Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Исакова Э.В.

АО «Международный центр репродуктивной медицины»

Савина В.А.

АО «Международный центр репродуктивной медицины»

Тонкий эндометрий в циклах вспомогательных репродуктивных технологий — определение, диагностика, причины и патогенез. Часть 1 (обзор литературы)

Авторы:

Исакова Э.В., Савина В.А.

Подробнее об авторах

Журнал: Проблемы репродукции. 2021;27(1): 71‑77

Прочитано: 9572 раза


Как цитировать:

Исакова Э.В., Савина В.А. Тонкий эндометрий в циклах вспомогательных репродуктивных технологий — определение, диагностика, причины и патогенез. Часть 1 (обзор литературы). Проблемы репродукции. 2021;27(1):71‑77.
Isakova EV, Savina VA. Thin endometrium in ART cycles — definition, diagnosis, causes, and pathogenesis. Part 1 (literature review). Russian Journal of Human Reproduction. 2021;27(1):71‑77. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/repro20212701171

Рекомендуем статьи по данной теме:

Имплантация качественной бластоцисты в рецептивный эндометрий является ключом к наступлению успешной беременности [1]. Несмотря на значительные достижения в области репродуктивной медицины за последние несколько десятилетий, неудача имплантации — по-прежнему частое явление в процессе вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ) [2]. Повторная неудача имплантации, как правило, определяется как отсутствие имплантации в трех и более попытках переноса одного или двух эмбрионов высокого качества в циклах ВРТ [3] и представляет собой большую эмоциональную и финансовую проблему для пациентов. Известно, что у женщин имплантация эмбриона в эндометрий возможна только в короткий период окна имплантации, который соответствует средней стадии фазы секреции. Именно в это время эндометрий характеризуется оптимальной восприимчивостью, или рецептивностью [4]. Недостаточная толщина эндометрия, влияющая на восприимчивость эндометрия, считается одной из основных причин отсутствия имплантации эмбриона [5] и одной из самых сложных проблем в лечении бесплодия [6]. В данном обзоре литературы представлены современные данные об определении, диагностике тонкого эндометрия, его причинах, а также о патогенезе сопутствующих неудач имплантации эмбрионов.

Что такое тонкий эндометрий

Определение тонкого эндометрия варьирует между исследованиями [7—9]. Однако тонкий эндометрий определяется в основном как эндометрий толщиной менее 7 мм в день овуляции, или в день назначения триггера во время овариальной стимуляции в циклах ВРТ, или в день назначения прогестерона в циклах переноса размороженных эмбрионов [10, 11].

Частота тонкого эндометрия колеблется, по данным разных авторов, от 1,5 до 9,1% [7—11], при этом в циклах стимуляции яичников может достигать 38—66% [10]. Согласно метаанализу, проведенному A. Kasius и соавт. (2014), который включает 1170 пациентов ВРТ, тонкий эндометрий наблюдается в 2,4% случаев [12]. Различия в частоте выявления могут быть связаны с разными методами измерения, ультразвуковым оборудованием, протоколами ВРТ и клиническим порогом толщины эндометрия для проведения переноса эмбрионов.

В то же время в литературе описаны случаи наступления беременности при толщине эндометрия 4 и 5 мм [13, 14]. Минимальная описанная толщина эндометрия, при которой наступила беременность, составляет 3,7 мм [15]. Это позволяет предположить, что восприимчивость, или рецептивность, эндометрия не обязательно связана с его толщиной.

L. Craciunas и соавт. (2019), проведя метаанализ, пришли к выводу, что в целом прогностическая точность толщины эндометрия для наступления клинической беременности низкая. Так, при толщине эндометрия более 7 мм чувствительность этого критерия составляет 99%, а специфичность — 3% [16].

I. Gallos и соавт. (2018) проанализировали 25 767 циклов ВРТ в Великобритании в период 2007—2016 гг. Трансвагинальное ультразвуковое исследование проведено для измерения максимальной толщины эндометрия во время стимуляции гонадотропинами. Показатели живорождения оценены на перенос эмбрионов. Показатели потерь включали сочетание биохимических и клинических потерь беременности. Коэффициент рождаемости составил 15,6% при толщине эндометрия 5 мм или менее и постепенно увеличивался до 33,1% при толщине эндометрия 10 мм. Вместе с тем показатель потерь беременности составлял 41,7% при толщине эндометрия 5 мм или менее и постепенно уменьшался до 26,5% при толщине эндометрия 10 мм. Статистическое моделирование для определения оптимального порога толщины эндометрия выявило максимальную частоту живорождений при толщине эндометрия 10 мм и более, что минимизировало и потерю беременности. Эта связь была независимой после поправки на такие факторы, как возраст, количество ооцитов, количество перенесенных эмбрионов, протокол стимуляции яичников и качество эмбрионов для живорождений и потерь при беременности [17].

