Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Стоюхина А.С.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней им. М.М. Краснова»

Коробов Е.Н.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней имени М.М. Краснова»

Смолин С.А.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней имени М.М. Краснова»

Изолированная первичная витреоретинальная лимфома (клиническое наблюдение)

Авторы:

Стоюхина А.С., Коробов Е.Н., Смолин С.А.

Подробнее об авторах

Журнал: Вестник офтальмологии. 2024;140(2‑2): 94‑101

Прочитано: 1794 раза


Как цитировать:

Стоюхина А.С., Коробов Е.Н., Смолин С.А. Изолированная первичная витреоретинальная лимфома (клиническое наблюдение). Вестник офтальмологии. 2024;140(2‑2):94‑101.
Stoyukhina AS, Korobov EN, Smolin SA. Isolated primary vitreoretinal lymphoma (case report). Russian Annals of Ophthalmology. 2024;140(2‑2):94‑101. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/oftalma202414002294

Рекомендуем статьи по данной теме:

Первичная витреоретинальная лимфома (ПВРЛ) — это злокачественная опухоль лимфоидной ткани, относящаяся к экстранодальным неходжкинским лимфомам, входящая в группу первичных лимфом центральной нервной системы (ПЛЦНС), локализующаяся интраокулярно с первичным поражением сетчатки и стекловидного тела. Такая опухоль не склонна к метастазированию [1—4]. Она может протекать изолированно или сопровождаться ассоциированным поражением ЦНС. Поэтому через 26—28 мес у пациентов с ПВРЛ могут обнаружить ПЛЦНС (60—90%) [5]. За счет ассоциации с ПЛЦНС повышается риск летального исхода даже при своевременном лечении [6]. ПВРЛ до 80% случаев имеют билатеральный характер [1]. Наиболее вероятная гистологическая форма ПВРЛ — диффузная B-крупноклеточная лимфома [7].

Согласно молекулярно-генетической гипотезе, важная роль в этиологии интраокулярных лимфом отводится комплексу белков ядерного фактора kB (NF-kB), которые регулируют процессы пролиферации B-клеток. На функциональную активность NF-kB влияет мутация гена MYD88 в 3p22 хромосоме, что может привести к злокачественной пролиферации B-клеток. Такая мутация встречается более чем в 80% случаев при ПВРЛ и примерно в 55% случаев при ПЛЦНС [8, 9].

Считается, что около 5% витреоретинальных лимфом (ВРЛ) связаны с системной диффузной B-крупноклеточной лимфомой. Есть данные о сочетанном поражении сетчатки и стекловидного тела с поражением внутренних органов. Поэтому такие формы ВРЛ правильнее называть «вторичными» [10].

При интраокулярных лимфомах в 57% случаев первым проявлением является снижение остроты зрения, в 31% — появление плавающих помутнений, в 13% наблюдается бессимптомное течение. В половине случаев острота зрения составляет 0,5 и выше, но может снижаться и до неправильной светопроекции [11]. При биомикроскопии выявляют «сальные» преципитаты на эндотелии роговицы, клеточную опалесценцию передней камеры (эффект Тиндаля), редко встречается псевдогипопион. Структура радужки в большинстве случаев остается неизменной, у некоторых пациентов развивается рубеоз, вследствие чего при разрыве новообразованных сосудов формируется гифема. Зрачок сохраняет правильную форму, как правило, отсутствуют задние синехии [12]. В стекловидном теле обнаруживают выраженные плавающие помутнения, описываемые в литературе как «северное сияние» и «нити жемчуга» [6, 13].

При офтальмоскопии выявляют интра- и субретинальные желто-белые, оранжево-желтые и кремовые инфильтраты, склонные к слиянию. Сетчатка приобретает вид «шкуры леопарда», так как нарушается метаболизм в ретинальном пигментном эпителии (РПЭ), пигмент перераспределяется, и формируются зоны атрофии [12].

Для уточнения диагноза «внутриглазной лимфомы» используют дополнительные методы исследования: ультразвуковое исследование (УЗИ), оптическую когерентную томографию (ОКТ) и ОКТ-ангиографию, аутофлюоресценцию, флюоресцентную ангиографию, ультразвуковую биомикроскопию и ОКТ переднего отрезка, а также диагностическую биопсию с последующим цитологическим (гистологическим), иммуноцитохимическим (иммуногистохимическим) исследованиями, молекулярно-генетические методы.

