Бибик Е.Е.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии» Минздрава России

Еремкина А.К.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии» Минздрава России

Липатенкова Ю.И.

ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России

Адамян Л.В.

ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России

Мокрышева Н.Г.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии» Минздрава России

Кальций-фосфорный обмен и вспомогательные репродуктивные технологии: точки пересечения

Авторы:

Бибик Е.Е., Еремкина А.К., Липатенкова Ю.И., Адамян Л.В., Мокрышева Н.Г.

Подробнее об авторах

Журнал: Проблемы репродукции. 2024;30(4): 19‑28

Прочитано: 1939 раз


Как цитировать:

Бибик Е.Е., Еремкина А.К., Липатенкова Ю.И., Адамян Л.В., Мокрышева Н.Г. Кальций-фосфорный обмен и вспомогательные репродуктивные технологии: точки пересечения. Проблемы репродукции. 2024;30(4):19‑28.
Bibik EE, Eremkina AK, Lipatenkova YuI, Adamyan LV, Mokrysheva NG. Calcium-phosphorus metabolism and assisted reproductive technologies: intersection points. Russian Journal of Human Reproduction. 2024;30(4):19‑28. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/repro20243004119

Рекомендуем статьи по данной теме:
Псо­ри­аз у бе­ре­мен­ных. Кли­ни­чес­кая дер­ма­то­ло­гия и ве­не­ро­ло­гия. 2024;(5):517-524

Введение

Кальций — один из главных макроэлементов в организме, выполняющий множество функций. Поддержание его гомеостаза обеспечивается разными механизмами, однако к ключевым регуляторам можно отнести паратиреоидный гормон (паратгормон, ПТГ), вырабатываемый околощитовидными железами (ОЩЖ), и витамин D [1]. Поддержание относительно постоянной концентрации кальция во внеклеточной жидкости обусловлено согласованной работой ОЩЖ, кишечника, почек и костной ткани. ПТГ в ответ на снижение уровня кальция крови запускает в почках синтез активной формы витамина D — кальцитриола (1,25(OH)2D), который повышает всасывание минерала в кишечнике. Если поступление кальция превышает потребность организма, секреция ПТГ, напротив, снижается, уменьшается абсорбция макроэлемента в кишечнике, а также усиливается его экскреция с мочой за счет сокращения образования активной формы витамина D. Для быстрого восстановления баланса с внеклеточной жидкостью под действием ПТГ происходит мобилизация кальция из костей за счет стимуляции резорбции костной ткани [1].

Кальцитонин, синтезируемый C-клетками щитовидной железы, наряду с ПТГ и витамином D является кальций-регулирующим агентом. Он выступает антагонистом ПТГ, его секреция стимулируется повышенной концентрацией кальция в сыворотке крови и уменьшается в ответ на гипокальциемию. Основные биологические эффекты кальцитонина — торможение резорбции костей и отложение в них минерализованного кальция, снижение интенсивности всасывания макроэлемента эпителием кишечника и усиление его экскреции в почках [1].

Кальций играет важную роль в функционировании яичников и развитии женской репродуктивной системы, активации яйцеклетки и образовании зиготы, вместе с витамином D обеспечивает рецептивность (восприимчивость) эндометрия [2]. С наступлением беременности в женском организме происходят физиологические изменения регуляции обмена кальция, которые направлены на обеспечение развития плода. Плацентой и молочными железами матери начинают продуцироваться ПТГ-подобные пептиды, почти в 2 раза повышается синтез кальцитриола, а секреция ПТГ у женщины, напротив, снижается. Эти механизмы обеспечивают повышенную абсорбцию кальция в желудочно-кишечном тракте, его реабсорбцию почками, резорбцию костной ткани (на поздних сроках) и транспорт минерала через плаценту [3].

Различные нарушения кальций-фосфорного обмена могут оказывать влияние на фертильность, развитие беременности, состояние женщины и новорожденного, в связи с чем повышение информированности медицинских специалистов, работающих с данной категорией пациентов, остается актуальной задачей.

Роль кальция в наступлении беременности

Кальций играет важную роль в синтезе и секреции нейротрансмиттеров, влияющих на высвобождение гонадотропин-релизинг-гормона (ГнРГ) [4, 5], под контролем которого осуществляется весь женский менструальный цикл [6].

В яичнике кальций обеспечивает развитие фолликулов и созревание ооцитов [7, 8]. Он фигурирует во внутриклеточных сигнальных путях, которые управляют овуляцией, способствуя выходу ооцита из фолликула [9—11]. Кроме того, кальций незаменим во время оплодотворения, поскольку участвует в образовании зиготы [12]. В частности, на этих этапах ионы кальция модулируют высвобождение важных вторичных посредников, включая инозитол трифосфат (ИТФ), циклический аденозин монофосфат (цАМФ) и диацилглицерол (ДАГ), которые необходимы для активации ооцита и его слияния со сперматозоидом [12, 13]. На ранних стадиях эмбрионального развития баланс концентрации кальция имеет решающее значение для правильного клеточного деления и имплантации эмбриона в слизистую оболочку матки [2, 14]. Следовательно, низкий или повышенный уровень кальция может нарушать фертильность и снижать вероятность успешной беременности [15, 16]. Таким образом, для женщин, стремящихся к зачатию, крайне важно поддерживать оптимальный гомеостаз кальция, чтобы обеспечить наиболее благоприятные условия для оплодотворения и развития эмбриона.

Во время беременности количество кальция в эндометрии увеличивается, он накапливается в месте имплантации эмбриона в матку, что является критическим моментом для наступления беременности [17, 18]. Эстроген повышает всасывание кальция и влияет на экспрессию генов HOXA10, LIF в эндометрии, имеющих решающее значение для наступления беременности [17—20]. Результаты исследования R. Zhang и соавт. показывают, что кальций активирует калиевые каналы [21]. Экспрессия этих каналов меняется в течение менструального цикла, что влияет на прикрепление эмбрионов к эндометрию и на экспрессию других факторов, имеющих решающее значение для его восприимчивости. Нарушения в метаболизме кальция, вероятно, могут влиять на фертильность и репродуктивную функцию [2].

Влияние витамина D на фертильность и вынашивание беременности

Беременные относятся к группам риска по развитию недостаточности/дефицита витамина D [22]. Результаты многочисленных исследований свидетельствуют об ассоциации дефицита витамина D с множеством неблагоприятных перинатальных, фетальных и неонатальных исходов: плацентарной недостаточностью, преэклампсией, гестационным сахарным диабетом, синдромом задержки роста плода, низкой массой тела при рождении, повышенным риском аутоиммунных заболеваний. Кроме того, дефицит витамина D может приводить к негативным последствиям для здоровья детей в отсроченном постнатальном периоде [23].

