Безбородова О.А.

Московский научно-исследовательский онкологический институт им. П.А. Герцена — филиал ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр радиологии» Минздрава России

Панкратов А.А.

Московский научно-исследовательский онкологический институт им. П.А. Герцена — филиал ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр радиологии» Минздрава России

Шегай П.В.

Московский научно-исследовательский онкологический институт им. П.А. Герцена — филиал ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр радиологии» Минздрава России

Каприн А.Д.

Московский научно-исследовательский онкологический институт им. П.А. Герцена — филиал ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр радиологии» Минздрава России

Антигенные рецепторы в разработке CAR-T клеток для иммунотерапии глиобластомы

Авторы:

Безбородова О.А., Панкратов А.А., Шегай П.В., Каприн А.Д.

Подробнее об авторах

Прочитано: 1315 раз


Как цитировать:

Безбородова О.А., Панкратов А.А., Шегай П.В., Каприн А.Д. Антигенные рецепторы в разработке CAR-T клеток для иммунотерапии глиобластомы. Онкология. Журнал им. П.А. Герцена. 2024;13(6):91‑95.
Bezborodova OA, Pankratov AA, Shegay PV, Kaprin AD. Antigen receptors in the development of CAR-T cells for glioblastoma immunotherapy. P.A. Herzen Journal of Oncology. 2024;13(6):91‑95. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/onkolog20241306191

Рекомендуем статьи по данной теме:

Глиобластома (ГБМ) является наиболее распространенной и агрессивной первичной злокачественной опухолью головного мозга у взрослых. Частота возникновения ГБМ увеличивается с возрастом и достигает пика в 75—84 года при частоте встречаемости примерно 3 случая на 100 000 взрослого населения [1].

Современный стандарт лечения ГБМ включает максимально безопасное хирургическое вмешательство с последующей лучевой и адъювантной химиотерапией [2]. Каждый из стандартных вариантов лечения позволяет добиться определенного улучшения качества жизни пациента, а в ряде случаев — стабилизации процесса заболевания. Однако прогноз для пациентов остается неблагоприятным: медиана общей выживаемости составляет от 12 до 18 мес после постановки диагноза [3]. Поэтому актуальным является поиск новых терапевтических подходов к лечению ГБМ.

Клеточная терапия — бурно развивающееся направление в иммунотерапии рака, которая предполагает использование цитотоксического потенциала модифицированных T-лимфоцитов, экспрессирующих на своей поверхности синтетические рецепторы, известные как химерные антигенные рецепторы (Chimeric Antigen Receptor, CAR).

Молекулярные механизмы, лежащие в основе терапии клетками CAR-T, включают генетическую модификацию полученных от пациента T-клеток для экспрессии CAR, специально разработанных для распознавания мишеней — опухолеассоциированных антигенов, которые имеют более высокий уровень экспрессии в опухолях по сравнению с нормальной тканью [4].

Взаимодействие между CAR и мишенью приводит к образованию иммунных синапсов и инициации каскадов внутриклеточных реакций, которые запускают активацию T-клеток и их эффекторные функции: секрецию цитотоксических молекул (перфорина и гранзима) и высвобождение провоспалительных цитокинов, таких как интерферон-гамма (IFN-γ), а также фактора некроза опухоли (TNF-α). Это приводит к таргетированному уничтожению опухолевых клеток [4].

Учитывая, что CAR-T терапия продемонстрировала высокий клинический потенциал в области онкогематологии, улучшив прогноз и общую выживаемость пациентов, включая полную неподдерживаемую (не требующую дополнительного лечения) ремиссию значительной доли больных острым лимфобластным лейкозом, этот метод рассматривается как перспективный подход к лечению ГБМ, поскольку CAR-T клетки преодолевают гематоэнцефалический барьер [5]. Однако пока этот метод лечения не достиг широкого клинического применения. Главной причиной ограничения — высокая гетерогенность опухоли. Поэтому поиск и идентификация антигенов ГБМ с целью оптимизации специфичности CAR-T клеток все еще остаются крайне актуальной задачей.