Чтобы исследовать взаимосвязь между толщиной эндометрия в день переноса эмбрионов и исходами беременности в циклах переноса размороженных эмбрионов (англ. frozen embryo transfer — FET), Z. Bu и соавт. (2016) ретроспективно проанализировали данные 2997 пациентов, проходивших первые циклы FET с января 2010 г. по декабрь 2012 г. Все пациенты разделены на 3 группы в соответствии с толщиной эндометрия в день переноса эмбрионов: группа A — ≤8 мм; группа B — 9—13 мм; группа C — ≥14 мм. Пациенты с тонким эндометрием в группе А по сравнению с пациентами в двух других группах имели значительно более низкую частоту наступления клинической беременности (33,4%, 41,3% и 45,4% соответственно, p<0,01) и частоту родов (23,8%, 32,2% и 34,0% соответственно, p<0,01). После поправки на возраст, индекс массы тела, количество перенесенных эмбрионов ассоциации между средней толщиной эндометрия (группа B) и частотой клинических беременностей и коэффициент рождаемости были значительными [18]. Авторы пришли к выводу, что толщина эндометрия в день переноса эмбрионов существенно влияет на результаты лечения в циклах переноса размороженных эмбрионов, независимо от других факторов.

Тонкий эндометрий и рецептивность эндометрия

Наступление беременности зависит от успешной имплантации — сложного процесса взаимодействия между слизистой оболочкой матки и бластоцистой. Данный процесс возможен только в короткий период окна имплантации, который соответствует средней стадии фазы секреции. Именно в этот период эндометрий характеризуется оптимальной восприимчивостью, или рецептивностью [4].

Как выяснено в различных исследованиях, тонкий эндометрий не обязательно является невосприимчивым, или нерецептивным. С целью оценки рецептивности эндометрия и прогноза исхода переноса эмбрионов кроме определения толщины эндометрия предлагается ERA-тест (англ. endometrial receptivity analysis). ERA-тест — это молекулярный анализ, который определяет окно имплантации [19, 20]. Этот тест можно использовать для подтверждения рецептивности эндометрия перед планированием переноса размороженных эмбрионов. В случае измененного окна имплантации может быть выполнен персонализированный перенос эмбрионов. Исследование, проведенное на пациентках с тонким эндометрием, равным 6 мм и менее, после определения восприимчивости эндометрия с помощью ERA-теста показало, что эндометрий был нерецептивным у 23% пациенток и рецептивным у 77% пациенток. Соотношение рецептивного и нерецептивного эндометрия у пациенток с тонким эндометрием не отличалось от этого показателя у пациенток с толщиной эндометрия более 6 мм. Общая частота наступления беременности в группе с тонким эндометрием у пациенток с переносом размороженных эмбрионов после ERA-теста составила 33,3% [20]. В то же время R. Bassil и соавт. (2018) показали, что частота наступления беременности после ERA-теста сопоставима с этим показателем в контрольной группе, и сделали вывод, что выполнение данного исследования перед переносом размороженных эмбрионов, по-видимому, не повышает частоту наступления беременности [21]. По предварительным данным исследования C. Simón и соавт. (2020), получено статистически значимое улучшение показателей беременности, имплантации и кумулятивного живорождения в случае применения персонализированного переноса эмбрионов (англ. personalized embryo transfer — pET) после оценки восприимчивости эндометрия с помощью ERA-теста по сравнению со стандартными переносами свежих и размороженных эмбрионов, что указывает на потенциальную полезность pET в соответствии с ERA-тестом даже при первой попытке ВРТ [19]. Однако авторы считают, что на сегодняшний день недостаточно данных, чтобы сравнить результаты после переноса эмбрионов в восприимчивый и невосприимчивый эндометрий по оценке ERA.

Диагностика тонкого эндометрия

Желание прогнозировать исход беременности после ВРТ привело к поиску прогностических маркеров. С этой целью предложены критерии: материнский возраст, измерение овариального резерва и маркеры рецептивности эндометрия. Несмотря на большое количество исследований в области имплантации эмбрионов человека, идеальный маркер рецептивности эндометрия не определен. Низкая точность, прогностическая ценность и инвазивность биохимических и гистологических маркеров рецептивности эндометрия ограничивают их клиническую применимость. Сонография в силу своей неинвазивной природы и универсальной доступности — это метод, наиболее часто используемый для оценки рецептивности эндометрия в ВРТ [22].

