Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Стоюхина А.С.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней им. М.М. Краснова»

Опухолеподобные заболевания и гамартомы сетчатки в практике офтальмолога

Авторы:

Стоюхина А.С.

Подробнее об авторах

Журнал: Вестник офтальмологии. 2020;136(4): 367‑372

Прочитано: 10200 раз


Как цитировать:

Стоюхина А.С. Опухолеподобные заболевания и гамартомы сетчатки в практике офтальмолога. Вестник офтальмологии. 2020;136(4):367‑372.
Stoyukhina AS. Tumor-like diseases and retinal hamartomas in ophthalmological practice. Russian Annals of Ophthalmology. 2020;136(4):367‑372. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/oftalma2020136042367

Рекомендуем статьи по данной теме:

Опухолеподобными принято называть те заболевания, течение которых схоже с течением доброкачественных опухолей. К данной группе можно отнести и некоторые редкие врожденные состояния, симптоматика которых может проявиться не сразу.

Гамартома — врожденное узловое доброкачественное опухолевидное образование, представляющее собой тканевую аномалию развития, состоящую из тех же тканевых компонентов, что и орган, в котором она расположена. При этом гамартома отличается аномальным строением и степенью дифференцировки тканей.

С врожденными заболеваниями сетчатки в первую очередь сталкиваются детские офтальмологи. Однако в редких случаях, если врожденная патология не приводит к появлению зрительных нарушений, с ней приходится впервые сталкиваться и взрослым офтальмологам, что нередко требует проведения дифференциальной диагностики с другими новообразованиями глазного дна.

Одним из таких состояний, не приводящих к нарушению зрительных функций, является макулопатия «torpedo» — врожденная аномалия ретинального пигментного эпителия (РПЭ) и наружных слоев сетчатки [1]. Впервые эта патология описана R. Roseman и J. Gass (1992) как гипопигментированный невус макулярной области [2]. В дальнейшем использовали различные термины: солитарный гипопигментированный невус, солитарный амеланотический невус, парамакулярная колобома и солитарный гипопигментированный меланоз [3].

Офтальмоскопически эта аномалия РПЭ представляет собой плоский беспигментный очаг овальной формы с четкими границами, расположенный в темпоральной части макулярной зоны (в редких случаях медиальный край может располагаться субфовеолярно). Край очага, обращенный к центральной ямке сетчатки (fovea centralis), может быть заостренным и гиперпигментированным [2—5].

Зрительные функции, как правило, не страдают. Однако в ряде случаев выявляют амблиопию со снижением максимальной остроты зрения до 0,4—0,8 [2, 4, 6] и/или относительную скотому с назальной стороны в соответствии с локализацией очага при сохранении нормальной светочувствительности (по данным микропериметрии) [4, 7, 8].

Среди теорий патогенеза данного состояния наиболее вероятным, с учетом данных оптической когерентной томографии (ОКТ), является предположение о поражении РПЭ, развивающемся во время закрытия швов сетчатки [9]. Существует также теория об эмбриогенетических изменениях в хориоидее макулярной локализации [10].

На основании данных ОКТ E. Wong и соавторы описали 2 томографических типа этого заболевания: незначительное разрушение наружных слоев сетчатки в отсутствие кавитации наружных слоев сетчатки (тип 1) и повреждение и кавитация наружных слоев сетчатки с/или без дегенерации внутренних слоев хориоидеи (тип 2) [8]. Позднее K. Tripathy и соавторы выделили тип 3, который характеризуется западением внутренней поверхности сетчатки и РПЭ, дезорганизацией РПЭ, истончением сетчатки и интраретинальными гипорефлективными пространствами без субретинальной щели [11].

Картина очага в свете коротковолновой аутофлюоресценции (К-АФ) варьирует от изоаутофлюоресценции с точечными участками гипераутофлюоресценции в заостренном крае очага, обращенном к макуле, до гипоаутофлюоресценции с ободком гипераутофлюоресценции. При исследовании аутофлюоресценции в ближнем инфракрасном диапазоне (ИК-АФ) макулопатия «torpedo» представляет собой зону гипоаутофлюоресценции, обусловленной, по-видимому, дефицитом отложения меланина в пораженном РПЭ [5, 7, 12].

При наблюдении в динамике увеличение размеров патологического очага не зафиксировано [6, 7], однако описаны единичные случаи развития субретинальной неоваскулярной мембраны на фоне макулопатии «torpedo» в сочетании с наличием «сателлитных» очагов на глазном дне [13—15].

