Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Малышкина А.И.

ФГБУ «Ивановский научно-исследовательский институт материнства и детства им. В.Н. Городкова» Минздрава России;
ФГБОУ ВО «Ивановская государственная медицинская академия» Минздрава России

Сотникова Н.Ю.

ФГБУ «Ивановский научно-исследовательский институт материнства и детства им. В.Н. Городкова» Минздрава России;
ФГБОУ ВО «Ивановская государственная медицинская академия» Минздрава России

Таланова И.Е.

ФГБОУ ВО «Ивановская государственная медицинская академия» Минздрава России

Колесникова А.М.

ФГБУ «Ивановский научно-исследовательский институт материнства и детства им. В.Н. Городкова» Минздрава России

Иммунологические аспекты привычного невынашивания беременности

Авторы:

Малышкина А.И., Сотникова Н.Ю., Таланова И.Е., Колесникова А.М.

Подробнее об авторах

Журнал: Проблемы репродукции. 2024;30(5): 64‑71

Прочитано: 1514 раз


Как цитировать:

Малышкина А.И., Сотникова Н.Ю., Таланова И.Е., Колесникова А.М. Иммунологические аспекты привычного невынашивания беременности. Проблемы репродукции. 2024;30(5):64‑71.
Malyshkina AI, Sotnikova NYu, Talanova IE, Kolesnikova AM. Immunological aspects of reccurent pregnancy loss. Russian Journal of Human Reproduction. 2024;30(5):64‑71. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/repro20243005164

Рекомендуем статьи по данной теме:
Сек­су­аль­ная фун­кция жен­щин во вре­мя бе­ре­мен­нос­ти. Рос­сий­ский вес­тник аку­ше­ра-ги­не­ко­ло­га. 2024;(6):112-117
Диабе­ти­чес­кая ре­ти­но­па­тия и бе­ре­мен­ность. Вес­тник оф­таль­мо­ло­гии. 2024;(6):145-151
Гиб­рид­ное ра­не­вое пок­ры­тие в ре­аби­ли­та­ции тя­же­лых тер­ми­чес­ких ожо­гов. (Эк­спе­ри­мен­таль­ное ис­сле­до­ва­ние). Воп­ро­сы ку­рор­то­ло­гии, фи­зи­оте­ра­пии и ле­чеб­ной фи­зи­чес­кой куль­ту­ры. 2024;(6-2):40-49
Гор­мо­наль­ные ме­то­ды кон­тра­цеп­ции и рас­се­ян­ный скле­роз. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(1):24-30
Прак­ти­ка при­ме­не­ния ме­ди­ка­мен­тоз­но­го абор­та в ми­ре. Рос­сий­ский вес­тник аку­ше­ра-ги­не­ко­ло­га. 2025;(1):19-24

Введение

По определению Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ), под привычным выкидышем понимают наличие в анамнезе у женщины подряд трех и более самопроизвольных прерываний беременности в сроке до 22 нед. В Российской Федерации, согласно последним клиническим рекомендациям по привычному выкидышу, диагноз выставляют женщине с потерей двух и более беременностей в сроке до 22 нед [1]. После потери беременности шанс на удачную реализацию следующей беременности уменьшается, так как находится в обратной зависимости от количества репродуктивных потерь пациенток. Установлено, что уже после одного самопроизвольного выкидыша риск потери последующей беременности составляет 13—17%, после двух — 36—38%, после трех — 40—45%. Н.К. Тетруашвили отмечает, что достаточно двух последовательных выкидышей, чтобы уделить особое внимание супружеской паре в подготовке к беременности [2].

Частота встречаемости привычного невынашивания беременности составляет 2—5% от числа всех беременностей. Сложность в определении причин прерывания беременности состоит в полиэтиологичности данного процесса. Только в половине случаев возможно установить определенную причину потери желанной беременности [3]. В литературе описан ряд факторов, приводящих к повторным репродуктивным потерям: анатомические факторы, которые обнаруживаются у 19% женщин с привычным невынашиванием [4] (врожденные аномалии матки, синехии, миома матки, полипы эндометрия) [5], хронический эндометрит, встречающийся у 10—27% пациенток [6], антифосфолипидный синдром, обнаруженный у 7—25% женщин [7], наследственные тромбофилии с частотой 29—37% [8, 9], эндокринные факторы с частотой 8—20% (гиперпролактинемия, инсулинорезистентность, сахарный диабет, недостаточность лютеиновой фазы, субклинический или явный гипотиреоз) [9, 10]. S. Pourmasumi и соавт. отмечают важность исследования мужского фактора в парах с привычным невынашиванием беременности, в том числе фрагментации дезоксирибонуклеиновой кислоты (ДНК) сперматозоидов [11].

Беременность, являясь уникальным процессом развития, требует определенной иммунологической среды. Поскольку плод наполовину аллогенен, неизбежно изменение местного иммунного ответа во время беременности [12].

