Андреев А.Н.

ФБУЗ «Приволжский окружной медицинский центр» ФМБА России

Светозарский С.Н.

ФБУЗ «Приволжский окружной медицинский центр» ФМБА России

Передняя стромальная микропункция в лечении персистирующей эрозии трансплантата роговицы после сквозной кератопластики

Авторы:

Андреев А.Н., Светозарский С.Н.

Подробнее об авторах

Журнал: Вестник офтальмологии. 2021;137(1): 78‑82

Прочитано: 1940 раз


Как цитировать:

Андреев А.Н., Светозарский С.Н. Передняя стромальная микропункция в лечении персистирующей эрозии трансплантата роговицы после сквозной кератопластики. Вестник офтальмологии. 2021;137(1):78‑82.
Andreev AN, Svetozarskiy SN. Anterior stromal micropuncture for the treatment of persistent corneal epithelial graft defects after penetrating keratoplasty. Russian Annals of Ophthalmology. 2021;137(1):78‑82. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/oftalma202113701178

Рекомендуем статьи по данной теме:

Персистирующая эрозия трансплантата роговицы, или персистирующий эпителиальный дефект роговицы, — частое (3—19,2%) осложнение сквозной кератопластики [1—5]. Стандартизированных критериев для постановки этого диагноза не существует, в исследованиях применяются такие определения, как отсутствие полного заживления эпителиального дефекта трансплантата в течение 6, 10 либо 14 дней [1, 6, 7]. Отечественные авторы выделяют несколько типов персистирующих эрозий: первично персистирующая эрозия трансплантата роговицы, сохраняющаяся от 10 дней до 1 мес после операции; длительно первично персистирующая эрозия трансплантата роговицы, отмечаемая дольше 1 мес после кератопластики; персистирующая эрозия трансплантата роговицы — дефект эпителия, развившийся после полной эпителизации; рецидив персистирующей эрозии роговичного трансплантата [7].

Неполноценность эпителиального барьера может привести к развитию вторичной инфекции, язвы и перфорации роговицы, неоваскуляризации, снижению остроты зрения, необходимости повторной кератопластики [6]. Длительное существование эпителиального дефекта приводит к пролиферации в строме роговицы миофибробластов и дезорганизации экстрацеллюлярного матрикса, что выражается в формировании стойких помутнений стромы роговицы [8]. Причинами персистирующей эрозии могут служить синдром сухого глаза, редкое моргание, лагофтальм, симблефарон [9], вирусная инфекция [10], аутоиммунная агрессия [7], применение эпителиотоксичных капель (в частности, диклофенака) [11]. Риск эрозирования трансплантата повышается при увеличении сроков хранения донорского материала [12], скорость реэпителизации обратно коррелирует с длительностью от момента смерти донора до забора материала и диаметром пересаживаемого лоскута [13].

При наличии факторов риска развития персистирующих эрозий после кератопластики высокого риска предлагается выполнять профилактическую трансплантацию амниотической мембраны, аутотенопластику и блефарорафию [14]. Описаны различные способы лечения персистирующего эпителиального дефекта роговицы после сквозной кератопластики. Медикаментозное лечение включает использование циклоспорина A [14], противовирусных препаратов [14], аутосыворотки крови в виде капель [15] и субконъюнктивальных инъекций, а также аутологичной плазмы, обогащенной тромбоцитами [16], что может сочетаться с использованием бандажной контактной линзы. Среди хирургических способов высокую эффективность показали блефарорафия [14, 17, 18], пересадка амниотической мембраны [14, 19, 20], покрытие дефекта лоскутом аутоконъюнктивы [6], фототерапевтическая кератэктомия [21]. В то же время проблема остается актуальной: в ряде случаев лечение известными способами недоступно или не приводит к успеху, развиваются язва и перфорация роговицы, приходится прибегать к повторной кератопластике [14].

Клинические наблюдения

В 2018—2019 гг. в отделении офтальмологии ФБУЗ «Приволжский окружной медицинский центр» ФМБА России было зарегистрировано три случая первичного незаживления эпителиального дефекта донорской роговицы более чем через 2 нед после сквозной кератопластики. Во всех случаях технология выполнения операции была традиционной: лоскут диаметром 8 мм из материала для восстановления роговицы, полученного из глазного банка, адаптировали путем наложения непрерывных швов.

После 7 дней неполной эпителизации к стандартной местной терапии добавляли аутосыворотку крови и гиалуроновую кислоту в инстилляциях, в двух случаях применяли также раствор циклоспорина A, в одном — бандажную мягкую контактную линзу (см. таблицау). По данным оптической когерентной томографии переднего отрезка отмечалось появление демаркационной линии в области передней стромы (рис. 1). Во всех случаях усиленное консервативное лечение не приводило к успеху, эпителий нарастал медленно, периодически увеличивалась площадь зоны эрозии (рис. 2).

