Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Конышко Н.А.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Конышко Г.С.

ГБУЗ «Смоленская областная клиническая больница»

Матвеева Д.А.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет)

Волынец Л.И.

ГБУЗ «Смоленская областная клиническая больница»;
ФГАОУ ВО «Смоленский государственный медицинский университет» Минздрава России

Киреева Д.А.

ГБУЗ «Московский клинический научный центр им. А.С. Логинова» Департамента здравоохранения г. Москвы

Инфекционные факторы при атопическом дерматите, фармацевтические возможности (систематический обзор литературы)

Авторы:

Конышко Н.А., Конышко Г.С., Матвеева Д.А., Волынец Л.И., Киреева Д.А.

Подробнее об авторах

Прочитано: 1684 раза


Как цитировать:

Конышко Н.А., Конышко Г.С., Матвеева Д.А., Волынец Л.И., Киреева Д.А. Инфекционные факторы при атопическом дерматите, фармацевтические возможности (систематический обзор литературы). Клиническая дерматология и венерология. 2025;24(1):7‑15.
Konyshko NA, Konyshko GC, Matveeva DA, Volynets LI, Kireeva AA. Infectious factors in atopic dermatitis, pharmaceutical possibilities (systematic literature review). Russian Journal of Clinical Dermatology and Venereology. 2025;24(1):7‑15. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/klinderma2025240117

Рекомендуем статьи по данной теме:
Эпи­де­ми­оло­гия M. geni­talium-ин­фек­ции. Что из­вес­тно?. Кли­ни­чес­кая дер­ма­то­ло­гия и ве­не­ро­ло­гия. 2025;(2):143-152
Бак­те­ри­аль­ный ва­ги­ноз: сов­ре­мен­ные пред­став­ле­ния. Кли­ни­чес­кая дер­ма­то­ло­гия и ве­не­ро­ло­гия. 2025;(3):261-268
Па­то­ло­гия пе­че­ни при COVID-19. Ар­хив па­то­ло­гии. 2025;(1):53-59
Пор­то­пуль­мо­наль­ная ги­пер­тен­зия. Рес­пи­ра­тор­ная ме­ди­ци­на. 2025;(2):39-44

Введение

Атопический дерматит (АД) — значимая проблема здравоохранения. Согласно эпидемиологическим данным, во всем мире около 230 млн человек страдают данной патологией, в Российской Федерации регистрируют более 400 случаев на 100 000 населения. Частота встречаемости АД среди всех дерматологических заболеваний составляет 20—40% [1, 2].

АД рассматривается как системное заболевание, ассоциированное с алиментарной аллергией, болезнями кожи и внутренних органов инфекционной этиологии, респираторной, психосоматической, воспалительной и аутоиммунной патологией. В патогенезе АД основными звеньями считают нарушения эпидермального барьера, иммунитета, а также качественные и количественные изменения микробиома. Иммуновоспалительные реакции у пациентов с АД связаны с активацией T-лимфоцитов, макрофагов, эозинофилов, кератиноцитов, тучных и дендритных клеток, что ассоциировано с изменением микрофлоры [1, 2]. Сопутствующие заболевания инфекционной природы могут быть предикторами и/или осложнениями атопии — инфекции кожи и мягких тканей, герпетическая экзема, бактериемия, остеомиелит, септический артрит, эндокардит и др. Инфекционную патологию кожи диагностируют достоверно чаще в группе пациентов с АД, и она характеризуется более тяжелым течением, чем у лиц без атопии [1, 2]. Системная терапия АД включает применение иммуносупрессоров, ингибиторов интерлейкинов и янус-киназы (JAK), антимикробных средств, которые оказывают прямое или опосредованное влияние на состав микрофлоры [2]. Сопряженность инфекционных факторов с развитием АД остается в поле научного интереса. Указанные аспекты целесообразно учитывать при составлении исследовательских и клинических алгоритмов для пациентов с АД, что обусловливает актуальность данной работы.

Цель исследования — анализ результатов научных исследований об инфекционных факторах и возможностях фармацевтического воздействия у больных с АД.

Материал и методы

Поиск статей проведен в базах данных PubMed, Elsevier, Scopus, Google Scholar, E-library за период с 1980 по 2023 г. по поисковым запросам с учетом морфологии: инфекция, атопический дерматит, вирусная, бактериальная и грибковая инфекция, иммунные реакции, экзема, пневмония, эндокардит, менингит, отит, фарингит (infection, atopic dermatitis. viral, bacterial and fungal infection, immune reactions, eczema, pneumonia, endocarditis, meningitis, otitis, pharyngitis), а также их ближайшие по смыслу аналоги. Прежде всего исследователи проанализировали заголовки и резюме. Критерии включения в исследование: релевантные оригинальные исследования в периодических рецензируемых изданиях на русском или английском языках; исследования с применением лабораторных, диагностических, лечебных и аналитических методов; исследования in vitro, а также исследования среди пациентов с АД и сопутствующими заболеваниями инфекционной этиологии при наличии контрольной группы. В случае дублирования публикаций в одной или разных базах данных в финальный анализ отбирали одну из них. Критерий исключения: несоответствие опубликованного материала поисковым запросам, описание единичных клинических наблюдений.

Исследователи независимо друг от друга занимались экстракцией данных, используя стандартизованные методики. Анализу подвергали год публикации, страну, дизайн исследования, группу и параметры вошедших в исследование с АД, наличие контрольной группы, результаты статистического анализа. Любые разногласия разрешали консенсусом. Всего найдена 171 публикация, отобраны для работы 63 полнотекстовые статьи с результатами лабораторных, клинических и когортных исследований, систематические и тематические обзоры литературы и метаанализы.

Результаты

Нарушения эпидермального барьера и иммунитета, способствующие развитию инфекционной патологии при АД

В основе АД рассматривали системную патологию иммунитета — атопический марш. Это серия аллергических реакций, предшествующих дебюту АД с раннего возраста, клинически проявляющихся бронхиальной астмой, аллергическим риноконъюнктивитом и/или патологией желудочно-кишечного тракта при непереносимости компонентов пищи. В настоящее время установлено, что патогенез АД более гетерогенен. У взрослых заболевание может проявляться экзематозным поражением рук и аллергическим контактным дерматитом, которые не относятся к проявлениям атопического марша [3].