При физиологически протекающей беременности в ответ на имплантацию плодного яйца происходит инфильтрация децидуальной оболочки клетками иммунной системы. M.M. Faas и P. de Vos приводят данные иммуногистохимического анализа клеточного состава децидуальной оболочки будущей плаценты. Авторы отмечают, что основными клетками зоны контакта «мать — плод» являются лейкоциты, а именно натуральные киллеры (NK-клетки) (70%), макрофаги (20—25%), дендритные клетки (1,7%), T-клетки (3—10%), особенно цитотоксические T-клетки [13]. Это способствует правильной регуляции инвазии цитотрофобласта и ремоделированию спиральных артерий и, следовательно, плацентации [14, 15]. Однако при патологически протекающей беременности возникает иммунный дисбаланс, который ставит под сомнение успешное завершение беременности [3].

Ученые из Нидерландов приводят данные о динамических изменениях наиболее заметных иммунных клеток на границе матери и плода на протяжении всей физиологически протекающей беременности. NK-клетки преобладают на ранних сроках беременности. Авторы отмечают, что доля T-клеток памяти увеличивается соответственно сроку беременности. B-клетки, напротив, в основном присутствуют на ранних сроках беременности. Макрофаги в большем проценте встречаются в I и II триместрах [16].

P. Chen и соавт., изучая клеточный состав децидуальной оболочки, полученной от женщин с привычным невынашиванием беременности в I триместре, выявили увеличение доли моноцитов (60%), NK-клеток (55%), макрофагов (55%), тучных клеток (75%) по сравнению с образцами, полученными от нормально протекающей беременности (40%, 45%, 45%, 25% соответственно). Количество децидуальных T-клеток и B-клеток превалировало у женщин с физиологической беременностью (60% и 80% соответственно) [17].

NK-клетки

Заметной популяцией иммунных клеток в децидуальной оболочке являются NK-клетки. Естественные киллеры с самого начала беременности обнаруживаются рядом с клетками трофобласта [18]. NK-клетки подразделяются на три подмножества: NK1, NK2 и NK3. Клетки NK1 экспрессируют ген LILRB1, который связывается с белками HLA-G, экспрессируемыми на клетках трофобласта, что обеспечивает рост эмбриона [19]. Кроме того, взаимодействие с главным комплексом гистосовместимости является ключевым фактором в предотвращении материнского иммунного отторжения [20]. Клетки NK2 и NK3 экспрессируют гены цитокин-опосредованных сигнальных путей, способствуя секреции провоспалительных цитокинов (IFN-γ, TNF-α) [21]. Активированные NK-клетки продуцируют ангиогенные факторы (VEGF, ANGPTs), тем самым участвуя в инвазии трофобласта и в ангиогенезе [14].

Согласно данным литературы, у женщин с привычным невынашиванием на предгравидарном этапе обнаружены более высокие концентрации NK-клеток в эндометрии в сравнении с женщинами без потери беременности в анамнезе [22]. У женщин с привычным выкидышем, беременность которых прервалась в I триместре, значительно снижено подмножество CD16CD56bright NK-клеток в децидуа по сравнению с неосложненной беременностью [23]. C. Guo и соавт. исследовали подмножество NK-клеток в децидуальной оболочке у женщин с привычным невынашиванием в I триместре. Выявлено, что доля NK1 выше у женщин с нормально протекающей беременностью, процент NK2 и NK3 был больше у пациенток с привычным невынашиванием [21]. A. Fukui и соавт. отмечают, что цитотоксическая активность NK-клеток была выше у женщин с привычным невынашиванием [24]. Это говорит о том, что NK-клетки у женщин с привычным невынашиванием количественно и качественно отличаются от тех, которые обычно обнаруживаются при беременности.

Дендритные клетки

Дендритные клетки играют двойную роль в организме — они могут дифференцироваться в мощные антигенпрезентирующие клетки, которые активируют эффекторные T-клетки, или в своем незрелом состоянии они могут повышать иммунную толерантность, индуцируя генерацию регуляторных T-клеток (Treg) [25]. Считается, что в децидуальной оболочке дендритные клетки играют важную роль в распознавании матерью отцовских антигенов как в предимплантационный, так и в имплантационный период. В частности, семенная жидкость способствует миграции дендритных клеток, а также макрофагов в децидуальную оболочку. Дендритные клетки, в свою очередь, могут поглощать и представлять семенные растворимые T-клетки главного комплекса гистосовместимости (HLA) в регионарные лимфатические узлы и индуцировать расширение популяции Treg [26]. Дендритные клетки способны стимулировать дифференцировку наивных клеток Th0 в сторону толерогенных Treg, а не в сторону цитотоксических эффекторных T-клеток, тем самым оказывая толерогенное действие. Дендритные клетки выполняют трофическую функцию, усиливая дифференцировку и пролиферацию стромальных клеток эндометрия, а также ангиогенез [27]. По данным литературы, у женщин с привычным невынашиванием беременности наблюдается пониженная регуляция толерогенных дендритных клеток как в периферической крови, так и в эндометрии, что может привести к нарушению процесса имплантации плодного яйца [28].

