ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроектыО насРекламаДоставка/ОплатаКонтакты
+7 (495) 428-43-29
  • Главная
  • / Журналы
  • / Вернуться в журнал
  • / Содержание номера
  • / Статья
Патологические изменения в биоптатах головного мозга пациентов при идиопатической нормотензивной гидроцефалии

Патологические изменения в биоптатах головного мозга пациентов при идиопатической нормотензивной гидроцефалии

Авторы:
Гаспар Владимирович Гаврилов,
Станишевский А.В.,
Гайдар Б.В.,
Парамонова Н.М.,
Гайкова О.Н.,
Дмитрий Владимирович Свистов

Журнал: Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2019;119(3):50-54.

DOI: 10.17116/jnevro201911903150

Прочитано: 3538 раз

Скачать PDF

Резюме

Цель исследования. Выявление специфических патоморфологических изменений, возникающих на тканевом, клеточном и субклеточном уровнях у пациентов с идиопатической нормотензивной гидроцефалией. Материал и методы. Методами световой и электронной микроскопии исследованы биоптаты головного мозга 32 пациентов с идиопатической нормотензивной гидроцефалией. Тонкоигольную пункционную биопсию выполняли в трех точках — коре, подкорковом и перивентрикулярном белом веществе — в проекции трека вентрикулярного катетера во время проведения ликворошунтирующей операции. Результаты. Выявлен ряд патоморфологических изменений, возникающих в веществе головного мозга на тканевом, клеточном и субклеточном уровне при идиопатической нормотензивной гидроцефалии. К наиболее характерным относятся общее разрежение и губчатость паренхимы мозга, расширение периваскулярных пространств, формирование очагов асептического некроза, амилоидная ангиопатия, отложение телец Леви и формирование скоплений глиофиламентов. Заключение. Выявленные патоморфологические изменения позволяют судить об идиопатической нормотензивной гидроцефалии как о специфическом проявлении общего нейродегенеративного процесса, имеющего вместе с тем характерные черты, сказывающиеся, вероятно, на особенностях клинических проявлений заболевания.

Ключевые слова

  • нормотензивная гидроцефалия
  • патогенез
  • патоморфология
  • биопсия

Дата публикации: 01.05.2020

Идиопатическая нормотензивная гидроцефалия (иНТГ) — патологическое состояние, характеризующееся избыточным накоплением цереброспинальной жидкости (ЦСЖ) в желудочках головного мозга и субарахноидальных пространствах, развивающееся на фоне нормального давления ЦСЖ и приводящее к формированию патоморфологических изменений в перивентрикулярном мозговом веществе, в результате которых формируется специфическая клиническая картина — триада Хаким—Адамса: нарушения походки, когнитивных функций и мочеиспускания.

иНТГ развивается, как правило, у людей старше 65 лет. Встречаемость иНТГ составляет, по разным данным, от 0,3 до 3% и увеличивается с возрастом [1]. Клинические проявления иНТГ значительно снижают качество жизни пациентов и в ряде случаев имеют инвалидизирующий характер. В отличие от большинства нейродегенеративных и сосудистых заболеваний, таких как болезнь Альцгеймера, сосудистая деменция, лобно-височная деменция и др., иНТГ является потенциально обратимой. Так, по данным ряда авторов, своевременное выполнение вентрикулоперитонеального шунтирования позволяет добиться регресса когнитивных нарушений у 60—80% пациентов [2]. Согласно данным современных исследований выполнение шунтирующей операции позволяет значительно улучшить качество жизни даже у пациентов с исходно присутствующим тяжелым неврологическим дефицитом, а также целесообразно у лежачих больных [3].

Несмотря на значительное количество исследований, посвященных изучению патогенеза иНТГ, единые взгляды на механизм формирования патологических проявлений заболевания до настоящего момента не выработаны [4, 5]. В представленной работе приведены результаты собственных исследований методами световой и электронной микроскопии биоптатов головного мозга пациентов с иНТГ, отражающие характер микроструктурных изменений на тканевом, клеточном и субклеточном уровнях, возникающих в веществе головного мозга при данной патологии. Формированию представлений о патогенезе заболевания способствует изучение возникающих у пациента морфологических изменений органов-мишеней.