В настоящей работе рассматриваются опухолеассоциированные антигены: EGFRvIII — рецептор эпидермального фактора роста, вариант III, IL13Rα2 — субъединица альфа-2 рецептора интерлейкина-13, HER2 — рецептор эпидермального фактора роста человека 2-го типа, B7-H3 — трансмембранный белок, член семейства белков B7 и GD2 — дисиалоганглиозид 2 как перспективные CAR-целевые антигены [6—9].

Anti-EGFRvIII-CAR-T терапия

Anti-EGFRvIII-CAR-T терапия является альтернативной стратегией лечения при злокачественных опухолях со сверхэкспрессией EGFRvIII — мутантного варианта EGFR.

EGFR (ERBB-1) — трансмембранный белок; относится к семейству эпидермального фактора роста (EGF); EGFR играет важную роль в миграции нервных стволовых клеток во время развития и активации сигнальных путей MAPK (Mitogen-Activated Protein Kinase) и PI3K-Akt (Phosphatidylinositol 3-kinases/protein kinase B), а также стимулирует клеточную пролиферацию.

Мутантный вариант EGFRvIII возникает в результате делеции экзонов 2—7 гена EGFR. EGFRvIII выявляется в опухолях у 30% пациентов с примерно 75% EGFRvIII-позитивных клеток [10], при этом отсутствует в нормальных тканях.

Несмотря на то что в доклинических исследованиях на мышиных моделях ГБМ была продемонстрирована эффективность anti-EGFRvIII CAR-T терапии [11], при первом применении у человека лечебный эффект был весьма ограничен из-за гетерогенности заболевания и иммуносупрессивного микроокружения опухоли. По данным авторов, медиана общей выживаемости составляла всего 8 мес. Иммуногистохимическое исследование позволяет установить, что все образцы ГБМ, помимо мутантной формы EGFRvIII, экспрессируют рецептор EGFR дикого типа. Этот фактор является неблагоприятным в отношении прогноза заболевания и свидетельствует о высоком уровне пролиферативной активности опухоли, агрессивности и устойчивости к проводимой терапии [12]. К настоящему моменту разработана конструкция CARv3-TEAM-E, которая направлена на опухолеспецифический антиген — рецептор EGFRvIII, а также на белок EGFR дикого типа посредством секреции молекулы антитела, взаимодействующего с T-клетками (TEAM, T-cell — Engaging Antibody Molecule) [13].

Клиническое исследование I фазы с дизайном 3+3, направленное на определение безопасной дозы CARv3-TEAM-E при интратуморальном введении у больных с рецидивирующей или впервые диагностированной глиобластомой, показало, что ни у одного из пациентов не развилась токсичность выше 3-й степени. Несмотря на то что у всех пациентов диагностировали стабилизацию заболевания, у 2 из 3 участников наблюдалось прогрессирование.

Для снижения нецелевой токсичности и повышения специфичности CAR-T клеток разрабатываются конструкции химерных рецепторов, которые нацелены на другие внеклеточные домены мутантных форм EGFR [14]. Например, CAR-806EGFR не распознает EGFR дикого типа в нормальной ткани головного мозга, поскольку эпитоп экспонируется только в конформациях, которые присутствуют на сверхэкспрессирующих опухолевых клетках. Подход к использованию CAR с широкой специфичностью может иметь преимущество в нацеливании на несколько клонов опухолевых клеток, как было показано в клинических исследованиях, которые селективно ориентированы на вариант EGFRvIII. К настоящему моменту терапевтический эффект был продемонстрирован только в доклинических исследованиях на мышиных моделях ГБМ [15, 16].

Anti-B7-H3-CAR-T терапия

Привлекательной мишенью для иммунотерапии рака является иммунорегуляторный белок B7-H3 (CD276), который сверхэкспрессируется в опухолевых клетках, демонстрируя ограниченную экспрессию в нормальных тканях [17]. Так, в работе C. Zhang и соавт. [22] показано, что экспрессия B7-H3 наблюдается в 70% исследованных образцов ГБМ; интенсивность экспрессии B7-H3 в опухоли значимо коррелирует с клиническим исходом заболевания.

В семействе белка B7, куда входит B7-H3, выделяют группы молекул, которые взаимодействуют с контрольными точками иммунитета (CTLA-4 и PD-1) [18]. Поэтому белок B7-H3 (CD276) является иммунной контрольной точкой с двойственной функциональной активностью, т.е. оказывает костимулирующее/коингибиторное регуляторное действие [19—21].

