Степанов И.А.

ФГБОУ ВО «Иркутский государственный медицинский университет» Минздрава России

Белобородов В.А.

ФГБОУ ВО «Иркутский государственный медицинский университет» Минздрава России

Шамеева М.А.

ФГБОУ ВО «Иркутский государственный медицинский университет» Минздрава России

Преодоление гематоэнцефалического барьера как фактор повышения эффективности лекарственной терапии глиобластомы

Авторы:

Степанов И.А., Белобородов В.А., Шамеева М.А.

Подробнее об авторах

Прочитано: 2623 раза


Как цитировать:

Степанов И.А., Белобородов В.А., Шамеева М.А. Преодоление гематоэнцефалического барьера как фактор повышения эффективности лекарственной терапии глиобластомы. Онкология. Журнал им. П.А. Герцена. 2023;12(2):56‑65.
Stepanov IA, beloborodov VA, Shameeva MA. Overcoming the blood-brain barrier as a factor for increasing the efficiency of drug therapy for glioblastoma. P.A. Herzen Journal of Oncology. 2023;12(2):56‑65. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/onkolog20231202156

Рекомендуем статьи по данной теме:
Те­ра­пев­ти­чес­кий по­тен­ци­ал квер­це­ти­на и его про­из­вод­ных про­тив COVID-19. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(5):44-50

Глиомы являются наиболее распространенной группой первичных опухолей головного мозга, составляя не менее 80% от всех типов неоплазий центральной нервной системы (ЦНС). Показатель заболеваемости глиомами головного мозга варьирует от 4 до 8 случаев на 100 000 населения [1, 2]. Самыми распространенными клинико-неврологическими проявлениями глиом головного мозга выступают головная боль, головокружение, тошнота, рвота, судорожные припадки, очаговые неврологические нарушения, а также мнестико-интеллектуальные и психопатологические расстройства [3]. Согласно современной классификации опухолей ЦНС Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ), глиомы головного мозга включают три большие патогистологические группы: диффузные астроцитарные и олигодендроглиальные неоплазии, другие астроцитарые опухоли и другие глиомы. При этом по степени злокачественности перечисленные группы глиом головного мозга классифицируются на глиомы низкой (I—II степень по ВОЗ) и высокой (III—IV степень по ВОЗ) степени злокачественности [4]. Особого внимания заслуживают глиомы высокой степени злокачественности (анапластические астроцитома и олигодендроглиома, анапластическая плеоморфная ксантоастроцитома, а также три молекулярно-генетических подтипа глиобластом) ввиду наличия неблагоприятного прогноза для выживаемости пациентов. Так, несмотря на использование стандартного протокола лечения пациентов с глиобластомой, основанного на использовании хирургического лечения с достижением максимальной степени резекции опухолевой ткани, лучевой терапии и химиотерапии, лишь 5% пациентов достигают порога 5-летней выживаемости [4, 5].

Гематоэнцефалический барьер (ГЭБ) — это универсальная комплексная гистологическая структура, основной целью которой выступает ограничение проникновения различных веществ и клеток в нервную ткань [6]. На сегодняшний день одной из основных проблем современной фундаментальной онкологии является преодоление ГЭБ, используя различные лекарственные средства, применяемые у пациентов с неоплазиями ЦНС. Поиск источников литературы в базах данных Pubmed, EMBASE, Cochrane Library и eLibrary продемонстрировал наличие нескольких исследований, посвященных изучению способов преодоления ГЭБ, применяя различные противоопухолевые лекарственные средства, используемые при глиомах высокой степени злокачественности головного мозга, в том числе при глиобластоме [7—12] (см. рисунок; табл. 1, 2). Объединение результатов указанных исследований и явилось побудительным моментом к написанию данного обзора литературы.

Схема строения ГЭБ и плотного межклеточного контакта мозгового эндотелия [12].

1 — микроглиоцит; 2 — отросток астроцита; 3 — эндотелиоцит; 4 — перицит; 5 — плотный межклеточный контакт и его структурные белковые компоненты; 6 — просвет капилляра; 7 — VE-кадгерин; 8 — окклюдин; 9 — клаудин-5; 10 — молекула соединительной адгезии; 11 — ZO 1, 2, 3; 12 — катенины; 13 — F-актин.

Таблица 1. Характеристика трансмембранных и внутриклеточных белков плотных межклеточных контактов [12]

Трансмембранные белки

Характеристика

Окклюдин

Молекулярная масса 65 кДа, состоит из 9 доменов (5 внеклеточных и 4 трансмембранных); играет важную роль в гомотипической адгезии; участвует в регуляции активного цитоскелета эндотелиоцитов

Клаудин

Семейство клаудинов включает более чем 20 белков с молекулярной массой около 20 кДа; представляют собой трансмембранные компоненты плотных контактов (состоят из 4 доменов); из большого семейства клаудинов только клаудин-5 специфичен для клеток эндотелия; показано большое содержание клаудина-5 в сосудах головного мозга

JAM-A (Junctional Adhesion Molecule-A, молекула соединительной адгезии-A)

Гликопротеины с молекулярной массой 32 кДа и состоящие из 2 доменов (внеклеточного и трансмембранного); играют важную роль в формировании гомотипической адгезии; обеспечивают барьерную функцию; участвуют в процессе ангиогенеза, миграции лейкоцитов через эндотелий

Внутриклеточные белки

Характеристика

ZO (Zonula Occludens)-1

ZO-белки представляют собой мультидоменные белки с молекулярной массой около 230 кДа; взаимодействуя с клаудинами, окклюдинами, актином и α-катенином, белки ZO играют важную роль не только в формировании правильной структуры плотных контактов, но и барьерной функции; ZO-1 играют важную роль в формировании комплекса адгезионных контактов эндотелиальных клеток, их барьерной функции, в миграции и ангиогенезе

ZO-2

ZO-3

Таблица 2. Характеристика трансмембранных и внутриклеточных белков адгезионных межклеточных контактов [12]

Трансмембранные белки

Характеристика

VE-кадгерин

Насчитывается более 50 членов семейства кадгеринов;

VE-кадгерин регулирует барьерную функцию эндотелия; участвует в регуляции клеточного цикла, контактного торможения пролиферации, клеточной гибели, а также в процессе ангиогенеза; VE-кадгерин взаимодействует с β-катенином, плакоглобином (γ-катенин) и P120

Внутриклеточные белки

Характеристика

α-Катенин

Может связываться с β-катенином и актином

β-Катенин

Играет важную роль в регуляции эмбриогенеза, дифференцировке клеток и развитии злокачественных опухолей; отмечается важная роль β-катенина в формировании барьерной функции эндотелиальных клеток

γ-Катенин

Выполняют вспомогательную функцию

Δ-Катенин

Строение, функции ГЭБ и пути поступления лекарственных средств

Головной мозг человека состоит более чем из 1 млрд капилляров, общая длина которых составляет около 650 км, а общая площадь поверхности — около 20 м2. Все это делает головной мозг самым кровоснабжаемым органом человеческого организма [13]. Правильное функционирование мозгового сосудистого русла заключается не только в адекватном притоке артериальной крови, насыщенной питательными веществами и кислородом, но и в защите ткани мозга от воздействия различных нейротоксических веществ. Именно ГЭБ обеспечивает нормальную работу нейронов и клеток глии головного мозга. ГЭБ представляет собой тканевое препятствие на пути проникновения некоторых ионов, макромолекул и клеток, а также принимает участие в трофике нервной ткани [14].