В качестве иммуномодулятора витамин D регулирует экспрессию своего рецептора (VDR) в активированных T-клетках, продукцию T-регуляторных клеток (T-супрессоры, Treg) и Th17 [24]. Treg-клетки необходимы для обеспечения иммунной толерантности и, как следствие, физиологического протекания беременности. У пациенток с привычным невынашиванием наблюдается снижение Treg-клеток и повышение провоспалительных Th17 [25, 26].

Накопленные данные проспективных и когортных исследований показали, что недостаточность или дефицит витамина D могут вносить вклад в патогенез бесплодия как у женщин, так и мужчин. Предполагается, что, прежде всего, это связано с влиянием кальцитриола на первоначальную имплантацию эмбриона путем регулирования иммунных клеток (естественных клеток-киллеров, дендритных клеток, макрофагов и T-клеток) в ткани матки и децидуальной оболочке [27]. В этом контексте особый интерес представляет изучение взаимосвязи между сывороточной концентрацией витамина D и исходами экстракорпорального оплодотворения (ЭКО).

Имеются данные о влиянии витамина D на рецептивность эндометрия. В исследование, опубликованное B. Rudick в 2014 г., были включены 99 женщин, которым планировался перенос эмбриона с использованием донорских ооцитов. Авторы показали, что у реципиентов с достаточным уровнем витамина D (>30 нг/мл) частота наступления беременности была выше, чем в группах с недостаточностью или дефицитом (37% против 78%; p=0,004). В исследовании авторы также оценивали влияние витамина D на структуру эндометрия и сделали вывод, что у женщин, планирующих ЭКО, должен быть достигнут уровень 25(OH D >30 нг/мл [28]. Однако в аналогичном исследовании A. Fabris (2014) подобной взаимосвязи продемонстрировано не было [29].

Показано, что концентрация витамина D в фолликулярной жидкости коррелирует с его уровнем в крови. Однако при оценке количества зрелых ооцитов, частоты оплодотворения и получения эмбрионов «топ-качества» не удалось выявить зависимости этих параметров от уровня витамина D [30]. В проспективном наблюдательном исследовании изучалась взаимосвязь между исходами ЭКО и значением 25(OH)D в фолликулярной жидкости и сыворотке крови у 221 женщины с бесплодием [31]. Частота оплодотворения, связанная со статусом витамина D, составила: 43,2% для женщин с дефицитом витамина D, 53,4% для женщин с недостаточностью витамина D и 58,8% для женщин с его целевым уровнем (p=0,054), а частота имплантации — 17,3, 15,3 и 18,8% соответственно (p=0,579). Статистически значимой корреляции между частотой наступления беременности и уровнями витамина D в сыворотке крови (p=0,094) или фолликулярной жидкости (p=0,170) обнаружено не было. Отсутствие статистически значимой корреляции, вероятно, может быть связано с небольшой долей женщин с достаточным уровнем витамина D (7,2%).

В исследовании S. Butts и соавт. было показано, что уровень витамина D не оказывал влияния на результаты индукции овуляции у женщин с бесплодием неясного генеза. При этом после выделения отдельной подгруппы пациенток с синдромом поликистозных яичников (СПКЯ) у женщин с низкой обеспеченностью витамином D частота живорождения была ниже на 37% [32]. Сопоставимые результаты были получены в другом рандомизированном клиническом исследовании (РКИ). У пациенток с СПКЯ частота наступления беременности была ниже при дефиците витамина D. Кроме того, для этой группы было характерно снижение частоты оплодотворения и получения качественных эмбрионов. В группе женщин, которые исходно имели дефицит витамина D, но получали насыщающие дозы препарата витамина D, была отмечена не только нормализация его уровня, но и повышение количества эмбрионов, пригодных для переноса, в том числе «топ-качества» [33].

В настоящее время опубликовано достаточно большое количество метаанализов, посвященных взаимосвязи витамина D с исходами ЭКО, однако их результаты также остаются неоднозначными. В 2018 г. J. Chu и соавт. опубликовали метаанализ, в который вошли 11 исследований (2052 женщины). Недостаточность витамина D отмечалась у 45,3% пациенток (95% доверительный интервал (ДИ) 42,4—48,5%), дефицит — у 34,6% (95% ДИ 32,0—37,4%). У женщин с нормальным уровнем витамина D беременность наступала в 1,46 раза чаще (95% ДИ 1,05—2,02). Данные по исходам беременности были доступны в 6 исследованиях. При их анализе было показано, что частота живорождения при нормальном уровне витамина D была выше в 1,33 раза (95% ДИ 1,08—1,65%). При этом частота невынашивания беременности в обеих группах была сопоставима [34]. В другой работе первичные результаты показали, что у женщин с оптимальным уровнем 25(OH)D по сравнению с женщинами с дефицитом или недостаточностью витамина D наблюдались более высокие показатели наступления беременности, а также коэффициента продолжающейся беременности и живорождения [35]. Однако после анализа чувствительности эти различия не достигли статистической значимости. Кроме того, группы не отличались по частоте выкидышей.

Недавно опубликованный метаанализ X. Meng и соавт. с включением 9 РКИ и 3 когортных исследований показал, что у бесплодных женщин, получавших витамин D, частота клинической беременности увеличивалась по сравнению с контрольной группой (отношение шансов 1,70, 95% ДИ 1,24—2,34; I2=63%, p=0,001). Однако частота имплантации, биохимической беременности, выкидыша и многоплодной беременности значимо не различалась. На улучшение показателей клинической беременности в группе вмешательства влияли исходный уровень 25(OH)D, тип препарата, общая и ежедневная доза препарата, продолжительность и частота приема препаратов витамина D. Длительный прием препарата в течение 30–60 дней также способствовал лучшим исходам беременности [36]. В то же время в работе A. Eller и соавт. с включением 18 исследований положительная корреляция между уровнями витамина D в сыворотке крови и эффективностью ЭКО была показана лишь в 5 из них. В 12 работах такие ассоциации отсутствовали, и, более того, в 1 работе были показаны обратные взаимосвязи. Также был сделан интересный вывод о некоторых этнических различиях, в частности о том, что европейцы неиспаноязычного происхождения в большей степени подвержены негативным эффектам дефицита витамина D в отношении репродуктивной функции по сравнению с представителями азиатской расы. Только в 1 исследовании в группе с дефицитом витамина D наблюдались большее количество естественных киллеров, B-клеток, большая доля Th/T-цитотоксических T-клеток и ассоциация с меньшим количеством Th/цитотоксических T-клеток [37].