При УЗИ обнаруживают плавающие мембраны в стекловидном теле, отслойку сетчатки, инфильтрацию хориоретинальной области и расширение тени зрительного нерва [14], однако данные изменения не являются специфичными для интраокулярных лимфом.

При проведении спектральной ОКТ выявляют особые признаки ПВРЛ — массивные скопления клеток в стекловидном теле [15], гиперрефлективные инфильтраты в виде узелков или полос в нескольких зонах: эпиретинально, интраретинально (в слое ганглиозных клеток, внутреннем плексиформном слое, во внутреннем сегменте фоторецепторов), субретинально (между РПЭ и наружными сегментами фоторецепторов) и непосредственно под РПЭ. При этом наблюдается отслойка нейроэпителия и РПЭ, патогномоничен волнистый профиль РПЭ [15—17]. Гиперрефлективные инфильтраты локализуются преимущественно вокруг сосудов сетчатки второго и третьего порядка [18]. Эпиретинальные и интраретинальные инфильтраты встречаются реже, чем субретинальные [19], и требуется дифференциальная диагностика с возрастной макулярной дегенерацией (ВМД) или диабетическим макулярным отеком [20—22]. У некоторых пациентов наблюдаются макулярный отек и наличие субретинальной жидкости [17]. На ОКТ-ангиографии при ПВРЛ выявляются поражения, похожие на «бутоны цветов». Они представлены в виде точечных включений или сливающихся полос, окружающих сосуды сетчатки, с вовлечением артерий и вен [23].

При исследовании аутофлюоресценции для ПВРЛ характерен зернистый рисунок. Пятна гипераутофлюоресценции обусловлены скоплением лимфоидных инфильтратов под РПЭ, что приводит к нарушению его метаболизма с последующим накоплением липофусцина, а окружающие их кольца гипоаутофлюоресценции — наличием лимфомных инфильтратов над РПЭ-эффектом экранирования. При флюоресцентной ангиографии также наблюдается обратное соответствие [16, 24].

Для верификации диагноза при ПВРЛ возможны аспирация стекловидного тела и хориоретинальная тонкоигольная аспирационная биопсия.

Стекловидное тело, полученное при транссклеральной аспирации или во время витрэктомии pars plana, можно исследовать цитологическим, иммуноцитохимическим методами, с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР), методом проточной цитометрии и иммуноферментного анализа. Метод считается относительно безопасным, из осложнений встречаются гемофтальм, отслойка сетчатки и сосудистой оболочки, пролиферативная витреоретинопатия, эндофтальмит [25].

Хориоретинальная тонкоигольная аспирационная биопсия используется редко в силу сложности выполнения и высокого риска осложнений. Предложены два основных доступа: транссклеральный или трансвитреальный. Первый является менее безопасным по сравнению со вторым, так как часто сопровождается супрахориоидальным кровоизлиянием. Трансвитреальный доступ является продолжением частичной витрэктомии pars plana. Полученные образцы можно исследовать гистологическим и иммуноцитохимическим методами [25].

Оценка клональности может быть выполнена при исследовании ДНК, выделенной из клеток внутриглазной лимфомы. Для этого используют ПЦР с праймерами, направленными против тяжелых и легких цепей иммуноглобулина при B-клеточных лимфомах (IgH-PCR и IgL-PCR соответственно). В редких случаях ПЦР для определения T-клеточного рецептора (TCR-γ-PCR) может помочь выявить внутриглазную T-клеточную лимфому [26]. Выявление MYD88 методом ПЦР является высоконадежным тестом для диагностики ПВРЛ [27, 28].

Пациенты с ВРЛ должны быть обследованы на предмет сопутствующих поражений ЦНС и системного вовлечения.

В русскоязычной литературе описаны единичные первичные интраокулярные лимфомы без поражения ЦНС [29, 30], в связи с чем интерес представляет описываемый нами клинический случай.

Клинический случай

Пациентка Е., 76 лет, обратилась в ФГБНУ «НИИ глазных болезней им. М.М. Краснова» с жалобами на постепенное снижение зрения правого глаза в течение 6 месяцев, возникшее после переохлаждения, наиболее выраженное в течение одного месяца и низкое зрение левого глаза в течение 5 лет. Из анамнеза известно, что в 2020 г. на левом глазу и в 2022 г. на правом глазу выполнены факоэмульсификация катаракты с имплантацией интраокулярной линзы (ИОЛ). В 2018 г. на левом глазу диагностирована влажная форма ВМД, в связи с чем по месту жительства выполнено 7 интравитреальных инъекций ингибитора ангиогенеза в режиме «по требованию». С 2019 г. по поводу глаукомы в оба глаза закапывает фиксированную комбинацию Дорзоламид-Тимолол 2 раза в день.