B7-H3 рассматривают не только как потенциальный прогностический фактор, но и терапевтическую мишень. Например, известен препарат на основе конъюгата моноклонального антитела против B7-H3 и радиоактивного йода [23], который продемонстрировал положительный клинический эффект у пациентов детского возраста с диффузной внутренней глиомой ствола головного мозга.

Учитывая положительную клиническую эффективность конъюгата и тот факт, что B7-H3 высоко экспрессируется на клетках ГБМ, в настоящее время разработан клеточный продукт anti-B7-H3-CAR-T клетки. Результаты I фазы клинического испытания свидетельствуют о хорошей переносимости клеточного продукта. Включенные в исследование 12 пациентов с диффузной срединной глиомой головного мозга, получавшие внутривенное введение, прошли лечение без возникновения синдрома высвобождения цитокинов и признаков нейротоксичности. У 1 пациента при локорегиональном введении anti-B7-H3-CAR-T клеток наблюдали стабилизацию процесса и незначительное уменьшение размера опухоли [24, 25].

Anti-IL13Rα2-CAR-T терапия

Мишенью для иммунотерапии является IL-13Rα2 (CD213A2) — трансмембранный белок и субъединица альфа-2 рецептора противовоспалительного интерлейкина-13.

IL-13Rα2 выявляется в широком спектре опухолевых клеток, включая рак поджелудочной, молочной желез и яичников [26]. Также IL-13Rα2 определяется у 50% пациентов с ГБМ, у 85% с диффузной срединной глиомой головного мозга. По данным ряда авторов [27], IL-13Rα2 является прогностическим маркером.

Попытки применения anti-IL13Rα2-CAR-T клеток, предпринимавшиеся еще в 2015 г. [28], не принесли ожидаемого эффекта: у всех пациентов наблюдался рецидив опухоли. Исследование по эскалации дозы anti-IL13Rα2-CAR-T клеток, проведенное тем же автором, продемонстрировало регрессию опухоли у 1 пациента, которая продолжалась в течение 7,5 мес после инфузий [29].

В 2024 г. та же группа сообщила о результатах завершенного исследования I фазы с включением 65 пациентов (в возрасте от 12 до 75 лет) с рецидивирующей глиомой высокой степени злокачественности, у которых при лечении использовались еженедельные внутриопухолевые и/или внутрижелудочковые инфузии T-клеток, экспрессирующих IL13Rα2-специфические химерные антигенные рецепторы [30]. В это исследование были включены пациенты, у которых были исчерпаны все методы традиционного лечения и не имелось альтернатив. Для участия в исследовании отбирали пациентов с индексом по шкале Карновского 60 или выше, ожидаемой продолжительностью жизни более 4 нед и подтвержденной экспрессией в опухоли IL-13Rα2. Из включенных в исследование 58 пациентов получили по 3 инфузии anti-IL13Rα2-CAR-T клеток, далее оценили ответ на заболевание и общую выживаемость. В исследовании предлагалось три пути локорегионального введения клеток (интратуморальный, интравентрикулярный и интратуморальный/интратутрикулярный).

Результаты, полученные в ходе клинического испытания, продемонстрировали, что локорегиональное введение anti-IL13Rα2-CAR-T клеток вызывало у 30% пациентов токсичность 3-й степени. Токсичность была связана с CAR-T терапией. У 1 пациента наблюдалась энцефалопатия 3-й степени, у 1– атаксия 3-й степени, у 2 — отек мозга 4-й степени. Стабилизация заболевания или улучшение было достигнуто у 50% пациентов, при этом диагностировались некоторые частичные и полные ответы. Медиана общей выживаемости для всех пациентов составила 7,7 мес.

Помимо этого, в исследование I фазы [7] в когорте из 6 пациентов использовали аллогенные стероидрезистентные CAR-T клетки, соединенные с рекомбинантным IL-2 человека, полученные от здорового донора. Терапию проводили на фоне системного введения дексаметазона. Клетки IL13Rα2-targeted-CAR+(IL13-zetakine+) были получены из продукта цитолитических T-лимфоцитов с использованием технологии редактирования генома — цинк-пальцевой нуклеазы (ZFN). Терапия, по данным авторов, хорошо переносилась, и у 4 из 6 леченых пациентов наблюдались временное уменьшение опухоли или некроз опухоли в месте инфузии клеточного продукта, однако у всех пациентов в ходе дальнейшего наблюдения был выявлен рецидив.