Исследование, охватывающее более 300 пациенток из российской популяции, проходивших лечение бесплодия с применением разных методов, продемонстрировало прямую связь между уровнем витамина D в сыворотке крови и увеличением эффективности программ ЭКО в циклах без стимуляции овуляции при переносе криоконсервированных/размороженных эмбрионов. Наибольшая частота успешной имплантации и наступления беременности определялась в группе с нормальным уровнем витамина D (73,9%). Средний уровень витамина D был достоверно выше в каждой из групп, в которой наблюдалась клиническая беременность, в сравнении с группами, где беременность не наступила. У женщин со стимулированным циклом прослеживалась обратная связь между нормальным уровнем витамина D в крови и эффективностью ЭКО, в частности между успешной имплантацией и наступлением клинической беременности, но полученные данные не достигли статистической значимости. Возможно, более низкая эффективность стимулированных циклов и нарушение связи между наступлением беременности и уровнем витамина D в таких циклах может быть связана с негативным влиянием стимуляции на функции витамина и, как следствие, с уменьшением частоты имплантации эмбриона и в целом эффективности программ вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ). Предполагается, что происходит блокировка VDR при суперфизиологических концентрациях эстрадиола и прогестерона при стимуляции во время фолликулярной фазы [38]. В другой отечественной работе с включением 100 женщин с бесплодием, обратившихся для проведения ВРТ, показана тенденция к повышению частоты ранних репродуктивных потерь у пациенток с недостаточностью (26,3%) и дефицитом витамина D (66,7%) по сравнению с группой с его оптимальным уровнем (13,6%). При проведении многофакторного анализа на частоту наступления беременности влияли дефицит витамина D и наличие полиморфизма гена VDR (аллель G (FOKI-rs2228570)) [39].

Вспомогательные репродуктивные технологии при первичном гиперпаратиреозе

Первичный гиперпаратиреоз (ПГПТ) — эндокринное заболевание, характеризующееся избыточной секрецией ПТГ при верхне-нормальном или повышенном уровне кальция в крови вследствие первичной опухолевой патологии ОЩЖ [40].

ПГПТ относится к одним из наиболее распространенных эндокринных заболеваний [41]. На долю первичной патологии ОЩЖ, диагностированной во время беременности, по данным литературы, приходится около 0,05—1,4% всех случаев ПГПТ [42, 43]. Однако истинная распространенность остается неизвестной. Чаще всего в этот период симптомы заболевания неспецифичны [44], а определение показателей кальций-фосфорного обмена, к сожалению, пока не входит в рутинные скрининговые мероприятия [45].

К настоящему времени данных об отрицательном влиянии ПГПТ на репродуктивную функцию нет. Однако нарушения обмена кальция значимо сказываются на течении беременности. С учетом повышенных рисков осложнений разной степени тяжести со стороны как матери, так и плода/новорожденного рекомендовано хирургическое лечение ПГПТ до наступления беременности [46].

ПГПТ в молодом возрасте может являться одним из компонентов генетически детерминированных синдромов (5—10% всех случаев заболевания ОЩЖ), среди которых наиболее часто встречается синдром множественной эндокринной неоплазии 1-го типа (МЭН-1). МЭН-1 (синдром Вермера) классически проявляется сочетанным возникновением опухолей или гиперплазии ОЩЖ (в 90% случаев), нейроэндокринных новообразований поджелудочной железы (в 30—70%) и передней доли гипофиза (в 30—40%). Пенетрантность компонентов синдрома увеличивается с возрастом. Реже диагностируются опухоли коры надпочечников, нейроэндокринные новообразования тимуса, бронхов, ангиофибромы лица, коллагеномы, липомы и другие образования [47]. Частота МЭН-1 составляет 1 случай на 30 тыс. населения. Основой формирования синдрома является мутация в гене MEN1, расположенном в длинном плече хромосомы 11 (11q13). Белок менин, кодируемый данным геном, в основном выполняет роль онкосупрессора и обеспечивает контроль клеточного цикла [48]. Компонентом синдрома с наиболее высокой пенетрантностью является именно ПГПТ. В отличие от спорадической формы заболевания для ПГПТ в рамках МЭН-1 характерны ранняя манифестация (до 40 лет) и полигландулярное поражение ОЩЖ [47].

Исследование, проведенное среди жителей Австралийского острова Тасмания, продемонстрировало отсутствие влияния синдрома МЭН-1 на фертильность. При сравнении родителей с наличием и без мутации MEN1 доля мертворожденных была сопоставима; при этом среднее число детей и доля живорожденных на 1 родителя с МЭН-1 были даже выше. Репродуктивный потенциал был нарушен только в подгруппе пациентов с патологией гипофиза [49].

Поскольку МЭН-1 имеет аутосомно-доминантное наследование и риск передачи мутации потомству составляет 50%, разрабатываются новые подходы прегравидарной подготовки. В частности, преимплантационная генетическая диагностика позволяет отобрать здоровые эмбрионы и повысить вероятность успешной беременности среди пациентов, являющихся носителями моногенных заболеваний. Описано клиническое наблюдение успешной преимплантационной генетической диагностики с рождением здорового младенца у пары, в которой мужчина являлся носителем гетерозиготной мутации в гене MEN1 [50]. Супружеская пара прошла цикл контролируемой стимуляции яичников и ИКСИ (Intracytoplasmic sperm injection, ICSI). Эмбрионы забирали на стадии бластоцисты и подвергали криоконсервации; для прегравидарной диагностики использовали анализ ДНК на основе полимеразной цепной реакции. Только в 1 из 5 эмбрионов, проходивших скрининг, не было обнаружено мутации MEN1. Этот эмбрион был разморожен и после подготовки эндометрия перенесен в полость матки женщины. После положительного теста на хорионический гонадотропин человека-β клиническая беременность была подтверждена с помощью ультразвукового исследования, впоследствии родился здоровый ребенок. Представленный вариант протокола остается спорным для носителей мутаций MEN1 женского пола, поскольку стимуляция яичников в рамках ЭКО потенциально может приводить к прогрессированию опухолевого процесса. Тем не менее остается возможность применения данного подхода при суррогатном материнстве.

