. 2019;8(6):543.  https://doi.org/10.3390/cells8060543
  17. Ajami B, Bennett JL, Krieger C, et al. Infiltrating monocytes trigger EAE progression, but do not contribute to the resident microglia pool. Nat Neurosci. 2011;14(9):1142-1149. https://doi.org/10.1038/nn.2887
  18. Brosnan CF, Bornstein MB, Bloom BR. The effects of macrophage depletion on the clinical and pathologic expression of experimental allergic encephalomyelitis. J Immunol. 1981;126(2):614-620. 
  19. Huitinga I, van Rooijen N, de Groot CJ, et al. Suppression of experimental allergic encephalomyelitis in Lewis rats after elimination of macrophages. J Exp Med. 1990;172(4):1025-1033. https://doi.org/10.1084/jem.172.4.1025
  20. Moreno MA, Burns T, Yao P, et al. Therapeutic depletion of monocyte-derived cells protects from long-term axonal loss in experimental autoimmune encephalomyelitis. J Neuroimmunol. 2016;290:36-46.  https://doi.org/10.1016/j.jneuroim.2015.11.004
  21. Kornek B, Storch MK, Weissert R, et al. Multiple sclerosis and chronic autoimmune encephalomyelitis: a comparative quantitative study of axonal injury in active, inactive, and remyelinated lesions. Am J Pathol. 2000;157(1):267-276.  https://doi.org/10.1016/S0002-9440(10)64537-3
  22. Bitsch A, Schuchardt J, Bunkowski S, et al. Acute axonal injury in multiple sclerosis. Correlation with demyelination and inflammation. Brain. 2000;123(Pt 6):1174-1183. https://doi.org/10.1093/brain/123.6.1174
  23. Kuhlmann T, Lingfeld G, Bitsch A, et al. Acute axonal damage in multiple sclerosis is most extensive in early disease stages and decreases over time. Brain. 2002;125(Pt 10):2202-2212. https://doi.org/10.1093/brain/awf235
  24. Ferguson B, Matyszak MK, Esiri MM, Perry VH. Axonal damage in acute multiple sclerosis lesions. Brain. 1997;120(Pt 3):393-399.  https://doi.org/10.1093/brain/120.3.393
  25. Bross M, Hackett, M, Bernitsas E. Approved and Emerging Disease Modifying Therapies on Neurodegeneration in Multiple Sclerosis. Int J Mol Sci. 2020;21(12):4312. https://doi.org/10.3390/ijms21124312
  26. Tierney JB, Kharkrang M, La Flamme AC. Type II-activated macrophages suppress the development of experimental autoimmune encephalomyelitis. Immunol Cell Biol. 2009;87(3):235-240.  https://doi.org/10.1038/icb.2008.99
  27. Jiang HR, Milovanović M, Allan D, et al. IL-33 attenuates EAE by suppressing IL-17 and IFN-γ production and inducing alternatively activated macrophages. Eur J Immunol. 2012;42(7):1804-1814. https://doi.org/10.1002/eji.201141947
  28. Raine CS. Multiple sclerosis: The resolving lesion revealed. J Neuroimmunol. 2017;304:2-6.  https://doi.org/10.1016/j.jneuroim.2016.05.021
  29. Pul R, Moharregh-Khiabani D, Škuljec J, et al. Glatiramer acetate modulates TNF-α and IL-10 secretion in microglia and promotes their phagocytic activity. J Neuroimmune Pharmacol. 2011;6(3):381-388.  https://doi.org/10.1007/s11481-010-9248-1
  30. Kim HJ, Ifergan I, Antel JP, et al. Type 2 monocyte and microglia differentiation mediated by glatiramer acetate therapy in patients with multiple sclerosis. J Immunol. 2004;172(11):7144-7153. https://doi.org/10.4049/jimmunol.172.11.7144
  31. Floris S, Ruuls SR, Wierinckx A, et al. Interferon-beta directly influences monocyte infiltration into the central nervous system. J Neuroimmunol. 2002;127(1-2):69-79.  https://doi.org/10.1016/s0165-5728(02)00098-x
  32. Waschbisch A, Sanderson N, Krumbholz M, et al. Interferon beta and vitamin D synergize to induce immunoregulatory receptors on peripheral blood monocytes of multiple sclerosis patients. PLoS One. 2014;9(12):e115488. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0115488
  33. Schilling S, Goelz S, Linker R, et al. Fumaric acid esters are effective in chronic experimental autoimmune encephalomyelitis and suppress macrophage infiltration. Clin Exp Immunol. 2006;145(1):101-107.  https://doi.org/10.1111/j.1365-2249.2006.03094.x
  34. Schulze-Topphoff U, Varrin-Doyer M, et al. Dimethyl fumarate treatment induces adaptive and innate immune modulation independent of Nrf2. Proc Natl Acad Sci USA. 2016;113(17):4777-4782. https://doi.org/10.1073/pnas.1603907113
  35. Diebold M, Sievers C, Bantug G, et al. Dimethyl fumarate influences innate and adaptive immunity in multiple sclerosis. J Autoimmun. 2018;86:39-50.  https://doi.org/10.1016/j.jaut.2017.09.009
  36. Ringheim GE, Lee L, Laws-Ricker L, et al. Teriflunomide attenuates immunopathological changes in the dark agouti rat model of experimental autoimmune encephalomyelitis. Front Neurol. 2013;4:169.  https://doi.org/10.3389/fneur.2013.00169