Аллергическая сенсибилизация возникает в результате нарушения целостности эпидермального барьера, через который проникают аллергены, микробы и их метаболиты. Молекулярная основа указанного дефекта кожи — дефицит белков и липидов, обеспечивающих ее целостность и защитные свойства: филаггрина, инволюкрина, клаудинов, керамидов, холестерина и свободных жирных кислот. Мутация гена, кодирующего синтез филаггрина (FLG LoF), выявлена у 15—46% пациентов с АД и ассоциирована с повышенным риском развития данного заболевания [4]. В здоровой коже филаггрин расщепляется на гигроскопичные аминокислоты, урокановую и пирролидонкарбоновую, которые способствуют поддержанию нормального pH рогового слоя эпидермиса. Кислая среда в здоровой коже снижает экспрессию поверхностных белков стафилококка, фактора свертывания B и фибронектин-связывающего белка, которые контактируют с протеинами цитокератином и фибронектином соответственно. Дефекты экспрессии гена приводят к снижению уровня урокановой и пирролидонкарбоновой кислот, к повышению pH, что способствует размножению золотистого стафилококка [5]. T-хелперы (Th) 2, 22 и интерлейкины (IL-4/IL-13/IL-25, IL-22), содержание и активность которых повышается при АД, подавляют экспрессию филаггрина в кератиноцитах, способствуя снижению барьерной функции кожи и усугубляя последствия имеющихся генетических аномалий. У больных АД с мутацией FLG LoF в 7 раз выше риск 4 или более эпизодов инфекционных заболеваний кожи в течение года, требующих назначения антимикробной терапии, по сравнению с пациентами с АД без этой генетической мутации. FLGLoF значительно повышает риск развития герпетической экземы у пациентов с АД [5].

Состав липидов эпидермиса у лиц с АД существенно отличается от такового у здоровых людей. В этой категории пациентов снижена экспрессия элонгаз жирных кислот, которые способствуют трансформации липидов кожи, а также IL-4 и IL-13, оказывающих ингибирующее действие на эти ферменты. При АД нарушаются физические и химические свойства эпидермального барьера. Последние обеспечиваются молекулами с защитными свойствами — β-дефензином и кателицидином [6].

Кератиноциты — эпителиальные клетки кожи, выполняющие барьерную и защитную функции. При АД кератиноциты продуцируют повышенное количество тимусного стромального лимфопоэтина, IL-33 и IL-25, которые усиливают пролиферацию и экспрессию лимфоидных клеток (ILC2), выделяющих цитокины 2-го типа IL-4, IL-5 и IL-13, и активируют T-лимфоциты [7]. IL-33 в норме содержится в ядрах макрофагов, тучных клеток, базофилов и выделяется при воспалительных реакциях. IL-33 прикрепляется к соответствующему рецептору (ST2), активирует выработку IL-5 и IL-13 [8]. IL-4 и IL-13 подавляют экспрессию антимикробных пептидов в кератиноцитах, а, следовательно, и барьерные функции кожи, что повышает риск инфекционной патологии кожи у пациентов с АД [2].

Дефекты дендритных клеток способствуют развитию инфекционных осложнений при АД. Миелоидные и плазмоцитоидные дендритные клетки у пациентов с АД вырабатывают значительно меньше защитного интерферона альфа. При АД выявлено нарушение распознавания золотистого стафилококка toll-подобным рецептором-2 (TLR-2) клеток Лангерганса и дендритных клеток эпидермиса [7].

Золотистый стафилококк выявляют у 76—90% пациентов с АД. Его преобладание в микробиоме кожи и слизистых оболочках характерно именно для пациентов с АД по сравнению со здоровыми людьми и лицами с другими хроническими воспалительными заболеваниями кожи, например псориазом [8].

Благодаря повышению содержания факторов патогенности S. aureus, бактерия способна модифицировать иммунную систему кожи при АД. Фибронектин и энтеротоксины (суперантигены) S. aureus разрушают эпидермальный барьер, усиливают воспаление 2-го типа, снижают в коже уровень интерферона гамма и фактора некроза опухоли альфа, которые являются медиаторами клеточного иммунитета для защиты от бактериальных и вирусных инфекций [9].

Метициллинрезистентный золотистый стафилококк (MRSA) продуцирует значительно больше суперантигенов, чем чувствительный к метициллину aureus (MSSA). Суперантигены и стафилококковый токсин (театоксин) способствовуют апоптозу кератиноцитов, дегрануляции тучных клеток и нарушению эпидермального барьера при АД [10—12].

При чрезмерной сухости кожи и слизистых оболочек в младенческом возрасте наблюдается ранний дефект эпидермального барьера как исходный фактор развития АД. У взрослых с АД изменение содержания и соотношения Th2/Th22, гиперплазия эпидермиса при отсутствии дефицита барьерных протеинов указывает на инициирующую роль дисбаланса T-лимфоцитов в патогенезе заболевания [13, 14].

Патологические иммунные реакции при АД способствуют повреждению внутренних органов, хотя в отличие, например, от псориаза уровень C-реактивного белка, как правило, не повышен [15, 16]. У 29 детей с тяжелым обострением АД выявлены несколько повышенные уровень C-реактивного белка и скорость оседания эритроцитов, что предложено использовать как маркеры риска инфекционных осложнений у этой категории пациентов [17].

В крови пациентов с АД выявлена активная дифференциация T-лимфоцитов, их высокая и стойкая активность [18, 19]. Дефицит T-лимфоцитов-киллеров при атопии может способствовать активации реакции воспаления 2-го типа вследствие контррегуляторного механизма [20]. Повышенная концентрация и активность Th, B-лимфоцитов, системных цитокинов у пациентов любого возраста является особенностью АД средней и тяжелой степени (определенной по индексу SCORAD). Указанные факты ассоциированы с повышением уровня IgE у 80% пациентов с АД [21, 22]. У детей с АД дисбаланс Th2 наблюдается в пуле дермальных/CLAþ T-лимфоцитов и не распространяется на CD8þ T-лимфоциты. У взрослых отмечается активация Th2 системных/CLA eCD4þ T-лимфоцитов и CD8þ T-лимфоцитов [7]. Повышение содержания и активности Th1, Th2и Th17 наблюдается при тяжелых и персистирующих формах АД, а также у пациентов с аутоиммунной патологией (воспалительными заболеваниями кишечника, ревматоидным артритом, системной красной волчанкой) [23—25].