Параметры для определения рецептивности эндометрия с помощью традиционного двухмерного ультразвука (УЗ) представляют собой оценку толщины эндометрия [22]. С появлением трехмерного и четырехмерного УЗ изучены дополнительные факторы для улучшения прогностической ценности этого метода исследования. Они включают измерение объема эндометрия и доплерографию маточного и субэндометриального кровотока [23]. Однако толщина и структура эндометрия остаются наиболее исследованными параметрами с точки зрения их прогностической ценности при ВРТ.

Изменения эндометрия в течение менструального цикла хорошо изучены [22]. При УЗ исследовании видно, что толщина эндометрия увеличивается в фолликулярной фазе, при этом характер эндометрия изменяется от гипоэхогенного триламинарного к компактному гиперэхогенному виду после овуляции. Толщина эндометрия измеряется как максимальное расстояние между эхогенными границами миометрия и эндометрия в плоскости через центральную продольную ось тела матки. Эндометрий должен измеряться трансвагинально в сагиттальной плоскости в самой толстой части (около дна матки) [9]. Появление тройной линии или многослойного эндометрия в день триггера овуляции определяется как рецептивный эндометрий, в то время как однородный внешний вид или немногослойный эндометрий в этот день определяется как нерецептивный [24].

Группа экспертов Европейского общества репродукции человека и эмбриологии с целью оценки прогноза исхода цикла ВРТ рекомендует выполнять одно УЗ измерение толщины эндометрия в день триггера или забора яйцеклеток, чтобы в последующем информировать пациентов о возможном снижении вероятности наступления беременности [25].

Причины тонкого эндометрия

Причины тонкого эндометрия можно разделить на три основные группы.

1. Воспалительные. Острая или хроническая инфекция может привести к разрушению базального слоя эндометрия [26].

2. Ятрогенные. Гистероскопическая миомэктомия, полипэктомия или лапароскопическая миомэктомия, эмболизация миомы матки, хирургическая коррекция аномалий матки могут приводить к формированию внутриматочных спаек. A. Hooker и соавт. (2017) показали, что после одного кюретажа внутриматочная адгезия встречается в 10% случаев, а у женщин как минимум с двумя кюретажами — в 30,6% случаев (при оценке гистероскопией через 10 нед после кюретажа) [27].

3. Идиопатические. Тонкий эндометрий не обязательно вторичен по отношению к заболеванию, он может быть результатом индивидуальной структуры матки или внутренних свойств эндометрия, которые влияют на его рост [28]. Известно, что предрасположенность к внутриматочным спайкам связана с неспецифическими факторами, такими как возраст, раса, особенности питания [29].

Кроме того, негативное влияние на толщину эндометрия может оказывать курение. Так, A. Heger и соавт. (2018) показали, что курение отрицательно влияет на толщину эндометрия в день переноса эмбрионов [30].

Плохая васкуляризация и низкий уровень эстрадиола также могут привести к плохому росту эндометрия, поэтому тонкий эндометрий чаще встречается у женщин старшего репродуктивного возраста и наблюдается только в 5% случаев у женщин младше 40 лет и в 25% случаев у женщин после 40 лет в естественных циклах [31].

Патогенез неудач имплантации при тонком эндометрии

Эндометрий человека является важной и специализированной структурой в репродуктивной системе. За последние несколько десятилетий проведены исследования ткани эндометрия во время окна имплантации с целью выявления ключевых рецепторов, цитокинов, иммунокомпетентных клеток и паттернов белка, вовлеченных в процесс имплантации [32]. Считается, что молекулы-маркеры восприимчивости эндометрия участвуют в функции эндометрия, в частности в регуляции имплантации. Эти маркеры включают рецепторы интегрина [33], лептина [34] и цитокины, такие как фактор, ингибирующий лейкемию (LIF) [35], и фактор роста эндотелия сосудов (VEGF) [36].

После идентификации молекул-маркеров в эндометрии у фертильных женщин и демонстрации их важности для беременности у мышей возник интерес к исследованию их функции у субфертильных и бесплодных пациенток. Отсутствие экспрессии в эндометрии α v β 3 интегринов связано с плохим прогнозом лечения с применением ВРТ [37]. Показано, что женщины с более высоким уровнем LIF и слабой иммунореактивностью клаудина-4 во время окна имплантации имеют больше шансов забеременеть по сравнению с женщинами с более низким уровнем белка, что свидетельствует о важности LIF в исходах ВРТ [38].

Существует доказательство того, что есть определенная сеть взаимодействий между различными маркерными молекулами. Рецептор лептина способен влиять на экспрессию VEGF и его рецептора [39, 40], β 3 интегрина [41] и LIF [42]. LIF оказывает положительное влияние на VEGF [43] и экспрессию интегрина [44, 45]. VEGF, в свою очередь, способен влиять на экспрессию интегрина [45]. Интегрин v 3 снова участвует в активации VEGF-R2 после связывания молекулы клеточной адгезии L1 (L1Ig6), лиганда этого рецептора интегрина [43—45].