Anti-HER2-CAR-T терапия

HER2 (CD340/Neu/ ErbB2) — трансмембранный белок является членом семейства эпидермального фактора роста (EGF). Общая частота сверхэкспрессии HER2 в клетках ГБМ составляет около 80% [31], поэтому HER2 может стать потенциальной терапевтической мишенью для ее лечения.

Было проведено исследование по введению HER2-специфических CAR-T клеток пациентам с прогрессирующей ГБМ [8]. В когорте из 17 пациентов с диагнозом «прогрессирующая HER2-положительная ГБМ», из которых 7 в возрасте до 18 лет, использовалось лечение, включающее одну или несколько инфузий anti-HER2-CAR-T клеток, вводимых без лимфодеплеции (устранения собственных клеток, способных снижать активность CAR-T-лимфоцитов). Среди 16 обследованных пациентов (включая 9 взрослых и 7 детей) результаты разнились: у 1 наблюдался частичный ответ, продолжавшийся более 9 мес, у 7 — стабилизация заболевания в течение от 8 нед до 29 мес, в то время как у 8 пациентов диагностировалось прогрессирование заболевания. Медиана общей выживаемости составила 11,1 мес с момента начала первой инфузии T-клеток и 24,5 мес с момента постановки диагноза.

В настоящее время стартовало клиническое исследование I фазы (NCT04903080 https://clinicaltrials.gov/study/NCT04903080 ) с применением HER2-специфических CAR-T клеток для лечения пациентов детского возраста с рефрактерной или рецидивирующей эпендимомой после проведения лимфодеплеционной химиотерапии (результаты не опубликованы).

Anti-GD2-CAR-T терапия

Дисиалоганглиозид GD2 — гликосфинголипид [32]. В злокачественных новообразованиях описана повышенная экспрессия GD2 на клетках нейробластомы, глиобластомы и астроцитомы и в ряде других опухолей [33—35]. Высокая экспрессия GD2 характерна для клеток диффузной средостенной глиомы с мутацией H3K27M, редкой, но довольно агрессивной злокачественной опухоли [36]. В нормальных клетках эта молекула практически не представлена, за исключением минорной экспрессии на клетках головного мозга, в периферических нервах и меланоцитах кожи. При опухолевой трансформации экспрессия GD2 возрастает на порядок, достигая 10 млн молекул на клетку.

GD2 подавляет функцию NK-клеток посредством связывания с Siglec-7, ремодулирует и поддерживает иммуносупрессивный фенотип микроокружения опухоли [37—39]. GD2 снижает функциональную активность T-клеток, дендритных клеток, одновременно способствуя привлечению клеток-супрессоров миелоидного происхождения и T-регуляторных клеток.

Три анти-GD2-mAb-препарата были официально разрешены для клинического применения в лечении пациентов с нейробластомой высокого риска [40]. Включение иммунотерапии anti-GD2-антителами в схемы лечения пациентов с рецидивами нейробластомы позволяет у части больных добиться улучшения ответа или стабилизации заболевания.

Учитывая положительную клиническую эффективность моноклональных антител анти-GD2-mAb и тот факт, что GD2 экспрессируется на поверхности опухолевых клеток при низких уровнях экспрессии в нормальных тканях [33], можно предположить, что молекулярная мишень GD2 рассматривается как перспективная для создания anti-GD2-CAR-T клеток. Следует отметить, что в программе по приоритезации опухолеассоциированных антигенов Национального института рака США GD2 стоит на 12-м месте в числе наиболее значимых антигенов [41].