Инфекции кожи у пациентов с атопическим дерматитом

У пациентов с АД определены факторы риска развития заболеваний инфекционной этиологии: дисфункция эпидермального барьера, снижение уровня антимикробных пептидов и липидов, нарушение звеньев иммунитета, изменение микробиома, колонизация патогенами и применение иммунодепрессантов [26]. Болезни кожи инфекционной природы чаще встречаются у пациентов с АД, чем в общей популяции населения и в группе лиц, не страдающих атопией. Согласно принятой классификации, кожные инфекции — один из второстепенных диагностических критериев АД [27]. Тяжелое течение АД связано с более высоким риском инфицирования. Исследования микробиома и вирома кожи подтвердили и расширили представления о роли инфекций при АД [28].

Золотистый стафилококк выявляют бактериологическими методами в 70—90% случаев в очагах АД, причем у некоторых пациентов преобладает метициллинрезистентный S. aureus. Исследования с использованием метода секвенирования бактериальных генов доказали, что увеличение заболеваемости АД связано с повышением обсемененности S. aureus и снижением микробного разнообразия кожи [29]. Систематический анализ данных продемонстрировал, что у пациентов с АД золотистым стафилококком колонизированы пораженные участки кожи в 70% случаев (n ¼81), эпидермальные локусы без проявлений атопии в 39% (n ¼30) случаев и у 62% обследованных установлено инфицирование микробом слизистой оболочки носа (n ¼43). Статистический анализ данных продемонстрировал высокую вероятность колонизации золотистым стафилококком пораженных локусов эпителия (отношение шансов (ОШ) 19,74 [доверительный интервал (ДИ) 10,88—35,81], n ¼16), интактных участков кожи (ОШ 7,77 [ДИ 3,82—15,82], n ¼12) и слизистой оболочки носа (ОШ 4,50 [ДИ 3,00—6,75], n ¼19 исследований) у пациентов с АД по сравнению с контрольной группой при 95% вероятности [30]. Инфекционные болезни кожи — импетиго, целлюлит и абсцессы — распространены при АД. Наиболее частой причиной их считается S. aureus [31]. Данный микроорганизм индуцирует выработку IL-4/IL-13 и IL-22, способствуя развитию воспалительной реакции при участии Th2/Th22 у пациентов с АД и может влиять на системные иммунные реакции [32]. Экспериментально установлено, что возникновение дерматита у кератиноцитоспецифичных мышей ассоциировано с колонизацией кожи S. aureus и Corynebacterium bovis [33]. Предполагается, что указанные бактерии способствуют развитию АД у человека.

Систематический анализ 10 контролируемых исследований продемонстрировал, что пациенты с АД имеют высокую концентрацию IgE, действующего против стафилококковых энтеротоксинов A (33%, n ¼19 исследований), B (35%, n ¼23 исследования), C (14%, n ¼7 исследований), D (5%, n ¼3 исследования) и токсина I (16%,n ¼10 исследований) [33, 34]. При АД выявлено повышенное содержание IgG или IgM против стафилококковых энтеротоксинов (34,6, 87,0%) по сравнению с контролем. Ни в одной научной работе пока не изучено содержание IgA против стафилококковых энтеротоксинов у пациентов с АД [32].

В систематическом обзоре, содержащем сведения о 32 исследованиях, изучали роль микробиома кожи при АД [34]. Установлено, что эпителий при АД характеризуется низким бактериальным разнообразием, особенно на пораженных участках. Определено уменьшение колоний грибков рода Malassezia, высокое разнообразие микотических агентов других видов, повышенное содержание золотистого и эпидермального стафилококков, а также снижение количества пропионибактерий и некоторых других видов микробов [35]. В результате лабораторных исследований доказано, что при увеличении микробного разнообразия уменьшается тяжесть течения АД, Staphylococcus epidermidis проявляет активность против золотистого стафилококка [36].

MSSA и MRSA вызывают по 40% инфекционных осложнений у госпитализированных с АД. Эти показатели инфицирования соответствуют показателям в общей популяции детей, госпитализированных в США [37]. Второй наиболее распространенной причиной инфекционных заболеваний кожи и внутренних органов при АД является Streptococcus pyogenes [38].

В научных работах представлена прямая корреляция между заболеваемостью АД и герпетической экземой (ГЭ). Примерно у 30% детей, госпитализированных по поводу инфекционных осложнений АД, диагностирована указанная патология. Анализ данных репрезентативной когорты госпитализированных пациентов в США за 2008—2012 гг. установил достоверность статистической связи ГЭ с АД: при 95% вероятности ОШ 11,72 [ДИ 9,48—14,49]. Хотя АД и является фактором риска развития ГЭ, она развивается только у 3% пациентов этой категории [39]. Данная патология встречается преимущественно у лиц с АД при определенных условиях: при тяжелом течении, дебюте в раннем возрасте, сопутствующей атопической патологии, при выраженной дифференциации Th2, сенсибилизации к аллергенам, высоком уровне общего IgE сыворотки крови и периферических эозинофилов, при наличии других атопических заболеваний (пищевая аллергия и астма) и коморбидных кожных заболеваниях инфекционной этиологии [39, 40]. Заражение вирусом простого герпеса (ВПГ-1) распространено среди населения в целом и выявляется у 60% взрослых и 20% детей [41]. Иммунологические и генетические факторы способствуют развитию ГЭ у пациентов с АД. У пациентов с АД и ЭГ установлены снижение выработки интерферона гамма и однонуклеотидный полиморфизм его рецептора, что может способствовать нарушению иммунного ответа при инфицировании ВПГ-1 [41]. С ГЭ следует дифференцировать экзему Коксаки, вызываемую одноименными энтеровирусами и ассоциированную с АД [42].

