Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Абрамов Д.С.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Дмитрия Рогачева» Минздрава России

Федорова А.С.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Дмитрия Рогачева» Минздрава России

Тузова Е.А.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Дмитрия Рогачева» Минздрава России

Мякова Н.В.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Дмитрия Рогачева» Минздрава России

Коновалов Д.М.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Дмитрия Рогачева» Минздрава России;
ФГБОУ ДПО «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Минздрава России

ALK-позитивная анапластическая крупноклеточная лимфома с поражением придаточных пазух носа: два клинических наблюдения и обзор литературы

Авторы:

Абрамов Д.С., Федорова А.С., Тузова Е.А., Мякова Н.В., Коновалов Д.М.

Подробнее об авторах

Журнал: Архив патологии. 2024;86(4): 42‑47

Прочитано: 1587 раз


Как цитировать:

Абрамов Д.С., Федорова А.С., Тузова Е.А., Мякова Н.В., Коновалов Д.М. ALK-позитивная анапластическая крупноклеточная лимфома с поражением придаточных пазух носа: два клинических наблюдения и обзор литературы. Архив патологии. 2024;86(4):42‑47.
Abramov DS, Fedorova AS, Tuzova EA, Myakova NV, Konovalov DM. ALK-positive anaplastic large cell lymphoma of paranasal sinuses: two cases report and literature review. Russian Journal of Archive of Pathology. 2024;86(4):42‑47. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/patol20248604142

Рекомендуем статьи по данной теме:
Рас­ту­щий пе­ре­лом вер­хней стен­ки ор­би­ты. Кли­ни­чес­кий слу­чай и об­зор ли­те­ра­ту­ры. Жур­нал «Воп­ро­сы ней­ро­хи­рур­гии» име­ни Н.Н. Бур­ден­ко. 2024;(5):77-86
Ро­бот-ас­сис­ти­ро­ван­ная ре­зек­ция те­ра­то­мы яич­ни­ка. Эн­дос­ко­пи­чес­кая хи­рур­гия. 2024;(5):54-58
Эпи­де­ми­оло­гия су­ици­даль­но­го по­ве­де­ния у де­тей и под­рос­тков во всем ми­ре. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2024;(11-2):16-26
Диаг­нос­ти­ка ней­ро­ин­фек­ций у де­тей. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2024;(11-2):51-59
Сов­ре­мен­ные под­хо­ды к ди­аг­нос­ти­ке и ле­че­нию син­дро­ма ве­ге­та­тив­ной дис­фун­кции у де­тей. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2024;(11-2):66-75
Изу­че­ние воз­мож­нос­ти при­ме­не­ния ме­то­дик для оцен­ки расстройств раз­ви­тия экспрес­сив­ной ре­чи у де­тей 3—6 лет. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2024;(11-2):103-109

ALK-позитивная анапластическая крупноклеточная лимфома (ALK+АККЛ) является частью гетерогенной группы анапластических крупноклеточных лимфом, выделяемой на основании морфологических, иммунофенотипических и цитологических признаков. Данная неоплазия имеет T-клеточное происхождение [1] и характеризуется драйверными хромосомными транслокациями с вовлечением гена ALK [1, 2]. Наиболее часто заболевание манифестирует с увеличения периферических лимфатических узлов, при дальнейшем обследовании нередко выявляется распространенное поражение внутренних органов и мягких тканей [1].

В данной работе представлено описание двух собственных наблюдений ALK+АККЛ, характеризующихся необычной локализацией поражения, и обзор литературы.

Клинический случай 1

Мальчик, 11 лет. В 2016 г. появились жалобы на заложенность носа, интенсивные головные боли в левой височной области, периодически сопровождающиеся тошнотой и онемением в левой половине лица, отечность левой половины лица. Амбулаторно применялись антибиотики, антигистаминные без эффекта. При проведении магнитно-резонансной томографии (МРТ) придаточных пазух носа выявлено снижение пневматизации левой клиновидной пазухи. Ребенок был консультирован оториноларингологом, неврологом. При проведении компьютерной томографии (КТ) головного мозга выявлено снижение пневматизации левой клиновидной пазухи (плотность до +60 HU) с деструкцией латеральной стенки пазухи, основания большого крыла клиновидной кости и основания крыловидного отростка слева, проникновением в среднюю черепную ямку до 12×12,4×17 мм и окологлоточное пространство слева. При контрастном усилении отмечалось накопление образованием контрастного вещества. Также была выполнена МРТ головного мозга с внутривенным контрастированием, выявлено изоинтенсивное в T1- и T2-режимах образование левой клиновидной пазухи с четкими ровными контурами, распространяющееся за пределы пазухи каудально и латерально и прорастающее в клиновидные мышцы. Отмечалось среднеинтенсивное кольцевидное накопление образованием контрастного вещества. В отделении детской нейрохирургии выполнены эндоскопическое частичное удаление и биопсия образования. Макроскопически полученные фрагменты мягкоэластической консистенции, белесовато-коричневого цвета, общим объемом до 1,3 см3. При гистологическом исследовании материал был представлен мелкими фрагментами патологической ткани, состоящими из компактно расположенных клеточных элементов крупного и среднего размера с обильной цитоплазмой и полиморфными ядрами, содержащими гранулярный хроматин и базофильные ядрышки. Был выявлен высокий уровень митотической и апоптотической активности. При иммуногистохимическом исследовании клетки экспрессировали CD30, ALK, TIA1, а также слабо — CD4 и фокально — c-myc (рис. 1, 2). Был установлен диагноз ALK+АККЛ (общий морфологический тип).