Клиническая характеристика пациентов с персистирующим эпителиальным дефектом трансплантата роговицы и проводимые лечебные мероприятия

Показатель

Пациент К.

Пациент В.

Пациент Л.

Возраст пациента, лет

76

45

32

Пол

Мужской

Мужской

Мужской

Показания к кератопластике

Буллезная кератопатия

Эндотелиальная дистрофия роговицы Фукса

Кератоконус

Возраст донора, лет

53

60

56

Пол донора

Женский

Мужской

Мужской

Время от момента смерти до обработки материала, ч

19

16

22,5

Длительность хранения материала, сут

7

10

6

Исходная плотность эндотелиальных клеток в материале, клеток/мм2

2705

2507

2911

Послеоперационное лечение

В инстилляциях: антибиотики, дексаметазон, гель-репарант (дексапантенол)

Характер эпителиального дефекта

Первичное незаживление

Локализация и размер дефекта

Центральный дефект диаметром 6 мм

В нижнем квадранте 3×4 мм

Центральный дефект диаметром 6 мм

Назначения после 7 дней неполной эпителизации

Аутосыворотка, циклоспорин А, гиалуроновая кислота в инстилляциях, мягкая контактная линза

Аутосыворотка, гиалуроновая кислота в инстилляциях

Аутосыворотка, циклоспорин А, гиалуроновая кислота в инстилляциях

Лабораторные исследования

Посев соскоба эпителия роговицы на флору — отрицательный, ПЦР на вирус герпеса 1-го и 2-го типа — отрицательный

Посев соскоба эпителия роговицы на флору и грибы — отрицательный, ПЦР на микоплазму, вирус герпеса 1-го и 2-го типа, кандиды — отрицательный

Посев соскоба эпителия роговицы на флору — отрицательный, ИФА: IgM и IgG к цитомегаловирусу, вирусу простого герпеса отсутствуют

Срок от операции до выполнения передней стромальной пункции, сут

30

40

24

Срок от процедуры до полной эпителизации, сут

16

10

13

Повторные эпизоды деэпителизации

Нет

Нет

Эрозия, язва роговицы в интактной от микропункций оптической зоне через 63 дня после кератопластики

Примечание. ПЦР — полимеразная цепная реакция, ИФА — иммуноферментный анализ.

Рис. 1. Оптическая когерентная томограмма роговицы пациента С. с персистирующим в течение 2 нед эпителиальным дефектом трансплантата.

Белыми стрелками указана демаркационная линия в передней строме.

Рис. 2. Фотография переднего отрезка глаза пациента С.

Эпителиальный дефект прокрашен флуоресцеином.

Сохранение персистирующего эпителиального дефекта более 3 нед (24—40 дней) заставило перейти к более активной тактике лечения. Учитывая опыт коллег в лечении персистирующей эрозии роговицы [22], мы проводили переднюю стромальную микропункцию роговицы. Манипуляция выполнялась под эпибульбарной анестезией в условиях операционной под контролем хирургического микроскопа после стерилизации операционного поля. Пункцию осуществляли с помощью инсулиновой иглы, удерживаемой на соответствующем шприце в положении, близком к вертикальному. В зоне эпителиального дефекта выполняли проколы поверхности стромы на глубину до 1/3 толщины роговицы (оценивали визуально) плотно друг к другу, примерно каждые 0,5 мм. Интактной оставляли центральную оптическую зону диаметром около 3 мм. После манипуляции инстиллировали растворы антибиотиков и нестероидных противовоспалительных препаратов.

После процедуры отмечалось постепенное нарастание эпителия, причем в зоне нанесения пункций эпителизация происходила быстрее, чем в центральной интактной зоне. Полное заживление поверхности роговицы определялось на 10—16-е сутки после манипуляции, срок послеоперационного наблюдения составил не менее 10 мес (рис. 3). В одном случае через 2 мес после кератопластики развилась язва роговицы в интактной от микропункций оптической зоне, с которой удалось справиться с помощью консервативного лечения (см. таблицу).

Рис. 3. Фотография переднего отрезка глаза пациента К. через 1 мес после выполнения микропункций.

Черные стрелки обозначают зону точечных микропомутнений в передней строме.

Обсуждение

Микропункция стромы роговицы с помощью инъекционной иглы или Nd:YAG-лазера продемонстрировала свою эффективность в лечении буллезной кератопатии и рецидивирующей эрозии роговицы [22—26]. Публикаций, посвященных лечению персистирующей эрозии трансплантата роговицы после сквозной кератопластики с помощью стромальной микропункции донорского лоскута, в доступной отечественной и англоязычной литературе нами не найдено.