Инфекцию кожи контагиозным моллюском вызывает поксвирус подсемейства моллюскипоксвирусов, который отличается от вирусов осповакцины, натуральной оспы и коровьей оспы рода Orthopoxvirinae. У пациентов с АД процесс может быть диффузным или развиваться только в пораженных локусах, к чему предрасполагает дефект эпидермального барьера. Инфекция при АД ассоциирована с мутацией FLGLoF [43, 44].

Вакцинная экзема — это опасное для жизни заболевание, этиологическим фактором которого является живой вирус коровьей оспы, содержащийся в соответствующих вакцинах, поэтому данный вид вакцинации противопоказан больным с АД и контактным лицам. Встречается редко после прекращения плановой вакцинации против натуральной оспы в 1971 г.

Исследования выявили противоречивые данные относительно связи АД с развитием кожных папиллом. Когортные исследования, проведенные в Великобритании и Швеции, установили более высокую их распространенность у подростков с АД [45, 46]. Исследование Национальной службы здравоохранения Италии, проведенный в 2007 г., определил, что наличие АД у пациентов ассоциировано с более низкой вероятностью появления кожных папиллом по сравнению с пациентами без данной патологии. В то же время при наличии у пациентов основной группы сопутствующей атопической патологии выявлена высокая вероятность образования папиллом [47].

Поддержание здоровья кожи зависит от присутствия комменсалов в микробиоме. Наиболее распространенными из них являются Cutibacterium acnes, Corynebacterium и коагулазонегативный стафилококк (CoNS). При дефиците комменсалов у пациентов с АД повышается вирулентность золотистого стафилококка в пораженных локусах. Комменсалы, во-первых, влияют на иммунную систему человека, снижают активность воспалительных реакций, во-вторых, напрямую противостоят патогенам, в том числе S. aureus, S. epidermidis. Комменсалы продуцируют липоитехоевую кислоту, которая предотвращает воспаление кожи при повреждении, опосредованное взаимодействием TLR-3 с TLR-2 [48]. S. epidermidis оказывает влияние на цитотоксические и регуляторные T-лимфоциты человека, участвующие в процессах репарации повреждений и иммунологической толерантности соответственно. Кроме того, S. epidermidis активирует выработку кератиноцитами антимикробных пептидов, защищающих от патогенов. Некоторые комменсалы обладают бактерицидными свойствами. S. epidermidis, S. lugdunensis и S. hominis продуцируют антимикробные протеазы, которые разрушают клеточные мембраны патогенов [48].

Сопутствующие заболевания внутренних органов инфекционной этиологии у лиц с атопическим дерматитом

Пациенты с АД имеют более высокую распространенность заболеваний инфекционной природы, в том числе хронического синусита, рецидивирующего отита, стрептококкового фарингита, болезней верхних и нижних дыхательных путей, ветряной оспы, болезней мочевыводящих путей по сравнению с контрольной группой без атопии [49].

Когортное исследование BAMSE, проведенное в Швеции, выявило у детей с АД в возрасте от 0 до 2 лет значительно более высокую заболеваемость пневмонией, острым средним отитом и более частое применение антимикробных препаратов по сравнению с контрольными группами лиц без атопии, в том числе после стратификации по бронхиальной астме [50].

Анализ данных медицинских карт амбулаторных пациентов в США выявил более высокую вероятность рецидивирующих инфекционных отитов средней и тяжелой степени у лиц с АД в отличие от респондентов без атопии. Установлена более высокая заболеваемость отитом при тяжелых формах АД, чем при легкой и умеренной степени заболевания [51].

При анализе 95 100 наблюдений пациентов с диагностированным АД в США выявлена более высокая распространенность заболеваний инфекционной природы по сравнению с контрольной группой (42,1% против 25,4%). Продемонстрирована достоверная связь АД с увеличением вероятности заболевания гриппом/пневмонией (ОШ 2,37, 95% ДИ 1,96—2,88), острого фарингита (соответственно 2,19 и 1,74—2,76), острых респираторных заболеваний (1,71 и 1,54—1,91), синусита (2,36 и 2,07—2,68), гастроэнтерита (2,51 и 2,06—3,07), ветряной оспы (1,61 и 1,38—1,87), инфекционно-воспалительных и аутоиммунных заболеваний (3,37, 2,78—4,08) и лихорадки, длящейся более суток (2,13 и 1,87—2,44). АД у взрослых достоверно ассоциирован с одним (ОШ 1,62, ДИ 1,22—2,16, при 95% вероятности), двумя (2,36 и 1,78—3,13) и тремя (2,67 и 1,93—3,69) инфекционными заболеваниями. Установлено, что указанная патология наиболее распространена у пациентов, страдавших АД и сопутствующими атопическими заболеваниями, по сравнению с лицами, у которых установлен только АД. В данном исследовании пациенты сами сообщали об инфекционной патологии, что является ограничением исследования [49, 52].

АД ассоциирован с 32 из 38 исследованных инфекционных заболеваний, в том числе с рожистым воспалением, туберкулезом, инфекционной артропатией, эндокардитом, энцефалитом и болезнями, вызванными метициллинрезистентными штаммами золотистого стафилококка. Последующее исследование у детей из той же когорты выявило ассоциации АД с 47 из 49 изучаемых инфекционных болезней, включая 8 кожных, 9 заболеваний верхних дыхательных путей, 8 заболеваний нижних дыхательных путей или легких, а также сердечно-сосудистую патологию, болезни центральной нервной системы, желудочно-кишечного тракта и костно-суставные инфекционно-воспалительные заболевания [53].

Возникновение и течение заболеваний пищеварительной системы инфекционной природы (эзофагит, гастрит) у пациентов с АД коррелируют со степенью тяжести последнего, клинически проявляются болью за грудиной и в эпигастрии, диспепсией и диареей. Нерациональное питание повышает риск обострения указанной патологии. Диета с нормальным содержанием омега-3/омега-6 жирных кислот, пребиотиков и рациональное применение лекарственных средств эффективны для профилактики и лечения указанных заболеваний [3].

Профилактика и лечение инфекционных осложнений при атопическом дерматите

Пациентам рекомендуется ежедневное увлажнение кожи для поддержания ее защитной функции, использование вазелина для усиления действия антимикробных пептидов и индукции ключевых барьерных маркеров дифференцировки (филагрин и инволюкрин) [54].