  37. Medina S, Sainz de la Maza S, Villarrubia N, et al. Teriflunomide induces a tolerogenic bias in blood immune cells of MS patients. Ann Clin Transl Neurol. 2019;6(2):355-363.  https://doi.org/10.1002/acn3.711
  38. Lewis ND, Haxhinasto SA, Anderson SM, et al. Circulating monocytes are reduced by sphingosine-1-phosphate receptor modulators independently of S1P3. J Immunol. 2013;190(7):3533-3540. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1201810
  39. Di Dario M, Colombo E, Govi C, et al. Myeloid cells as target of fingolimod action in multiple sclerosis. Neurol Neuroimmunol Neuroinflamm. 2015;2(6):e157. https://doi.org/10.1212/NXI.0000000000000157
  40. Mindur JE, Ito N, Dhib-Jalbut S, Ito K. Early treatment with anti-VLA-4 mAb can prevent the infiltration and/or development of pathogenic CD11b+CD4+ T cells in the CNS during progressive EAE. PLoS One. 2014;9(6):e99068. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0099068
  41. Sucksdorff M, Tuisku J, Matilainen M, et al. Natalizumab treatment reduces microglial activation in the white matter of the MS brain. Neurol Neuroimmunol Neuroinflamm. 2019;6(4):e574. https://doi.org/10.1212/NXI.0000000000000574
  42. Li R, Rezk A, Miyazaki Y, et al. Canadian B cells in MS Team. Proinflammatory GM-CSF-producing B cells in multiple sclerosis and B cell depletion therapy. Sci Transl Med. 2015;7(310):310ra166. https://doi.org/10.1126/scitranslmed.aab4176
  43. Luessi F, Zipp F, Witsch E. Dendritic cells as therapeutic targets in neuroinflammation. Cell Mol Life Sci. 2016;73(13):2425-2450. https://doi.org/10.1007/s00018-016-2170-9
  44. Correale J, Halfon MJ, Jack D, et al. Acting centrally or peripherally: A renewed interest in the central nervous system penetration of disease-modifying drugs in multiple sclerosis. Mult Scler Relat Disord. 2021;56:103264. https://doi.org/10.1016/j.msard.2021.103264
  45. Carandini T, Cercignani M, Galimberti D, et al. The distinct roles of monoamines in multiple sclerosis: A bridge between the immune and nervous systems? Brain Behav Immun. 2021;94:381-391.  https://doi.org/10.1016/j.bbi.2021.02.030
  46. Malinova TS, Dijkstra CD, de Vries HE. Serotonin: A mediator of the gut-brain axis in multiple sclerosis. Mult Scler. 2018;24(9):1144-1150. https://doi.org/10.1177/1352458517739975
  47. Shajib MS, Khan WI. The role of serotonin and its receptors in activation of immune responses and inflammation. Acta Physiol (Oxf). 2015;213(3):561-574.  https://doi.org/10.1111/apha.12430
  48. Durk T, Panther E, Muller T, et al. 5-Hydroxytryptamine modulates cytokine and chemokine production in LPS-primed human monocytes via stimulation of different 5-HTR subtypes. Int Immunol. 2005;17(5):599-606. 
  49. de las Casas-Engel M, Dominguez-Soto A, Sierra-Filardi E, et al. Serotonin skews human macrophage polarization through HTR2B and HTR7. J Immunol. 2013;190(5):2301-2310.
  50. Herr N, Bode C, Duerschmied D. The Effects of Serotonin in Immune Cells. Front Cardiovasc Med. 2017;4:48. 
  51. Nieto C, Rayo I, de Las Casas-Engel M, et al. Serotonin (5-HT) Shapes the Macrophage Gene Profile through the 5-HT2B-Dependent Activation of the Aryl Hydrocarbon Receptor. J Immunol. 2020;204(10):2808-2817. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1901531
  52. Szabo A, Gogolak P, Koncz G, et al. Immunomodulatory capacity of the serotonin receptor 5-HT2B in a subset of human dendritic cells. Sci Rep. 2018;8(1):1765. https://doi.org/10.1038/s41598-018-20173-y
  53. Кривенко Л.В., Свиридова А.А., Мельников М.В. и др. Влияние флуоксетина на продукцию дендритными клетками интерлейкина-6 и интерлейкина-1β при рассеянном склерозе in vitro. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2020;120(7-2):67-72.  https://doi.org/10.17116/jnevro202012007267
  54. Belowski D, Kowalski J, Madej A, Herman ZS. Influence of antidepressant drugs on macrophage cytotoxic activity in rats. Pol J Pharmacol. 2004;56(6):837-842. 
  55. Du RH, Tan J, Sun XY, et al. Fluoxetine Inhibits NLRP3 Inflammasome Activation: Implication in Depression. Int J Neuropsychopharmacol. 2016;19(9):pyw037. https://doi.org/10.1093/ijnp/pyw037
  56. Yoshioka Y, Sugino Y, Shibagaki F, et al. Dopamine attenuates lipopolysaccha-ride-induced expression of proinflammatory cytokines by inhibiting the nuclear translocation of NF-κB p65 through the for-mation of dopamine quinone in microglia. Eur J Pharmacol. 2020;866:172826. https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2019.172826
  57. Yan Y, Jiang W, Liu L, et al. Dopamine controls systemic inflammation through inhibition of NLRP3 inflammasome. Cell. 2015;160(1-2):62-73.  https://doi.org/10.1016/j.cell.2014.11.047

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.