VEGF. Тонкий эндометрий коррелирует с отсутствием молекул, которые участвуют в ангиогенезе. Недостаток VEGF может привести к недостаточному росту кровеносных сосудов у пациенток с тонким эндометрием [38].

LIF. Имеется множество доказательств того, что LIF может участвовать в ангиогенезе в эндометрии и плаценте, а также влиять на экспрессию VEGF в эндометрии человека. Отсутствие LIF, наблюдаемое в железистых эпителиальных клетках при биопсии эндометрия, полученной у пациенток с бесплодием, также может способствовать развитию бесплодия [46, 47]. M. Tawfeek и соавт. (2012) предположили, что экспрессия мРНК LIF в эндометрии может быть использована в качестве молекулярного маркера необъяснимого бесплодия [48].

Лептин. Рецептор лептина также участвует в ангиогенезе [49]. Снижение экспрессии противовоспалительных и ангиогенных цитокинов наблюдается у женщин с идиопатическим рецидивирующим самопроизвольным выкидышем [50]. Как показали J. Alfer и соавт. (2000), рецептор лептина (вариант длинной изоформы) отсутствует или недостаточно экспрессируется в эндометрии у пациенток с бесплодием, у которых выявлен аномально тонкий эндометрий [34].

Таким образом, обнаружено, что LIF, VEGF и β 3 интегрин, которые являются маркерными молекулами восприимчивости эндометрия, были недостаточно выражены или полностью отсутствовали в образцах тканей эндометрия у группы пациенток с бесплодием и тонким эндометрием [32]. Хотя эти маркеры первоначально идентифицированы и исследованы независимо друг от друга, они оказывают положительное влияние друг на друга и участвуют в ангиогенезе. Дефицит эндометрия, по-видимому, уже начинается во время пролиферативной фазы, о чем свидетельствует недостаток VEGF и рецептора лептина. Недостаток рассматриваемых маркерных молекул убедительно подтверждает гипотезу о том, что существует нарушенный ангиогенез, приводящий к недостаточной секреторной трансформации и тонкому эндометрию, который обусловливает пониженную частоту имплантации в этой группе пациенток с бесплодием.

G-CSF. Успешная имплантация эмбриона требует сложного взаимодействия между эмбрионом и эндометрием женщины. Основная масса молекулярных факторов вовлечена в этот сложный процесс, в том числе эндометриальные интегрины, молекулы внеклеточного матрикса, молекулы адгезии, факторы роста и ионные каналы [1]. Гранулоцитарный колониестимулирующий фактор (G-CSF) принадлежит к семейству колониестимулирующих факторов (CSF), синтезируемых разными типами клеток (например, это эндотелиальные клетки, фибробласты, макрофаги, лимфоциты) [51]. Доказано, что CSF продуцируются некоторыми органами и тканями репродуктивной системы, такими как яичник [52] и эндометрий [53]. В настоящее время имеется информация о том, что G-CSF играет важную роль для наступления беременности, так, он способствует делению эмбриона и формированию бластоцисты [54], регулирует процессы в эндометрии и имеет решающее значение для имплантации, включая ремоделирование эндометриальных сосудов, локальную иммунную модуляцию и клеточные пути адгезии [55], развитие фолликула и овуляцию [56].

Генетические причины тонкого эндометрия

Исследование R. Maekawa и соавт. (2017) выявило 318 активных генов и 322 подавленных гена в тонком эндометрии по сравнению с контрольным эндометрием [57]. Анализ показал, что тонкий эндометрий обладает аберрантно активированным иммунитетом и цитотоксичностью природных клеток-киллеров, что сопровождается повышенным уровнем воспалительных цитокинов, таких как интерферон-γ. Различные гены, которые связаны с метаболизмом и антиоксидантным стрессом, подавлены в тонком эндометрии. Авторы сделали вывод, что неудача имплантации в тонком эндометрии, по-видимому, связана с аберрантно активированной воспалительной средой и со сниженной реакцией на окислительный стресс. Эти измененные молекулярные механизмы в тонком эндометрии могут быть причиной ошибок имплантации [57].

A. Le и соавт. (2013) предположили потенциальную роль полиморфизма гена рецептора эстрогенов в этиологии идиопатического атрофического эндометрия. Они обнаружили, что распределение аллеля R полиморфизма RsaI у пациенток с идиопатическим тонким эндометрием составило 37,1% — по сравнению с 48,3% в контрольной группе. В обеих группах не обнаружено существенной разницы в генотипе AluI полиморфизма. Нарушение равновесия сцепления между гаплоидами RsaI и AluI не было статистически значимым ни в одной группе со значениями D’0,2036 и 0,0685 у пациенток с идиопатическим тонким эндометрием и у пациенток группы контроля соответственно [58].