Миелиновые волокна сетчатки (МВС) — практически непроминирующий беспигментный очаг на глазном дне — выявляют у 0,3—0,6% офтальмологических пациентов и в 0,9—1% случаев при аутопсии [16, 17].

Впервые миелиновые волокна в сочетании с миопией описал F. Berg (1914). Появление миелиновых волокон связывают с продолжением миелинизации за пределы решетчатой пластинки [18], что может быть связано с гетеротопией олигодендроцитов или глиальных клеток в слой нервных волокон сетчатки [19, 20] или распространением миелина в сетчатку через врожденный дефект в решетчатой пластинке [17, 21]. Подтверждением этому может служить встречающееся сочетание миелиновых волокон с ямкой диска зрительного нерва (ДЗН) [22].

Известны наследуемые формы аномалии с аутосомно-рецессивным и аутосомно-доминантным типами наследования. В 17—20% случаев эта аномалия двусторонняя [17, 23]. Миелиновые волокна могут сочетаться с гиперметропией [20], миопией, амблиопией, косоглазием, нистагмом, витреомакулярным тракционным синдромом [21, 23—25], а также с системными наследственными заболеваниями, такими как нейрофиброматоз, синдром Дауна, синдром Горлина [17, 24].

В литературе описаны случаи развития миелиновых волокон у пациентов, которым ранее выполнена фоторегистрация глазного дна. Так, G. Baarsma описал развитие миелиновых волокон после тупой травмы глаза у пациента, которому за 7 лет до данного события выполнена фоторегистрация глазного дна при обследовании по поводу сахарного диабета [18]. R. Duval и соавторы представили случаи появления двусторонних миелиновых волокон у пациентов с друзами ДЗН [17]. Отмечено также прогрессирование данного состояния в процессе наблюдения [26, 27].

Офтальмоскопически МВС проявляется белыми очагами, расходящимися от ДЗН в виде «языков пламени» с радиальной исчерченностью, частично прикрывающими ретинальные сосуды [23, 25, 28], они могут встречаться и на удалении от ДЗН, что вызывает наибольшие сложности в дифференциальной диагностике с беспигментными внутриглазными новообразованиями [28], а при локализации МВС по краю ДЗН — с его друзами [29].

Зрительные функции обычно не страдают, но при большом распространении миелинизации на глазном дне может быть выявлена относительная скотома и/или отмечено снижение зрения [23, 30].

При ОКТ миелиновые волокна выглядят как высокорефлективные очаги на уровне слоя нервных волокон сетчатки (СНВС) при сохранной ее толщине [25, 28, 30]. При этом возможно отсутствие линии сочленения фоторецептров в макулярной зоне даже при экстрамакулярном расположении миелиновых волокон [19].

При проведении флюоресцентной ангиографии МВС блокируют флюоресценцию [25], а также аутофлюоресценцию, что связано с блокированием эндогенной флюоресценции от подлежащего липофусцина [25, 28].

Как правило, МВС остаются стабильными в течение всей жизни пациента. Однако в литературе описаны случаи регресса данного состояния после окклюзии центральной артерии сетчатки [16], при некомпенсированной глаукоме за счет антероградной дегенерации аксонов [31, 32] и на фоне постлучевой ретино- и нейропатии после брахитерапии меланомы хориоидеи как результат потери олигодендроцитов [33].

Описаны осложнения миелиновых волокон: телеангиоэктазии, окклюзии ветвей ретинальных артерий и вен, неоваскуляризация и кровоизлияния в стекловидное тело, что связывают с ишимизацией глубже расположенных слоев сетчатки как исходом сдавления их утолщенным СНВС [34, 35].

Астроцитарная гамартома сетчатки (АС) — еще одно патологическое состояние, проявляющееся утолщением внутренних слоев сетчатки. Это доброкачественная глиальная опухоль, развивающаяся из слоя нервных волокон сетчатки, которую чаще выявляют случайно у молодых пациентов. Наряду с этим описаны случаи выявления АС у лиц старшей возрастной группы [36].

Чаще встречаются синдром-ассоциированные случаи АС, спорадические случаи составляют 29% [37]. АС может сочетаться с пигментным ретинитом, нейрофиброматозом или миелиновыми волокнами [37, 38], но наиболее часто она является одним из проявлений туберозного склероза [37—39].