ГЭБ состоит из специализированных эндотелиальных клеток головного мозга, которые проявляют свои барьерные свойства путем непрерывного взаимодействия с окружающими их клетками (астроцитами, перицитами, периваскулярными макрофагами) [14, 15]. Концы отростков астроцитов охватывают базальную мембрану мозговых капилляров, что формирует единую клеточную структуру [15]. Важно отметить, что астроциты играют первоочередную роль в поддержании барьерных свойств эндотелия. Перициты покрывают поверхность эндотелиальных клеток и обеспечивают структурную целостность всего ГЭБ в период его формирования [16]. По мнению J. Alvarez и соавт. [17], астроциты и перициты способны к секреции сигнальных молекул (ретиноевая кислота, Wnt, Sonic Hedgehog), регулирующих проницаемость ГЭБ.

Эндотелиоциты головного мозга связаны между собой плотными клеточными контактами. Через межклеточные контакты данного типа способны проникать только молекулы с предельно низкой молекулярной массой, такие как вода и углекислый газ [18]. Интегральные белки, участвующие в образовании плотных межклеточных контактов, включают окклюдин, клаудин-1, клаудин-5 и молекулы соединительной адгезии-A (JAM-A, Junctional Adhesion Molecule-A) [19]. Белки клаудин-1 и окклюдин связаны посредством белковых комплексов ZO (Zonula Occludens) с протеинами, ассоциированными с плотными клеточными контактами (цингулин, JACOP, 7H6), которые в свою очередь связаны с цитоскелетным комплексом актин/миозин, способным изменять свойства плотных клеточных контактов. В адгезивных клеточных соединениях, являющихся структурной основой плотных клеточных контактов, белки VE-кадгерины в цитоплазме с α-, β- и γ-катенинами [19]. Организация плотных межклеточных контактов зависит не только от наличия данных типов белков, но и от их молекулярной организации и активности взаимодействия друг с другом [20]. Наличие плотных контактов между эндотелиальными клетками и отсутствие фенестр позволяют ГЭБ полноценно регулировать трансэндотелиальный перенос веществ из сосудистого русла в ткань головного мозга и наоборот. Растворимые вещества способны проникать через эндотелий мозговых сосудов путем пассивной диффузии. При этом степень диффузии веществ всецело зависит от их физико-химических свойств (электрический заряд, молекулярная масса и степень липофильности) [21]. Поглощение необходимых питательных веществ клетками активно регулируется как рецептор-опосредованными (трансферрин), так и носитель-опосредованными (SLC-2/GLUT-1 для глюкозы) путями. Необходимо подчеркнуть, что поглощение клетками ГЭБ лекарственных средств может также осуществляться через носитель-опосредованный путь. Так, транспортеры OATP1A2 и ATP2B1 экспрессируются клетками ГЭБ и участвуют в переносе некоторых лекарственных средств [22, 23]. В работе E. van de Steeg и соавт. [24] показано, что отсутствие переносчиков OATP1A/1B приводит к выраженному снижению поступления в гепатоциты метотрексата и паклитаксела при отсутствии влияния на поступление указанных лекарственных средств в головной мозг.

В свою очередь элиминация продуктов метаболизма и нежелательных веществ достигается благодаря АТФ-зависимым транспортерам, таким как ABCB1 (P-гликопротеин) и ABCG2. Белок ABCB1 обнаружен и подробно изучен в 1976 г. R. Juliano и V. Ling [25]. Исследователи доказали, что благодаря P-гликопротеину некоторые неоплазии проявляют множественную лекарственную устойчивость к различным противоопухолевым агентам. Множественная лекарственная устойчивость, опосредованная белком ABCB1, объясняется его способностью к выведению из клеток более чем 60% химиотерапевтических лекарственных средств, что значительно снижает цитоплазматическую концентрацию последних и, как следствие, их цитотоксический эффект [26]. В работах C. Cordon-Cardo и соавт. [9] и A. Schinkel и соавт. [27] наглядно продемонстрировано, что P-гликопротеин активно экспрессируется клетками ГЭБ. Отсутствие ABCB1a в ряде случаев приводило к тому, что широко используемые лекарственные препараты выступали в качестве нейротоксических веществ. M. Demeule и соавт. [28] экспериментально подтвердили, что протеин ABCB1 ответствен за проникновение через ГЭБ широкого спектра лекарственных средств. Транспортный белок ABCG2, участвующий в выведении веществ из клетки, также присутствует в ГЭБ. Элиминационная функция белка ABCG2 подробно исследована в работе N. de Vries и соавт. [29]. В опыте S. Durmus и соавт. [30] показано, что снижение экспрессии белков ABCB1a- и ABCG2-клетками ГЭБ мышей приводило к 10-кратному увеличению поступления вемурафениба в их цитоплазматическое пространство.

Наряду с транспортными белками ABCB1 и ABCG2, в молекулярно-клеточном контроле поступления веществ через ГЭБ участвуют протеины семейства ABCC (ABCC1, ABCC2, ABCC4 и ABCC5) [31—33]. Как правило, данное семейство белков осуществляет транспорт более полярных молекул, таких как конъюгированные лекарственные средства и эндогенные метаболиты [34]. Функциональная активность белков семейства ABCC доказана лишь в отношении трех лекарственных препаратов (метаболит осельтамивира, аналог камптотецина и метотрексат) [35, 36]. Стоит отметить, что транспортеры ABCB1 и ABCG2 могут иметь схожие субстраты с белками семейства ABCC [36]. Таким образом, белки семейства ABCC и транспортные протеины ABCB1 и ABCG2 играют важнейшую роль в регуляции поступления многих веществ, в том числе лекарственных средств, способных влиять на внутриклеточные сигнальные пути глиомогенеза [37].

Строение гематоэнцефалотуморозного барьера

Структурная организация и функционирование ГЭБ могут изменяться при различных патологических состояниях головного мозга (рассеянный склероз, энцефалиты, острое нарушение мозгового кровообращения, функциональные заболевания головного мозга и опухоли) [14, 15]. По мнению D. Groothuis и соавт. [38], изменение структуры и функций ГЭБ при церебральных неоплазиях не зависит от размеров, гистологического варианта и анатомического расположения последних. M. Machein и соавт. [39] доказали, что при глиомах низкой степени злокачественности состояние гематоэнцефалотуморозного барьера (ГЭТБ) практически не отличается от нормального ГЭБ. Что же касается глиом высокой степени злокачественности, то здесь наблюдаются выраженные структурно-функциональные, преимущественно сосудистые, изменения ГЭТБ. Данные изменения лежат в основе накопления контрастных лекарственных средств в опухолевой ткани при выполнении магнитно-резонансной томографии (МРТ) головного мозга. В исследовании S.Watkins и соавт. [40] показано, что вытеснение отростка астроцита с поверхности эндотелия одной опухолевой клеткой является достаточным для изменения функций ГЭБ. Тем не менее такого рода локальные нарушения клеточной организации ГЭБ не позволяют проникать большому количеству лекарственного агента в ткань неоплазии.