Вспомогательные репродуктивные технологии при хроническом гипопаратиреозе

Гипопаратиреоз (гипоПТ) — состояние, характеризующееся сниженной продукцией ПТГ в ОЩЖ или резистентностью тканей к его действию, что приводит к различным нарушениям, прежде всего фосфорно-кальциевого обмена. Основной этиологией гипоПТ является повреждение или удаление ОЩЖ во время хирургического вмешательства на органах шеи (около 75% всех случаев) [51].

В современной литературе также отсутствует информация о серьезных фертильных проблемах, вызванных самим гипоПТ. При соблюдении режима лечения и адекватном динамическом контроле наиболее вероятным исходом беременности является рождение здорового ребенка [52—54]. Самое крупное исследование по этой теме проведено в Швеции с участием 97 беременных женщин с хроническим гипоПТ и контрольной группы, включающей 1030 беременных того же возраста. Была выявлена значимо более высокая частота сахарного диабета и хронической болезни почек у пациенток по сравнению с контролем [52]. По данным многофакторного анализа, хронический гипоПТ был связан с более высоким риском преждевременных родов и несколько меньшей массой тела новорожденных, других неблагоприятных исходов беременности не наблюдалось.

Особой группой являются наследственные формы хронического гипоПТ в составе генетических синдромов. По результатам мультицентрового исследования с участием 43 женщин с аутоиммунным полиэндокринным синдромом (АПС) 1-го типа (всего 83 беременности, средний возраст пациенток 27 лет (от 17 до 39 лет)), 72% беременностей закончились родами, в том числе 5 (6,0%) преждевременных родов и 2 (2,4%) мертворождения. Пять (6,0%) беременностей развились при использовании донорских яйцеклеток. Выкидыши, искусственные аборты и внематочная беременность наблюдались в 14 (17%), 8 (10%) и 1 (1,2%) случае соответственно. Возраст матери, преждевременная недостаточность яичников, первичная надпочечниковая недостаточность и гипоПТ не ассоциировались с выкидышами. У женщин с благополучными исходами беременности в среднем наблюдалось 4 компонента АПС (0—10), при этом гипоПТ диагностирован у 78%, первичная надпочечниковая недостаточность — у 36%. На протяжении беременности проявления АПС 1-го типа в основном оставались стабильными, однако в 1 случае отмечена манифестация первичной надпочечниковой недостаточности в виде гипоадреналового криза, что привело к мертворождению. Масса тела при рождении была нормальной у более чем 80% детей. За исключением одной неонатальной смерти недоношенного младенца, серьезных перинатальных осложнений не зафиксировано [54].

ГипоПТ может также наблюдаться при аномалиях 22-й хромосомы (в 90% микроделеции 22q11.2) — синдроме ДиДжорджи (DiGeorge syndrome), который является следствием дефекта структур, происходящих из 3-й и 4-й жаберных дуг [55]. Характерными особенностями таких пациентов являются дисморфизм лицевого черепа, гипо- или аплазия тимуса, гипо- или аплазия ОЩЖ и конотрункальные пороки сердца. В 90% случаев причина синдрома — хромосомная мутация, возникшая de novo. Примерно от 6 до 10% случаев заболевания являются семейными, когда один из родителей, обычно с неяркими клиническими проявлениями, может быть носителем делеции 22q11, риск передачи мутации при этом составляет 50%. Ранняя диагностика синдрома позволяет не только провести преморбидную оценку и своевременное вмешательство по медицинским показаниям, но и соответствующее семейное консультирование и тестирование.

Показаниями к пренатальной диагностике синдрома ДиДжорджи являются наличие у родителя или ребенка микроделеции 22q11.2 или подозрительные результаты пренатального скрининга. Окончательный диагноз устанавливается после генетического тестирования ворсин хориона или амниона с использованием хромосомного микрочипа. Скрининг проводится в виде неинвазивного пренатального генетического скрининга (NIPS) и ультразвуковой визуализации характерных признаков (аномалии развития выносящих сосудов сердца, реже аномалии скелета, мочевыводящей системы, гипоплазия тимуса, задержка внутриутробного развития, многоводие и др.). NIPS доступен с 10-й недели гестации, чувствительность метода составляет 70—83%, а положительная прогностическая ценность — 40—50% для большинства связанных микроделеций 22q11.2 [56].

Еще одно редкое генетическое заболевание, ассоциированное с нарушением кальций-фосфорного обмена, — псевдогипопаратиреоз (ПГП). Оно обусловлено мутацией в гене GNAS, кодирующем α-субъединицу G-белка, одного из ключевых трансмиттеров внутриклеточных сигналов. Для ПГП характерна мультигормональная резистентность, связанная с нарушением передачи сигнала от рецепторов к различным гормонам в клетку ткани-мишени. В настоящее известно несколько типов ПГП, характеризующихся определенными типами мутаций, особенностями наследования и клинического течения [57]. В случае наследования инактивирующей мутации гена GNAS от матери или при возникновении ее de novo на материнской аллели развивается ПГП типа Ia. У таких пациентов отмечаются мультигормональная резистентность и фенотипические особенности: ожирение, брахидактилия, укорочение пальцев за счет IV, V пястных и плюсневых костей, округлое лицо, короткая шея, подкожные кальцификаты, низкорослость, умственная отсталость и др. Нарушение функционирования α-субъединицы G-белка может возникать не только при мутациях в самом гене GNAS, но и при эпигенетических нарушениях, приводящих к ПГП типа Ib. Кроме того, существует ПГП Ic, клинически идентичный ПГП Ia, при котором α-субъединица G-белка оказывает свои эффекты рецептор-независимым путем. Также описан ПГП типа II, при котором резистентность к гормонам обусловлена нарушением других звеньев механизма пострецепторной передачи сигнала, а мутаций в гене GNAS не выявляется [58].

ПГП Ib характеризуется нарушением импринтинга, возникающим в результате потери метилирования материнского гена GNAS, что подавляет транскрипцию α-субъединицы стимулирующего G-белка рецептора ПТГ. Новые данные подтверждают связь между ВРТ и нарушениями импринтинга; однако в настоящее время имеется мало доказательств ассоциации ВРТ именно с ПГП Ib. Тем не менее интерес представляют отдельные клинические случаи. N. Goel и соавт. описали мальчика-близнеца, зачатого в результате ЭКО от родителей, у которых в анамнезе не было случаев бесплодия и отклонений фосфорно-кальциевого обмена. В 12 лет у мальчика были выявлены двустороннее смещение эпифиза головки бедренной кости и двусторонняя вальгусная деформация коленных суставов, при этом другие характерные симптомы для ПГП отсутствовали. Клинические и лабораторные исследования подтвердили повышенный уровень ПТГ, низкий уровень ионизированного кальция, повышенный уровень фосфора, резистентность к тиреотропному гормону и рентгенологические признаки гиперпаратиреоза, что позволило установить ПГП Ib. Наблюдалась частичная потеря метилирования в локусе экзона A/B GNAS. Дизиготный брат-близнец пациента не имел симптомов ПГП, у него наблюдались нормальные лабораторные показатели фосфорно-кальциевого обмена [59].