Цель исследования — выявление специфических патоморфологических изменений, возникающих на тканевом, клеточном и субклеточном уровнях у пациентов с идиопатической нормотензивной гидроцефалией.

Материал и методы

Исследованы биоптаты коры, субкортикального и перивентрикулярного белого вещества головного мозга 32 пациентов с иНТГ, полученные при выполнении вентрикулоперитонеального шунтирования. Из них 20 биоптатов исследованы методом световой и 12 — методом электронной микроскопии.

У всех пациентов исследуемой группы диагноз иНТГ был установлен на основании комплексной оценки клинических данных, результатов нейровизуализации и люмбальной пункции. Клинически пациенты характеризовались сочетанием когнитивных нарушений, апраксии ходьбы (оценивали по скорости прохождения дистанции 10 м и результату теста «time up and go»), а также нарушений мочеиспускания. При магнитно-резонансной томографии (МРТ) головного мозга определяли степень расширения боковых желудочков (индекс Эванса более 30), наличие картины DESH-синдрома («disproportionally enlarged subarachnoid space hydrocephalus»), признаки перивентрикулярного отека, ширину «каллезного угла», расширение височных рогов и др. Во всех случаях у пациентов, включенных в исследование, диагноз иНТГ подтвержден результатами спинального tap-теста.

Первым этапом при выполнении ЦСЖ-шунтирующей операции при помощи системы интраоперационной навигации выполняли биопсию ткани головного мозга в трех областях (кортикальной, субкортикальной и перивентрикулярной) строго в проекции трека вентрикулярного катетера.

Далее взятый для гистологического исследования материал в виде столбцов ткани кусочков толщиной 0,7 мм обезжиривали в спиртах возрастающей концентрации, обрабатывали хлороформом в аппарате Tissue-Tek VIP 6 (Sakura) и заливали в парафин по стандартной методике. Затем изготовляли гистологические срезы толщиной 5—7 микрон. Все микропрепараты окрашивали в аппарате Tissue-Tek Prisma (Sakura) гематоксилином и эозином, дополнительно также использовали окраски по методам Ван-Гизона, Шпильмейера и Ниссля. Для микроскопической оценки использовали световой микроскоп Leica DM 1000 (Германия).

Кроме того, часть материала была подготовлена к ультраструктурному исследованию с использованием трансмиссионной электронной микроскопии. Биоптаты фиксировали смесью 0,5% глутаральдегида и 4% параформальдегида в течение 2,5 ч при температуре 4 °C. Постфиксацию проводили в 1% растворе тетраоксида осмия. Затем кусочки ткани были дегидратированы в растворах этилового спирта возрастающей концентрации и ацетоне, после чего заключены в смесь аралдитов. После полимеризации блоков из них изготавливали ультратонкие срезы на ультрамикротоме LKB III (Швеция). Исследование материала и фотосъемку проводили с помощью просвечивающего электронного микроскопа JEM-100 CX (Япония) ВМедА и FEITecnai G2 Spirit Bio TWIN (Нидерланды) Центра коллективного пользования ЦЭФБ им. И.М. Сеченова.

Дизайн исследования одобрен этическим комитетом Военно-медицинской академии им. С.М. Кирова (протокол № 199 от 19.12.17).

Результаты

По данным световой микроскопии большинство нейронов были изменены, единичные — имели правильную форму, но темное ядро, ядрышко не определялось. Часто встречались «клетки-тени», иногда с явлениями нейронофагии. Имели место очаги нейронального опустошения. Наиболее характерными являлись темные, сморщенные нейроны с темным ядром неправильной формы.

Наиболее выраженные изменения в веществе головного мозга у пациентов с иНТГ были связаны с общим разрежением нейропиля, утолщением и склерозированием стенок артериол, набуханием эндотелия, образованием конвалютов. Периваскулярные пространства часто были расширены, иногда значительно, с образованием криблюр (рис. 1).