Местные противовоспалительные препараты (топические кортикостероиды и ингибиторы кальциневрина) уменьшают трансэпидермальную потерею влаги, препятствуют колонизации S. aureus и способствуют увеличению микробного разнообразия у пациентов с АД [55].

В результате многоцентрового исследования более 200 случаев ГЭ авторы установили, что применение системных и топических кортикостероидов, ингибитора кальциневрина или циклоспорина не ассоциировано с прогрессированием ГЭ. Неконтролируемое воспаление при АД, вероятно, является основным фактором риска развития ЭГ и бактериальных инфекций. При отсутствии активного инфекционного процесса противовоспалительное лечение может обеспечить его профилактику у пациентов с АД [56].

Дупилумаб, моноклональное антитело, воздействующее на рецептор IL-4 для нейтрализации эффектов IL-4 и IL-13, уменьшает колонизацию золотистым стафилококком и увеличивает микробное разнообразие при АД. Эти наблюдения согласуются с данными об ингибирующем действии IL-4 и IL-13 на барьерные функции кожи и экспрессию эндогенных антимикробных пептидов [57].

Результаты применения антимикробных и антисептических средств при АД противоречивы. Систематический анализ данных базы Cochrane Library доказал, что тяжесть течения АД не уменьшается при назначении антибактериальной терапии, что связано с развитием дисбактериоза и резистентности патогенов. Однако в ряде исследований доказано, что при тяжелом течении АД антимикробные препараты эффективны для лечения и профилактики инфекционных осложнений. Применение местных и системных противовоспалительных препаратов и эмолентов препятствует колонизации патогенов [58].

Попытки деколонизации золотистого стафилококка в основном экспериментальные. Недостаточно доказательств, что уксусная кислота, антисептики для ванн, хлоргексидин и некоторые другие антимикробные средства приводят к устойчивой деколонизации золотистого стафилококка.

Противовирусные препараты для лечения герпетической экземы, вызванной ВПГ: ацикловир, валацикловир, фамцикловир, фоскарнет. При подозрении на ГЭ следует провести исследование методом полимеразной цепной реакции на ВПГ. Лечение продолжается до получения результатов повторного тестирования [54].

Эмпирическая схема применения антибактериальных средств должна обеспечивать защиту от золотистого стафилококка, поскольку это наиболее часто выявляемый бактериальный патоген при АД. Для MRSA препаратом выбора является ванкомицин. Клиндамицин, доксициклин, триметоприм, сульфаметоксазол и линезолид — приемлемые пероральные препараты для лечения кожных инфекций, вызванных MRSA, у детей и у взрослых при условии чувствительности к ним in vitro. При MSSA препаратами первой линии служат цефазолин и нафциллин. Для пациентов в тяжелом состоянии целесообразно обеспечить лечение MRSA и MSSA ванкомицином, антистафилококковыми бета-лактамами или цефалоспоринами первого поколения. Клиндамицин также можно использовать при отсутствии эндоваскулярной инфекции и региональной резистентности к клиндамицину менее 15% [59].

В настоящее время исследуется ряд препаратов для профилактики инфекций при АД, в том числе противовоспалительные препараты, нацеленные на воспаление 2-го типа. К ним относятся моноклональные антитела, против IL-13, IL-33, стромального лимфопоэтина тимуса и ингибиторы JAK. Доказано, что ингибирование янус-киназы уменьшает воспаление и улучшает состояние эпидермального барьера при АД. В Японии для лечения АД одобрен делгоцитиниб местного действия. В долгосрочном исследовании с применением немолизумаба (моноклонального антитела к рецептору EIL-31) сообщается об уменьшении зуда и тяжести течения АД [60].

Изучаются эффекты агониста меластатина с временным потенциалом действия на рецепторы и антагонисты ваниллоидов. В предварительных исследованиях продемонстрировано, что препарат повышает экспрессию филаггрина, выработку эндогенных антимикробных факторов и улучшает течение АД [61].

Активно исследуют возможность прямого воздействия на золотистый стафилококк при применении препаратов природного происхождения, синтетического антимикробного пептида, ауреолитических агентов [62].

Пока не существует одобренной вакцины против золотистого стафилококка. Разрабатываются подходы для инактивации ауреустоксинов.

Местное применение пробиотиков эффективно для подавления распространения S. aureus при АД. Грамотрицательная бактерия Roseomonas mucosa улучшает течение и уменьшает обсемененность S. aureus у взрослых и детей с АД. Выявлены 75 штаммов S. hominis, продуцирующие пептид ингибитор системы генов, отвечающих за образование защитной биопленки S. aureus. Аппликации на кожу непатогенных бактерий Vitreoscilla filiformis способствуют восстановлению микробиома эпителия и ликвидации проявлений АД [63].

Заключение

АД — многофакторное заболевание, связанное с дефектами эпидермального барьера, которые приводят к инвазии аллергенов или патогенов, вызывающих хронизацию воспаления и повышенный риск инфекционных осложнений. Профилактика последних при АД должна включать восстановление эпидермального барьера и применение противовоспалительных препаратов. Вопрос о необходимости применения антимикробных средств у пациентов с тяжелым течением АД должен решаться индивидуально на основе клинико-лабораторной диагностики и имеющихся рекомендаций.

Вклад авторов.

Концепция и дизайн исследования — Конышко Н.А., Волынец Л.И.

Сбор и обработка материала — Конышко Н.А., Конышко Г.С., Матвеева Д.А., Киреева А.А.

Написание текста — Конышко Н.А., Конышко Г.С. Матвеева Д.А., Волынец Л.И., Киреева А.А.

Редактирование — Конышко Н.А., Волынец Л.И.

Финансирование. Финансирование исследования осуществлялось за счет средств авторов.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Contribution of the authors.

The concept and design of the study — Konyshko N.A., Volynets L.I.

Collection and processing of the material — Konyshko N.A., Konyshko G.S., Matveeva D.A., Kireeva A.A.

Writing of the text — Konyshko N.A., Konyshko G.S., Volynets L.I., Matveeva D.A., Kireeva A.A.

Editing — Konyshko N.A., Volynets L.I.

Financing. The research was funded by the authors.

The authors declare that there is no conflict of interest.