Еще один случай ПГП Ib, развившийся у ребенка, рожденного в результате ЭКО, представлен M. Fernandez [60]. Здесь также отмечалось спорадическое заболевание с неполной потерей метилирования экзона A/B GNAS. Тот факт, что оба описанных случая являются спорадическими, подтверждает гипотезу о том, что ЭКО могло сыграть роль в возникновении дефекта метилирования.

Как ЭКО, так и ИКСИ связаны с повышенным относительным риском нарушений импринтинга, включая разные генетические синдромы (Беквита—Видемана, Ангельмана и Сильвера—Рассела) [61—63]. Результаты, полученные на животных моделях, подтверждают достоверность биологической причинно-следственной связи между ошибками импринтинга и ЭКО [59, 64]. Также было высказано предположение, что связь между ошибками импринтинга и ЭКО может быть вторичной по отношению к исходным причинам бесплодия или субфертильности, таким как олигоспермия и преклонный возраст матери, и не иметь отношения к манипуляциям, выполняемым в рамках репродуктивных технологий [65, 66]. Возможно, и субфертильность, и ЭКО играют роль в повышенном риске нарушений импринтинга, наблюдаемых в этой популяции [67, 68].

Заключение

Нарушения кальций-фосфорного обмена, метаболизма витамина D могут оказывать влияние на фертильность, течение беременности, состояние женщины, плода и новорожденного. Применение ВРТ позволяет получить здоровое потомство при разных генетических заболеваниях, в том числе связанных с патологией ОЩЖ и нарушениями кальций-фосфорного обмена. Однако использование таких методов само по себе может быть фактором риска для ряда генетических патологий у новорожденных.

Поисково-аналитическая работа по подготовке рукописи проведена в рамках выполнения государственного задания «Хронический послеоперационный и нехирургический гипопаратиреоз: предикторы осложнений заболевания и контроль диагностики, лечения и мониторинга пациентов с использованием систем поддержки принятия врачебных решений» № ЕГИСУ НИОКТР 123021300171-7 при финансовой поддержке Минздрава России.

Участие авторов:

Сбор и обработка материала — Е.Е. Бибик, А.К. Еремкина

Написание текста — Е.Е. Бибик, А.К. Еремкина

Редактирование — Л.В. Адамян, Н.Г. Мокрышева, Ю.И. Липатенкова, Е.Е. Бибик, А.К. Еремкина