Большая потребность глиом высокой степени злокачественности в поступлении питательных веществ является причиной образования участков гипоксии опухолевой ткани, что индуцирует экспрессию клетками неоплазии фактора роста эндотелия сосудов (VEGF, Vesseal Endothelial Growth Factor) и, как следствие, активацию процессов ангиогенеза [41]. При этом вновь образованные сосуды изменяют структурно-функциональные свойства ГЭТБ. Необходимо подчеркнуть, что опухолевые клетки глиом высокой степени злокачественности способны к пролиферации как в области нарушенного ГЭТБ, так и в областях интактной мозговой ткани с сохранным ГЭБ. Указанные области пролиферации клеток неоплазии в неизмененном головном мозге обнаруживаются на T1-взвешенных изображениях МРТ с помощью внутривенного усиления гадолинием. A. Korfel и E. Thiel [42] считают, что основным препятствием поступления лекарственных средств в опухолевую ткань при глиомах выступает как ГЭБ, так и ГЭТБ.

ГЭТБ, в отличие от ГЭБ, образован капиллярами опухолевой ткани и структурно отличается от последнего. Капилляры ГЭТБ способны к гиперэкспрессии рецепторов, которые участвуют в опосредованном лигандзависимом транспорте лекарственных средств внутрь клеток. N. Ningaraj и соавт. [43] и S. Nishio и соавт. [44] считают, что данную особенность капилляров ГЭТБ можно использовать с целью селективного усиления доставки лекарственных препаратов в ткань неоплазии. Структура ГЭТБ может включать три типа капилляров (непрерывные нефенестрированные, непрерывные фенестрированные и капилляры с межэндотелиальными промежутками) [6]. Многие транспортные белки ГЭБ, участвующие в выведении веществ из клеток, обнаружены и в ГЭТБ [12, 13]. Так, F. Lin и соавт. [45] экспериментально подтвердили, что семейство ABC-транспортеров активно экспрессируется клетками глиобластомы и участвует в формировании ее лекарственной резистентности.

Пути преодоления ГЭТБ

Осмотическое изменение барьерных свойств ГЭТБ

Впервые о возможности изменения барьерных свойств ГЭТБ упомянули в своих исследованиях S. Rapoport и соавт. [46, 47]. Осмотическое изменение барьерных свойств ГЭТБ основано на внутриартериальном введении осмотического диуретика (маннитол), который вызывает временное сокращение эндотелиоцитов и открытие плотных межклеточных контактов в течение нескольких часов. Данный временной промежуток позволяет вводить внутриартериальным путем некоторые цитотоксические агенты, активные в отношении ряда опухолей головного мозга (метотрексат и карбоплатин) [48]. Однако существует ряд ограничений использования данной методики изменения проницаемости ГЭТБ. В сообщении T. Siegal и соавт. [48] показано, что осмотическое изменение барьерных свойств ГЭТБ приводит к неконтролируемому повышению проницаемости нормального ГЭБ, что является причиной накопления различных низко- и высокомолекулярных соединений в ткани головного мозга с формированием интерстициального отека и последующими клинико-неврологическими расстройствами. Несмотря на более чем полувековое изучение данной проблемы, клиническая эффективность использования осмотического метода изменения проницаемости ГЭТБ не доказана. Лишь в ретроспективном исследовании L. Angelov и соавт. [49] были получены удовлетворительные результаты в отношении клинической эффективности использования данного метода изменения барьерных свойств ГЭТБ и внутриартериального введения метотрексата у пациентов с первичной лимфомой ЦНС. В 2012 г. начато крупное рандомизированное контролируемое клиническое исследование, направленное на изучение эффективности применения анти-VEGF-лекарственного средства (бевацизумаб) и осмотического изменения барьерных свойств ГЭТБ у пациентов с рецидивом глиобластомы [50]. Стоит отметить, что перспективность использования данного метода преодоления ГЭТБ и бевацизумаба у изучаемой группы пациентов не является однозначной. Указанная неоднозначность связана с локализацией экспрессии VEGF, где уже имеет место нарушение ГЭТБ, а также с фармакокинетическими особенностями бевацизумаба, период полувыведения которого составляет не менее 2 нед, поэтому кратковременное изменение барьерных свойств ГЭТБ с целью введения данного лекарственного средства не будет иметь высокую клинико-фармакологическую эффективность у пациентов с рецидивом глиобластомы.

Брадикинин-зависимое преодоление ГЭТБ

В 1986 г. J. Raymond и соавт. [51] доказали, что изменение барьерных свойств ГЭБ/ГЭТБ возможно с помощью воздействия на рецепторы эндотелиоцитов брадикинином, что приводит к открытию плотных межклеточных контактов через вторичные мессенджеры. Спустя 10 лет P. Elliot и соавт. [52] и T. Inamura и соавт. [53] независимо друг от друга разработали аналог брадикинина с улучшенным системным действием, носящим экспериментальное название RMP-7 (Cereport или Labramidil). Клинические испытания разработанного препарата не подтвердили его эффективность. Так, во II фазе рандомизированного двойного слепого плацебо-контролируемого исследования M. Prados и соавт. [54] наглядно продемонстрировано, что применение RMP-7 в комбинации с химиотерапевтическим агентом (карбоплатин) не обладает высокой клинической эффективностью в отношении глиом высокой степени злокачественности. K. Warren и соавт. [55] также не обнаружили клинико-фармакологическую эффективность RMP-7 у пациентов детского возраста с глиомами головного мозга. По мнению исследователей, основной причиной неудовлетворительных результатов использования аналога брадикинина RMP-7 являлась малая доза (300 нг/кг) препарата. Тем не менее проведение дальнейших клинических исследований с повышенной дозой обозначенного лекарственного средства не проводилось. Другой возможной причиной низкой клинической эффективности RMP-7 в комбинации с противоопухолевыми препаратами выступало несовпадение коротких временных периодов снижения барьерных свойств ГЭБ/ГЭТБ и длительных периодов накопления лекарственных средств в крови. В экспериментальном исследовании D. Emerich и соавт. [56] отмечено, что использование высоких доз RMP-7 позволяет увеличить концентрацию цитотоксического агента (карбоплатин) в опухолевой ткани не менее чем в 2 раза.