Рис. 1. Кора. Крупная криблюра, в просвете небольшое количество рыхло расположенных коллагеновых волокон и свободно лежащие макрофаги и лимфоциты. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. 400.

В подкорковом белом веществе имели место мелкие очаги элективного некроза ткани мозга и образования мелких полостей неправильной формы с неровными контурами. Количество миелинизированных аксонов уменьшено во всех случаях, иногда значительно, волокна были неравномерными по толщине и не образовывали характерной для белого вещества плотной сети (рис.2).

Рис. 2. Белое вещество. Нейропиль разрежен, количество миелиновых волокон значительно уменьшено. Окраска по методу Шпильмеера. Ув. 1000.

Плотность белого вещества в перивентрикулярной зоне была неравномерной и значимо уменьшалась в участках, прилежащих к желудочку. Состояние глии и сосудов аналогично изменениям в субкортикальном белом веществе. Белое вещество, прилежащее к желудочку, представлено множественными полостями с неровными контурами разных размеров и формы. Миелиновые волокна в этой зоне были единичными, неровными, истонченными (рис. 3).

Рис. 3. Перивентрикулярное белое вещество представлено множественными разных размеров и форм полостями с неровными контурами. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. 400.

По данным электронной микроскопии изменения морфологии клеток головного мозга и межклеточного вещества при иНТГ выявлялись и на ультрамикроструктурном уровне. При электронной микроскопии ткани перивентрикулярной области у пациентов с иНТГ определялась общая пастозность ткани. Губчатость паренхимы была обусловлена множеством расширенных оптически пустых дендритов и аксонов, диффузно расположенных среди нейропиля по всей перивентрикулярной зоне. Максимальное их скопление локализовано вокруг сосудов. Отечные отростки, сливаясь по 2—4 в единые конгломераты, имели между собой щелевые контакты. Образованные спонтанно в результате критического сближения мембран соседних, увеличенных в объеме отростков, щелевые контакты могут выполнять роль электрических синапсов.

Синапсы, образованные с участием большинства пар нервных окончаний, имели морфологические проявления нарушения проводимости нервных импульсов. Синаптические везикулы в большом количестве скапливались в аксонных терминалях, агглютинировали (рис. 4).

Рис. 4. Тонкий аксональный отросток полностью заполнен агглютинировавшими свободными везикулами (СВ). Ув. 20 500.

Нередко в перинуклеарных «карманах» и более объемных, оптически «пустых» областях, прилегающих к ядру, наблюдались скопления вещества, напоминающего ядерный хроматин. Кариоплазма при этом имела повышенную конденсацию хроматина, не свойственную данным клеткам в нормальном состоянии.

Основная масса нейро- и глиоцитов перивентрикулярной зоны, в том числе элементы гематоэнцефалического барьера, были повреждены и/или гиперхромны с необратимыми дегенеративными изменениями (рис. 5).

Рис. 5. Часть гиперхромного нейрона, у ядерных пор скопления хроматина (Хр), в цитоплазме небольшое тельце Леви (ТЛ) и лизосома (Л). Ув. 26 500.
В цитоплазме многих клеток обнаружены тельца Леви.

В перивентрикулярной зоне лобных долей головного мозга при иНТГ обнаружены амилоидные бляшки. Как правило, в исследуемых биоптатах крупные амилоидные бляшки были окружены разнонаправленными волокнами глиофиламентов и небольшими по размеру фрагментами остаточных мембран (рис. 6).

Рис. 6. Амилоидная бляшка (АБ), окруженная большими пучками разнонаправленных глиофиламентов (ГлФл). Ув. 3000.
В перивентрикулярной зоне выявлен фиброз клеточных элементов и межклеточного пространства нейропиля. В цитоплазме тел фиброзных астроцитов и олигодендроцитов обнаружены глиофиламенты в виде тонких нитей или плотных сконцентрированных пучков вокруг ядер.