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Мокрышева Н.Г. Околощитовидные железы. Первичный гиперпаратиреоз. М.: Медицинское информационное агентство; 2019;448. 
  2. Kapper C, Oppelt P, Ganhör C, Gyunesh AA, Arbeithuber B, Stelzl P, Rezk-Füreder M. Minerals and the Menstrual Cycle: Impacts on Ovulation and Endometrial Health. Nutrients. 2024 Mar;16(7):1008. https://doi.org/10.3390/nu16071008
  3. Kovacs CS. Maternal Mineral and Bone Metabolism During Pregnancy, Lactation, and Post-Weaning Recovery. Physiological Reviews. 2016 Apr;96(2):449-547.  https://doi.org/10.1152/physrev.00027.2015
  4. Sudhof TC. Calcium Control of Neurotransmitter Release. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 2012 Jan;4(1):a011353a011353. https://doi.org/10.1101/cshperspect.a011353
  5. Jasoni CL, Romanò N, Constantin S, Lee K, Herbison AE. Calcium dynamics in gonadotropin-releasing hormone neurons. Frontiers in Neuroendocrinology. 2010 Jul;31(3):259-269.  https://doi.org/10.1016/j.yfrne.2010.05.005
  6. Pitkin RM, Reynolds WA, Williams GA, Hargis GK. Calcium-Regulating Hormones during the Menstrual Cycle. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 1978 Sep;47(3):626-632.  https://doi.org/10.1210/jcem-47-3-626
  7. Silvestre F, Boni R, Fissore RA, Tosti E. Ca2+ signaling during maturation of cumulusoocyte complex in mammals. Molecular Reproduction and Development. 2011 Oct;78(1011):744-756.  https://doi.org/10.1002/mrd.21332
  8. Machaca K. Ca2+ signaling differentiation during oocyte maturation. Journal of Cellular Physiology. 2007 Nov 9;213(2):331-340.  https://doi.org/10.1002/jcp.21194
  9. Martín-Romero FJ, López-Guerrero AM, Álvarez IS, Pozo-Guisado E. Role of Store-Operated Calcium Entry During Meiotic Progression and Fertilization of Mammalian Oocytes. International Review of Cell and Molecular Biology. 2012;295:291-328.  https://doi.org/10.1016/b978-0-12-394306-4.00014-9
  10. Madgwick S, Levasseur M, Jones KT. Calmodulin-dependent protein kinase II, and not protein kinase C, is sufficient for triggering cell-cycle resumption in mammalian eggs. Journal of Cell Science. 2005 Sep;118(17):3849-3859. https://doi.org/10.1242/jcs.02506
  11. Lefèvre B, Pesty A, Courtot AM, Martins CV, Broca O, Denys A, Arnault E, Poirot C, Avazeri N. The Phosphoinositide-Phospholipase C (PI-PLC) Pathway in the Mouse Oocyte. Critical Reviews in Eukaryotic Gene Expression. 2007;17(4):259-269.  https://doi.org/10.1615/critreveukargeneexpr.v17.i4.10
  12. Whitaker M. Calcium at Fertilization and in Early Development. Physiological Reviews. 2006 Jan;86(1):25-88.  https://doi.org/10.1152/physrev.00023.2005
  13. Anifandis G, Michopoulos A, Daponte A, Chatzimeletiou K, Simopoulou M, Messini CI, Polyzos NP, Vassiou K, Dafopoulos K, Goulis DG. Artificial oocyte activation: physiological, pathophysiological and ethical aspects. Systems Biology in Reproductive Medicine. 2019 Jan;65(1):3-11.  https://doi.org/10.1080/19396368.2018.1516000
  14. Chen X, Zhao H, Lv J, Dong Y, Zhao M, Sui X, Cui R, Liu B, Wu K. Calcium ionophore improves embryonic development and pregnancy outcomes in patients with previous developmental problems in ICSI cycles. BMC Pregnancy Childbirth. 2022;22(1):894.  https://doi.org/10.1186/s12884-022-05228-3
  15. Korhonen P, Tihtonen K, Isojärvi J, Ojala R, Ashorn U, Ashorn P, Tammela O. Calcium supplementation during pregnancy and long‐term offspring outcome: a systematic literature review and meta‐analysis. Annals of the New York Academy of Sciences. 2022 Apr;1510(1):36-51.  https://doi.org/10.1111/nyas.14729
  16. Appelman-Dijkstra NM, Ertl DA, Zillikens MC, Rjenmark L, Winter EM. Hypercalcemia during pregnancy: management and outcomes for mother and child. Endocrine. 2021;71(3):604-610.  https://doi.org/10.1007/s12020-021-02615-2
  17. Tong XM, Lin XN, Song T, Liu L, Zhang S. Calcium-binding protein S100P is highly expressed during the implantation window in human endometrium. Fertility and Sterility. 2010 Sep;94(4):1510-1518. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2009.07.1667
  18. Choi Y, Jang H, Seo H, Yoo I, Han J, Kim M, Lee S, Ka H. Changes in calcium levels in the endometrium throughout pregnancy and the role of calcium on endometrial gene expression at the time of conceptus implantation in pigs. Molecular Reproduction and Development. 2019 Jul 8;86(7):883-895.  https://doi.org/10.1002/mrd.23166
  19. Bi Y, Huang W, Yuan L, Chen S, Liao S, Fu X, Liu B, Yang Y. HOXA10 improves endometrial receptivity by upregulating E-cadherin. Biology of Reproduction. 2022;106(5):992-999.  https://doi.org/10.1093/biolre/ioac007
  20. Ahmed M, Nafady A, Taha S, El-Din A, Ali A. Leukemia Inhibitory Factor a Marker of Implantation Success in Unexplained Infertility: a Randomized Controlled Trial. Clinical Laboratory. 2022;68(12). https://doi.org/10.7754/clin.lab.2022.211217
  21. Zhang RJ, Zou LB, Zhang D, Tan YJ, Wang TT, Liu AX, Qu F, Meng Y, Ding GL, Lu YC, Lv PP, Sheng JZ, Huang HF. Functional Expression of Large-Conductance Calcium-Activated Potassium Channels in Human Endometrium: A Novel Mechanism Involved in Endometrial Receptivity and Embryo Implantation. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 2012;97(2):543-553.  https://doi.org/10.1210/jc.2011-2108
  22. Дедов И.И., Мельниченко Г.А., Мокрышева Н.Г., Пигарова Е.А., Поваляева А.А., Рожинская Л.Я., Белая Ж.Е., Дзеранова Л.К., Каронова Т.Л., Суплотова Л.А., Трошина Е.А. Проект федеральных клинических рекомендаций по диагностике, лечению и профилактике дефицита витамина D. Остеопороз и остеопатии. 2021;24(4):4-26.  https://doi.org/10.14341/osteo12937
  23. Kaushal M, Magon N. Vitamin D in pregnancy: A metabolic outlook. Indian Journal of Endocrinology and Metabolism. 2013;17(1):76-82.  https://doi.org/10.4103/2230-8210.107862
  24. Vijayendra Chary A, Hemalatha R, Seshacharyulu M, Vasudeva Murali M, Jayaprakash D, Dinesh Kumar B. Reprint of Vitamin D deficiency in pregnant women impairs regulatory T cell function. The Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. 2015;148:194-201.  https://doi.org/10.1016/j.jsbmb.2015.01.026
  25. Hamzaoui A, Berraïes A, Hamdi B, Kaabachi W, Ammar J, Hamzaoui K. Vitamin D reduces the differentiation and expansion of Th17 cells in young asthmatic children. Immunobiology. 2014;219(11):873-879.  https://doi.org/10.1016/j.imbio.2014.07.009