В 2022 г. R.Majzner и соавт. [42] опубликовали результаты клинической апробации anti-GD2-CAR-T клеток. У 4 пациентов с диффузной срединной глиомой головного мозга, которые получили несколько внутривенных инфузий продукта, и 1 получавшего интрацеребровентрикулярные инфузии наблюдали системный воспалительный ответ организма (синдром высвобождения цитокинов) и нейротоксичность. При этом у одного пациента наблюдали уменьшение объема опухоли после первой инфузии, у второго — инфильтрацию иммунными клетками опухоли, но без клинического эффекта, у третьего — уменьшение объема опухоли после 5 инфузий, но со смертельным исходом.

В исследовании NCT03170141 [9] выявлена безопасность внутривенных инфузий (в 3 случаях с последующим внутриполостным введением) анти-GD2-CAR-T клеток у 4 пациентов с ГБМ. Среди них у 2 пациентов не было зарегистрировано никакого ответа, а у 2 других наблюдали частичный ответ.

Была проведена оценка безопасности anti-GD2-CAR-T клеток у 8 пациентов с ГБМ [9] при внутримозговом внутрижелудочковом введении 4SCAR-T клеток и у 3 при внутривенном одновременно с интратуморальным введением. 4SCAR-T терапия хорошо переносилась, серьезных побочных эффектов не выявлено. Несмотря на то что у некоторых пациентов удалось достичь увеличения медианы общей выживаемости, небольшой размер выборки не позволил четко определить клинические преимущества.

Заключение

Таргетная иммунотерапия с использованием CAR-T клеток к EGFRvIII, B7-H3, IL13Rα2, HER2 и GD2 демонстрирует достаточно скромные результаты, что затрудняет сделать окончательные выводы об эффективности и безопасности терапии. Молекулярный механизм, лежащий в основе CAR-T терапии, основан на сложном взаимодействии сконструированных химерных рецепторов CAR с опухолевыми клетками через распознавание антигенов, которые имеют высокий уровень экспрессии в клетках глиобластомы. Известно, что на молекулярном уровне эти опухоли значительно отличаются у каждого пациента и даже в пределах одной и той же опухоли могут проявлять гетерогенность. Поэтому одними из основных ограничений CAR-T терапии глиобластомы являются разнообразие антигенов и их генетическая и молекулярная изменчивость. Продолжение исследований, касающихся разработки химерных рецепторов с несколькими направленностями, является обязательным условием для продвижения этого подхода к достижению значимых клинических результатов и в конечном итоге для улучшения прогноза у пациентов с этим заболеванием.

Работа выполнена в рамках госзадания Министерства здравоохранения Российской Федерации (№ CAHN-2024-0004).