Описаны две формы этого образования — некальцифицированная и кальцифицированная [39—41], возможен и комбинированный вариант [39].

Некальфицированные АС встречаются преимущественно при туберозном склерозе, возможно билатеральное и мультифокальное поражение [42]. Некальфицированная АС представляет собой единичный относительно плоский полупрозрачный светло-серый очаг округлой или овальной формы, размерами около 0,5 диаметров ДЗН, расположенный в слое нервных волокон сетчатки. Вокруг очага может быть выявлен слабый круговой световой рефлекс [41].

Офтальмоскопически кальцифицированная астроцитома представляет собой отграниченный узел, чаще всего локализованный в центральных отделах глазного дна, белого или желтовато-белого цвета, который при наличии кист на поверхности может приобретать вид «тутовой ягоды» [39, 43], возможны точечные зоны кальцификации интенсивно белого цвета [43].

На ОКТ некальцифицированная АС проявляется значительным утолщением СНВС с сохранением подлежащих слоев сетчатки [42, 44]. При ОКТ в режиме ангиографии (ОКТ-ангиография) в ряде случаев удается выявить наличие центрального питающего сосуда [44].

Кальцифицированная АС проявляется утолщением внутренних слоев сетчатки с дистальным затенением и витреоретинальной тракцией [36, 45]. ОКТ-ангиография позволяет выявлять блокирование сигнала от глубоких структур с уменьшением плотности поверхностных ретинальных сосудов [45].

F. Pichi и соавторы выделили 4 типа ОКТ изменений АС на уровне слоя нервных волокон сетчатки [46]:

Тип 1 — плоский, умеренно гиперрефлективный очаг без признаков витрео-ретинальной тракции, структуры подлежащей нейросенсорной сетчатки и РПЭ сохранены.

Тип 2 — очаг умеренной толщины (до 500 мкм) с признаками витрео-ретинальной тракции на его поверхности и гиперрефлективностью передней поверхности.

Тип 3 — грибовидный очаг с элевацией более 500 мкм и оптическими пустотами типа «проеденными молью», что соответствует кальцификации внутри очага и феноменом дистальной тени за очагом.

Тип 4 — очаг куполообразной формы с элевацией более 500 мкм с оптически пустыми одиночными полостями и гиперрефлективной передней поверхностью.

При проведении ФАГ характерно блокирование флюоресценции в ранние фазы и гиперфлюоресценция в поздние, что более показательно в кальцифицированных АС. В ряде случаев возможно выявление капиллярной сети на поверхности опухоли [41].

При исследовании К-АФ некальцифицированные АС проявляются ослаблением фоновой аутофлюоресценции, в то время как кальцифицированные, напротив — яркой гипераутофлюоресценцией [41].

Течение АС, как правило, бессимптомное. Снижение зрения возможно при развитии вторичной экссудативной отслойки сетчатки, в том числе изолированно в макулярной зоне, гемофтальма или неоваскулярной глаукомы [38, 39, 47]. АС может также осложняться витриитом с появлением отсевов в стекловидном теле [48].

Описано сочетание астроцитарной гамартомы сетчатки с ее миелиновыми волокнами [49].

Кавернозная гемангиома сетчатки (КГС) — редко встречающаяся гамартома, которую выявляют преимущественно в молодом возрасте, может сочетаться с кавернозными гемангиомами кожи и центральной нервной системы [50—52]. Офтальмоскопически КГС характеризуется наличием гроздевидных кистоподобных выпячиваний, которые представляют собой аномально расширенные сосуды, заполненные темно-красной венозной кровью и окруженные желто-белыми фиброзными изменениями [50, 51, 53, 54]. Течение КГС, как правило, бессимптомное [55]. Снижение зрительных функций выявляют при локализации образования непосредственно в фовеолярной зоне [55] или в случае возникновения осложнений [52, 54, 55]. Описан случай сочетания кавернозной гемангиомы сетчатки с колбочковой дистрофией [53]. В основном встречаются спорадические случаи, однако описаны и семейные формы с аутосомно-доминантным типом наследования, для которых характерно билатеральное поражение. При монолатеральном поражении чаще страдает правый глаз [55].