Блокирование работы белков-транспортеров

Как уже отмечалось ранее, многие лекарственные средства способны легко проникать в нервную ткань при отсутствии транспортных белков, участвующих в выведении последних из клеток [6, 36]. Из этого следует, что применение метода блокирования белков-транспортеров может являться весьма перспективным и безопасным способом преодоления ГЭБ/ГЭТБ без изменения их клеточной структуры. Большая часть ингибиторов белков семейства ABC-транспортеров разработана фармацевтическими компаниями в конце прошлого столетия. Одними из первых лекарственных средств, воздействующих на опухоли с фармакорезистентными свойствами, являлись ингибиторы протеинов ABCB1 и ABCG2 (элакридар и тариквидар) [57]. К сожалению, клинические испытания данных лекарственных средств не дали положительных результатов. W. Stein и соавт. [58] считают, что неэффективность использования блокаторов белков-транспортеров связана с тем, что множественная лекарственная устойчивость неоплазии обусловлена наличием целого ряда молекулярно-генетических процессов, а опухолевые клетки выступают в роли генетически «нестабильных» «движущихся мишеней» и воздействие на них лишь одним терапевтическим агентом не будет обладать противоопухолевым действием. На сегодняшний день основной целью использования ингибиторов транспортных белков ГЭБ/ГЭТБ является создание лекарственных средств высокой степени аффинности к рецепторам, расположенным на цитоплазматической мембране, генетически «стабильных» опухолевых клеток. С другой стороны, экспериментальные исследования, посвященные изучению ингибиторов транспортных белков семейства ABC, продемонстрировали неоднозначные результаты. Так, D. Kurnik и соавт. [10] показали, что внутривенное использование 150 мг тариквидара не вызывает центральных опиоидных эффектов лоперамида, несмотря на выраженное ингибирование ABCB1 в лимфоцитах. M. Bauer и соавт. [7] в своем наблюдении отметили, что тариквидар значимо повышает концентрацию верапамила в головном мозге по данным позитронно-эмиссионной томографии (ПЭТ). Однако в наблюдении E. Choo и соавт. [59] отмечено, что применение ингибиторов ABC-транспортных белков в лимфоцитах не приводит к блокированию последних в ГЭБ. E. Kemper и соавт. [60] пришли к заключению, что ингибиторы ABC-транспортеров первого и второго поколений не являются достаточно эффективными лекарственными средствами. Сравнение эффективности элакридара и тариквидара показало, что элакридар оказывает более выраженное блокирующее действие на белки семейства ABC-транспортеров, а потому его использование может быть весьма многообещающим. По нашему мнению, применение ингибиторов транспортных белков семейства ABC является перспективным методом повышения эффективности различных противоопухолевых агентов. Дальнейшее изучение ингибиторов белков-транспортеров должно быть направлено на увеличение степени их аффинности к субстратам и улучшение биодоступности.

Использование рецептор-опосредованной транспортной системы

Еще одним способом преодоления ГЭБ/ГЭТБ без изменения структуры эндотелия и нарушения плотных клеточных контактов является использование рецептор-опосредованных транспортных клеточных систем. Указанный способ позволяет осуществлять доставку широкого спектра лекарственных средств внутрь клетки. В 2012 г. W. Pardridge [61] описал несколько рецептор-опосредованных транспортных белковых систем, участвующих в доставке радиофармпрепаратов в ткань головного мозга. К настоящему времени клинические испытания проходят два лекарственных препарата, механизм действия которых основан на использовании рецептор-опосредованных транспортных клеточных систем. Первым лекарственным средством является GRN1005, или ANG1005, разработанный компанией «AngioChem Inc.» (США). GRN1005 представляет собой соединение паклитаксела и пептида Angiopep-2, который связывается с белком 1, подобным рецептору липопротеинов низкой плотности, и проникает через ГЭБ/ГЭТБ путем трансцитоза [62]. Вторым экспериментальным лекарственным препаратом выступает 2B3-101, биохимическая структура которого включает пегилированную липосому в комплексе с глутатионом. Первые положительные клинические результаты применения 2B3-101 у пациентов со злокачественными опухолями головного мозга, в том числе с глиомами высокой степени злокачественности, получены в исследовании P. Gaillard и соавт. [63]. Фармакокинетической особенностью препарата 2B3-101 является наличие пегилированной липосомы, которая позволяет значительно увеличить период его полувыведения и повысить концентрацию последнего в нервной ткани.

В недавнем сообщении A. Ben-Zvi и соавт. [8] отмечено, что докозагексаеновый транспортер MFSD2A способен к подавлению трансцитоза через эндотелиальные клетки ЦНС. Исследователи считают, что торможение активности белка MFSD2A может привести к усилению трансцитоза и, как следствие, к повышению эффективности доставки лекарственных средств в ткань головного мозга.

Обходные пути преодоления ГЭТБ

Безусловно, наиболее простым способом обходного пути преодоления ГЭБ/ГЭТБ является прямая доставка лекарственных средств непосредственно в ткань головного мозга или полость резецированной опухоли. Немаловажными способами доставки лекарственных средств в ЦНС выступают интравентрикулярные и интратекальные инъекции с контролем скорости введения и объема препарата. Данные способы доставки лекарственных агентов изучены в ряде клинических исследований на примере метотрексата и нитрозомочевины [64, 65]. Однако такого рода обходные пути преодоления ГЭБ/ГЭТБ лекарственными средствами сопряжены с развитием некоторых нежелательных явлений (инфекции ЦНС, нейротоксичность препаратов, обструкция катетеров), что ограничивает использование данных методов в широкой клинической практике. Наиболее безопасным и эффективным методом доставки противоопухолевых препаратов в нервную ткань является использование биодеградируемых полимерных пластин, содержащих цитотоксические лекарственные средства. Полимерные пластины с химиотерапевтическими агентами помещаются в полость резецированной опухоли во время оперативного вмешательства, а последующая их биодеградация способствует высвобождению лекарственного средства в необходимой концентрации. A. Korfel и F. Thiel [42] наглядно доказали, что использование биодеградируемых пластин с кармустином достоверно обеспечивает непрерывную доставку цитотоксического агента в ткань опухоли при минимальном количестве нежелательных лекарственных реакций. В 1996 г. Управление по надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов США (US FDA, U.S. Food and Drug Administration) одобрило применение биодеградируемых пластин с химиотерапевтическими агентами в качестве местной терапии впервые выявленной и рецидивной глиобластом [66]. Тем не менее данный метод терапии также не лишен нежелательных явлений, среди которых наибольшее распространение получили нейротоксические реакции, инфекции ЦНС и развитие отека головного мозга. Кроме того, локальное использование биодеградируемых полимерных пластин, содержащих цитотоксические лекарственные средства, не позволяет эффективно воздействовать на отдаленно расположенные опухолевые клетки, что приводит к активной пролиферации последних.