Наследственность по онкологическим и офтальмологическим заболеваниям не отягощена. Аллергологический анамнез не отягощен. Сопутствующие заболевания: сахарный диабет 2-го типа, артериальная гипертензия и постинфарктный кардиосклероз от 2008 г.

На момент осмотра острота зрения правого глаза 0,01 н/к, левого глаза — движение руки у лица н/к. Уровень внутриглазного давления (по данным iCare) правого и левого глаза 18 и 17 мм рт.ст. соответственно.

При осмотре положение глаз в орбите правильное, движение глаз в полном объеме, область проекции слезной железы внешне не изменена, глазная щель средней ширины, смыкание век полное.

При биомикроскопии конъюнктива век, переходных складок и глазного яблока бледно-розовая. Роговица отечная, полупрозрачная. На эндотелии роговицы обоих глаз несвежие «сальные» преципитаты, более выражены слева (рис. 1, а, б).

Рис. 1. Фотографии переднего отрезка глаза.

а — правый глаз; б — левый глаз. Синими стрелками указаны преципитаты на роговице; красными — преципитаты на передней поверхности интраокулярной линзы.

Передние камеры обоих глаз глубже средних. Выраженная опалесценция влаги передней камеры слева (Тиндаль +). Пигментная кайма частично разрешена на обоих глазах. Радужка субатрофична. Реакция зрачка на свет сохранена с двух сторон. ИОЛ центрирована в задней камере, на поверхности преципитаты, более выражены слева (см. рис. 1). В стекловидном теле — выраженные плавающие помутнения с двух сторон.

При офтальмоскопии в условиях медикаментозного мидриаза: глазное дно правого глаза за флером за счет выраженных помутнений в стекловидном теле (клетки +++). В преретинальном пространстве имеются фиксированные мембраны с точечными наложениями. Диск зрительного нерва (ДЗН) бледно-розовый, границы четкие, артерии сужены, вены умеренно расширены. В макулярной зоне множественные друзы, диспигментация. По ходу верхневисочной аркады выявлены множественные интраретинальные инфильтраты бледно-желтого цвета с нечеткими контурами. В верхненаружном отделе глазного дна на средней периферии обнаружены проминирующие очаги бело-желтого цвета неправильной формы с нечеткими контурами, по периферии очагов — крапчатость по типу «шкуры леопарда» (рис. 2).

Рис. 2. Фотография глазного дна правого глаза.

Зелеными стрелками указана зона пигментации по типу «шкуры леопарда»; синими — интраретинальные инфильтраты; звездочками — очаги на средней периферии.

Глазное дно левого глаза — за флером за счет выраженных помутнений в стекловидном теле (клетки +++). ДЗН бледно-розовый, границы четкие, артерии сужены, вены умеренно расширены. В макулярной зоне определена пастозность, парафовеолярно — кровоизлияния. На периферии сетчатки — детали за флером (рис. 3). По данным ОКТ правого глаза, в макулярной зоне выявлены множественные интраретинальные гиперрефлективные включения, сливные друзы, парафовеолярно — отслойка пигментного эпителия (ОПЭ), «волнистость» РПЭ, отек внутренних слоев сетчатки (рис. 4).

Рис. 3. Фотография глазного дна левого глаза.

Стрелками указаны кровоизлияния.

Рис. 4. Результаты оптической когерентной томографии.

Горизонтальные сканы: а — через фовеа; б, в — парафовеолярно сверху. Желтыми стрелками указаны интраретинальные гиперрефлективные включения; фиолетовыми — сливные друзы; красными — отслойка пигментного эпителия; зелеными — «волнистость» ретинального пигментного эпителия; звездочками — отек внутренних слоев сетчатки.

В зоне офтальмоскопируемых очагах на средней периферии выявлены множественные участки высокой ОПЭ с гиперэхогенным содержимым, гиперрефлективные интраретинальные включения, нарушение дифференцировки слоев сетчатки за счет интраретинального отека (рис. 5).

Рис. 5. Результат оптической когерентной томографии правого глаза.

Зона сканирования — средняя периферия сверху. Желтыми звездочками указаны участки высокой отслойки пигментного эпителия с гиперэхогенным содержимым, гиперрефлективные интраретинальные включения; розовыми — интраретинальный отек внутренних слоев.