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Ostrom QT, Patil N, Cioffi G, Waite K, Kruchko C, Barnholtz-Sloan JS. CBTRUS Statistical Report: primary brain and other central nervous system tumors diagnosed in the United States in 2013—2017. Neuro Oncol. 2020;22(12 Suppl. 2):iv1-iv96. https://doi.org/10.1093/neuonc/noaa200
  2. Kotecha R, Odia Y, Khosla AA, Ahluwalia MS. Key clinical principles in the management of glioblastoma. JCO Oncol Pract. 2023;19(4):180-189.  https://doi.org/10.1200/OP.22.00476
  3. Weller M, Wick W, Aldape K, Brada M, Berger M, Pfister SM, Nishikawa R, Rosenthal M, Wen PY, Stupp R, et al. Glioma. Nat Rev Dis Primers. 2015;1:15017. https://doi.org/10.1038/nrdp.2015.17
  4. Agosti E, Zeppieri M, De Maria L, Tedeschi C, Fontanella MM, Panciani PP, Ius T. Glioblastoma immunotherapy: a systematic review of the present strategies and prospects for advancements. Int J Mol Sci. 2023;24(20):15037. https://doi.org/10.3390/ijms242015037
  5. Bagley SJ, Desai AS, Linette GP, June CH, O’Rourke DM. CAR T-cell therapy for glioblastoma: recent clinical advances and future challenges. Neuro Oncol. 2018;20(11):1429-1438, https://doi.org/10.1093/neuonc/noy032
  6. Goff SL, Morgan RA, Yang JC, Sherry RM, Robbins PF, Restifo NP, Feldman SA, Lu YC, Lu L, Zheng Z, et al. Pilot trial of adoptive transfer of chimeric antigen receptor-transduced T cells targeting EGFRvIII in patients with glioblastoma. J Immunother. 2019;42(4):126-135.  https://doi.org/10.1097/CJI.0000000000000260
  7. Brown CE, Rodriguez A, Palmer J, Ostberg JR, Naranjo A, Wagner JR, Aguilar B, Starr R, Weng L, Synold TW, et al. Off-the-shelf, steroid-resistant, IL13Rα2-specific CAR T cells for treatment of glioblastoma. Neuro Oncol. 2022;24(8):1318-1330. https://doi.org/10.1093/neuonc/noac024
  8. Ahmed N, Brawley V, Hegde M, Bielamowicz K, Kalra M, Landi D, Robertson C, Gray TL, Diouf O, Wakefield A, et al. HER2-specific chimeric antigen receptor-modified virus-specific T cells for progressive glioblastoma: a phase 1 dose-escalation trial. JAMA Oncol. 2017;3(8):1094-1101. https://doi.org/10.1001/jamaoncol.2017.0184
  9. Liu Z, Zhou J, Yang X, Liu Y, Zou C, Lv W, Chen C, Cheng KK, Chen T, Chang LJ, et al. Safety and antitumor activity of GD2-Specific 4SCAR-T cells in patients with glioblastoma. Mol Cancer. 2023;22(1):3.  https://doi.org/10.1186/s12943-022-01711-9
  10. Struve N, Binder ZA, Stead LF, Brend T, Bagley SJ, Faulkner C, Ott L, Müller-Goebel J, Weik AS, Hoffer K, et al. EGFRvIII upregulates DNA mismatch repair resulting in increased temozolomide sensitivity of MGMT promoter methylated glioblastoma. Oncogene. 2020;39(15):3041-3055. https://doi.org/10.1038/s41388-020-1208-5
  11. Johnson LA, Scholler J, Ohkuri T, Kosaka A, Patel PR, McGettigan SE, Nace AK, Dentchev T, Thekkat P, Loew A, et al. Rational development and characterization of humanized anti-EGFR variant III chimeric antigen receptor T cells for glioblastoma. Sci Transl Med. 2015;7(275):275ra22. https://doi.org/10.1126/scitranslmed.aaa4963
  12. O’Rourke DM, Nasrallah MP, Desai A, Melenhorst JJ, Mansfield K, Morrissette JJD, Martinez-Lage M, Brem S, Maloney E, Shen A, et al. A single dose of peripherally infused EGFRvIII-directed CAR T cells mediates antigen loss and induces adaptive resistance in patients with recurrent glioblastoma. Sci Transl Med. 2017;9(399):eaaa0984. https://doi.org/10.1126/scitranslmed.aaa0984
  13. Choi BD, Gerstner ER, Frigault MJ, Leick MB, Mount CW, Balaj L, Nikiforow S, Carter BS, Curry WT, Gallagher K, et al. Intraventricular CARv3-TEAM-E T cells in recurrent glioblastoma. N Engl J Med. 2024;390(14):1290-1298. https://doi.org/10.1056/NEJMoa2314390