T-лимфоциты и B-лимфоциты

Treg являются важными компонентами адаптивного иммунитета, поскольку их основная функция заключается в ограничении иммунной реакции. Treg участвуют в иммунологической толерантности и играют соответствующую роль в предотвращении аутоиммунных реакций [29, 30]. При физиологически протекающей беременности наблюдается расширение популяции децидуальных Treg. Они оказывают ряд важных функций: препятствуют отторжению полуаллогенного эмбриона эффекторными T-клетками, способствуют имплантации эмбриона, осуществляют ремоделирование спиральных артерий [31, 32]. Treg особенно важны на самых ранних стадиях беременности, тогда как на более поздних стадиях их влияние ограниченно [3]. У женщин с привычным невынашиванием беременности отмечается снижение количества Treg в периферической крови, а также в эндометрии и децидуальной оболочке [33]. Поскольку Treg участвуют в подавлении чрезмерной воспалительной реакции на эмбрион, то дисрегуляция или дисфункция этих клеток может быть фактором привычного невынашивания [34].

Н.Ю. Сотникова и соавт. оценивали дифференцировку периферических B-лимфоцитов у женщин с привычным невынашиванием и угрозой прерывания в I триместре. Было выявлено увеличение в периферической крови доли B-клеток, преимущественно за счет В2-лимфоцитов, лимфоцитов CD20+IgM+ и клеток памяти. Количество наивных клеток, плазмоцитов и лимфоцитов, экспрессирующих IL-6 и IL-10, напротив, было снижено. Отмечен сдвиг дифференцировки B-лимфоцитов в сторону незрелых форм у женщин с привычным невынашиванием. Уменьшенное число клеток CD20+IL-10+ у данной категории пациенток может привести к ослаблению супрессорного влияния, связанного с IL-10, и нарушению толерантности материнского организма к плоду [35].

Моноциты/макрофаги

Большая роль в поддержании иммунологической толерантности отводится моноцитам и их конечной стадии дифференцировки — макрофагам как составляющим системы врожденного иммунитета [36]. В настоящее время описаны несколько субпопуляций моноцитов. Одни авторы придерживаются классификации моноцитов, которые подразделяются на две группы: M1 (классически активированные макрофаги) и M2 (альтернативно активированные макрофаги). Макрофаги М1 обладают бактерицидными и воспалительными свойствами, в то время как макрофаги М2 обладают иммуномодулирующими свойствами, индуцируя толерантность и разрешение воспаления [13]. В других источниках моноциты подразделяют на три популяции в зависимости от экспрессии поверхностных антигенов CD14 и CD16: классически активированные (CD14++CD16), промежуточные (CD14++CD16+) и альтернативно активированные (CD14+ CD16++) [37]. Классически активированные моноциты, экспрессируя провоспалительные белки S-100 (S100A12 и S100A8/9), участвуют в воспалительных реакциях и в то же время способствуют регенерации тканей, регулируя процесс апоптоза [37].

Промежуточные моноциты обладают самой высокой антигенпрезентирующей способностью и самой высокой среди моноцитов экспрессией Toll-подобных рецепторов (TLR2, TLR4), которые активируются различными лигандами, главным образом структурными компонентами бактерий, вирусов и грибов. Это приводит к активации клеточного иммунного ответа и запуску врожденного иммунитета [38]. Промежуточные моноциты участвуют в ангиогенезе посредством взаимодействия с мембранными белками — тирозинкиназой (Tie2, CD202b), эндоглином и фактором роста эндотелия сосудов (VEGFR-2) [37].

Альтернативно активированные моноциты способствуют выработке IL-4 CD4+ T-клетками [37].

М2-макрофаги разделяют на субпопуляции М2a, M2b, M2c и M2d в зависимости от секретируемых цитокинов и выполняемых функций. Макрофаги М2a, которые индуцируются IL-4 и IL-13, способствуют экспрессии IL-10, TGF-β, обеспечивая рост клеток и восстановление тканей [39]. Макрофаги M2b, индуцированные иммунным комплексом, лигандами Toll-подобных рецепторов (TLR) и IL-1β, продуцируют как провоспалительные, так и противовоспалительные цитокины (TNF-α, IL-1β, IL-6, IL-10), участвуя в реакциях воспаления [40]. Субпопуляция макрофагов M2c активируется глюкокортикоидами, IL-10 и TGF-β и играет решающую роль в процессе фагоцитоза. Макрофаги M2d индуцируются лигандами TLR и секретируют высокие уровни IL-10 и фактора роста эндотелия сосудов (VEGF), что способствует ангиогенезу и росту опухолей [39].

Беременность подразумевает последовательное изменение иммунологических процессов. На стадии предимплантации активированные макрофаги M1 продуцируют провоспалительные цитокины (IL-1β, IL-6 и TNF-α), способствуя имплантации эмбриона. Постепенно происходит преобладание подтипа М2, который препятствует воспалению и способствует поддержанию беременности. При приближении к периоду родов макрофаги M1 начинают преобладать над популяцией M2, снова активируются воспалительные процессы [41].