Заключение

Таким образом, несмотря на многолетние исследования, посвященные проблеме тонкого эндометрия в программах вспомогательных репродуктивных технологий, на данный момент отсутствует точное определение данного понятия, не сформулированы однозначные представления о взаимосвязи толщины эндометрия и его рецептивности. Патогенез неудач имплантации эмбриона при тонком эндометрии является мультифакториальным и до конца не изученным, что указывает на необходимость дальнейших исследований в данной области. Вопрос о тактике ведения пациенток с тонким эндометрием является одним из самых актуальных в современной репродуктивной медицине и будет подробно раскрыт в следующей статье.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Davidson LM, Coward K. Molecular mechanisms of membrane interaction at implantation. Birth Defects Research. Part C, Embryo Today: Reviews. 2016;108(1):19-32.  https://doi.org/10.1002/bdrc.21122
  2. Cha J, Sun X, Dey SK. Mechanisms of implantation: strategies for successful pregnancy. Nature Medicine. 2012;18(12):1754-1767. https://doi.org/10.1038/nm.3012
  3. Simon A, Laufer N. Repeated implantation failure: clinical approach. Fertility and Sterility. 2012;97(5):1039-1043. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2012.03.010
  4. Wilcox AJ, Baird DD, Weinberg CR. Time of Implantation of the Conceptus and Loss of Pregnancy. New English Journal of Medicine. 1999;340(23):1796-1799. https://doi.org/10.1056/NEJM199906103402304
  5. Cakmak H, Taylor HS. Implantation failure: molecular mechanisms and clinical treatment. Human Reproduction Update. 2012; 17(2):242-253.  https://doi.org/10.1093/humupd/dmq037
  6. Edwards RG. Human implantation: the last barrier in assisted reproduction technologies? Reproduction Biomedicine Online. 2006; 13(6):887-904.  https://doi.org/10.1016/s1472-6483(10)61039-5
  7. Liu KE, Hartman M, Hartman A, Luo Z-C, Mahutte N. The impact of a thin endometrial lining on fresh and frozen — thaw IVF outcomes: an analysis of over 40 000 embryo transfers. Human Reproduction. 2018;33(10):1883-1888. https://doi.org/10.1093/humrep/dey281
  8. Wu Y, Gao X, Lu X, Xi J, Jiang S, Sun Y, Xi X. Endometrial thickness affects the outcome of in vitro fertilization and embryo transfer in normal responders after GnRH antagonist administration. Reproductive Biology and Endocrinology. 2014;12:96.  https://doi.org/10.1186/1477-7827-12-96
  9. Bu Z, Sun Y. The impact of endometrial thickness on the day of human chorionic gonadotrophin (hCG) administration on ongoing pregnancy rate in patients with different ovarian response. Public Library of Science One. 2015;10(12):e0145703. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0145703
  10. Liu KE, Hartman M, Hartman A. Management of thin endometrium in assisted reproduction: a clinical practice guideline from the Canadian Fertility and Andrology Society. Reproductive Biomedicine Online. 2019;39(1):49-62.  https://doi.org/10.1016/j.rbmo.2019.02.013
  11. Zhao J, Huang G, Sun H, et al. Chinese expert consensus on diagnosis and management of abnormal endometrium in assisted reproductive technology. Journal of Reproductive Medicine. 2018;27: 1057-1064.
  12. Kasius A, Smit JG, Torrance HL, Eijkemans MJ, Mol BW, Opmeer BC, Broekmans FJM. Endometrial thickness and pregnancy rates after IVF: A systematic review and meta-analysis. Human Reproduction Update. 2014;20(4):530-541.  https://doi.org/10.1093/humupd/dmu011
  13. Check JH, Dietterich C, Check ML, Katz Y. Successful delivery despite conception with a maximal endometrial thickness of 4 mm. Clinical and Experemental Obstetrics and Gynecology. 2003;30(2-3): 93-94. 
  14. Sundström P. Establishment of a successful pregnancy following in-vitro fertilization with an endometrial thickness of no more than 4 mm. Human Reproduction. 1998;13(6):1550-1552. https://doi.org/10.1093/humrep/13.6.1550
  15. Holden EC, Dodge LE, Sneeringer R, Moragianni VA, Penzias AS, Hacker MR. Thicker endometrial linings are associated with better IVF outcomes: a cohort of 6331 women. Human Fertility Cambridge. 2018;21(4):298-293.  https://doi.org/10.1080/14647273.2017.1334130