  26. Christakos S, Dhawan P, Verstuyf A, Verlinden L, Carmeliet G. Vitamin D: Metabolism, Molecular Mechanism of Action, and Pleiotropic Effects. Physiological Reviews. 2016;96(1):365-408.  https://doi.org/10.1152/physrev.00014.2015
  27. Tamblyn JA, Hewison M, Wagner CL, Bulmer JN, Kilby MD. Immunological role of vitamin D at the maternalfetal interface. Journal of Endocrinology. 2015;224(3):107-121.  https://doi.org/10.1530/joe-14-0642
  28. Rudick BJ, Ingles SA, Chung K, Stanczyk FZ, Paulson RJ, Bendikson KA. Influence of vitamin D levels on in vitro fertilization outcomes in donor-recipient cycles. Fertility and Sterility. 2014;101(2):447-452.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2013.10.008
  29. Fabris A, Pacheco A, Cruz M, Puente JM, Fatemi H, Garcia-Velasco JA. Impact of circulating levels of total and bioavailable serum vitamin D on pregnancy rate in egg donation recipients. Fertility and Sterility. 2014;102(6):1608-1612. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2014.08.030
  30. Polyzos NP, Anckaert E, Guzman L, Schiettecatte J, Van Landuyt L, Camus M, Smitz J, Tournaye H. Vitamin D deficiency and pregnancy rates in women undergoing single embryo, blastocyst stage, transfer (SET) for IVF/ICSI. Human Reproduction. 2014;29(9):203-240.  https://doi.org/10.1093/humrep/deu156
  31. Firouzabadi RD, Rahmani E, Rahsepar M, Firouzabadi MM. Value of follicular fluid vitamin D in predicting the pregnancy rate in an IVF program. Archives of Gynecology and Obstetrics. 2014;289(1):201-206.  https://doi.org/10.1007/s00404-013-2959-9
  32. Butts SF, Seifer DB, Koelper N, Senapati S, Sammel MD, Hoofnagle AN, Kelly A, Krawetz SA, Santoro N, Zhang H, Diamond MP, Legro RS; Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Health and Human Development Reproductive Medicine Network. Vitamin D Deficiency Is Associated With Poor Ovarian Stimulation Outcome in PCOS but Not Unexplained Infertility. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 2019;104(2):369-378.  https://doi.org/10.1210/jc.2018-00750
  33. Zhao J, Liu S, Wang Y, Wang P, Qu D, Liu M, Ma W, Li Y. Vitamin D improves in-vitro fertilization outcomes in infertile women with polycystic ovary syndrome and insulin resistance. Minerva Medica. 2019;110(3):199-208.  https://doi.org/10.23736/s0026-4806.18.05946-3
  34. Chu J, Gallos I, Tobias A, Tan B, Eapen A, Coomarasamy A. Vitamin D and assisted reproductive treatment outcome: a systematic review and meta-analysis. Human Reproduction. 2018;33(1):65-80.  https://doi.org/10.1093/humrep/dex326
  35. Cozzolino M, Busnelli A, Pellegrini L, Riviello E, Vitagliano A. How vitamin D level influences in vitro fertilization outcomes: results of a systematic review and meta-analysis. Fertility and Sterility. 2020;114(5):1014-1025. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2020.05.040
  36. Meng X, Zhang J, Wan Q, Huang J, Han T, Qu T, Yu LL. Influence of Vitamin D supplementation on reproductive outcomes of infertile patients: a systematic review and meta-analysis. Reproductive Biology and Endocrinology. 2023;21(1):17.  https://doi.org/10.1186/s12958-023-01068-8
  37. Eller ABP, Ejzenberg D, Monteleone PAA, Soares JMJ, Baracat EC. Vitamin D and in vitro fertilization: a systematic review. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2023;40(4):735-743.  https://doi.org/10.1007/s10815-023-02767-2
  38. Наими З.М.С., Калинина Е.А., Донников А.Е., Алиева К.У. Ассоциация уровня витамина D в крови с исходами программ вспомогательных репродуктивных технологий. Акушерство и Гинекология. 2016;8:93-98.  https://doi.org/10.18565/aig.2016.8.93-98
  39. Сыркашева А.Г., Киндышева С.В., Франкевич В.Е., Донников А.Е., Долгушина Н.В. Ассоциация уровня витамина D и полиморфизма гена VDR с исходами программ вспомогательных репродуктивных технологий. Гинекология. 2022;24(1):303-304.  https://doi.org/10.26442/20795696.2022.1.201245
  40. Дедов И.И., Мельниченко Г.А., Мокрышева Н.Г., Андреева Е.Н., Анциферов М.Б., Бельцевич Д.Г., Бибик Е.Е., Горбачева А.М., Дегтярев М.В., Егшатян Л.В., Еремкина А.К., Каронова Т.Л., Ким И.В., Крупинова Ю.А., Крюкова И.В., Кузнецов Н.С., Лукьянов С.В., Мамедова Е.О., Маркина Н.В., Мирная С.С., Пигарова Е.А., Рожинская Л.Я., Слащук К.Ю., Слепцов И.В., Чагай Н.Б. Проект клинических рекомендаций по диагностике и лечению первичного гиперпаратиреоза у взрослых пациентов. Эндокринная хирургия. 2022;16(4):5-54.  https://doi.org/10.14341/serg12790
  41. Minisola S, Arnold A, Belaya Z, Brandi ML, Clarke BL, Hannan FM, Hofbauer LC, Insogna KL, Lacroix A, Liberman U, Palermo A, Pepe J, Rizzoli R, Wermers R, Thakker RV. Epidemiology, Pathophysiology, and Genetics of Primary Hyperparathyroidism. Journal of Bone and Mineral Research. 2022;37(11):2315-2329. https://doi.org/10.1002/jbmr.4665
  42. Ali DS, Dandurand K, Khan AA. Primary Hyperparathyroidism in Pregnancy: Literature Review of the Diagnosis and Management. Journal of Clinical Medicine. 2021;10(13):2956. https://doi.org/10.3390/jcm10132956
  43. Мокрышева Н.Г., Липатенкова А.К., Таллер Н.А. Первичный гиперпаратиреоз и беременность. Акушерство и Гинекология. 2016;10:18-25.  https://doi.org/10.18565/aig.2016.10.18-25
  44. Schnatz PF, Curry SL. Primary hyperparathyroidism in pregnancy: evidence-based management. Obstetrical and Gynecological Survey. 2002;57(6):365-376.  https://doi.org/10.1097/00006254-200206000-00022
  45. Приказ Минздрава России от 20.10.2020 N1130н «Об утверждении Порядка оказания медицинской помощи по профилю «акушерство и гинекология».
  46. Bollerslev J, Rejnmark L, Zahn A, Heck A, Appelman-Dijkstra NM, Cardoso L, Hannan FM, Cetani F, Sikjær T, Formenti AM, Björnsdottir S, Schalin-Jantti C, Belaya Z, Gibb FW, Lapauw B, Amrein K, Wicke C, Grasemann C, Krebs M, Ryhänen EM, Makay O, Minisola S, Gaujoux S, Bertocchio JP, Hassan-Smith ZK, Linglart A, Winter EM, Kollmann M, Zmierczak HG, Tsourdi E, Pilz S, Siggelkow H, Gittoes NJ, Marcocci C, Kamenicky P; 2021 PARAT Working Group. European Expert Consensus on Practical Management of Specific Aspects of Parathyroid Disorders in Adults and in Pregnancy: Recommendations of the ESE Educational Program of Parathyroid Disorders. European Journal of Endocrinology. 2022;186(2):33-63.  https://doi.org/10.1530/eje-21-1044
  47. Kamilaris CDC, Stratakis CA. Multiple Endocrine Neoplasia Type 1 (MEN1): An Update and the Significance of Early Genetic and Clinical Diagnosis. Frontiers in Endocrinology (Lausanne). 2019;10:339.  https://doi.org/10.3389/fendo.2019.00339