  14. Thokala R, Binder ZA, Yin Y, Zhang L, Zhang JV, Zhang DY, Milone MC, Ming GL, Song H, O’Rourke DM. High-affinity chimeric antigen receptor with cross-reactive scFv to clinically relevant EGFR oncogenic isoforms. Front Oncol. 2021;11:664236, https://doi.org/10.3389/fonc.2021.664236
  15. Chen M, Sun R, Shi B, Wang Y, Di S, Luo H, Sun Y, Li Z, Zhou M, Jiang H. Antitumor efficacy of chimeric antigen receptor T cells against EGFRvIII-expressing glioblastoma in C57BL/6 mice. Biomed Pharmacother. 2019;113:108734. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2019.108734
  16. Ravanpay AC, Gust J, Johnson AJ, Rolczynski LS, Cecchini M, Chang CA, Hoglund VJ, Mukherjee R, Vitanza NA, Orentas RJ, et al. EGFR806-CAR T cells selectively target a tumor-restricted EGFR epitope in glioblastoma. Oncotarget. 2019;10(66):7080-7095. https://doi.org/10.18632/oncotarget.27389
  17. Zhou WT, Jin WL. B7-H3/CD276: an emerging cancer immunotherapy. Front Immunol. 2021;12:701006. https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.701006
  18. Janakiram M, Shah UA, Liu W, Zhao A, Schoenberg MP, Zang X. The third group of the B7-CD28 immune checkpoint family: HHLA2, TMIGD2, B7x, and B7-H3. Immunol Rev. 2017;276(1):26-39.  https://doi.org/10.1111/imr.12521
  19. Flem-Karlsen K, Fodstad O, Tan M, Nunes-Xavier CE. B7-H3 in cancer — beyond immune regulation. Trends Cancer. 2018;4(6):401-404.  https://doi.org/10.1016/j.trecan.2018.03.010
  20. Wang L, Kang F, Sun N, Wang J, Chen W, Li D, Shan B. The tumor suppressor miR-124 inhibits cell proliferation and invasion by targeting B7-H3 in osteosarcoma. Tumor Biol. 2016;37(11):14939-14947. https://doi.org/10.1007/s13277-016-5386-2
  21. Purvis IJ, Avilala J, Guda MR, Venkataraman S, Vibhakar R, Tsung AJ, Velpula KK, Asuthkar S. Role of MYC-miR-29-B7-H3 in medulloblastoma growth and angiogenesis. J Clin Med. 2019;8(8):1158. https://doi.org/10.3390/jcm8081158
  22. Zhang C, Zhang Z, Li F, Shen Z, Qiao Y, Li L, Liu S, Song M, Zhao X, Ren F, et al. Large-scale analysis reveals the specific clinical and immune features of B7-H3 in glioma. Oncoimmunology. 2018;7(11):e1461304. https://doi.org/1080/2162402X.2018.1461304
  23. Bander ED, Ramos AD, Wembacher-Schroeder E, Ivasyk I, Thomson R, Morgenstern PF, Souweidane MM. Repeat convection-enhanced delivery for diffuse intrinsic pontine glioma. J Neurosurg Pediatr. 2020;26(6):661-666.  https://doi.org/10.3171/2020.6.PEDS20280
  24. Vitanza NA, Wilson AL, Huang W, Seidel K, Brown C, Gustafson JA, Yokoyama JK, Johnson AJ, Baxter BA, Koning RW, et al. Intraventricular B7-H3 CAR T cells for diffuse intrinsic pontine glioma: preliminary first-in-human bioactivity and safety. Cancer Discov. 2023;13(1):114-131.  https://doi.org/10.1158/2159-8290.CD-22-0750
  25. Vitanza N, Ronsley R, Wilson A, Huang W, Seidel K, Pinto N, Gust J, Gardner R, Jensen M, Park J. TRLS-12. Intraventricular B7-H3 CAR T cells for diffuse intrinsic pontine glioma: interim analysis of brainchild-03 arm c. Neuro Oncol. 2023;25(Supplement_1):i81-i82.  https://doi.org/10.1093/neuonc/noad073.315
  26. Jaen M, Martin-Regalado A, Bartolome RA, Robles J, Casal, JI. Interleukin 13 receptor alpha 2 (IL13Ralpha2): expression, signaling pathways and therapeutic applications in cancer. Biochim Biophys Acta Rev Cancer. 2022;1877(5):188802. https://doi.org/10.1016/j.bbcan.2022.188802
  27. Zeng J, Zhang J, Yang YZ, Wang F, Jiang H, Chen HD, Wu HY, Sai K, Hu WM. IL13RA2 is overexpressed in malignant gliomas and related to clinical outcome of patients. Am J Transl Res. 2020;12(8):4702-4714.
  28. Brown CE, Badie B, Barish ME, Weng L, Ostberg JR, Chang WC, Naranjo A, Starr R, Wagner J, Wright C, et al. Bioactivity and safety of IL13Ralpha2-redirected chimeric antigen receptor CD8+ T cells in patients with recurrent glioblastoma. Clin Cancer Res. 2015;21(18):4062-4072. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-15-0428