По данным морфологических исследований, КГС развивается во внутренних слоях сетчатки, постепенно в процесс вовлекаются все ее слои [55]. КГС характеризуется формированием интраретинальных полостей в сочетании с гиперрефлективными изменениями на ОКТ. ОКТ позволяет визуализировать интраретинально расположенные, четко-очерченные гроздевидные каверны, прикрытые преретинальной тканью [56, 57], а ОКТ-ангиография выявляет резкое расширение ретинальных сосудов с локальными изменениями в виде узлов и «гроздей винограда» [51, 57].

ФАГ в ранней фазе у таких больных подтверждает наличие микроаневризм, представленных зонами гипофлюоресценции и замедленным заполнением извитых и расширенных ретинальных сосудов в зоне КГС в средней и поздней венозных фазах. В фазе рециркуляции сосуды опухоли заполняются красителем, при этом для каверн характерен «уровень» Флуоресцеина натрия и крови [51, 53, 54, 56, 58].

Для КГС характерны рецидивирующие гемофтальм и гифема [54, 56, 58, 59]. Гемофтальм возникает в результате формирования эпиретинальной мембраны, прилежащей к сосудистым полостям и образующей мосты между ними. Рецидивирующая гифема может осложняться вторичной глаукомой [60], а в детском возрасте — стать причиной амблиопии [50, 52, 60].

Заключение

Офтальмоскопическая картина перечисленных образований сетчатки редко, но достаточно подробно описана в «классической» офтальмологической литературе. Описаны и осложнения, которые могут возникать при этих, казалось бы, безобидных образованиях. Однако характер изменений в слоях сетчатки до появления оптической когерентной томографии оставался неизвестным. Понимание патологических изменений, которые возникают в сетчатке при этих образованиях и выявление их с помощью оптической когерентной томографии, возможно, станут базой для разработки методов предупреждения этих осложнений.

Автор заявляет об отсутствии конфликта интересов.

The author declares no conflicts of interest.

Литература / References:

  1. Venkatesh R, Bavaharan B, Yadav N. Multicolor imaging findings in torpedo maculopathy. Indian Journal of Ophthalmology. 2019;67(2):295-297.  https://doi.org/10.4103/ijo.IJO_1317_18
  2. Roseman RL, Gass JDM. Solitary Hypopigmented Nevus of the Retinal Pigment Epithelium in the Macula. Archives of Ophthalmology. 1992;110(10): 1358-1359. https://doi.org/10.1001/archopht.1992.01080220020005
  3. Черни Э. Макулопатия «Торпеда». Офтальмологические ведомости. 2013;6(3):80-82.  https://doi.org/10.17816/OV2013380-82
  4. Trevino R, Kiani S, Raveendranathan P. The expanding clinical spectrum of torpedo maculopathy. Optometry and Vision Science. 2014;91(4 suppl 1):71-78.  https://doi.org/10.1097/OPX.0000000000000181
  5. Стоюхина А.С., Жоржоладзе Н.В., Данилов С.С. Макулопатия «torpedo» (клинический случай). Вестник офтальмологии. 2017;133(5):56-62.  https://doi.org/10.17116/oftalma2017133556-62
  6. Buzzonetti L, Petroni S, Catena G, Iarossi G. Optical coherence tomography and electrophysiological findings in torpedo maculopathy. Documenta Ophthalmologica. 2015;130(1):65-70.  https://doi.org/10.1007/s10633-014-9472-8
  7. Pilotto E, Zannin ME, Convento E, Cortese M, Midena E. Torpedo maculopathy: A morphofunctional evaluation. International Ophthalmology. 2013;33(1):71-74.  https://doi.org/10.1007/s10792-012-9618-1
  8. Wong EN, Fraser-Bell S, Hunyor AP, Chen FK. Novel optical coherence tomography classification of torpedo maculopathy. Clinical and Experimental Ophthalmology. 2015;43(4):342-348.  https://doi.org/10.1111/ceo.12435
  9. Pian D, Ferrucci S, Anderson SF, Wu C. Paramacular coloboma. Optometry and Vision Science. 2003;80(8):556-563.  https://doi.org/10.1097/00006324-200308000-00008
  10. Teitelbaum BA, Hachey DL, Messner LV. Torpedo maculopathy. Journal of the American Optometric Association. 1997;68(6):373-376. 
  11. Tripathy K, Sarma B, Mazumdar S. Commentary: Inner retinal excavation in torpedo maculopathy and proposed type 3 lesions in optical coherence tomography. Indian Journal of Ophthalmology. 2018;66(8):1213-1214. https://doi.org/10.4103/ijo.IJO_656_18
  12. Schuerch K, Ebneter A, Zinkernagel M. Two case reports of torpedo maculopathy. Klinische Monatsblätter für Augenheilkunde. 2015;232(4):558-559.  https://doi.org/10.1055/s-0035-1545805
  13. Jurjevic D, Böni C, Barthelmes D, Fasler K, Becker M, Michels S, Stemmle J, Herbort C, Zweifel SA. Torpedo Maculopathy Associated with Choroidal Neovascularization. Klinische Monatsblätter für Augenheilkunde. 2017; 234(4):508-514.  https://doi.org/10.1055/s-0043-100230
  14. Shirley K, O’Neill M, Gamble R, Ramsey A, McLoone E. Torpedo maculopathy: disease spectrum and associated choroidal neovascularisation in a paediatric population. Eye (London, England). 2018;32(8):1315-1320. https://doi.org/10.1038/s41433-018-0074-7
  15. Parodi MB, Romano F, Montagna M, Albertini GC, Pierro L, Arrigo A, Bandello F. Choroidal neovascularization in torpedo maculopathy assessed on optical coherence tomography angiography. Ophthalmic Surgery, Lasers and Imaging Retina. 2018;49(11):210-213.  https://doi.org/10.3928/23258160-20181101-20
  16. Teich SA. Disappearance of Myelinated Retinal Nerve Fibers After a Branch Retinal Artery Occlusion. American Journal of Ophthalmology. 1987;103(6): 835-837.  https://doi.org/10.1016/S0002-9394(14)74409-5
  17. Duval R, Hammamji K, Aroichane M, Michaud JL, Ospina LH. Acquired myelinated nerve fibers in association with optic disk drusen. Journal of AAPOS. 2010;14(6):544-547.  https://doi.org/10.1016/j.jaapos.2010.08.008
  18. Baarsma GS. Acquired medullated nerve fibres. British Journal of Ophthalmology.1980;64(9):651.  https://doi.org/10.1136/bjo.64.9.651
  19. Bass SJ, Westcott J, Sherman J. OCT in a myelinated retinal nerve fiber syndrome with reduced vision. Optometry and Vision Science. 2016;93(10):1285-1291. https://doi.org/10.1097/OPX.0000000000000951
  20. Nangia V, Jonas JB, Khare A, Bhate K, Agarwal S, Panda-Jonas S. Prevalence of myelinated retinal nerve fibres in adult Indians: the Central India Eye and Medical Study. Acta Ophthalmologica. 2014;92(3):235-236.  https://doi.org/10.1111/aos.12118
  21. Lee MS, Gonzalez C. Unilateral peripapillary myelinated retinal nerve fibers associated with strabismus, amblyopia, and myopia. American Journal of Ophthalmology. 1998;125(4):554-556.  https://doi.org/10.1016/S0002-9394(99)80199-8