В настоящее время наиболее перспективным способом обходного пути преодоления ГЭБ/ГЭТБ лекарственными средствами является конвекционная доставка препаратов в ткань головного мозга [64—66]. Конвекционная доставка основана на применении установленных стереотаксическим методом интрацеребральных микрокатетеров, которые обеспечивают непрерывную прямую доставку различных лекарственных средств практически в любую область головного мозга [67]. Церебральный конец микрокатетера имеет специальное устройство, позволяющее создавать градиент давления для потока лекарственных агентов через интерстициальное пространство нервной ткани [68]. Несмотря на безопасность данного метода обходного пути преодоления ГЭБ/ГЭТБ лекарственными средствами и равномерное распределение препаратов в структурах головного мозга, рандомизированные контролируемые клинические исследования, изучающие эффективность конвекционной доставки цитотоксических агентов в ткань головного мозга у пациентов со злокачественными опухолями, отсутствуют. Кроме того, необходимо уточнить такие параметры конвекционной доставки, как объем вводимого химиотерапевтического агента и наиболее оптимальное место установки микрокатетеров в головной мозг [69]. Недавние доклинические испытания метода конвекционной доставки в моделях глиом головного мозга показали весьма обнадеживающие результаты с использованием радиоактивных меченых моноклональных антител [70], этопозида [71], кармустина [72], карбоплатина [73], а также цисплатина [74] и терапевтических стволовых клеток [75]. Ретроспективные клинические исследования с использованием конвекционного способа доставки позволили оценить цитотоксический эффект целого ряда химиотерапевтических агентов (паклитаксел, топотекан, нимустин, IL13-PE38QRR, TP-38, ингибитор TGF-2) [76—79]. К сожалению, результаты данных клинических исследований оказались неутешительными, что в значительной степени объяснялось плохим распределением лекарственных средств в периферических участках глиальных опухолей, рефлюксом препаратов через микрокатетер и снижением их концентрации до субтерапевтических значений. Другим ограничением обозначенных исследований методики конвекционной доставки выступает отсутствие возможности визуализации распределения используемого лекарственного средства.

В 2014 г. K. Kicielinski и соавт. [11] и J. Markert и соавт. [80] с целью наиболее оптимального распределения цитотоксических лекарственных средств в ткани неоплазии предложили использование селективных самореплицирующихся онколитических вирусов. Авторами данных исследований в I фазе клинических испытаний получены удовлетворительные результаты в отношении глиом головного мозга у взрослых пациентов.

Заключение

Таким образом, эффективность применения химиотерапевтических агентов всецело зависит от степени проницаемости ГЭБ/ГЭТБ. Участки ГЭТБ, имеющие сохранную структуру и во многом повторяющие строение интактного ГЭБ, особенно ограничивают проникновение противоопухолевых лекарственных средств. В настоящем обзоре авторами предпринята попытка представить современные данные литературы об экспериментальных и клинических методах преодоления и увеличения степени проницаемости ГЭТБ. Накопленные знания о молекулярной биологии туморогенеза, в частности глиомогенеза, позволяют активно разрабатывать и внедрять в широкую онкологическую практику новые противоопухолевые агенты. Однако разработка новых противоопухолевых лекарственных средств должна идти строго параллельно с изучением способов преодоления и повышения проницаемости ГЭБ/ГЭТБ. Отличным примером такого подхода к изучению способов повышения клинико-фармакологической эффективности цитотоксических препаратов является разработка методики ингибирования активности транспортера MFSD2A, подавляющего эндотелиальный трансцитоз в головном мозге, что может приводить к увеличению концентрации лекарственных средств в нервной ткани. Представленная методика на этапе доклинических испытаний наглядно продемонстрировала свою перспективность и уже в ближайшем будущем будет изучена в клинических исследованиях. Особенно интересным открытием представляется применение селективных самореплицирующихся онколитических вирусов с целью адресной доставки лекарственных препаратов. Бесспорно, дальнейшее изучение биологии глиом головного мозга и способов преодоления ГЭБ/ГЭТБ позволит значительно продвинуться в лечении пациентов нейроонкологического профиля.

Исследование выполнено при поддержке Фонда содействия инновациям (проект №14419ГУ/2019).