  16. Craciunas L, Gallos I, Chu J, Bourne T, Quenby S, Brosens JJ, Coomarasamy A. Conventional and modern markers of endometrial receptivity: a systematic review and meta-analysis. Human Reproduction Update. 2019;25(2):202-223.  https://doi.org/10.1093/humupd/dmy044
  17. Gallos ID, Khairy M, Chu J, Rajkhowa M, Tobias A, Campbell A, Dowell K, Fishel S, Coomarasamy A. Optimal endometrial thickness to maximize live births and minimize pregnancy losses: Analysis of 25,767 fresh embryo transfers. Reproductive BioMedicine Online. 2018;37(5):542-548.  https://doi.org/10.1016/j.rbmo.2018.08.025
  18. Bu Z, Wang K, Dai W, Sun Y. Endometrial Thickness Significantly Affects Clinical Pregnancy and Live Birth Rates in Frozen-Thawed Embryo Transfer Cycles. Gynecology and Endocrinology. 2016;32(7): 524-528.  https://doi.org/10.3109/09513590.2015.1136616
  19. Simón C, Gómez C, Cabanillas S, Vladimirov I, Castillón G, Giles J, Boynukalin K, Findikli N, Bahçeci M, Ortega I, Vidal C, Funabiki M, Izquierdo A, López L, Portela S, Frantz N, Kulmann M, Taguchi S, Labarta E, Colucci F, Mackens S, Santamaría X, Muñoz E,. Barrera S, García-Velasco JA, Fernández M, Ferrando M, Ruiz M, Mol BW, Valbuena D; ERA-RCT Study Consortium Group. A 5-year multicentre randomized controlled trial comparing personalized, frozen and fresh blastocyst transfer in IVF. Reproductive Biomedicine Online. 2020;41(3):402-415. 
  20. Mahajan N. Endometrial receptivity array: Clinical application. Journal of Human Reproductive Sciences. 2015;8(3):121-129.  https://doi.org/10.4103/0974-1208.165153
  21. Bassil R, Casper R, Samara N, Hsieh TB, Barzilay E, Orvieto R, Haas J. Does the endometrial receptivity array really provide personalized embryo transfer? Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2018;35(7):1301. https://doi.org/10.1007/s10815-018-1190-9
  22. Mahajan N, Sharma S. The endometrium in assisted reproductive technology: How thin is thin? Journal of Human Reproductive Sciences. 2016;9(1):3-8.  https://doi.org/10.4103/0974-1208.178632
  23. Bonilla-Musoles F, Raga F, Osborne NG, Castillo JC, Bonilla F. Endometrial receptivity: Evaluation with ultrasound. Ultrasound Quarterly. 2013;29(1):3-20.  https://doi.org/10.1097/RUQ.0b013e318281b60a
  24. Barker MA, Boehnlein LM, Kovacs P, Lindheim SR. Follicular and luteal phase endometrial thickness and echogenic pattern and pregnancy outcome in oocyte donation cycles. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2009;26(5):243-249.  https://doi.org/10.1007/s10815-009-9312-z
  25. Bosch E, Broer S, Griesinger G, Grynberg M, Humaidan P, Kolibianakis E, Kunicki M, La Marca A, Lainas G, Le Clef N, Massin N, Mastenbroek S, Polyzos N, Sunkara S, Timeva T, Töyli M, Urbancsek J, Vermeulen N, Broekmans F. Guideline of the European Society of Human Reproduction and Embryology. Ovarian stimulation for IVF/ICSI. Human Reproduction Open. 2020;2020(2): hoaa009. https://doi.org/10.1093/hropen/hoaa009
  26. Puente E, Alonso L, Laganà AS, Ghezzi F, Casarin J, Carugno J. Chronic Endometritis: Old Problem, Novel Insights and Future Challenges. Fertility and Sterility. 2020;13(4):250-256.  https://doi.org/10.22074/ijfs.2020.5779
  27. Hooker AB, de Leeuw R, van de Ven PM, Bakkum EA, Thurkow AL, Vogel NEA, van Vliet HAAM, Bongers MY, Emanuel MH, Verdonkschot AEM, Brölmann HAM, Huirne JAF. Prevalence of intrauterine adhesions after the application of hyaluronic acid gel after dilatation and curettage in women with at least one previous curettage: short-term outcomes of a multicenter, prospective randomized controlled trial. Fertility and Sterility. 2017;107(5): 1223-1231. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2017.02.113
  28. Strohmer H, Obruca A, Radner KM, Feichtinger W. Relationship of the individual uterine size and the endometrial thickness in stimulated cycles. Fertility and Sterility. 1994;61(5):972-975.  https://doi.org/10.1016/S0015-0282(16)56716-8
  29. Di Spiezio Sardo A, Calagna G, Scognamiglio M, O’Donovan P, Campo R, de Wilde RL. Prevention of intrauterine post-surgical adhesions in hysteroscopy. A systematic review. European Journal of Obstetrics and Gynecology and Reproducrive Biology. 2016;203: 182-192.  https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2016.05.050