Обсуждение

Расширение периваскулярных пространств вокруг мелкокалиберных артериол укладывается в концепцию нарушений функционирования глиолимфатической системы, возникающих у пациентов с иНТГ [6]. Само по себе расширение периартериальных пространств может приводить к снижению темпов обменных процессов между ЦСЖ и тканевой жидкостью, затруднять клиренс продуктов обмена из межклеточного пространства. Теоретические представления о нарушениях механизмов очищения микроокружения нервных клеток от токсинов и «шлаков» нашло подтверждение в экспериментальных работах с интратекальным введением МР-контрастного вещества. Так, в работах S. Vathehol и G. Ringstad отмечено значительное снижение клиренса гадобутрола из субарахноидальных пространств у пациентов с НТГ [7].

Обеднение паренхимы мозга нейронами и формирование постапоптотических полостей, а также разрежение нервных волокон в подкорковом белом веществе свидетельствуют о выраженной дистрофии, развивающейся при иНТГ. Данные литературы свидетельствуют о двух наиболее вероятных механизмах развития подобных патологических изменений в ткани головного мозга: ишемические изменения в клетках на фоне снижения мозгового кровотока [8] и вторичная атрофия нейронов, возникающая вследствие механического повреждения проводящих путей, возникающего при расширении боковых желудочков [9]. Стоит отметить, что гипотеза о ключевой роли снижения мозгового кровотока в патогенезе иНТГ не вполне согласуется с клиническими находками. Так, по данным G. Bateman и соавт., у 14—16% пациентов с иНТГ показатели мозгового кровотока находятся в пределах нормальных значений [10]. В значительном количестве исследований с построением диффузионно-тензорных изображений при иНТГ выявлено увеличение коэффициента фракционной анизотропии, что косвенно свидетельствует о повреждении проводящих путей [11, 12]. Вместе с тем отмечено, что после проведения ЦСЖ-шунтирующей операции или тап-теста регрессу неврологической симптоматики соответствует нормализация коэффициента фракционной анизотропии [13—15].

Нарастание выраженности патологических изменений в перивентрикулярной области соответствует патофизиологическим концепциям, постулирующим прямое воздействие пульсовых волн внутричерепного давления на стенки боковых желудочков в качестве главного фактора развития гидроцефалии. Наши наблюдения согласуются с экспериментальными данными, свидетельствующими о повреждении эпендимы при НТГ [16] и существовании прямого трансэпендимарного тока ЦСЖ в условиях «пульсационного стресса» [17].

Изучение ультрамикроструктурных изменений в клетках головного мозга позволяет понять механизмы формирования неврологической симптоматики при иНТГ. Так, формирование патологических щелевых контактов между нейронами, агглютинация синаптических везикул в терминалях аксонов, формирование контактов между нейронами и астроцитами и другими глиальными клетками, очевидно, приводят к нарушению механизмов возбуждения нейронов и проведения нервных импульсов.

Конденсация хроматина в ядрах нейронов, формирование телец Леви и амилоидных бляшек в цитоплазме клеток и межклеточном веществе не только перивентрикулярной, но и других областей, говорит о существовании общего дегенеративного процесса, сопряженного с иНТГ. Это обстоятельство согласуется с исследованиями D. Cabral и соавт., установившими на основании результатов аутопсий высокую частоту коморбидности иНТГ с болезнью Альцгеймера [18].

Выявленные патоморфологические изменения в коре, и белом веществе головного мозга у пациентов с иНТГ соответствуют существующим на сегодняшний день патофизиологическим концепциям. Наиболее характерными микроскопическими изменениями вещества головного мозга при иНТГ являются ангиопатия, пористость и вакуолизация паренхимы, снижение количества миелиновых волокон.

На ультрамикроскопическом уровне при иНТГ выявляются нарушение синаптической структуры, формирование патологических щелевых контактов между отечными отростками нейронов, образование амилоидных бляшек, телец Леви и разрастаний глиофиламентов.