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Molinaro AM, Taylor JW, Wiencke JK, Wrensch MR. Genetic and molecular epidemiology of adult diffuse glioma. Nat Rev Neurol. 2019;15(7):405‐417.  https://doi.org/10.1038/s41582-019-0220-2
  2. Ostrom QT, Gittleman H, Stetson L, Virk SM, Barnholtz-Sloan JS. Epidemiology of gliomas. Cancer Treat Res. 2015;163:1‐14.  https://doi.org/10.1007/978-3-319-12048-5_1
  3. Hori T, Ishida A, Aihara Y, Matsuo S, Yoshimoto H, Shiramizu H. Surgery of critically located intracranial gliomas. Prog Neurol Surg. 2018;30:186‐203.  https://doi.org/10.1159/000464396
  4. Wesseling P, Capper D. WHO 2016 Classification of gliomas. Neuropathol Appl Neurobiol. 2018;44(2):139‐150.  https://doi.org/10.1111/nan.12432
  5. Alexander BM, Cloughesy TF. Adult glioblastoma. J Clin Oncol. 2017;35(21):2402‐2409. https://doi.org/10.1200/JCO.2017.73.0119
  6. Данилов Р.К., ред. Руководство по гистологии. 2-е изд. Т.1. СПб.: СпецЛит; 2011.
  7. Bauer M, Karch R, Zeitlinger M, Philippe C, Römermann K, Stanek J, Maier-Salamon A, Wadsak W, Jäger W, Hacker M, et al. Approaching complete inhibition of P-glycoprotein at the human blood-brain barrier: an (R)-[11C] verapamil PET study. J Cereb Blood Flow Metab. 2015;35(5):743‐746.  https://doi.org/10.1038/jcbfm.2015.19
  8. Ben-Zvi A, Lacoste B, Kur E, Andreone BJ, Mayshar Y, Yan H, Gu C. Andreone BJ, Mayshar Y, Yan H, et al. Mfsd2a is critical for the formation and function of the blood-brain barrier. Nature. 2014;509(7501):507‐511.  https://doi.org/10.1038/nature13324
  9. Cordon-Cardo C, O’Brien JP, Casals D, Rittman-Grauer L, Biedler JL, Melamed MR, Bertino JR. Multidrug-resistance gene (P-glycoprotein) is expressed by endothelial cells at blood-brain barrier sites. Proc Natl Acad Sci USA. 1989;86(2):695‐698.  https://doi.org/10.1073/pnas.86.2.695
  10. Kurnik D, Sofowora GG, Donahue JP, Nair UB, Wilkinson GR, Wood AJ, Muszkat M. Tariquidar, a selective P-glycoprotein inhibitor, does not potentiate loperamide’s opioid brain effects in humans despite full inhibition of lymphocyte P-glycoprotein. Anesthesiology. 2008;109(6):1092‐1099. https://doi.org/10.1097/ALN.0b013e31818d8f28
  11. Kicielinski KP, Chiocca EA, Yu JS, Gill GM, Coffey M, Markert JM. Phase 1 clinical trial of intratumoral reovirus infusion for the treatment of recurrent malignant gliomas in adults. Mol Ther. 2014;22(5):1056‐1062. https://doi.org/10.1038/mt.2014.21
  12. Furtado D, Björnmalm M, Ayton S, Bush AI, Kempe K, Caruso F. Overcoming the blood-brain barrier: the role of nanomaterials in treating neurological diseases. Adv Mater. 2018;30(46):e1801362. https://doi.org/10.1002/adma.201801362
  13. van Tellingen O, Yetkin-Arik B, de Gooijer MC, Wesseling P, Wurdinger T, de Vries HE. Overcoming the blood-brain tumor barrier for effective glioblastoma treatment. Drug Resist Updat. 2015;19:1‐12.  https://doi.org/10.1016/j.drup.2015.02.002
  14. Daneman R, Prat A. The blood-brain barrier. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2015;7(1):a020412. https://doi.org/10.1101/cshperspect.a020412
  15. Obermeier B, Verma A, Ransohoff RM. The blood-brain barrier. Handb Clin Neurol. 2016;133:39‐59.  https://doi.org/10.1016/B978-0-444-63432-0.00003-7
  16. Pardridge WM. CSF, blood-brain barrier, and brain drug delivery. Expert Opin Drug Deliv. 2016;13(7):963‐975.  https://doi.org/10.1517/17425247.2016.1171315
  17. Alvarez JI, Dodelet-Devillers A, Kebir H, Ifergan I, Fabre PJ, Terouz S, Sabbagh M, Wosik K, Bourbonnière L, Bernard M, et al. The Hedgehog pathway promotes blood-brain barrier integrity and CNS immune quiescence. Science. 2011;334(6063):1727‐1731. https://doi.org/10.1126/science.1206936
  18. Pais TF, Penha-Gonçalves C. Brain endothelium: the «Innate Immunity Response Hypothesis» in cerebral malaria pathogenesis. Front Immunol. 2019;9:3100. https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.03100
  19. Zihni C, Mills C, Matter K, Balda MS. Tight junctions: from simple barriers to multifunctional molecular gates. Nat Rev Mol Cell Biol. 2016;17(9):564‐580.  https://doi.org/10.1038/nrm.2016.80
  20. Tietz S, Engelhardt B. Brain barriers: crosstalk between complex tight junctions and adherens junctions. J Cell Biol. 2015;209(4):493‐506.  https://doi.org/10.1083/jcb.201412147
  21. Van Itallie CM, Anderson JM. Architecture of tight junctions and principles of molecular composition. Semin Cell Dev Biol. 2014;36:157‐165.  https://doi.org/10.1016/j.semcdb.2014.08.011
  22. König J, Müller F, Fromm MF. Transporters and drug-drug interactions: important determinants of drug disposition and effects. Pharmacol Rev. 2013;65(3):944‐966.  https://doi.org/10.1124/pr.113.007518
  23. Shitara Y, Maeda K, Ikejiri K, Yoshida K, Horie T, Sugiyama Y. Clinical significance of organic anion transporting polypeptides (OATPs) in drug disposition: their roles in hepatic clearance and intestinal absorption. Biopharm Drug Dispos. 2013;34(1):45‐78.  https://doi.org/10.1002/bdd.1823
  24. van de Steeg E, van Esch A, Wagenaar E, van der Kruijssen CM, van Tellingen O, Kenworthy KE, Schinkel AH. High impact of Oatp1a/1b transporters on in vivo disposition of the hydrophobic anticancer drug paclitaxel. Clin Cancer Res. 2011;17(2):294‐301.  https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-10-1980
  25. Juliano RL, Ling V. A surface glycoprotein modulating drug permeability in Chinese hamster ovary cell mutants. Biochim Biophys Acta. 1976;455(1):152‐162.  https://doi.org/10.1016/0005-2736(76)90160-7
  26. Choi YH, Yu AM. ABC transporters in multidrug resistance and pharmacokinetics, and strategies for drug development. Curr Pharm Des. 2014;20(5):793‐807.  https://doi.org/10.2174/138161282005140214165212
  27. Schinkel AH, Smit JJ, van Tellingen O, Beijnen JH, Wagenaar E, van Deemter L, Mol CA, van der Valk MA, Robanus-Maandag EC, te Riele HP, et al. Disruption of the mouse mdr1a P-glycoprotein gene leads to a deficiency in the blood-brain barrier and to increased sensitivity to drugs. Cell. 1994;77(4):491‐502.  https://doi.org/10.1016/0092-8674(94)90212-7
  28. Demeule M, Régina A, Jodoin J, Laplante A, Dagenais C, Berthelet F, Moghrabi A, Béliveau R. Drug transport to the brain: key roles for the efflux pump P-glycoprotein in the blood-brain barrier. Vascul Pharmacol. 2002;38(6):339‐348.  https://doi.org/10.1016/s1537-1891(02)00201-x
  29. de Vries NA, Zhao J, Kroon E, Buckle T, Beijnen JH, van Tellingen O. P-glycoprotein and breast cancer resistance protein: two dominant transporters working together in limiting the brain penetration of topotecan. Clin Cancer Res. 2007;13(21):6440‐6449. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-07-1335