Литература / References:

  1. Hanifin JM, Rajka G. Diagnostic features of atopic dermatitis. Acta Derm Venereol (Stockh). 1980;92:44e7.
  2. Wang V, Boguniewicz J, Boguniewicz M, Ong PY. The infectious complications of atopic dermatitis. Ann Allergy Asthma Immunol. 2021 Jan;126(1):3-12.  https://doi.org/10.1016/j.anai.2020.08.002
  3. Jonathan I. Silverberg. Comorbidities and the impact of atopic dermatitis. Ann Allergy Asthma Immunol. 2019;123:144e151. https://doi.org/10.1016/j.anai.2019.04.020
  4. Kim HS, Hwang HJ, Seo WD, Do SH. Sprouts Restore Skin Barrier Function by Modulating the Expression of the Epidermal Differentiation Complex in Models of Skin Irritation. Int J Mol Sci. 2023;24(24):17274. https://doi.org/10.3390/ijms242417274
  5. Venkataraman D, Soto-Ramírez N, Kurukulaaratchy RJ, Holloway JW, Karmaus W, Ewart SL, Arshad SH, Erlewyn-Lajeunesse M. Filaggrin loss-of-function mutations are associated with food allergy in childhood and adolescence. J Allergy Clin Immunol. 2014 Oct;134(4):876-882.e4.  https://doi.org/10.1016/j.jaci.2014.07.033
  6. Berdyshev E, Goleva E, Bronova I, Dyjack N. Lipid abnormalities in atopic skin are driven by type 2 cytokines. JCI Insight. 2018;22;3(4):e98006. https://doi.org/10.1172/jci.insight.98006
  7. Iwamoto K, Nümm TJ, Koch S, Herrmann N, Leib N, Bieber T. Langerhans and inflammatory dendritic epidermal cells in atopic dermatitis are tolerized toward TLR2 activation. Allergy. 2018;73(11):2205e2213.
  8. Fyhrquist N, Muirhead G, Prast-Nielsen S, et al. Microbe-host interplay in atopic dermatitis and psoriasis. Nat Commun. 2019;10(1):4703.
  9. Kim J, Kim BE, Ahn K, Leung DYM. Interactions between atopic dermatitis and Staphylococcus aureus infection: clinical implications. Allergy Asthma Immunol Res. 2019;11(5):593e603.
  10. Orfali RL, Yoshikawa FSY, Oliveira LMDS, et al. Staphylococcal enterotoxins modulate the effector CD4þ T cell response by reshaping the gene expression profile in adults with atopic dermatitis. Sci Rep. 2019;9(1):13082.
  11. Orfali RL, da Silva Oliveira LM, de Lima JF, et al. Staphylococcus aureus enterotoxins modulate IL-22-secreting cells in adults with atopic dermatitis. Sci Rep. 2018;8(1):6665.
  12. Stier MT, Peebles Jr RS. Innate lymphoid cells and allergic disease. Ann Allergy Asthma Immunol. 2017;119(6):480e488. https://doi.org/10.1016/j.anai.2017.08.290
  13. Ong PY, Ohtake T, Brandt C, et al. Endogenous antimicrobial peptides and skin infections in atopic dermatitis. N Engl J Med. 2002;347(15):1151e1160. https://doi.org/10.1056/NEJMoa021481
  14. Simons E, Balshaw R, Lefebvre DL, Dai D, Turvey SE, Moraes TJ, Mandhane PJ, Azad MB, Sears MR, Subbarao P, Becker AB. Timing of Introduction, Sensitization, and Allergy to Highly Allergenic Foods at Age 3 Years in a General-Population Canadian Cohort. J Allergy Clin Immunol Pract. 2020;8(1):166-175.e10.  https://doi.org/10.1016/j.jaip.2019.09.039
  15. Ferrucci S, Casazza G, Zussino M, Tavecchio S, Marzano AV, Tedeschi M. Predictive Factors of Early Response to Dupilumab in Patients with Moderate-to-Severe Atopic Dermatitis. J Clin Med. 2023;12(20):6575. https://doi.org/10.3390/jcm12206575
  16. Kommoss KS, Bieler T, Ringen J, Lehmann A, Mihalceanu S, Hobohm L, Keller K, Brand A, Fischer B, Kramer D, Wild J, Waisman A, Enk A, Schäkel K, Heikenwälder M, Karbach S. A simple tool for evaluation of inflammation in psoriasis: NeutrophIL-to-lymphocyte and platelet-to-lymphocyte ratio as markers in psoriasis patients and related murine models of psoriasis-like skin disease. J Mol Med (Berl). 2023;12:4.  https://doi.org/10.1007/s00109-023-02406-4
  17. Wang V, Keefer M, Ong PY. Antibiotic choice and methicillin-resistant Staphylococcus aureus rate in children hospitalized for atopic dermatitis. Ann Allergy Asthma Immunol. 2019;122(3):314e317.
  18. Pandaleke TA, Handono K, Widasmara D, Susianti H. The immunomodulatory activity of Orthosiphon aristatus against atopic dermatitis: Evidence-based on network pharmacology and molecular simulations. J Taibah Univ Med Sci. 2023;19(1):164-174.  https://doi.org/10.1016/j.jtumed.2023.10.005
  19. Mohamed AA, El Borolossy R, Salah EM, Hussein MS, Muharram NM, Elsalawy N, Khalil MG, Mahmoud MO, El-Amir RY, Elsanhory HMA, Ahmed N, Adaroas AS, Montaser M, El Kholy AA. A comparative randomized clinical trial evaluating the efficacy and safety of tacrolimus versus hydrocortisone as a topical treatment of atopic dermatitis in children. Front Pharmacol. 2023;14:1202325. https://doi.org/10.3389/fphar.2023.1202325
  20. Mack MR, Brestoff JR, Berrien-Elliott MM, et al. Blood natural killer cell deficiency reveals an immunotherapy strategy for atopic dermatitis. Sci Transl Med. 2020;12(532):eaay1005.
  21. Kader HA, Azeem M, Jwayed SA, Al-Shehhi A, Tabassum A, Ayoub MA, Hetta HF, Waheed Y, Iratni R, Al-Dhaheri A, Muhammad K. Current Insights into Immunology and Novel Therapeutics of Atopic Dermatitis. Cells. 2021 Jun 4;10(6):1392. https://doi.org/10.3390/cells10061392