  30. Heger A, Sator M, Walch K, Pietrowski D. Smoking Decreases Endometrial Thickness in IVF/ICSI Patients. Geburtshilfe und Frauenheilkunde. 2018;78(1):78-82.  https://doi.org/10.1055/s-0043-123762
  31. Sher G, Herbert C, Maassarani G, Jacobs MH. Assessment of the late proliferative phase endometrium by ultrasonography in patients undergoing in-vitro fertilization and embryo transfer (IVF/ET). Human Reproductive. 1991;6(2):232-237.  https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.humrep.a137312
  32. Alfer J, Happel L, Dittrich R, Beckmann MW, Hartmann A, Gaumann A, Buck VU, Classen-Linke I. Insufficient Angiogenesis: Cause of Abnormally Thin Endometrium in Subfertile Patients? Geburtshilfe und Frauenheilkunde. 2017;77(7):756-764.  https://doi.org/10.1055/s-0043-111899
  33. Lessey BA, Damjanovich L, Coutifaris C, Castelbaum A, Albelda SM, Buck CA. Integrin adhesion molecules in the human endometrium. Correlation with the normal and abnormal menstrual cycle. Journal of Clinical Investigation. 1992;90(1):188-195.  https://doi.org/10.1172/JCI115835
  34. Alfer J, Müller-Schöttle F, Classen-Linke I, von Rango U, Happel L, Beier-Hellwig K, Rath W, Beier HM. The endometrium as a novel target for leptin: differences in fertility and subfertility. Molecular Human Reproduction. 2000;6(7):595-601.  https://doi.org/10.1093/humupd/4.5.539
  35. Kojima K, Kanzaki H, Iwai M, Hatayama H, Fujimoto M, Inoue T, Horie K, Nakayama H, Fujita J, Mori T. Expression of leukemia inhibitory factor in human endometrium and placenta. Biology of Reproduction. 1994;50(4):882-887.  https://doi.org/10.1095/biolreprod50.4.882
  36. Gargett CE, Lederman FL, Lau TM, Taylor NH, Rogers PA. Lack of correlation between vascular endothelial growth factor production and endothelial cell proliferation in the human endometrium. Human Reproduction. 1999;14(8):2080-2088. https://doi.org/10.1093/humrep/14.8.2080
  37. Miller PB, Parnell BA, Bushnell G, Tallman N, Forstein DA, Higdon HL 3rd, Kitawaki J, Lessey BA. Endometrial receptivity defects during IVF cycles with and without letrozole. Human Reproduction. 2012;27(3):881-888.  https://doi.org/10.1093/humrep/der452
  38. Serafini PC, Silva ID, Smith GD, Motta EL, Rocha AM, Baracat EC. Endometrial claudin-4 and leukemia inhibitory factor are associated with assisted reproduction outcome. Reproductive Biology and Endocrinology. 2009;7:30.  https://doi.org/10.1186/1477-7827-7-30
  39. Cascio S, Ferla R, D’Andrea A, Gerbino A, Bazan V, Surmacz E, Russo A. Expression of angiogenic regulators, VEGF and leptin, is regulated by the EGF/PI3K/STAT3 pathway in colorectal cancer cells. Journal of Cellular Physiology. 2009;221(1):189-194.  https://doi.org/10.1002/jcp.21843
  40. Adya R, Tan BK, Randeva HS. Differential effects of leptin and adiponectin in endothelial angiogenesis. Journal of Diabetes Research. 2015;2015:648239. https://doi.org/10.1155/2015/648239
  41. Gonzalez RR, Leavis P. Leptin upregulates beta3-integrin expression and interleukin-1beta, upregulates leptin and leptin receptor expression in human endometrial epithelial cell cultures. Endocrine. 2001;16(1):21-28.  https://doi.org/10.1385/ENDO:16:1:21
  42. Carino C, Olawaiye AB, Cherfils S, Serikawa T, Lynch MP, Rueda BR, Gonzalez RR. Leptin regulation of proangiogenic molecules in benign and cancerous endometrial cells. The International Journal of Cancer. 2008;123(12):2782-2790. https://doi.org/10.1002/ijc.23887
  43. Rosario GX, Hondo E, Jeong JW, Mutalif R, Ye X, Yee LX, Stewart CL. The LIF-mediated molecular signature regulating murine embryo implantation. Biology of Reproduction. 2014;91(3):66.  https://doi.org/10.1095/biolreprod.114.118513
  44. Kim EY, Choi HJ, Chung TW, Choi JY, Kim HS, Jung YS, Lee SO, Ha KT. Water-extracted Perilla frutescens increases endometrial receptivity though leukemia inhibitory factor-dependent expression of integrins. Journal of Pharmacological Science. 2016;131(4):259-266.  https://doi.org/10.1016/j.jphs.2016.07.004