  30. Durmus S, Sparidans RW, Wagenaar E, Beijnen JH, Schinkel AH. Oral availability and brain penetration of the B-RAFV600E inhibitor vemurafenib can be enhanced by the P-GLYCOprotein (ABCB1) and breast cancer resistance protein (ABCG2) inhibitor elacridar. Mol Pharm. 2012;9(11):3236‐3245. https://doi.org/10.1021/mp3003144
  31. Gil-Martins E, Barbosa DJ, Silva V, Remião F, Silva R. Dysfunction of ABC transporters at the blood-brain barrier: role in neurological disorders. Pharmacol Ther. 2020;213:107554. https://doi.org/10.1016/j.pharmthera.2020.107554
  32. Slåtsve AM, Ravna AW, Lyså RA, Sager G. ABC-transportørenes betydning for effekt og omsetning av legemidler. [ABC transporters’ impact on effect and metabolism of drugs]. Tidsskr Nor Laegeforen. 2011;131(11):1084‐1087. (In Norwegian). https://doi.org/10.4045/tidsskr.10.0675
  33. Strazielle N, Ghersi-Egea JF. Efflux transporters in blood-brain interfaces of the developing brain. Front Neurosci. 2015;9:21.  https://doi.org/10.3389/fnins.2015.00021
  34. Chaves C, Remiao F, Cisternino S, Decleves X. Opioids and the blood-brain barrier: a dynamic interaction with consequences on drug disposition in brain. Curr Neuropharmacol. 2017;15(8):1156‐1173. https://doi.org/10.2174/1570159X15666170504095823
  35. Ose A, Ito M, Kusuhara H, Yamatsugu K, Kanai M, Shibasaki M, Hosokawa M, Schuetz JD, Sugiyama Y. Limited brain distribution of [3R,4R,5S]-4-acetamido-5-amino-3-(1-ethylpropoxy)-1-cyclohexene-1-carboxylate phosphate (Ro 64-0802), a pharmacologically active form of oseltamivir, by active efflux across the blood-brain barrier mediated by organic anion transporter 3 (Oat3/Slc22a8) and multidrug resistance-associated protein 4 (Mrp4/Abcc4). Drug Metab Dispos. 2009;37(2):315‐321.  https://doi.org/10.1124/dmd.108.024018
  36. Lin F, de Gooijer MC, Hanekamp D, Brandsma D, Beijnen JH, van Tellingen O. Targeting core (mutated) pathways of high-grade gliomas: challenges of intrinsic resistance and drug efflux. CNS Oncol. 2013;2(3):271‐288.  https://doi.org/10.2217/cns.13.15
  37. Kondo T. Molecular mechanisms involved in gliomagenesis. Brain Tumor Pathol. 2017;34(1):1‐7.  https://doi.org/10.1007/s10014-017-0278-8
  38. Groothuis DR. The blood-brain and blood-tumor barriers: a review of strategies for increasing drug delivery. Neuro Oncol. 2000;2(1):45‐59.  https://doi.org/10.1093/neuonc/2.1.45
  39. Machein MR, Kullmer J, Fiebich BL, Plate KH, Warnke PC. Vascular endothelial growth factor expression, vascular volume, and, capillary permeability in human brain tumors. Neurosurgery. 1999;44(4):732-740; discussion 740-741.  https://doi.org/10.1097/00006123-199904000-00022
  40. Watkins S, Robel S, Kimbrough IF, Robert SM, Ellis-Davies G, Sontheimer H. Disruption of astrocyte-vascular coupling and the blood-brain barrier by invading glioma cells. Nat Commun. 2014;5:4196. https://doi.org/10.1038/ncomms5196
  41. Бывальцев В.А., Степанов И.А., Белых Е.Г., Яруллина А.И. Молекулярные аспекты ангиогенеза в глиобластомах головного мозга. Вопросы онкологии. 2017;63(1):19-27.  https://doi.org/10.37469/0507-3758-2017-63-1-19-27
  42. Korfel A, Thiel E. Targeted therapy and blood-brain barrier. Recent Results Cancer Res. 2007;176:123‐133.  https://doi.org/10.1007/978-3-540-46091-6_10
  43. Ningaraj NS, Rao M, Hashizume K, Asotra K, Black KL. Regulation of blood-brain tumor barrier permeability by calcium-activated potassium channels. J Pharmacol Exp Ther. 2002;301(3):838‐851.  https://doi.org/10.1124/jpet.301.3.838
  44. Nishio S, Ohta M, Abe M, Kitamura K. Microvascular abnormalities in ethylnitrosourea (ENU)-induced rat brain tumors: structural basis for altered blood-brain barrier function. Acta Neuropathol. 1983;59(1):1‐10.  https://doi.org/10.1007/BF00690311
  45. Lin F, de Gooijer MC, Roig EM, Buil LC, Christner SM, Beumer JH, Würdinger T, Beijnen JH, van Tellingen O. ABCB1, ABCG2, and PTEN determine the response of glioblastoma to temozolomide and ABT-888 therapy. Clin Cancer Res. 2014;20(10):2703‐2713. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-14-0084
  46. Rapoport SI. Effect of concentrated solutions on blood-brain barrier. Am J Physiol. 1970;219(1):270‐274.  https://doi.org/10.1152/ajplegacy.1970.219.1.270
  47. Rapoport SI, Hori M, Klatzo I. Testing of a hypothesis for osmotic opening of the blood-brain barrier. Am J Physiol. 1972;223(2):323‐331.  https://doi.org/10.1152/ajplegacy.1972.223.2.323
  48. Siegal T, Rubinstein R, Bokstein F, Schwartz A, Lossos A, Shalom E, Chisin R, Gomori JM. In vivo assessment of the window of barrier opening after osmotic blood-brain barrier disruption in humans. J Neurosurg. 2000;92(4):599‐605.  https://doi.org/10.3171/jns.2000.92.4.0599
  49. Angelov L, Doolittle ND, Kraemer DF, Siegal T, Barnett GH, Peereboom DM, Stevens G, McGregor J, Jahnke K, Lacy CA, et al. Blood-brain barrier disruption and intra-arterial methotrexate-based therapy for newly diagnosed primary CNS lymphoma: a multi-institutional experience. J Clin Oncol. 2009;27(21):3503-3509. https://doi.org/10.1200/jco.2008.19.3789
  50. Burkhardt JK, Riina H, Shin BJ, Christos P, Kesavabhotla K, Hofstetter CP, Tsiouris AJ, Boockvar JA. Intra-arterial delivery of bevacizumab after blood-brain barrier disruption for the treatment of recurrent glioblastoma: progression-free survival and overall survival. World Neurosurg. 2012;77(1):130‐134.  https://doi.org/10.1016/j.wneu.2011.05.056
  51. Raymond JJ, Robertson DM, Dinsdale HB. Pharmacological modification of bradykinin induced breakdown of the blood-brain barrier. Can J Neurol Science. 1986;13(3):214-220.  https://doi.org/10.1017/s0317167100036301
  52. Elliott PJ, Hayward NJ, Huff MR, Nagle TL, Black KL, Bartus RT. Unlocking the blood-brain barrier: a role for RMP-7 in brain tumor therapy. Exp Neurol. 1996;141(2):214‐224.  https://doi.org/10.1006/exnr.1996.0156
  53. Inamura T, Nomura T, Bartus RT, Black KL. Intracarotid infusion of RMP-7, a bradykinin analog: a method for selective drug delivery to brain tumors. J Neurosurg. 1994;81(5):752‐758.  https://doi.org/10.3171/jns.1994.81.5.0752
  54. Prados MD, Schold SC Jr, Fine HA, Jaeckle K, Hochberg F, Mechtler L, Fetell MR, Phuphanich S, Feun L, Janus TJ, et al. A randomized, double-blind, placebo-controlled, phase 2 study of RMP-7 in combination with carboplatin administered intravenously for the treatment of recurrent malignant glioma. Neuro Oncol. 2003;5(2):96‐103.  https://doi.org/10.1093/neuonc/5.2.96
  55. Warren K, Jakacki R, Widemann B, Aikin A, Libucha M, Packer R, Vezina G, Reaman G, Shaw D, Krailo M, et al. Phase II trial of intravenous lobradimil and carboplatin in childhood brain tumors: a report from the Children’s Oncology Group. Cancer Chemother Pharmacol. 2006;58(3):343‐347.  https://doi.org/10.1007/s00280-005-0172-7