Хотя макрофаги присутствуют в плацентарном ложе постоянно во время беременности, количество децидуальных макрофагов меняется в зависимости от срока беременности, причем наибольшее их количество наблюдается в I и II триместрах [42]. При привычном невынашивании отмечается изменение дифференцировки макрофагов в децидуальной оболочке с нарушением баланса провоспалительных и противовоспалительных цитокинов [39]. А.И. Малышкина и соавт. отмечают повышение относительного содержания IL-1β-, IL-6-, IL-10-, IL-13-, IL-21-, IL-22-, IL-23-, IL-27-, TNF-α-продуцирующих макрофагов и снижение относительного содержания IL-10- и IL-4-продуцирующих моноцитов у женщин с привычным невынашиванием и угрозой прерывания в I триместре [43, 44]. Относительное содержание IL-4-позитивных моноцитов, равное 26,7% и менее, позволяет прогнозировать преждевременные роды у данных пациенток [45]. При относительном содержании IL-10-продуцирующих моноцитов 27,0% и менее прогнозируют прерывание беременности в виде самопроизвольного выкидыша или неразвивающейся беременности в сроке до 22 нед [46].

Рецепторы, активируемые пероксисомными пролифераторами (PPAR-γ), принадлежат к семейству ядерных рецепторов, которые связаны с инвазией трофобласта и участвуют в поддержании беременности. Клетки трофобластов и децидуальные макрофаги экспрессируют PPAR-γ, что необходимо для созревания альтернативно активированных макрофагов M2. T.M. Kolben и соавт. приводят данные, что макрофаги децидуальной оболочки у женщин с привычным невынашиванием характеризуются отсутствием экспрессии PPAR-γ, что приводит к потере поляризованных макрофагов М2 и нарушению иммуноустойчивой среды [47].

Апоптоз

Макрофаги реализуют большинство своих функций за счет процессов апоптоза. Апоптоз имеет основополагающее значение для репродукции человека, участвуя в обновлении клеток эндометрия, ремоделировании спиральных артерий, развитии эмбриона и в иммунологической толерантности матери и плода [48]. Запуск апоптоза внешним (рецептор-зависимым) или внутренним (митохондриальным) путем приводит к гибели клеток посредством активации каскада каспаз [49].

Внешний сигнальный путь осуществляется с участием рецепторов гибели клетки. Мембранными рецепторами готовности клеток к апоптозу являются Fas (CD95, Apo-1), TNF-R1 (рецептор 1 фактора некроза опухоли) и соответствующие им Fas-лиганды (FasL) и TNF-α. Fas-рецепторы (FasR) присутствуют на мембранах тимоцитов, активированных T-лимфоцитов и B-лимфоцитов, гепатоцитов, на фибробластах, миелоидных клетках. Данные рецепторы активируются соответствующим антигеном, являющимся индуктором апоптоза, или лигандом — FasL, расположенным на T-лимфоцитах и натуральных киллерах (NK-клетках) [50].

В настоящее время ученые проявляют большой интерес к изучению экспрессии и полиморфизма проапоптотических генов и их влияния на течение беременности. A. Diemert и P.C. Arck отмечают, что у женщин с привычным невынашиванием беременности выявляется более высокая экспрессия проапоптотических генов в образцах хориона, в том числе FAS, FASLG [51]. Активность апоптоза у женщин с привычным выкидышем выше, чем у женщин со спонтанно прерванной беременностью в I триместре [52].

R.R. Nair и соавт., изучив полиморфизм генов на индийском населении, выявили комбинированный генотип FAS-670GG/-1377AA, который ассоциировался с высоким риском возникновения привычного невынашивания [53]. R.T. Michita и соавт. отмечают, что FAS-670A/G не влияет на риск возникновения привычного невынашивания. Тем не менее данный генотип играет роль в других нарушениях беременности, таких как преждевременный разрыв плодных оболочек, преэклампсия, задержка роста плода [48]. Кроме того, FAS-670A/G играет роль в несвязанных с беременностью состояниях, таких как рак и аутоиммунные заболевания [54].

Рецептор-ловушка DcR3, также известный как рецептор фактора некроза опухоли (TNFR), член суперсемейства 6b (TNFRSF6B), является растворимым рецептором, который способен нейтрализовать известные индукторы апоптоза и воспаления, в том числе Fas-лиганд (FasL/CD95L/TNFSF6), LIGHT (TNFSF14) и TNF-подобную молекулу 1A (TL1A/TNFSF15) [55]. DcR3 практически не обнаруживается в физиологическом состоянии и, напротив, чрезмерно экспрессируется у пациентов со злокачественными новообразованиями, аутоиммунными и воспалительными заболеваниями [56].

Рекомбинантный DcR3, воздействуя на дендритные клетки и макрофаги, способствует дифференцировки T-клеток в фенотип Th2, а макрофагов в фенотип M2 [57].

Н.В. Крошкина и Н.В. Батрак отмечают, что повышение сывороточного содержания DcR3 на ранних сроках беременности способствует развитию плацентарной недостаточности, связывая этот факт с нарушением апоптоза при формировании сосудов плаценты [58].