В представленных случаях отмечались такие факторы риска персистирующего эпителиального дефекта, как большой интервал времени от момента смерти до обработки материала и длительное хранение лоскута в питательной среде. Во всех наблюдениях выполнение стромальной микропункции на фоне сохраняющейся более 3 нед эрозии привело к полной эпителизации трансплантата.

Механизм действия стромальной микропункции связывают отчасти с механическим фактором — созданием пористой поверхности с лучшими адгезионными свойствами, рельеф которой обеспечивает наиболее плотный контакт эпителия, боуменовой и базальной мембран [23]. Наряду с этим нанесение микротравм на поверхность стромы роговицы активирует выработку базальными клетками эпителия внеклеточных матриксных гликопротеинов — фибронектина, коллагена IV типа и ламинина, необходимых для стабильной адгезии эпителия [1]. По данным электронной микроскопии, в эксперименте заполнение микроразрезов эпителием происходит уже в первые сутки, а восстановление базальной мембраны — в течение 2—4 нед [28].

В результате процедуры наряду с эпителизацией развивается хирургически индуцированный фиброз передней стромы в местах нанесения микротравм, не приводящий к развитию неоваскуляризации [30], что отмечалось при биомикроскопии во всех представленных случаях, в связи с чем целесообразно оставлять интактной центральную оптическую зону роговицы.

Заключение

Передняя стромальная микропункция роговицы представляется эффективным способом микроинвазивного лечения персистирующей эрозии трансплантата после сквозной кератопластики. Данная методика дополняет известный арсенал хирургических способов лечения персистирующего эпителиального дефекта — трансплантации амниотической мембраны, аутотенопластике, блефарорафии и фототерапевтической кератэктомии. Выполнение микропункций передней стромы роговицы во всех представленных случаях позволило добиться эпителизации донорского лоскута, что сократило длительность стационарного лечения и временной нетрудоспособности пациентов.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования: А.А., С.С.

Сбор и обработка материала: А.А., С.С.

Написание текста: С.С.