  45. Senger DR, Ledbetter SR, Claffey KP, Papadopoulos-Sergiou A, Peruzzi CA, Detmar M. Stimulation of endothelial cell migration by vascular permeability factor/vascular endothelial growth factor through cooperative mechanisms involving the alphavbeta3 integrin, osteopontin, and thrombin. The American Journal of Pathology. 1996;149(1):293-305. 
  46. Hambartsoumian E. Endometrial leukemia inhibitory factor (LIF) as a possible cause of unexplained infertility and multiple failures of implantation. The American Journal of Reproductive Immunology. 1998;39(2):137-143.  https://doi.org/10.1111/j.1600-0897.1998.tb00345.x
  47. Piccinni MP, Beloni L, Livi C, Maggi E, Scarselli G, Romagnani S. Defective production of both leukemia inhibitory factor and type 2 T-helper cytokines by decidual T cells in unexplained recurrent abortions. Nature Medicine. 1998;4(9):1020-1024. https://doi.org/10.1038/2006
  48. Tawfeek MA, Eid MA, Hasan AM, Mostafa M, El-Serogy HA. Assessment of leukemia inhibitory factor and glycoprotein 130 expression in endometrium and uterine flushing: a possible diagnostic tool for impaired fertility. BMC Womens Health. 2012;12:10.  https://doi.org/10.1186/1472-6874-12-10
  49. Bouloumié A, Drexler HC, Lafontan M, Busse R. Leptin, the product of Ob gene, promotes angiogenesis. Circulation Research. 1998; 83(10):1059-1066. https://doi.org/10.1161/01.res.83.10.1059
  50. Banerjee P, Jana SK, Pasricha P, Ghosh S, Chakravarty B, Chaudhury K. Proinflammatory cytokines induced altered expression of cyclooxygenase-2 gene results in unreceptive endometrium in women with idiopathic recurrent spontaneous miscarriage. Fertility and Sterility. 2013;99(1):179-187.e2.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2012.08.034
  51. Würfel W. Treatment with granulocyte colony-stimulating factor in patients with repetitive implantation failures and/or recurrent spontaneous abortions. Journal of Reproductive Immunology. 2015;108: 123-135.  https://doi.org/10.1016/j.jri.2015.01.010
  52. Zhao Y, Rong H, Chegini N. Expression and selective cellular localization of granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) and GM-CSF alpha and beta receptor messenger ribonucleic acid and protein in human ovarian tissue. Biology of Reproduction. 1995;53(4):923-930.  https://doi.org/10.1095/biolreprod53.4.923
  53. Giacomini G, Tabibzadeh SS, Satyaswaroop PG, Bonsi L, Vitale L, Bagnara GP, Strippoli P, Jasonni VM. Epithelial cells are the major source of biologically active granulocyte macrophage colony-stimulating factor in human endometrium. Human Reproductive. 1995;10(12):3259-3263. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.humrep.a135899
  54. Cai L, Jeon Y, Yoon JD, Hwang SU, Kim E, Park KM, Kim KJ, Jin MH, Lee E, Kim H, Jeung EB, Hyun SH. The effects of human recombinant granulocyte-colony stimulating factor treatment during in vitro maturation of porcine oocyte on subsequent embryonic development. Theriogenology. 2015;84(7):1075-1087. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2015.06.008
  55. Rahmati M, Petitbarat M, Dubanchet S, Bensussan A, Chaouat G, Ledee N. Granulocyte-colony stimulating factor related pathways tested on an endometrial ex vivo model. Public Library of Science One. 2014;9(9):e102286. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0102286
  56. Salmassi A, Schmutzler AG, Schaefer S, Koch K, Hedderich J, Jonat W, Mettler L. Is granulocyte colony-stimulating factor level predictive for human IVF outcome? Human Reproduction. 2005; 20(9):2434-2440. https://doi.org/doi.org/10.1093/humrep/dei071
  57. Maekawa R, Taketani T, Mihara Y, Sato S, Okada M, Tamura I, Jozaki K, Kajimura T, Asada H, Tamura H, Takasaki A, Sugino N. Thin endometrium transcriptome analysis reveals a potential mechanism of implantation failure. Reproductive Medicine and Biology. 2017;16(2):206-227.  https://doi.org/10.1002/rmb2.12030
  58. Le AW, Wang ZH, Yuan R, Shan LL, Xiao TH, Zhuo R, Shen Y. Association of the estrogen receptor-β gene RsaI and AluI polymorphisms with human idiopathic thin endometrium. Genetic and Molecular Research. 2013;12(4):5978-5985. https://doi.org/10.4238/2013.november.26.7

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.