Изучение микро- и ультрамикроструктурных изменений дает ключ к лучшему пониманию механизмов формирования иНТГ.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Сведения об авторах

Гаврилов Гаспар Владимирович – докторант кафедры нейрохирургии; http://orcid.org/0000-0002-8594-1533. gaspar_gavrilov@mail.ru.

Станишевский Артём Вадимович – клинический ординатор клиники нейрохирургии; http://orcid.org/0000-0002-2615-269X; e-mail: a-stan@mail.ru

Гайдар Борис Всеволодович – академик РАМН, доктор медицинских наук, профессор кафедры нейрохирургии.

Свистов Дмитрий Владимирович — к.м.н., доцент, начальник кафедры нейрохирургии, главный нейрохирург МО РФ; e-mail: dvsvistov@mail.ru; http://orcid.org/0000-0002-3922-9887

Парамонова Наталья Михайловна – научный сотрудник лаборатории молекулярной эндокринологии и нейрохимии, ФГБУН ИЭФБ им. И. М. Сеченова РАН, и научный сотрудник лаборатории клеточных технологий НИЦ ФГБВОУ ВО ВМедА им. С. М. Кирова МО РФ; natapa@bk.ru.

Гайкова Ольга Николаевна — д.м.н., профессор по специальности «патологическая анатомия», ведущий научный сотрудник лаборатории морфологии и электронной микроскопии, Федеральное государственное бюджетное учреждение науки «Институт токсикологии Федерального медико-биологического агентства»; http://orcid.org/0000-0002-9942-2742; e-mail: Olga-Gaykova@yandex.ru

*e-mail: gaspar_gavrilov@mail.ru

slide-cover
slide-cover
slide-cover
slide-cover
slide-cover

Рекомендуем статьи по данной теме:

Характеристика субпопуляций лимфоцитов и клеток системы мононуклеарных фагоцитов печени в острый период и в отдаленные сроки после перенесенного заболевания COVID-19.Архив патологии. 2026;88(4):5-13

Эпидемиологические и клинические особенности опухолей околоушных слюнных желез в Республике Хакасия.Оперативная хирургия и клиническая анатомия (Пироговский научный журнал). 2026;10(2-2):73-79

Случай псевдолимфомы кожи лица как реакция на профессиональное воздействие дихлорэтана.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(2):271-276

Саркоидоз. (Клинические рекомендации. Краткая версия).Респираторная медицина. 2026;2(1):28-40

Патоморфологические особенности различных этиологических форм аневризмы аорты.Архив патологии. 2026;88(2):43-51

Розацеа: от многофакторного патогенеза к современным методам лечения.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(1):23-30

Морфологическая и иммуногистохимическая характеристика сердца пациентов с COVID-19.Архив патологии. 2026;88(1):44-51

Роль провоспалительных цитокинов TNF-α, IL-1, IL-8 и противовоспалительных цитокинов IL-4 и IL-10 при хроническом вазомоторном рините.Вестник оториноларингологии. 2025;90(6):55-59

Сравнение эффективности модели морфокинетического и морфологического прогнозирования отбора бластоцист человека с использованием технологии искусственного интеллекта и преимплантационного генетического тестирования.Проблемы репродукции. 2025;31(6):75-84

Патоморфологические признаки возрастных изменений головного мозга у нечеловекообразных приматов.Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2025;43(4-2):143-149

Издательство «Медиа Сфера»
РекламаДоставка/ОплатаО насКонтактыОбучение для редакцийПолитика конфиденциальностиПолитика обработки персональных данныхПубличная оферта на реализацию издательской продукции
ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроекты
  • RuStore

© 1998-2026

  • Телефоны издательства:

  • +7 (495) 482-41-18
  • +7 (495) 482-43-29
  • Прямой телефон отдела подписки
    (только по вопросам заказов и доставки журналов)

  • +7 (800) 250-18-12
  • пн-пт с 10:00 до 18:00

  • Telegram
  • VK
info@mediasphera.ru
  • Почтовый адрес:

  • Издательство «Медиа Сфера»,
    а/я 54, Москва, Россия, 127238

  • RuStore

© 1998-2026