Рис. 1. Морфологическая картина ALK-позитивной анапластической крупноклеточной лимфомы, биопсия образования клиновидной пазухи.

а — ALK-позитивная анапластическая крупноклеточная лимфома характеризуется наличием солидных полей крупных, атипичных клеток. Эти клетки имеют полигональную форму, ядра овальной, бобовидной формы. Различим ангиоцентрический тип роста опухоли; б — цитоплазма клеток имеет слабобазофильное окрашивание. Опухоль обладает высокой митотической и апоптотической активностью, встречаются «ключевые» клетки. Окраска гематоксилином и эозином, а — ×40; б — ×100.

Рис. 2. Иммунофенотип ALK-позитивной анапластической крупноклеточной лимфомы.

а — яркая ядерно-цитоплазматическая, фокально мембранная экспрессия ALK, ×20; б — типичная для данной опухоли тотальная мембранная экспрессия CD30 с характерной точечной экспрессией антигена в зоне аппарата Гольджи, ×40.

Клинический случай 2

Мальчик, 4 года. В 2005 г. после незначительной травмы правой половины грудной клетки появились боли в месте ушиба, лихорадка до 39 °C. В ходе госпитализации был установлен диагноз правосторонней плевропневмонии, выполнена плевральная пункция с эвакуацией до 300 мл экссудата, цитологическое исследование не проводилось. Получал курс антибиотикотерапии с кратковременным эффектом. В гемограмме отмечалась тенденция к лейкоцитозу. Была выполнена биопсия лимфатического узла неизвестной локализации, диагностирована ALK+АККЛ. При дальнейшем обследовании выявлено поражение гайморовой пазухи, носоглотки, средостения, легких, периферических, внутрибрюшных лимфатических узлов, кожи. Проведена гайморотомия, терапия по протоколу NHL-BFM-90, ветвь для Кі-1-лимфом. В дальнейшем диагностированы 2 рецидива (в 2012 и 2017 г.), проводилась терапия по протоколу ALCL Relapse и терапия кризотинибом и винбластином соответственно. При исследовании увеличенного лимфатического узла и биоптата кожи в 2017 г. в лимфатическом узле и субэпителиально выявлен инфильтрат, состоящий из клеток среднего размера с обильной светлоэозинофильной цитоплазмой и ядрами неправильной формы с глыбчатым хроматином и заметными базофильными ядрышками. Клетки демонстрировали высокую митотическую активность. При иммуногистохимическом исследовании клетки экспрессировали CD30, ALK. Был установлен диагноз рецидива ALK+АККЛ (общий морфологический тип). Мы не приводим иллюстрации в связи с тем, что в нашем распоряжении имеются только материалы, относящиеся к рецидиву заболевания.

Обсуждение

Эпидемиология

ALK+АККЛ является одной из наиболее распространенных лимфом детского возраста (10—20%), кроме того, она составляет 3% всех неходжкинских лимфом у взрослых [3]. Пик заболеваемости приходится на детей 10—14 лет, у лиц мужского пола ALK+АККЛ встречается чаще (по разным данным, соотношение пациентов мужского и женского пола варьирует от 1,5:1 [1, 4] до 6,5:1 [3, 5]).

Клиническая картина

В 90% случаев первичным проявлением ALK+АККЛ является лимфаденопатия (преимущественно шейных, паховых, подмышечных лимфатических узлов) [6, 7]. На продвинутых стадиях заболевания могут возникать экстранодальные поражения (кожа, легкие, печень, мягкие ткани, органы пищеварительного тракта, селезенка) [1]. Необходимо отметить, что экстранодальное расположение вблизи слизистых оболочек нехарактерно для ALK+АККЛ и других T-клеточных лимфом и встречается чаще при лимфомах B-клеточной линии дифференцировки [8—12]. Частота поражения средостения достигает 50% [13]. У 60% пациентов возникают так называемые общие симптомы (B-симптомы): лихорадка, ночная потливость, потеря более 10% массы тела в течение 6 мес [6]. Поражение костного мозга встречается в 10—30% случаев [14]. Помимо лимфаденопатии, ALK+АККЛ может манифестировать с проявления гемофагоцитарного лимфогистиоцитоза [15].