По данным ОКТ левого глаза, в макулярной зоне выявлена протяженная ОПЭ с гиперрефлективным содержимым, высокая отслойка нейроэпителия, гомогенный гиперрефлективный субретинальный экссудат (рис. 6). При исследовании аутофлюоресценции обоих глаз отмечен «зернистый» паттерн с участками гипоаутофлюоресценции (справа — за счет плавающих помутнений в стекловидном теле, слева — за счет атрофии РПЭ) (рис. 7). При УЗИ выявлены плавающие грубые помутнения в стекловидном теле обоих глаз, проминирующий очаг в правом глазу с гиперэхогенным содержимым (рис. 8).

Рис. 6. Результат оптической когерентной томографии левого глаза.

Горизонтальный скан через фовеа. Красными стрелками указана протяженная отслойка пигментного эпителия с гиперрефлективным содержимым; зелеными — гомогенный гиперрефлективный субретинальный экссудат; звездочкой — отслойка нейроэпителия.

Рис. 7. Результат аутофлуоресценции глазного дна.

а, б — правый глаз; в, г — левый глаз.

Рис. 8. Результат ультразвукового исследования.

а — правый глаз; б — левый глаз. Зелеными стрелками указаны плавающие помутнения в стекловидном теле; красной — проминирующий очаг.

На основании данных офтальмоскопии, ОКТ и аутофлюоресцентной картины заподозрена витреоретинальная лимфома.

При лабораторном и инструментальном общесоматическом обследовании не выявлены поражения ЦНС и системность процесса.

С целью получения материала для проведения ПЦР-исследования на B-клеточную клональность выполнена частичная витрэктомия pars plana с биопсией стекловидного тела. Молекулярно-генетическое исследование B-клеточной клональности по генам тяжелой цепи IgH и выявление мутации гена MYD88 подтвердили диагноз ПВРЛ. Пациентка направлена в ФГАУ «НМИЦ нейрохирургии им. акад. Н.Н. Бурденко» для проведения радиотерапии.

Заключение

Первичная интраокулярная лимфома, как правило, протекает под маской других заболеваний, и требуется проведение дифференциальной диагностики с задним увеитом, хореоретинитом, внутриглазным метастазом, возрастной макулярной дегенерацией, реже — с гемофтальмом.

В представленном клиническом случае выявленные на глазном дне правого глаза бело-желтые проминирующие очаги с пигментацией по типу «шкуры леопарда», парамакулярные инфильтраты в сочетании с гиперэхогенными очагами в стекловидном теле («лимфомное тело»), характерными особенностями картины оптической когерентной томографии — отслойкой пигментного эпителия с гиперрефлективным содержимым, гиперрефлективной инфильтрацией внутренних слоев сетчатки, волнистостью ретинального пигментного эпителия, «зернистость» при исследовании аутофлуоресценции глазного дна, а также наличие «сальных» преципитатов на эндотелии позволили заподозрить витреоретинальную лимфому.

При анализе стекловидного тела выявлены характерная для первичной интраокулярной лимфомы мутация гена MYD88 [8] и B-клеточная клональность по генам тяжелой цепи IgH. Таким образом, подтвержден диагноз первичной витреоретинальной лимфомы.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования:

Сбор и обработка материала: А.С., Е.К., С.С.

Написание текста: А.С., С.С.