  22. Jain DH, Natarajan KK. Rare association of optic disk pits with myelinated retinal nerves. Journal of Pediatric Ophthalmology and Strabismus. 2017;21(5): 429-430.  https://doi.org/10.1016/j.jaapos.2017.06.016
  23. Зрительные функции и их коррекция у детей: Руководство для врачей. Под ред. Аветисова С.Э., Кащенко Т.П., Шамшиновой А.М. М.: Медицина; 2005.
  24. Di Giovanna F, Morreale Bubella D, Carità S, Morreale Bubella R, Lodato G. Retinal myelinated nerve fibers associated with macular pseudohole. Journal Francais de Ophtalmologie. 2008;31(3):295-298.  https://doi.org/10.1016/s0181-5512(08)74808-3
  25. Ramkumar HL, Verma R, Ferreyra HA, Robbins SL. Myelinated Retinal Nerve Fiber Layer (RNFL). International Ophthalmology Clinics. 2018;58(4): 147-156.  https://doi.org/10.1097/IIO.0000000000000239
  26. Duru I, Savides RP. Unilateral progressive myelinated retinal nerve fibres in an asymptomatic adult with optic nerve head drusen. Canadian Journal of Ophthalmology. 2018;53(4):136-138.  https://doi.org/10.1016/j.jcjo.2017.10.023
  27. Dean M, Kirschen D, Hubschman JP, Straatsma BR, Sarraf D, Francone A. Bilateral acquired progressive retinal nerve fiber layer myelination. Ophthalmic Surgery, Lasers and Imaging Retina. 2018;49(10):147-150.  https://doi.org/10.3928/23258160-20181002-18
  28. Corvi F, Querques G. Multimodal imaging of peripheral myelinated retinal nerve fiber layers without optic disk involvement. Journal Francais de Ophtalmologie. 2015;38(9):896-897.  https://doi.org/10.1016/j.jfo.2015.01.016
  29. Шеремет Н.Л., Харлап С.И., Киселева Т.Н., Будзинская М.В. Кравчук Е.А. Друзы диска зрительного нерва. Сообщение 1. Возможности диагностики. Вестник офтальмологии. 2010;126(2):8-11. 
  30. Gharai S, Prakash G, Ashok Kumar D, Jacob S, Agarwal A, Arora V. Spectral domain optical coherence tomographic characteristics of unilateral peripapillary myelinated retinal nerve fibers involving the macula. Journal of Pediatric Ophthalmology and Strabismus. 2010;14(5):432-434.  https://doi.org/10.1016/j.jaapos.2010.05.010
  31. Sowka JW, Nadeau MJ. Regression of Myelinated Retinal Nerve Fibers in a Glaucomatous Eye. Optometry and Vision Science. 2013;90(7):218-220.  https://doi.org/10.1097/OPX.0b013e3182968b1a
  32. Katz SE, Weber PA. Photographic documentation of the loss of medullated nerve fibers of the retina in uncontrolled primary open angle glaucoma. Journal of Glaucoma. 1996;5(6):406-409. 
  33. Mashayekhi A, Shields CL, Shields JA. Disappearance of retinal myelinated nerve fibers after plaque radiotherapy for choroidal melanoma. Retina. 2003; 23(4):572-573.  https://doi.org/10.1097/00006982-200308000-00029
  34. Leys AM, Leys MJ, Hooymans JMM, Craandijk A, Malenfant M, van Germeersch D, Priem H, de Laey JJ. Myelinated nerve fibers and retinal vascular abnormalities. Retina. 1996;16(2):89-96.  https://doi.org/10.1097/00006982-199616020-00001
  35. Silvestri G, Sehmi K, Hamilton P. Retinal vascular abnormalities. A rare complication of myelinated nerve fibers? Retina. 1996;16(3):214-218. 
  36. Стоюхина А.С. Локальное обызвествление как одна из причин ошибочных диагнозов хориоретинального поражения. Офтальмологические ведомости. 2019;12(3):31-39.  https://doi.org/10.17816/OV15931
  37. Pusateri A, Margo CE. Intraocular Astrocytoma and Its Differential Diagnosis. Archives of Pathology and Laboratory Medicine. 2014;138:1250-1254. https://doi.org/10.5858/arpa.2013-0448-RS
  38. Bloom S, Mahl C. Photocoagulation for serous detachment of the macula secondary to retinal astrocytoma. Retina. 1991;11(4):416-422.  https://doi.org/10.1097/00006982-199110000-00009
  39. Shields JA, Shields CL. Glial tumors of the retina. The 2009 King Khaled Memorial Lecture. Saudi Journal of Ophthalmology. 2009;23(3-4):197-201.  https://doi.org/10.1016/j.sjopt.2009.10.003
  40. Мякошина Е.Б. Астроцитарная гамартома сетчатки: два клинических случая, визуализация с помощью спектральной оптической когерентной томографии. Российская педиатрическая офтальмология. 2013;1:23-27. 
  41. Mennel S, Meyer CH, Eggarter F, Peter S. Autofluorescence and Angiographic Findings of Retinal Astrocytic Hamartomas in Tuberous Sclerosis. Ophthalmologica. 2005;219(6):350-356.  https://doi.org/10.1159/000088377