  29. Brown CE, Alizadeh D, Starr R, Weng L, Wagner JR, Naranjo A, Ostberg JR, Blanchard MS, Kilpatrick J, Simpson J, et al. Regression of glioblastoma after chimeric antigen receptor T-cell therapy. N Engl J Med. 2016;375(26):2561-2569. https://doi.org/10.1056/NEJMoa1610497
  30. Brown CE, Hibbard JC, Alizadeh D, Blanchard MS, Natri HM, Wang D, Ostberg JR, Aguilar B, Wagner JR, Paul JA, et al. Locoregional delivery of IL-13Ralpha2-targeting CAR-T cells in recurrent high-grade glioma: a phase 1 trial. Nat Med. 2024;30(4):1001-1012. https://doi.org/10.1038/s41591-024-02875-1
  31. Mineo JF, Bordron A, Baroncini M, Maurage CA, Ramirez C, Siminski RM, Berthou C, Dam Hieu P. Low HER2-expressing glioblastomas are more often secondary to anaplastic transformation of low-grade glioma. J Neurooncol. 2007;85(3):281-287.  https://doi.org/10.1007/s11060-007-9424-1
  32. Machy P, Mortier E, Birkle S. Biology of GD2 ganglioside: implications for cancer immunotherapy. Front Pharmacol. 2023;14:1249929. https://doi.org/10.3389/fphar.2023.1249929
  33. Nazha B, Inal C, Owonikoko TK. Disialoganglioside GD2 expression in solid tumors and role as a target for cancer therapy. Front Oncol. 2020;10:1000. https://doi.org/doi:10.3389/fonc.2020.01000
  34. Cheresh DA, Pierschbacher MD, Herzig MA, Mujoo K. Disialogangliosides GD2 and GD3 are involved in the attachment of human melanoma and neuroblastoma cells to extracellular matrix proteins. J Cell Biol. 1986;102(3):688-696.  https://doi.org/10.1083/jcb.102.3.688
  35. Liang YJ, Ding Y, Levery SB, Lobaton M, Handa K, Hakomori SI. Differential expression profiles of glycosphingolipids in human breast cancer stem cells vs. cancer non-stem cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 2013;110(13):4968-4973. https://doi.org/10.1073/pnas.1302825110
  36. Julien S, Bobowski M, Steenackers A, Le Bourhis X, Delannoy P. How do gangliosides regulate RTKs signaling? Cells. 2013;2(4):751-767.  https://doi.org/10.3390/cells2040751
  37. Theruvath J, Menard M, Smith BAH, Linde MH, Coles GL, Dalton GN, Wu W, Kiru L, Delaidelli A, Sotillo E, et al. Anti-GD2 synergizes with CD47 blockade to mediate tumor eradication. Nat Med. 2022;28(2):333-344.  https://doi.org/10.1038/s41591-021-01625-x
  38. Shurin GV, Shurin MR, Bykovskaia S, Shogan J, Lotze MT, Barksdale EM Jr. Neuroblastoma-derived gangliosides inhibit dendritic cell generation and function. Cancer Res. 2001;61(1):363-369. 
  39. Wondimu A, Liu Y, Su Y, Bobb D, Ma JS, Chakrabarti L, Radoja S, Ladisch S. Gangliosides drive the tumor infiltration and function of myeloid-derived suppressor cells. Cancer Res. 2014;74(19):5449-5457. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-14-0927
  40. Ladenstein R, Pötschger U, Valteau-Couanet D, Luksch R, Castel V, Ash S, Laureys G, Brock P, Michon JM, Owens C, et al. Investigation of the role of dinutuximab beta-based immunotherapy in the SIOPEN high-risk neuroblastoma 1 trial (HR-NBL1). Cancers (Basel). 2020;12(2):309.  https://doi.org/10.3389/fonc.2020.01000
  41. Cheever MA, Allison JP, Ferris AS, Finn OJ, Hastings BM, Hecht TT, Mellman I, Prindiville SA, Viner JL, Weiner LM, et al. The prioritization of cancer antigens: a national cancer institute pilot project for the acceleration of translational research. Clin Cancer Res. 2009;15(17):5323-5337. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-09-0737
  42. Majzner RG, Ramakrishna S, Yeom KW, Patel S, Chinnasamy H, Schultz LM, Richards RM, Jiang L, Barsan V, Mancusi R, et al. GD2-CAR T cell therapy for H3K27M-mutated diffuse midline gliomas. Nature. 2022;603(7903):934-941.  https://doi.org/10.1038/s41586-022-04489-4

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.