Редактирование: А.С., Е.К.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Бровкина А.Ф., Гришина Е.Е. Злокачественная (неходжкинская) лимфома органа зрения. Вестник офтальмологии. 2009;125(1):58-60. 
  2. Lopes PG, Ferreira FC, Christofoletti T, Landi EP. Primary intraocular lymphoma: case report and proposed diagnostic algorithm. Hematol Transfus Cell Ther. 2023;45(4):505-509.  https://doi.org/10.1016/j.htct.2021.11.016
  3. Саакян С.В., Амирян А.Г., Андреева Т.А., Склярова Н.В., Жильцова М.Г., Захарова Г.П. Неходжкинская лимфома (случай сочетанного поражения глаз и орбиты). Вестник офтальмологии. 2015;131(3): 82-89. 
  4. Тропинская О.Ф., Серова Н.К., Голанов А.В., Ветлова Е.Р., Фомин А.В. Редкий клинический случай витреоретинальной лимфомы. Вестник офтальмологии. 2014;130(4):63-67. 
  5. Тропинская О.Ф., Серова Н.К., Аронов М.С., Кобяков Г.Л. Злокачественная лимфома центральной нервной системы и глаза. Вестник офтальмологии. 2008;124(1):14-19. 
  6. Chan C-C, Rubenstein JL, Coupland SE, Davis JL, Harbour JW, Johnston PB, Cassoux N, Touitou V, Smith JR, Batchelor TT, Pulido JS. Primary Vitreoretinal Lymphoma: A Report from an International Primary Central Nervous System Lymphoma Collaborative Group Symposium. Oncologist. 2011; 16(11):1589-1599. https://doi.org/10.1634/theoncologist.2011-0210
  7. He L, Zhang J, Chen X, Wei R. Epidemiology and survival outcomes of patients with primary intraocular lymphoma: a population-based analysis. BMC Ophthalmol. 2022;22(1):486.  https://doi.org/10.1186/s12886-022-02702-6
  8. Narasimhan S, Joshi M, Parameswaran S, Rishi P, Khetan V, Ganesan S, Biswas J, Sundaram N, Sreenivasan J, Verma S, Krishnamurthy V, Subramanian K, Nethralaya Referral Laboratory S. MYD88 L265P mutation in intraocular lymphoma: A potential diagnostic marker. Indian J Ophthalmol. 2020;68(10):2160-2165. https://doi.org/10.4103/ijo.IJO_1712_19
  9. Yonese I, Takase H, Yoshimori M, Onozawa E, Tsuzura A, Miki T, Mochizuki M, Miura O, Arai A. CD79B mutations in primary vitreoretinal lymphoma: Diagnostic and prognostic potential. Eur J Haematol. 2019;102(2): 191-196.  https://doi.org/10.1111/ejh.13191
  10. Bhatt N, Fox A, Chan C-C, Roschewski M, Nida Sen H. Intraocular (vitreoretinal) lymphoma with renal, pelvic, and central nervous system lesions. Can J Ophthalmol. 2014;49(4):e104-e106. https://doi.org/10.1016/j.jcjo.2014.05.009
  11. Dalvin LA, Lim L-AS, Ancona-Lezama D, Mazloumi M, Chang M, Porcu P, Martinez NL, Glass J, Mashayekhi A, Shields CL. Clinical Features Predictive of Survival in Patients With Vitreoretinal Lymphoma: Analysis of 70 Patients at a Single Ocular Oncology Center. Asia-Pacific J Ophthalmol. 2020;9(2):110-116.  https://doi.org/10.1097/APO.0000000000000274
  12. Santos S, Le Lez ML, Arsène S, Pisella PJ. L’imagerie multimodale du lymphome oculo-cérébral. J Fr Ophtalmol. 2017;40(4):285-296.  https://doi.org/10.1016/j.jfo.2016.12.009
  13. Marchese A, Miserocchi E, Giuffrè C, Cicinelli MV, Querques G, Bandello F, Modorati G. Aurora borealis and string of pearls in vitreoretinal lymphoma: patterns of vitreous haze. Br J Ophthalmol. 2019;103(11):1656-1659. https://doi.org/10.1136/bjophthalmol-2018-313491
  14. Sagoo MS, Mehta H, Swampillai AJ, Cohen VML, Amin SZ, Plowman PN, Lightman S. Primary intraocular lymphoma. Surv Ophthalmol. 2014;59(5): 503-516.  https://doi.org/10.1016/j.survophthal.2013.12.001
  15. Barry RJ, Tasiopoulou A, Murray PI, Patel PJ, Sagoo MS, Denniston AK, Keane PA. Characteristic optical coherence tomography findings in patients with primary vitreoretinal lymphoma: a novel aid to early diagnosis. Br J Ophthalmol. 2018;102(10):1362-1366. https://doi.org/10.1136/BJOPHTHALMOL-2017-311612
  16. Egawa M, Mitamura Y, Hayashi Y, Naito T. Spectral-domain optical coherence tomographic and fundus autofluorescence findings in eyes with primary intraocular lymphoma. Clin Ophthalmol. 2014;8:335.  https://doi.org/10.2147/OPTH.S58114