  22. Çetinarslan T, Kümper L, Fölster-Holst R.The immunological and structural epidermal barrier dysfunction and skin microbiome in atopic dermatitis-an update. Front Mol Biosci. 2023;10:1159404. https://doi.org/10.3389/fmolb.2023.1159404
  23. Chung HC, Keiller DR, Swain PM, Chapman SL, Roberts JD, Gordon DA.Responsiveness to endurance training can be partly explained by the number of favorable single nucleotide polymorphisms an individual possesses. PLoS One. 2023;18(7):e0288996. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0288996
  24. Schneeweiss MC, Kirchgesner J, Wyss R, Jin Y, York C, Merola JF, Mostaghimi A, Silverberg JI, Schneeweiss S, Glynn RJ. Occurrence of inflammatory bowel disease in patients with chronic inflammatory skin diseases: a cohort study: Classification: Epidemiology. Br J Dermatol. 2022;187(5):692-703.  https://doi.org/10.1111/bjd.21704
  25. Sroka-Tomaszewska J, Trzeciak M. Molecular mechanisms of atopic dermatitis pathogenesis. Int J Mol Sci. 2021 Apr 16;22(8):4130. https://doi.org/10.3390/ijms22084130
  26. Wang V, Boguniewicz J, Boguniewicz M, Ong PY. The infectious complications of atopic dermatitis. Ann Allergy Asthma Immunol. 2021 Jan;126(1):3-12.  https://doi.org/10.1016/j.anai.2020.08.002
  27. Sun D, Ong PY. Infectious complications in atopic dermatitis. Immunol Allergy Clin North Am. 2017;37:75e93. https://doi.org/10.1016/j.iac.2016.08.015
  28. Bosveld CJ, Guth C, Limjunyawong N, Pundir P. Emerging Role of the Mast Cell-Microbiota Crosstalk in Cutaneous Homeostasis and Immunity. Cells. 2023 Nov 14;12(22):2624. https://doi.org/10.3390/cells12222624
  29. Chen YE, Fischbach MA, Belkaid Y. Skin microbiota-host interactions. Nature. 2018;553(7689):427-436.  https://doi.org/10.1038/nature25177
  30. Bjerre RD, Holm JB, Palleja A, Sølberg J, Skov L, Johansen JD. Skin dysbiosis in the microbiome in atopic dermatitis is site-specific and involves bacteria, fungus and virus. BMC Microbiol. 2021.23;21(1):256.  https://doi.org/10.1186/s12866-021-02302-2
  31. Wang ZY, Zheng YX, Xu F, Cui YZ, Chen XY, Chen SQ, Yan BX, Zhou Y, Zheng M, Man XY. Epidermal keratinocyte-specific STAT3 deficiency aggravated atopic dermatitis-like skin inflammation in mice through TSLP upregulation. Front Immunol. 2023 Nov 20;14:1273182. https://doi.org/10.3389/fimmu.2023.1273182
  32. Smits JPH, Ederveen THA, Rikken G, van den Brink NJM, van Vlijmen-Willems IMJJ, Boekhorst J, Kamsteeg M, Schalkwijk J, van Hijum SAFT, Zeeuwen PLJM, van den Bogaard EH. Targeting the Cutaneous Microbiota in Atopic Dermatitis by Coal Tar via AHR-Dependent Induction of Antimicrobial Peptides. J Invest Dermatol. 2020;140(2):415-424.e10.  https://doi.org/10.1016/j.jid.2019.06.142
  33. Clowry J, Irvine AD, McLoughlin RM. Next-generation anti-Staphylococcus aureus vaccines: A potential new therapeutic option for atopic dermatitis? J Allergy Clin Immunol. 2019;143(1):78-81.  https://doi.org/10.1016/j.jaci.2018.08.038
  34. de Wit J, Totte JEE, van Buchem FJM, Pasmans S. The prevalence of antibody responses against Staphylococcus aureus antigens in patients with atopic dermatitis: a systematic review and meta-analysis. Br J Dermatol. 2018; 178:1263e1271. https://doi.org/10.1111/bjd.16251
  35. Bjerre RD, Bandier J, Skov L, Engstrand L, Johansen JD. The role of the skin microbiome in atopic dermatitis: a systematic review. Br J Dermatol. 2017;177:1272e1278. https://doi.org/10.1111/bjd.15390
  36. Hsu UH, Chiang BL. γδ T Cells and Allergic Diseases. Clin Rev Allergy Immunol. 2023;65(2):172-182.  https://doi.org/10.1007/s12016-023-08966-0
  37. Gerber JS, Coffin SE, Smathers SA, Zaoutis TE. Trends in the incidence of methicillin-resistant Staphylococcus aureus infection in children’s hospitals in the United States. Clin Infect Dis. 2009;49(1):65e71.
  38. Francis NA, Ridd MJ, Thomas-Jones E, et al. Oral and topical antibiotics for clinically infected eczema in children: a pragmatic randomized controlled trial in ambulatory care. Ann Fam Med. 2017;15(2):124e130.
  39. Simpson EL, Chalmers JR, Hanifin JM, Thomas KS, Cork MJ, McLean WH, et al. Emollient enhancement of the skin barrier from birth offers effective atopic dermatitis prevention. J Allergy Clin Immunol. 2014;134:818e23. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2014.08.005
  40. Hodara E, Ong PY.The Genetics of Eczema Herpeticum. Clin Rev Allergy Immunol. 2022;63(3):390-397.  https://doi.org/10.1007/s12016-022-08953-x
  41. Leung DY. Why is eczema herpeticum unexpectedly rare? Antiviral Res. 2013;98(2):153e157.
  42. Moran MC, Klose A, Yoshida T, De Benedetto A, Schneider LC, Ong PY, Simpson EL, Leung DYM, Miller BL, Seplaki CL, Beck LA. History of S. aureus Skin Infection Significantly Associates with History of Eczema Herpeticum in Patients with Atopic Dermatitis. Dermatol Ther (Heidelb). 2023;13(10):2417-2429. https://doi.org/10.1007/s13555-023-00996-y
  43. Wollenberg A, Wetzel S, Burgdorf WH, Haas J. Viral infections in atopic dermatitis: pathogenic aspects and clinical management. J Allergy Clin Immunol. 2003;112(4):667e674.
  44. Manti S, Amorini M, Cuppari C, et al. Filaggrin mutations and molluscum contagiosum skin infection in patients with atopic dermatitis. Ann Allergy Asthma Immunol. 2017;119(5):446e451.