  48. Matkar S, Thiel A, Hua X. Menin: a scaffold protein that controls gene expression and cell signaling. Trends Biochemical Sciences. 2013;38(8):394-402.  https://doi.org/10.1016/j.tibs.2013.05.005
  49. Thompson M, Burgess J. No evidence of adverse fertility and pregnancy outcomes in patients with unrecognized and untreated multiple endocrine neoplasia type 1. Clinical Endocrinology (Oxford). 2019;90(2):312-319.  https://doi.org/10.1111/cen.13890
  50. Lima AD, Alves VR, Rocha AR, Martinhago AC, Martinhago C, Donadio N, Dzik A, Cavagna M, Gebrim LH. Preimplantation genetic diagnosis for a patient with multiple endocrine neoplasia type 1: case report. JBRA Assisted Reproduction. 2018;22(1):67-70.  https://doi.org/10.5935/1518-0557.20180010
  51. Ковалева Е.В., Еремкина А.К., Крупинова Ю.А., Мирная С.С., Ким И.В., Кузнецов Н.С., Андреева Е.Н., Каронова Т.Л., Крюкова И.В., Мудунов А.М., Слепцов И.В., Мельниченко Г.А., Мокрышева Н.Г., Дедов И.И. Обзор клинических рекомендаций по гипопаратиреозу. Проблемы эндокринологии. 2021;67(4):68-83.  https://doi.org/10.14341/probl12800
  52. Björnsdottir S, Clarke B, Mäkitie O, Sandström A, Tiblad E, Spelman T, Kämpe O. Women With Chronic Hypoparathyroidism Have Low Risk of Adverse Pregnancy Outcomes. Journal of Pediatric Endocrinology and Metabolism. 2021;106(11):3312-3319. https://doi.org/10.1210/clinem/dgab503
  53. Marcucci G, Altieri P, Benvenga S, Bondanelli M, Camozzi V, Cetani F, Cianferotti L, Duradoni M, Fossi C, Degli Uberti E, Famà F, Mantovani G, Marcocci C, Masi L, Pagotto U, Palermo A, Parri S, Ruggeri RM, Zatelli MC, Brandi ML. Hypoparathyroidism and pseudohypoparathyroidism in pregnancy: an Italian retrospective observational study. Orphanet Journal of Rare Rare Diseases. 2021;16(1):421.  https://doi.org/10.1186/s13023-021-02053-3
  54. Laakso S, Holopainen E, Betterle C, Saari V, Vogt E, Schmitt MM, Winer KK, Kareva M, Sabbadin C, Husebye ES, Orlova E, Lionakis MS, Mäkitie O. Pregnancy Outcome in Women With APECED (APS-1): A Multicenter Study on 43 Females With 83 Pregnancies. Journal of Pediatric Endocrinology and Metabolism. 2022;107(2):528-537.  https://doi.org/10.1210/clinem/dgab705
  55. Goldmuntz E. DiGeorge Syndrome: New Insights. Clinics in Perinatology. 2005;32(4):963-978.  https://doi.org/10.1016/j.clp.2005.09.006
  56. Blagowidow N, Nowakowska B, Schindewolf E, Grati FR, Putotto C, Breckpot J, Swillen A, Crowley TB, Loo JCY, Lairson LA, Óskarsdóttir S, Boot E, Garcia-Minaur S, Cristina Digilio M, Marino B, Coleman B, Moldenhauer JS, Bassett AS, McDonald-McGinn DM. Prenatal Screening and Diagnostic Considerations for 22q11.2 Microdeletions. Genes (Basel). 2023;14(1):160.  https://doi.org/10.3390/genes14010160
  57. Mantovani G. Clinical review: Pseudohypoparathyroidism: diagnosis and treatment. Journal of Pediatric Endocrinology and Metabolism. 2011;96(10):3020-3030. https://doi.org/10.1210/jc.2011-1048
  58. Mantovani G, Bastepe M, Monk D, de Sanctis L, Thiele S, Usardi A, Ahmed SF, Bufo R, Choplin T, De Filippo G, Devernois G, Eggermann T, Elli FM, Freson K, García Ramirez A, Germain-Lee EL, Groussin L, Hamdy N, Hanna P, Hiort O, Jüppner H, Kamenický P, Knight N, Kottler ML, Le Norcy E, Lecumberri B, Levine MA, Mäkitie O, Martin R, Martos-Moreno GÁ, Minagawa M, Murray P, Pereda A, Pignolo R, Rejnmark L, Rodado R, Rothenbuhler A, Saraff V, Shoemaker AH, Shore EM, Silve C, Turan S, Woods P, Zillikens MC, Perez de Nanclares G, Linglart A. Diagnosis and management of pseudohypoparathyroidism and related disorders: first international Consensus Statement. Nature Reviews Endocrinology. 2018;14(8):476-500.  https://doi.org/10.1038/s41574-018-0042-0
  59. Goel NJ, Meyers LL, Frangos M. Pseudohypoparathyroidism type 1B in a patient conceived by in vitro fertilization: another imprinting disorder reported with assisted reproductive technology. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2018;35(6):975-979.  https://doi.org/10.1007/s10815-018-1129-1
  60. Fernandez M, Zambrano MJ, Riquelme J, Castiglioni C, Kottler ML, Jüppner H, Mericq V. Pseudohypoparathyroidism type 1B associated with assisted reproductive technology. Journal of Pediatric Endocrinology and Metabolism. 2017;30(10):1125-1132. https://doi.org/10.1515/jpem-2017-0226
  61. Mussa A, Molinatto C, Cerrato F, Palumbo O, Carella M, Baldassarre G, Carli D, Peris C, Riccio A, Ferrero GB. Assisted Reproductive Techniques and Risk of Beckwith-Wiedemann Syndrome. Pediatrics. 2017;140(1):e20164311. https://doi.org/10.1542/peds.2016-4311
  62. Manipalviratn S, DeCherney A, Segars J. Imprinting disorders and assisted reproductive technology. Fertility and Sterility. 2009;91(2):305-315.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2009.01.002
  63. Amor DJ, Halliday J. A review of known imprinting syndromes and their association with assisted reproduction technologies. Human Reproduction. 2008;23(12):2826-2834. https://doi.org/10.1093/humrep/den310
  64. de Waal E, Vrooman LA, Fischer E, Ord T, Mainigi MA, Coutifaris C, Schultz RM, Bartolomei MS. The cumulative effect of assisted reproduction procedures on placental development and epigenetic perturbations in a mouse model. Human Molecular Genetics. 2015;24(24):697585. https://doi.org/10.1093/hmg/ddv400
  65. Hiura H, Okae H, Miyauchi N, Sato F, Sato A, Van De Pette M, John RM, Kagami M, Nakai K, Soejima H, Ogata T, Arima T. Characterization of DNA methylation errors in patients with imprinting disorders conceived by assisted reproduction technologies. Human Reproduction. 2012;27(8):2541-2548. https://doi.org/10.1093/humrep/des197
  66. Marques CJ, Carvalho F, Sousa M, Barros A. Genomic imprinting in disruptive spermatogenesis. Lancet. 2004;363(9422):1700-1702. https://doi.org/10.1016/s0140-6736(04)16256-9
  67. Doornbos ME, Maas SM, McDonnell J, Vermeiden JPW, Hennekam RCM. Infertility, assisted reproduction technologies and imprinting disturbances: a Dutch study. Human Reproduction. 2007;22(9):247680. https://doi.org/10.1093/humrep/dem172
  68. Hiura H, Okae H, Chiba H, Miyauchi N, Sato F, Sato A, Arima T. Imprinting methylation errors in ART. Reproductive Medicine and Biology. 2014;13(4):193-202.  https://doi.org/10.1007/s12522-014-0183-3

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.