Редактирование: С.С., А.А.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Wan S, Cheng J, Dong Y, Xie L. Epithelial defects after penetrating keratoplasty in infectious keratitis: An analysis of characteristics and risk factors. PLoS One. 2018;13(11):e0208163. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0208163
  2. Machado R, Mannis M, Mandel H, et al. The relationship between first postoperative day epithelial status and eventual health of the ocular surface in penetrating keratoplasty. Cornea. 2002;21(6):574-577.  https://doi.org/10.1097/00003226-200208000-00008
  3. Wagoner MD, Ba-Abbad R, Al-Mohaimeed M, et al. Postoperative complications after primary adult optical penetrating keratoplasty: prevalence and impact on graft survival. Cornea. 2009;28(4):385-394.  https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e31818d3aef
  4. Raj A, Dhasmana R, Bahadur H. Factors associated with surface epithelial keratopathy after optical penetrating keratoplasty. J Curr Ophthalmol. 2017; 29(2):108-115.  https://doi.org/10.1016/j.joco.2017.01.002
  5. Kitzmann AS, Goins KM, Sutphin JE, Wagoner MD. Keratoplasty for treatment of Acanthamoeba keratitis. Ophthalmology. 2009;116(5):864-869.  https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2008.12.029
  6. Chen HF, Yeung L, Yang KJ, Sun CC. Persistent corneal epithelial defect after pars plana vitrectomy. Retina. 2016;36(1):148-155.  https://doi.org/10.1097/IAE.0000000000000657
  7. Макаров П.В., Кугушева А.Э., Ченцова Е.В., Слепова О.С. О персистирующих эрозиях роговичного трансплантата (сообщение 1). Российский офтальмологический журнал. 2015;8(1):13-18. 
  8. Wilson SE, Medeiros CS, Santhiago MR. Pathophysiology of Corneal Scarring in Persistent Epithelial Defects after PRK and Other Corneal Injuries. J Refract Surg. 2018;34(1):59-64.  https://doi.org/10.3928/1081597X-20171128-01
  9. Fu Y, Liu J, Tseng S. Ocular surface deficits contributing to persistent epithelial defect after penetrating keratoplasty. Cornea. 2012;31(7):723-729.  https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e31821142ee
  10. Ricci F, Missiroli F, Ciotti M, et al. Persistent epithelial defect after penetrating keratoplasty caused by adenoviral infectious keratitis. New Microbiol. 2010;33(2):171-174. 
  11. Shimazaki J, Saito H, Yang HY, et al. Persistent epithelial defect following penetrating keratoplasty: an adverse effect of diclofenac eyedrops. Cornea. 1995;14(6):623-627.  https://doi.org/10.1097/00003226-199511000-00018
  12. Spelsberg H, Reinhard T, Sundmacher R. Epithelial damage of corneal grafts after prolonged storage in dextran-containing organ culture medium — a prospective study. Klin Monbl Augenheilkd. 2002;219(6):417-421.  https://doi.org/10.1055/s-2002-32877
  13. Chéour M, Nasri H, Kamoun H, et al. Factors associated with graft reepithelialization after penetrating keratoplasty. J Fr Ophtalmol. 2008;31(8):786-789.  https://doi.org/10.1016/s0181-5512(08)74398-5
  14. Макаров П.В., Кугушева А.Э., Слепова О.С. и др. О персистирующих эрозиях роговичного трансплантата (сообщение 2). Российский офтальмологический журнал. 2015;8(2):41-46. 
  15. Chiang C, Chen W, Lin J, Tsai Y. Allogeneic serum eye drops for the treatment of persistent corneal epithelial defect. Eye (Lond). 2009;23(2):290-293.  https://doi.org/10.1038/sj.eye.6703079
  16. Alizadeh S, Balagholi S, Baradaran-Rafii A, et al. Autologous platelet-rich plasma eye drops accelerate re-epithelialization of post-keratoplasty persistent corneal epithelial defects. J Ophthalm Vis Res. 2019;14(2):131-135.  https://doi.org/10.4103/jovr.jovr_279_17
  17. Cosar CB, Cohen EJ, Rapuano CJ, et al. Tarsorrhaphy: clinical experience from a cornea practice. Cornea. 2001;20(8):787-791.  https://doi.org/10.1097/00003226-200111000-00002
  18. Tzelikis PF, Diniz CM, Tanure MA, Trindade FC. [Tarsorrhaphy: applications in a Cornea Service]. Arq Bras Oftalmol. 2005;68(1):103-107. (In Port.). https://doi.org/10.1590/s0004-27492005000100019
  19. Seitz B, Das S, Sauer R, et al. Amniotic membrane transplantation for persistent corneal epithelial defects in eyes after penetrating keratoplasty. Eye (Lond). 2009;23(4):840-848.  https://doi.org/10.1038/eye.2008.140
  20. Prabhasawat P, Tesavibul N, Komolsuradej W. Single and multilayer amniotic membrane transplantation for persistent corneal epithelial defect with and without stromal thinning and perforation. Br J Ophthalmol. 2001;85(12): 1455-1463. https://doi.org/10.1136/bjo.85.12.1455
  21. Churashov SV, Kudryashova EV, Kulikov AN, et al. «Wet» transepithelial phototherapeutic keratectomy in the management of persistent epithelial defects in the graft. Clin Ophthalmol. 2018;12:895-901.  https://doi.org/10.2147/OPTH.S161018
  22. Oikonomakis K, Petrelli M, Petrovic A, et al. Epithelial map-guided anterior stromal micropuncture for the treatment of recurrent corneal erosion syndrome. Int Ophthalmol. 2019;39(4):943-948.  https://doi.org/10.1007/s10792-018-0891-5
  23. Miller DD, Hasan SA, Simmons NL, Stewart MW. Recurrent corneal erosion: a comprehensive review. Clin Ophthalmol. 2019;13:325-335.  https://doi.org/10.2147/OPTH.S157430
  24. Li G, Zheng J, Gong J, et al. Efficacy of Anterior Stromal Puncture Surgery with Corneal Bandage Lens for Bullous Keratopathy. Int J Med Sci. 2019; 16(5):660-664.  https://doi.org/10.7150/ijms.31669
  25. Каспарова Е.А., Ван Шуцюнь, Федоров А.А. Значение передней стромальной пункции в лечении болящей буллезной кератопатии. Вестник офтальмологии. 2011;127(4):45-49. 
  26. Каспарова Е.А., Ван Шуцюнь. Передняя стромальная пункция в лечении заболеваний роговицы. Вестник офтальмологии. 2010;126(5):43-47. 
  27. Hsu JK, Rubinfeld RS, Barry P, Jester JV. Anterior stromal puncture. Immunohistochemical studies in human corneas. Arch Ophthalmol. 1993;111(8): 1057-1063. https://doi.org/10.1001/archopht.1993.01090080053018
  28. Judge D, Payant J, Frase S, Wood TO. Anterior stromal micropuncture electron microscopic changes in the rabbit cornea. Cornea. 1990;9(2):152-160.  https://doi.org/10.1097/00003226-199004000-00012
  29. Tsubota K, Mashima Y, Murata H, et al. Corneal epithelium following penetrating keratoplasty. Br J Ophthalmol. 1995;79(3):257-260.  https://doi.org/10.1136/bjo.79.3.257
  30. Sridhar MS, Vemuganti GK, Bansal AK, Rao GN. Anterior stromal puncture in bullous keratopathy: a clinicopathologic study. Cornea. 2001;20(6): 573-579.  https://doi.org/10.1097/00003226-200108000-00004

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.