  45. von Kobyletzki L, Ballardini N, Henrohn D, Neary MP, Ortsäter G, Geale K, Rieem Dun A, Lindberg I, De Geer A, Neregård P, Cha A, Cappelleri JC, Romero W, Thyssen JP. Care pathways in atopic dermatitis: a retrospective population-based cohort study. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2022 Sep;36(9):1456-1466. https://doi.org/10.1111/jdv.18185
  46. de Lusignan S, Alexander H, Broderick C, Dennis J, McGovern A, Feeney C, Flohr C. Atopic dermatitis and risk of autoimmune conditions: Population-based cohort study. J Allergy Clin Immunol. 2022 Sep;150(3):709-713.  https://doi.org/10.1016/j.jaci.2022.03.030
  47. Galli E, Fortina AB, Ricci G, Maiello N, Neri I, Baldo E, Berti I, Bonamonte D, Capra L, Carboni E, Carello R, Caroppo F, Cavagni G, Chinellato I, Cipriani F, Comberiati P, Diociaiuti A, Di Lernia V, Duse M, Filippeschi C, Giannetti A, Giovannini M, Licari A, Marseglia GL, Pace M, Patrizi A, Pajno GB, Peroni D, Villani A, Eichenfield L. Narrative review on the management of moderate-severe atopic dermatitis in pediatric age of the Italian Society of Pediatric Allergology and Immunology (SIAIP), of the Italian Society of Pediatric Dermatology (SIDerP) and of the Italian Society of Pediatrics (SIP). Ital J Pediatr. 2022;48(1):95.  https://doi.org/10.1186/s13052-022-01278-7
  48. Nakatsuji T, Gallo RL. The role of the skin microbiome in atopic dermatitis. Ann Allergy Asthma Immunol. 2019;122(3):263e269.
  49. Silverberg JI, Silverberg NB. Childhood atopic dermatitis and warts are associated with increased risk of infection: a US population-based study. J Allergy Clin Immunol. 2014;133:1041e1047. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2013.08.012
  50. Almenara-Blasco M, Carmona-Pírez J, Gracia-Cazaña T, Poblador-Plou B, Pérez-Gilaberte JB, Navarro-Bielsa A, Gimeno-Miguel A, Prados-Torres A, Gilaberte Y. Comorbidity Patterns in Patients with Atopic Dermatitis Using Network Analysis in the EpiChron Study. J Clin Med. 2022; 11(21):6413. https://doi.org/10.3390/jcm11216413
  51. Strom MA, Silverberg JI. Association between atopic dermatitis and extracutaneous infections in US adults. Br J Dermatol. 2017;176:495e497. https://doi.org/10.1111/bjd.14708
  52. Narla S, Hsu DY, Thyssen JP, Silverberg JI. Inpatientfinancial burden of atopic dermatitis in the United States. J Invest Dermatol. 2017;137: 1461e1467. https://doi.org/10.1016/j.jid.2017.02.975
  53. Åkerlund S, Seifert O, Assarsson J, Jerkovic SG. Significant Association between Obsessive-Compulsive Disorder and Atopic Dermatitis — a Retrospective Population-Based Case-Control Study. Dermatol Pract Concept. 2023;13(1):e2023053. https://doi.org/10.5826/dpc.1301a53
  54. Boguniewicz M, Fonacier L, Guttman-Yassky E, Ong PY, Silverberg J, Farrar JR. Atopic dermatitis yardstick: practical recommendations for an evolving therapeutic landscape. Ann Allergy Asthma Immunol. 2018;120(1):10e22.e2. 
  55. Gong JQ, Lin L, Lin T, et al. Skin colonization by Staphylococcus aureus in patients with eczema and atopic dermatitis and relevant combined topical therapy: a double-blind multicentre randomized controlled trial. Br J Dermatol. 2006;155(4):680e687.
  56. Seegräber M, Worm M, Werfel T, et al. Recurrent eczema herpeticum — a retrospective European multicenter study evaluating the clinical characteristics of eczema herpeticum cases in atopic dermatitis patients. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2020;34(5):1074e1079.
  57. Callewaert C, Nakatsuji T, Knight R, et al. IL-4Rablockade by dupilumab decreases Staphylococcus aureus colonization and increases microbial diversity in atopic dermatitis. J Invest Dermatol. 2020;140(1):191e202.e7. 
  58. George SM, Karanovic S, Harrison DA, et al. Interventions to reduce Staphylococcus aureus in the management of eczema. Cochrane Database Syst Rev. 2019;2019(10):CD003871.
  59. Liu C, Bayer A, Cosgrove SE, et al. Clinical practice guidelines by the Infectious Disease Society of America for the treatment of methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections in adults and children: executive summary. Clin Infect Dis. 2011;52(3):285e292.
  60. Renert-Yuval Y, Guttman-Yassky E. New treatments for atopic dermatitis targeting beyond IL-4/IL-13 cytokines. Ann Allergy Asthma Immunol. 2020;124(1):28e35.
  61. Smits JPH, Ederveen THA, Rikken G, et al. Targeting the cutaneous microbiota in atopic dermatitis by coal tar via AHR-dependent induction of antimicrobial peptides. J Invest Dermatol. 2020;140(2):415e424.e10. 
  62. Nakagawa S, Hillebrand GG, Nunez G.Rosmarinus officinalis L.(Rosemary) extracts containing carnosic acid and carnosol are potent quorum sensing inhibitors of Staphylococcus aureusvirulence. Antibiotics (Basel). 2020;9(4):149. 
  63. Потекаев Н.Н., Серов Д.Н., Михайлова И.А., Анохина Л.С., Федотова К.Ю., Георгадзе Н.Г. Современные аспекты патогенеза и терапии атопического дерматита. Клиническая дерматология и венерология. 2019;18(3):259-263.  https://doi.org/10.17116/klinderma201918031259

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.