Заключение

Таким образом, иммунный механизм возникновения угрозы прерывания беременности у пациенток с привычным невынашиванием занимает одно из лидирующих мест в патогенезе данной патологии. Бесспорно, что дальнейшее изучение клеточного взаимодействия на системном и локальном уровнях позволит своевременно диагностировать и профилактировать акушерскую и перинатальную патологию у женщин с привычным невынашиванием беременности.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Министерство здравоохранения Российской Федерации. Клинические рекомендации «Привычный выкидыш». 2022.
  2. Тетруашвили Н.К. Привычный выкидыш. Акушерство и гинекология: новости, мнения, обучения. 2017;4:70-87.  https://doi.org/10.24411/2303-9698-2017-00010
  3. Ticconi C, Pietropolli A, Di Simone N, Piccione E, Fazleabas A. Endometrial Immune Dysfunction in Recurrent Pregnancy Loss. International Journal of Molecular Sciences. 2019;20(21):5332. https://doi.org/10.3390/ijms20215332
  4. Jaslow CR, Carney JL, Kutteh WH. Diagnostic factors identified in 1020 women with two versus three or more recurrent pregnancy losses. Fertility and Sterility. 2010;93(4):1234-1243. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2009.01.166
  5. El Hachem H, Crepaux V, May-Panloup P, Descamps P, Legendre G, Bouet P-E. Recurrent pregnancy loss: current perspectives. International Journal of Women’s Health. 2017;9:331-345.  https://doi.org/10.2147/ijwh.s100817
  6. Bouet P-E, El Hachem H, Monceau E, Gariépy G, Kadoch I-J, Sylvestre C. Chronic endometritis in women with recurrent pregnancy loss and recurrent implantation failure: prevalence and role of office hysteroscopy and immunohistochemistry in diagnosis. Fertility and Sterility. 2016;105(1):106-110.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2015.09.025
  7. Менжинская И.В., Кашенцева М.М., Ионанидзе Т.Б., Ванько Л.В., Сухих Г.Т. Спектр антифосфолипидных антител у женщин с привычным невынашиванием беременности и их диагностическое значение. Иммунология. 2016;37(1):4-9.  https://doi.org/10.18821/0206-4952-2016-37-1-4-9
  8. Галайко М.В., Рыбина О.В., Литвиненко М.С., Климов Ю.В., Альтшулер Б.Ю., Губкин А.В. Тромбофилия и беременность. Клиническая онкогематология. 2017;10(3):409-422.  https://doi.org/10.21320/2500-2139-2017-10-3-409-422
  9. Kuroda K, Ikemoto Y, Horikawa T, Moriyama A, Ojiro Y, Takamizawa S, Uchida T, Nojiri S, Nakagawa K, Sugiyama R. Novel approaches to the management of recurrent pregnancy loss: The OPTIMUM (OPtimization of Thyroid function, Thrombophilia, Immunity, and Uterine Milieu) treatment strategy. Reproductive Medicine and Biology. 2021;20(4):524-536.  https://doi.org/10.1002/rmb2.12412
  10. Поздний репродуктивный возраст и современные технологии. Гинекология. 2019;21(4):27-32.  https://doi.org/10.26442/20795696.2019.4.190563
  11. Pourmasumi S, Sabeti P, Ghasemi N. Male factor testing in recurrent pregnancy loss cases: A narrative review. International Journal of Reproductive BioMedicine. 2022;20(6):447-460.  https://doi.org/10.18502/ijrm.v20i6.11440
  12. Lucas ES, Dyer NP, Murakami K, Lee YH, Chan YW, Grimaldi G, Muter J, Brighton PJ, Moore JD, Patel G, Chan JK, Takeda S, Lam EW, Quenby S, Ott S, Brosens JJ. Loss of Endometrial Plasticity in Recurrent Pregnancy Loss. Stem Cells. 2015;34(2):346-356.  https://doi.org/10.1002/stem.2222
  13. Faas MM, de Vos P. Uterine NK cells and macrophages in pregnancy. Placenta. 2017;56:44-52.  https://doi.org/10.1016/j.placenta.2017.03.001
  14. Okada H, Tsuzuki T, Murata H. Decidualization of the human endometrium. Reproductive Medicine and Biology. 2018;17(3):220-227.  https://doi.org/10.1002/rmb2.12088
  15. Makieva S, Giacomini E, Ottolina J, Sanchez A, Papaleo E, Viganò P. Inside the Endometrial Cell Signaling Subway: Mind the Gap(s). International Journal of Molecular Sciences. 2018;19(9):2477. https://doi.org/10.3390/ijms19092477
  16. van der Zwan A, van Unen V, Beyrend G, Laban S, van der Keur C, Kapsenberg HJM, Höllt T, Chuva de Sousa Lopes SM, van der Hoorn MP, Koning F, Claas FHJ, Eikmans M, Heidt S. Visualizing Dynamic Changes at the Maternal-Fetal Interface Throughout Human Pregnancy by Mass Cytometry. Frontiers in Immunology. 2020; 11:571300. https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.571300