  56. Emerich DF, Snodgrass P, Dean R, Agostino M, Hasler B, Pink M, Xiong H, Kim BS, Bartus RT. Enhanced delivery of carboplatin into brain tumours with intravenous Cereport (RMP-7): dramatic differences and insight gained from dosing parameters. Br J Cancer. 1999;80(7):964‐970.  https://doi.org/10.1038/sj.bjc.6690450
  57. de Bruin M, Miyake K, Litman T, Robey R, Bates SE. Reversal of resistance by GF120918 in cell lines expressing the ABC half-transporter, MXR. Cancer Lett. 1999;146(2):117‐126.  https://doi.org/10.1016/s0304-3835(99)00182-2
  58. Stein WD, Bates SE, Fojo T. Intractable cancers: the many faces of multidrug resistance and the many targets it presents for therapeutic attack. Curr Drug Targets. 2004;5(4):333‐346.  https://doi.org/10.2174/1389450043345489
  59. Choo EF, Kurnik D, Muszkat M, Ohkubo T, Shay SD, Higginbotham JN, Glaeser H, Kim RB, Wood AJ, Wilkinson GR. Differential in vivo sensitivity to inhibition of P-glycoprotein located in lymphocytes, testes, and the blood-brain barrier. J Pharmacol Exp Ther. 2006;317(3):1012‐1018. https://doi.org/10.1124/jpet.105.099648
  60. Kemper EM, van Zandbergen AE, Cleypool C, Mos HA, Boogerd W, Beijnen JH, van Tellingen O. Mos HA, Boogerd W, Beijnen JH, et al. Increased penetration of paclitaxel into the brain by inhibition of P-Glycoprotein. Clin Cancer Res. 2003;9(7):2849‐2855.
  61. Pardridge WM. Drug transport across the blood-brain barrier. J Cereb Blood Flow Metab. 2012;32(11):1959‐1972. https://doi.org/10.1038/jcbfm.2012.126
  62. Drappatz J, Brenner A, Wong ET, Eichler A, Schiff D, Groves MD, Mikkelsen T, Rosenfeld S, Sarantopoulos J, Meyers CA, et al. Phase I study of GRN1005 in recurrent malignant glioma. Clin Cancer Res. 2013;19(6):1567‐1576. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-12-2481
  63. Gaillard PJ, Kerklaan BM, Aftimos P, Altintas S, Jager A, Gladdines W, Lonnqvist F, Soetekouw P, Verheul H, Awada A, et al. Abstract CT216: phase I dose escalating study of 2B3-101, glutathione PEGylated liposomal doxorubicin, in patients with solid tumors and brain metastases or recurrent malignant glioma. Cancer Res. 2014;74(19 suppl):CT216. https://doi.org/10.1158/1538-7445.am2014-ct216
  64. Allhenn D, Boushehri MA, Lamprecht A. Drug delivery strategies for the treatment of malignant gliomas. Int J Pharm. 2012;436(1-2):299‐310.  https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2012.06.025
  65. Bidros DS, Liu JK, Vogelbaum MA. Future of convection-enhanced delivery in the treatment of brain tumors. Future Oncol. 2010;6(1):117‐125.  https://doi.org/10.2217/fon.09.135
  66. Buonerba C, Di Lorenzo G, Marinelli A, Federico P, Palmieri G, Imbimbo M, Conti P, Peluso G, De Placido S, Sampson JH. A comprehensive outlook on intracerebral therapy of malignant gliomas. Crit Rev Oncol Hematol. 2011;80(1):54‐68.  https://doi.org/10.1016/j.critrevonc.2010.09.001
  67. Brown CB, Jacobs S, Johnson MP, Southerland C, Threatt S. Convection-enhanced delivery in the treatment of glioblastoma. Semin Oncol Nurs. 2018;34(5):494‐500.  https://doi.org/10.1016/j.soncn.2018.10.004
  68. Mehta AM, Sonabend AM, Bruce JN. Convection-enhanced delivery. Neurotherapeutics. 2017;14(2):358‐371.  https://doi.org/10.1007/s13311-017-0520-4
  69. Jahangiri A, Chin AT, Flanigan PM, Chen R, Bankiewicz K, Aghi MK. Convection-enhanced delivery in glioblastoma: a review of preclinical and clinical studies. J Neurosurg. 2017;126(1):191‐200.  https://doi.org/10.3171/2016.1.JNS151591
  70. Luther N, Zhou Z, Zanzonico P, Cheung NK, Humm J, Edgar MA, Souweidane MM. The potential of theragnostic ¹²⁴I-8H9 convection-enhanced delivery in diffuse intrinsic pontine glioma. Neuro Oncol. 2014;16(6):800‐806.  https://doi.org/10.1093/neuonc/not298
  71. Sonabend AM, Carminucci AS, Amendolara B, Bansal M, Leung R, Lei L, Realubit R, Li H, Karan C, Yun J, et al. Convection-enhanced delivery of etoposide is effective against murine proneural glioblastoma. Neuro Oncol. 2014;16(9):1210‐1219. https://doi.org/10.1093/neuonc/nou026
  72. Sewing AC, Caretti V, Lagerweij T, Schellen P, Jansen MH, van Vuurden DG, Idema S, Molthoff CF, Vandertop WP, Kaspers GJ, et al. Convection enhanced delivery of carmustine to the murine brainstem: a feasibility study. J Neurosci Methods. 2014;238:88‐94.  https://doi.org/10.1016/j.jneumeth.2014.09.020
  73. Yang W, Barth RF, Huo T, Nakkula RJ, Weldon M, Gupta N, Agius L, Grecula JC. Radiation therapy combined with intracerebral administration of carboplatin for the treatment of brain tumors. Radiat Oncol. 2014;9:25.  https://doi.org/10.1186/1748-717x-9-25
  74. Huo T, Barth RF, Yang W, Nakkula RJ, Koynova R, Tenchov B, Chaudhury AR, Agius L, Boulikas T, Elleaume H, et al. Preparation, biodistribution and neurotoxicity of liposomal cisplatin following convection enhanced delivery in normal and F98 glioma bearing rats. PLoS One. 2012;7(11):e48752. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0048752
  75. Duebgen M, Martinez-Quintanilla J, Tamura K, Hingtgen S, Redjal N, Wakimoto H, Shah K. Stem cells loaded with multimechanistic oncolytic herpes simplex virus variants for brain tumor therapy. J Natl Cancer Inst. 2014;106(6):dju090. https://doi.org/10.1093/jnci/dju090
  76. Lidar Z, Mardor Y, Jonas T, Pfeffer R, Faibel M, Nass D, Hadani M, Ram Z. Convection-enhanced delivery of paclitaxel for the treatment of recurrent malignant glioma: a phase I/II clinical study. J Neurosurg. 2004;100(3):472‐479.  https://doi.org/10.3171/jns.2004.100.3.0472
  77. Bruce JN, Fine RL, Canoll P, Yun J, Kennedy BC, Rosenfeld SS, Sands SA, Surapaneni K, Lai R, Yanes CL, et al. Regression of recurrent malignant gliomas with convection-enhanced delivery of topotecan. Neurosurgery. 2011;69(6):1272‐1279; discussion 1279-1280. https://doi.org/10.1227/NEU.0b013e3182233e24
  78. Saito R, Sonoda Y, Kumabe T, Nagamatsu K, Watanabe M, Tominaga T. Regression of recurrent glioblastoma infiltrating the brainstem after convection-enhanced delivery of nimustine hydrochloride. J Neurosurg Pediatr. 2011;7(5):522-526.  https://doi.org/10.3171/2011.2.peds10407
  79. Bogdahn U, Hau P, Stockhammer G, Venkataramana NK, Mahapatra AK, Suri A, Balasubramaniam A, Nair S, Oliushine V, Parfenov V, et al. Targeted therapy for high-grade glioma with the TGF-β2 inhibitor trabedersen: results of a randomized and controlled phase IIb study. Neuro Oncol. 2011;13(1):132‐142.  https://doi.org/10.1093/neuonc/noq142
  80. Markert JM, Razdan SN, Kuo HC, Cantor A, Knoll A, Karrasch M, Nabors LB, Markiewicz M, Agee BS, Coleman JM, et al. A phase 1 trial of oncolytic HSV-1, G207, given in combination with radiation for recurrent GBM demonstrates safety and radiographic responses. Mol Ther. 2014;22(5):1048‐1055. https://doi.org/10.1038/mt.2014.22

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.