  42. Schwartz SG, Harbour JW. Multimodal Imaging of Astrocytic Hamartomas Associated With Tuberous Sclerosis. Ophthalmic Surgery, Lasers and Imaging Retina. 2017;48(9):756-758.  https://doi.org/10.3928/23258160-20170829-11
  43. Офтальмоонкология. Руководство для врачей. Под ред. Бровкиной А.Ф. М.: Медицина; 2002.
  44. Yung M, Iafe N, Sarraf D. Optical coherence tomography angiography of a retinal astrocytic hamartoma. Canadian Journal of Ophthalmology. 2016;51(2): 62-64.  https://doi.org/10.1016/j.jcjo.2015.11.005
  45. de Massougnes S, Malclès A, Souteyrand G, Massa H, Thumann G, Steffen H. Imagerie multimodale d’un hamartome astrocytaire rétinien. Journal Francais de Ophtalmologie. 2017;40(1):84-86.  https://doi.org/10.1016/j.jfo.2016.10.003
  46. Pichi F, Massaro D, Serafino M, Carrai P, Giuliari GP, Shields CL, Veronese C, Ciardella AP, Nucci P. Retinal Astrocytic Hamartoma: Optical Coherence Tomography Classification and Correlation with Tuberous Sclerosis Complex. Retina. 2015;36(6):1199-1208. https://doi.org/10.1097/IAE.0000000000000829
  47. Salazar-Quiñones L, Arcos-Villegas G, Valverde-Megías A, Flores-Moreno I, Méndez-Fernández R, Díaz-Valle D. Vitreous haemorrhage a rare manifestation of retinal astrocytic hamartoma: a paediatric case report. Archivos de la Sociedad Espanola de Oftalmologia. 2019;94(9):449-452.  https://doi.org/10.1016/j.oftal.2019.04.012
  48. De Juan E, Green WR, Gupta PK, Barañano EC. Vitreous seeding by retinal astrocytic hamartoma in a patient with tuberous sclerosis. Retina. 1984; 4(2):100-102.  https://doi.org/10.1097/00006982-198400420-00005
  49. Bypareddy R, Takkar B, Lohchab M, Azad SV, Chawla R. Association of Myelinated Retinal Nerve Fibers With Acquired Mulberry Retinal Astrocytoma: Coincidental or Relational? Ophthalmic Surgery, Lasers and Imaging Retina. 2017;48(5):441-442.  https://doi.org/10.3928/23258160-20170428-13
  50. Gass JDM. Cavernous hemangioma of the retina. A neuro-oculo-cutaneous syndrome. American Journal of Ophthalmology. 1971;71(4):799-814.  https://doi.org/10.1016/0002-9394(71)90245-5
  51. Lyu S, Zhang M, Wang RK, Gao Y, Zhang Q, Min X. Analysis of the characteristics of optical coherence tomography angiography for retinal cavernous hemangioma A case report. Medicine. 2018;97(7):e9940. https://doi.org/10.1097/MD.0000000000009940
  52. Yamaguchi K, Yamaguchi K, Tamai M. Cavernous hemangioma of the retina in a pediatric patient. Ophthalmologica. 1988;197(3):127-129.  https://doi.org/10.1159/000309932
  53. Gündüz K, Özbayrak N, Okka M, Okudan S, Zengin N. Cavernous hemangioma with cone dysfunction. Ophthalmologica. 1996;210(6):367-371.  https://doi.org/10.1159/000310749
  54. Hasanpour H, Ramezani A, Karimi S. Recurrent vitreous hemorrhage in a case of retinal cavernous hemangioma: A rare presentation. Journal of Ophthalmic and Vision Research. 2016;11(3):333-335.  https://doi.org/10.4103/2008-322X.188398
  55. Wang W, Chen L. Cavernous hemangioma of the retina a comprehensive review of the literature (1934-2015). Retina. 2017;37(4):611-621.  https://doi.org/10.1097/IAE.0000000000001374
  56. Rani PK, Peguda HK, Kaliki S, Chhablani J. Reverse fluorescein cap sign of cavernous haemangioma of optic nerve on OCT angiography. BMJ Case Reports. 2016;2016:bcr2016218176. https://doi.org/10.1136/bcr-2016-218176
  57. Singh E, Sen A. A case of retinal cavernous hemangioma analyzed with optical coherence tomography angiography. Indian Journal of Ophthalmology. 2019;67(4):561-563.  https://doi.org/10.4103/ijo.IJO_1478_18
  58. Pringle E, Chen S, Rubinstein A, Patel CK, Downes S. Optical coherence tomography in retinal cavernous haemangioma may explain the mechanism of vitreous haemorrhage. Eye (London, England). 2009;23(5):1242-1243. https://doi.org/10.1038/eye.2008.156
  59. Bloch E, Hakim J. Retinal Cavernous Hemangioma. Ophthalmology. 2015; 122(10):2037. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2015.07.006
  60. Shields JA, Eagle RC, Ewing MQ, Lally SE, Shields CL. Retinal cavernous hemangioma: Fifty-two years of clinical follow-up with clinicopathologic correlation. Retina. 2014;34(6):1253-1257. https://doi.org/10.1097/IAE.0000000000000232

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.