  17. Chen P, Zhou L, Chen J, Lu Y, Cao C, Lv S, Wei Z, Wang L, Chen J, Hu X, Wu Z, Zhou X, Su D, Deng X, Zeng C, Wang H, Pu Z, Diao R, Mou L. The Immune Atlas of Human Deciduas With Unexplained Recurrent Pregnancy Loss. Frontiers in Immunology. 2021;12:689019. https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.689019
  18. Guerrero B, Hassouneh F, Delgado E, Casado JG, Tarazona R. Natural killer cells in recurrent miscarriage: An overview. Journal of Reproductive Immunology. 2020;142:103209. https://doi.org/10.1016/j.jri.2020.103209
  19. Rajagopalan S, Bryceson YT, Kuppusamy SP, Geraghty DE, van der Meer A, Joosten I, Long EO. Activation of NK cells by an endocytosed receptor for soluble HLA-G. PLoS Biology. 2005;4(1):e9.  https://doi.org/10.1371/journal.pbio.0040009
  20. Moffett A. NK cell allorecognition. Nature Reviews Immunology. 2017;17(8):466-466.  https://doi.org/10.1038/nri.2017.23
  21. Guo C, Cai P, Jin L, Sha Q, Yu Q, Zhang W, Jiang C, Liu Q, Zong D, Li K, Fang J, Lu F, Wang Y, Li D, Lin J, Li L, Zeng Z, Tong X, Wei H, Qu K. Single-cell profiling of the human decidual immune microenvironment in patients with recurrent pregnancy loss. Cell Discovery. 2021;7(1):1.  https://doi.org/10.1038/s41421-020-00236-z
  22. Kuon RJ, Weber M, Heger J, Santillán I, Vomstein K, Bär C, Strowitzki T, Markert UR, Toth B. Uterine natural killer cells in patients with idiopathic recurrent miscarriage. American Journal of Reproductive Immunology. 2017;78(4):e12721. https://doi.org/10.1111/aji.12721
  23. Dong P, Wen X, Liu J, Yan CY, Yuan J, Luo LR, Hu QF, Li J. Simultaneous detection of decidual Th1/Th2 and NK1/NK2 immunophenotyping in unknown recurrent miscarriage using 8-color flow cytometry with FSC/Vt extended strategy. Bioscience Reports. 2017; 37(3):BSR20170150. https://doi.org/10.1042/bsr20170150
  24. Fukui A, Funamizu A, Fukuhara R, Shibahara H. Expression of natural cytotoxicity receptors and cytokine production on endometrial natural killer cells in women with recurrent pregnancy loss or implantation failure, and the expression of natural cytotoxicity receptors on peripheral blood natural kille. Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 2017;43(11):1678-86.  https://doi.org/10.1111/jog.13448
  25. Arck P C, Hecher K. Fetomaternal immune cross-talk and its consequences for maternal and offspring’s health. Nature Medicine. 2013;19(5):548-556.  https://doi.org/10.1038/nm.3160
  26. Schumacher A, Sharkey DJ, Robertson SA, Zenclussen AC. Immune Cells at the Fetomaternal Interface: How the Microenvironment Modulates Immune Cells To Foster Fetal Development. The Journal of Immunology. 2018;201(2):325-334.  https://doi.org/10.4049/jimmunol.1800058
  27. Huang C, Zhang H, Chen X, Diao L, Lian R, Zhang X, Hu L, Zeng Y. Association of peripheral blood dendritic cells with recurrent pregnancy loss: a case-controlled study. American Journal of Reproductive Immunology. 2016;76(4):326-32.  https://doi.org/10.1111/aji.12550
  28. Liu S, Wei H, Li Y, Huang C, Lian R, Xu J, Chen L, Zeng Y. Downregulation of ILT4+dendritic cells in recurrent miscarriage and recurrent implantation failure. American Journal of Reproductive Immunology. 2018;80(4):e12998. https://doi.org/10.1111/aji.12998
  29. Sharma A, Rudra D. Emerging Functions of Regulatory T Cells in Tissue Homeostasis. Frontiers in Immunology. 2018;9:883.  https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.00883
  30. Pereira LMS, Gomes STM, Ishak R, Vallinoto ACR. Regulatory T Cell and Forkhead Box Protein 3 as Modulators of Immune Homeostasis. Frontiers in Immunology. 2017;8:605.  https://doi.org/10.3389/fimmu.2017.00605
  31. Robertson SA, Care AS, Moldenhauer LM. Regulatory T cells in embryo implantation and the immune response to pregnancy. Journal of Clinical Investigation. 2018;128(10):4224-4235. https://doi.org/10.1172/jci122182
  32. Care AS, Bourque SL, Morton JS, Hjartarson EP, Robertson SA, Davidge ST. Reduction in Regulatory T Cells in Early Pregnancy Causes Uterine Artery Dysfunction in Mice. Hypertension. 2018; 72(1):177-187.  https://doi.org/10.1161/hypertensionaha.118.10858
  33. Qian J, Zhang N, Lin J, Wang C, Pan X, Chen L, Li D, Wang L. Distinct pattern of Th17/Treg cells in pregnant women with a history of unexplained recurrent spontaneous abortion. BioScience Trends. 2018;12(2):157-167.  https://doi.org/10.5582/bst.2018.01012