  17. Jang HS, Sepah YJ, Sophie R, Bittencourt MG, Ferraz D, Hanout M, Liu H, Do D V, Nguyen QD. Longitudinal spectral domain optical coherence tomography changes in eyes with intraocular lymphoma. J Ophthalmic Inflamm Infect. 2013;3(1):59.  https://doi.org/10.1186/1869-5760-3-59
  18. Deák GG, Goldstein DA, Zhou M, Fawzi AA, Jampol LM. Vertical Hyperreflective Lesions on Optical Coherence Tomography in Vitreoretinal Lymphoma. JAMA Ophthalmol. 2019;137(2):194.  https://doi.org/10.1001/JAMAOPHTHALMOL.2018.5835
  19. Saito T, Ohguro N, Iwahashi C, Hashida N. Optical coherence tomography manifestations of primary vitreoretinal lymphoma. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2016;254(12):2319-2326. https://doi.org/10.1007/S00417-016-3395-X
  20. Folgar FA, Chow JH, Farsiu S, Wong WT, Schuman SG, O’Connell R V, Winter KP, Chew EY, Hwang TS, Srivastava SK, Harrington MW, Clemons TE, Toth CA. Spatial Correlation between Hyperpigmentary Changes on Color Fundus Photography and Hyperreflective Foci on SDOCT in Intermediate AMD. Investig Opthalmology Vis Sci. 2012;53(8):4626. https://doi.org/10.1167/iovs.12-9813
  21. Ota M, Nishijima K, Sakamoto A, Murakami T, Takayama K, Horii T, Yoshimura N. Optical Coherence Tomographic Evaluation of Foveal Hard Exudates in Patients with Diabetic Maculopathy Accompanying Macular Detachment. Ophthalmology. 2010;117(10):1996-2002. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2010.06.019
  22. Riazi-Esfahani H, Hassanpoor N, Ghassemi F, Zarei M. Presumed Intraocular Lymphoma Masquerading as Age-Related Macular Degeneration: A Case Report. J Curr Ophthalmol. 2020;32(2):207.  https://doi.org/10.4103/JOCO.JOCO_106_20
  23. Chen W, Gu J, Liu S, Zhao Z, Jiang T, Xu G, Chang Q. Perivascular flower-bud-like lesions on en face optical coherence tomography angiography in patients with vitreoretinal lymphoma. Retina. 2022;42(11):2169-2175. https://doi.org/10.1097/IAE.0000000000003579
  24. Casady M, Faia L, Nazemzadeh M, Nussenblatt R, Chan C-C, Sen HN. Fundus autofluorescence patterns in primary intraocular lymphoma. Retina. 2014;34(2):366-372.  https://doi.org/10.1097/IAE.0b013e31829977fa
  25. Mastropasqua R, Di Carlo E, Sorrentino C, Mariotti C, da Cruz L. Intraocular Biopsy and ImmunoMolecular Pathology for “Unmasking” Intraocular Inflammatory Diseases. J Clin Med. 2019;8(10):1733. https://doi.org/10.3390/jcm8101733
  26. Coupland SE, Chan CC, Smith J. Pathophysiology of Retinal Lymphoma. Ocul Immunol Inflamm. 2009;17(4):227-237.  https://doi.org/10.1080/09273940903168696
  27. Shumilov E, Mazzeo P, Zinkernagel MS, Legros M, Porret N, Romagna L, Haase D, Lenz G, Novak U, Banz Y, Pabst T, Bacher U. Comprehensive Laboratory Diagnostic Workup for Patients with Suspected Intraocular Lymphoma including Flow Cytometry, Molecular Genetics and Cytopathology. Curr Oncol. 2022;29(2):766-776.  https://doi.org/10.3390/curroncol29020065
  28. Weber ANR, Cardona Gloria Y, Çınar Ö, Reinhardt HC, Pezzutto A, Wolz OO. Oncogenic MYD88 mutations in lymphoma: novel insights and therapeutic possibilities. Cancer Immunol Immunother. 2018;67(11):1797-1807. https://doi.org/10.1007/s00262-018-2242-9
  29. Залуцкий И.В., Науменко Л.В., Возмитель М.В., Ваккер А.В., Белоцерковская М.В., Яценко В.П. Сложность диагностики злокачественных внутриглазных лимфом или «маскарадный синдром» в диагностике внутриглазных злокачественных лимфом. Новости хирургии. 2011;19(11):122-124. 
  30. Потемкин В.В., Астахов Ю.С., Марченко О.А., Виноградова Ю.Н., Раскин Г.А., Агеева Е.В. Первичная лимфома хориоидеи. Офтальмологические ведомости. 2016;9(2):100-105.  https://doi.org/10.17816/OV92100-105

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.