  34. Kofod L, Lindhard A, Hviid TVF. Implications of uterine NK cells and regulatory T cells in the endometrium of infertile women. Human Immunology. 2018;79(9):693-701.  https://doi.org/10.1016/j.humimm.2018.07.003
  35. Сотникова Н.Ю., Малышкина А.И., Куст А.В., Воронин Д.Н. Анализ дифференцировки периферических B-лимфоцитов у женщин с угрожающим самопроизвольным выкидышем и привычным невынашиванием беременности в анамнезе. Сибирский научный медицинский журнал. 2021;41(3):38-44.  https://doi.org/10.18699/SSMJ20210305
  36. Xu L, Li Y, Sang Y, Li DJ, Du M. Crosstalk Between Trophoblasts and Decidual Immune Cells: The Cornerstone of Maternal-Fetal Immunotolerance. Frontiers in Immunology. 2021;12:642392. https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.642392
  37. Watanabe R, Hashimoto M. Pathogenic role of monocytes/macrophages in large vessel vasculitis. Frontiers in Immunology. 2022;13: 859502. https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.859502
  38. Доброхотова Ю.Э., Ганковская Л.В., Боровкова Е.И., Зайдиева З.С., Скальная В.С. Модулирование локальной экспрессии факторов врожденного иммунитета у пациенток с хроническим эндометритом и бесплодием. Акушерство и гинекология. 2019;5:125-32.  https://doi.org/10.18565/aig.2019.5.125-132
  39. Yao Y, Xu XH, Jin L. Macrophage Polarization in Physiological and Pathological Pregnancy. Frontiers in Immunology. 2019;10:792.  https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.00792
  40. Wang L, Zhang S, Wu H, Rong X, Guo J. M2b macrophage polarization and its roles in diseases. Journal of Leukocyte Biology. 2018;106(2):345-358.  https://doi.org/10.1002/jlb.3ru1018-378rr
  41. Zhang YH, He M, Wang Y, Liao AH. Modulators of the Balance between M1 and M2 Macrophages during Pregnancy. Frontiers in Immunology. 2017;8:120.  https://doi.org/10.3389/fimmu.2017.00120
  42. Wheeler KC, Jena MK, Pradhan BS, Nayak N, Das S, Hsu CD, Wheeler DS, Chen K, Nayak NR. VEGF may contribute to macrophage recruitment and M2 polarization in the decidua. PloS One. 2018;13(1):e0191040. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0191040
  43. Малышкина А.И., Сотникова Н.Ю., Крошкина Н.В., Таланова И.Е., Куст А.В., Козелкова Е.В. Особенности содержания цитокинов периферической крови у беременных женщин с привычным невынашиванием беременности. Клиническая лабораторная диагностика. 2020;65(5):299-303.  https://doi.org/10.18821/0869-2084-2020-65-5-299-303
  44. Малышкина А.И., Сотникова Н.Ю., Григушкина Е.В., Крошкина Н.В., Таланова И.Е. Прогнозирование исхода беременности у женщин с привычным невынашиванием. Клиническая лабораторная диагностика. 2021;66(10):618-622.  https://doi.org/10.51620/0869-2084-2021-66-10-618-622
  45. Малышкина А.И., Сотникова Н.Ю., Крошкина Н.В., Григушкина Е.В., Таланова И.Е. Патент №2755269 C1 РФ, МПК G01N33/50. Способ прогнозирования преждевременных родов у женщин с угрожающим выкидышем ранних сроков и привычным невынашиванием в анамнезе. Заявитель и патентообладатель ФГБУ «Ивановский научно-исследовательский институт материнства и детства им. В.Н. Городкова» Минздрава России. №2021104403; заявл. 20.02.2021; опубл. 14.09.2021.
  46. Малышкина А.И., Сотникова Н.Ю., Крошкина Н.В., Григушкина Е.В., Таланова И.Е. Патент №2751419 С1 РФ, МПК G01N33/53. Способ прогнозирования прерывания беременности у женщин с угрожающим выкидышем и привычным невынашиванием в анамнезе. Заявитель и патентообладатель ФГБУ «Ивановский научно-исследовательский институт материнства и детства им. В.Н. Городкова» Минздрава России. №2021101133; заявл. 20.01.2021; опубл. 13.07.2021.
  47. Kolben TM, Rogatsch E, Vattai A, Hester A, Kuhn C, Schmoeckel E, Mahner S, Jeschke U, Kolben T. PPARγ Expression Is Diminished in Macrophages of Recurrent Miscarriage Placentas. International Journal of Molecular Sciences. 2018;19(7):1872. https://doi.org/10.3390/ijms19071872
  48. Michita RT, Zambra FMB, Fraga LR, Sanseverino MT, Schuler-Faccini L, Chies JAB, Vianna P. The role of FAS, FAS-L, BAX, and BCL-2 gene polymorphisms in determining susceptibility to unexplained recurrent pregnancy loss. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2019;36(5):995-1002. https://doi.org/10.1007/s10815-019-01441-w
  49. Курлович И.В., Белуга М.В., Зубовская Е.Т., Матач Е.А., Митрошенко И.В., Демидова Р.Н. Апоптоз: роль апоптических процессов при беременности. Медицинские новости. 2019;4(295):4-9. 
  50. Galluzzi L, Vitale I, Aaronson SA, Abrams JM, Adam D, Agostinis P, Alnemri ES, Altucci L, Amelio I, Andrews DW, Annicchiarico-Petruzzelli M, Antonov AV, Arama E, Baehrecke EH, Barlev NA, Bazan NG, Bernassola F, Bertrand MJM, Bianchi K, Blagosklonny MV, Blomgren K, Borner C, Boya P, Brenner C, Campanella M, Candi E, Carmona-Gutierrez D, Cecconi F, Chan FK, Chandel NS, Cheng EH, Chipuk JE, Cidlowski JA, Ciechanover A, Cohen GM, Conrad M, Cubillos-Ruiz JR, Czabotar PE, D’Angiolella V, Dawson TM, Dawson VL, De Laurenzi V, De Maria R, Debatin KM, DeBerardinis RJ, Deshmukh M, Di Daniele N, Di Virgilio F, Dixit VM, Dixon SJ, Duckett CS, Dynlacht BD, El-Deiry WS, Elrod JW, Fimia GM, Fulda S, García-Sáez AJ, Garg AD, Garrido C, Gavathiotis E, Golstein P, Gottlieb E, Green DR, Greene LA, Gronemeyer H, Gross A, Hajnoczky G, Hardwick JM, Harris IS, Hengartner MO, Hetz C, Ichijo H, Jäättelä M, Joseph B, Jost PJ, Juin PP, Kaiser WJ, Karin M, Kaufmann T, Kepp O, Kimchi A, Kitsis RN, Klionsky DJ, Knight RA, Kumar S, Lee SW, Lemasters JJ, Levine B, Linkermann A, Lipton SA, Lockshin RA, López-Otín C, Lowe SW, Luedde T, Lugli E, MacFarlane M, Madeo F, Malewicz M, Malorni W, Manic G, Marine JC, Martin SJ, Martinou JC, Medema JP, Mehlen P, Meier P, Melino S, Miao EA, Molkentin JD, Moll UM, Muñoz-Pinedo C, Nagata S, Nuñez G, Oberst A, Oren M, Overholtzer M, Pagano M, Panaretakis T, Pasparakis M, Penninger JM, Pereira DM, Pervaiz S, Peter ME, Piacentini M, Pinton P, Prehn JHM, Puthalakath H, Rabinovich GA, Rehm M, Rizzuto R, Rodrigues CMP, Rubinsztein DC, Rudel T, Ryan KM, Sayan E, Scorrano L, Shao F, Shi Y, Silke J, Simon HU, Sistigu A, Stockwell BR, Strasser A, Szabadkai G, Tait SWG, Tang D, Tavernarakis N, Thorburn A, Tsujimoto Y, Turk B, Vanden Berghe T, Vandenabeele P, Vander Heiden MG, Villunger A, Virgin HW, Vousden KH, Vucic D, Wagner EF, Walczak H, Wallach D, Wang Y, Wells JA, Wood W, Yuan J, Zakeri Z, Zhivotovsky B, Zitvogel L, Melino G, Kroemer G. Molecular mechanisms of cell death: recommendations of the Nomenclature Committee on Cell Death 2018. Cell Death and Differentiation. 2018;25(3):486-541.  https://doi.org/10.1038/s41418-017-0012-4
  51. Diemert A, Arck PC. Pregnancy Around the Clock. Trends in Molecular Medicine. 2018;24(1):1-3.  https://doi.org/10.1016/j.molmed.2017.11.007
  52. Aghaeepour N, Ganio EA, Mcilwain D, Tsai AS, Tingle M, Van Gassen S, Gaudilliere DK, Baca Q, McNeil L, Okada R, Ghaemi MS, Furman D, Wong RJ, Winn VD, Druzin ML, El-Sayed YY, Quaintance C, Gibbs R, Darmstadt GL, Shaw GM, Stevenson DK, Tibshirani R, Nolan GP, Lewis DB, Angst MS, Gaudilliere B. An immune clock of human pregnancy. Science Immunology. 2017;2(15):eaan2946. https://doi.org/10.1126/sciimmunol.aan2946
  53. Nair RR, Khanna A, Singh K. Association of FAS -1377 G>A and FAS -670 A>G functional polymorphisms of FAS gene of cell death pathway with recurrent early pregnancy loss risk. Journal of Reproductive Immunology. 2012;93(2):114-118.  https://doi.org/10.1016/j.jri.2011.12.004
  54. Han AR, Choi YM, Hong MA, Kim JJ, Lee SK, Yang KM, Paik EC, Jeong HJ, Jun JK. Fas and FasL genetic polymorphisms in women with recurrent pregnancy loss: a case-control study. Human Fertility: Journal of the British Fertility Society. 2018;22(3):198-203.  https://doi.org/10.1080/14647273.2018.1467573
  55. Volpe E, Sambucci M, Battistini L, Borsellino G. Fas—Fas Ligand: Checkpoint of T Cell Functions in Multiple Sclerosis. Frontiers in Immunology. 2016;7:382.  https://doi.org/10.3389/fimmu.2016.00382
  56. Lagou S, Grapsa D, Syrigos N, Bamias G. The Role of Decoy Receptor DcR3 in Gastrointestinal Malignancy. Cancer Diagnosis & Prognosis. 2022;2(4):411-421.  https://doi.org/10.21873/cdp.10124
  57. Hsieh SL, Lin WW. Decoy receptor 3: an endogenous immunomodulator in cancer growth and inflammatory reactions. Journal of Biomedical Science. 2017;24(1):39.  https://doi.org/10.1186/s12929-017-0347-7
  58. Крошкина Н.В., Батрак Н.В. Особенности сывороточного содержания DcR3 на ранних сроках беременности при привычном невынашивании. Медицинская иммунология. 2017;19(S):264. 

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.