Обязательным методом диагностики в случае ALK+ АККЛ является биопсия очага поражения (лимфатического узла и/или экстранодального очага). Для стадирования и оценки соматического статуса используются общий и биохимический анализы крови, исследование мазка периферической крови, аспирация и биопсия костного мозга, компьютерная томография грудной клетки, брюшной полости и таза с контрастированием, магнитно-резонансная томография, исследование спинно-мозговой жидкости, позитронно-эмиссионная компьютерная томография с фтордезоксиглюкозой [16]. Стадирование заболевания проводят по унифицированным системам: St Jude, Ann Arbor, Lugano [16, 17].

Этиология и патогенез

Наиболее распространенной драйверной мутацией для ALK+АККЛ является реципрокная транслокация t(2;5)(p23;q35), приводящая к слиянию генов, кодирующих белки ALK и NPM [2, 18]. Домен димеризации белка NPM обеспечивает аутофосфорилирование и активацию киназы ALK, что запускает дальнейший каскад молекулярных событий [2, 19]. Реже в качестве партнеров ALK выступают гены ALO17 [20], TFG [21], TPM3, TPM4 [22, 23], MYH9 [24], CLTC [25], ATIC [26], MSN [27]. К основным сигнальным путям, активируемым в клетках ALK+АККЛ, относятся Ras/ERK, JAK3/STAT3, PI3K/Akt и NF-κB. Следствием активации данных каскадов является усиление выживания и пролиферации клеток лимфомы, их миграционного и инвазивного потенциала [2, 28].

Множество работ посвящено установлению гистогенеза ALK+АККЛ. В более ранних работах [29—31] говорилось о происхождении данной лимфомы из зрелых активированных T-лимфоцитов, регуляторных T-лимфоцитов или T-хелперов (причиной таких предположений были иммунофенотип и периферическая локализация поражения). Однако в более поздних работах на основании сравнительного исследования профиля экспрессии генов и метиломов было продемонстрировано, что ALK+АККЛ может возникать на ранних этапах развития T-лимфоцитов: из гемопоэтических стволовых клеток, ранних тимических предшественников [32—34], пре-T-клеток или дважды позитивных T-клеток [34]. Фактором, позволяющим клеткам лимфомы избежать бета-селекции (известно, что для ALK+ АККЛ характерно нарушение или отсутствие перестройки бета-цепи T-клеточного рецептора [34]), выжить, покинуть тимус и выйти в периферическую циркуляцию, скорее всего является химерный белок, образующийся в результате драйверной транслокации (чаще всего NPM::ALK) [34]. NPM::ALK также стимулирует выработку молекул, определяющих иммунофенотип ALK+АККЛ.

Морфологическая картина

Морфологическая картина ALK+АККЛ характеризуется разнообразием, однако ряд признаков встречается в большинстве случаев: наличие так называемых ключевых клеток (hallmark cells) с обильной цитоплазмой и эксцентрично расположенным ядром подковообразной или бубликообразной формы (что объясняется инвагинацией цитоплазмы в ядро), базофильными ядрышками и эозинофильно окрашенной зоной вокруг ядра, соответствующей аппарату Гольджи, а также многоядерных клеток, напоминающих клетки Рид—Березовского—Штернберга, но отличающихся значительно менее выраженными ядрышками [1, 35, 36]. Для «ключевых» клеток характерно периваскулярное расположение. По гистологической картине ALK+ АККЛ принято разделять на так называемые общий (common) и редкий (non-common) типы (внутри последнего выделяются мелкоклеточный, лимфогистиоцитарный и смешанный морфологические варианты) [1]. ALK+АККЛ общего типа (до 75% всех случаев) представлена «ключевыми» клетками, клетками, сходными с клетками Рид—Березовского—Штернберга, а также крупными многоядерными плеоморфными клетками иной морфологии [1]. Лимфогистиоцитарный вариант составляет около 10% всех случаев ALK+АККЛ и характеризуется обильной гистиоцитарной инфильтрацией, приводящей к стиранию структуры лимфатического узла и затруднению идентификации неопластических клеток. «Ключевые» клетки при этом, как правило, меньшего размера, чем при общем типе [1, 35]. Мелкоклеточный вариант встречается в 5—10% случаев ALK+ АККЛ. Он представлен мелкими и среднего размера клетками с ядрами неправильной формы, а также «ключевыми» клетками и клетками перстневидной формы [1, 35]. При смешанном варианте редкого типа отмечается сочетание признаков вышеперечисленных морфологических групп.

Иммунофенотип

Метод иммуногистохимического исследования — основополагающий в диагностике ALK+АККЛ. Константная экспрессия ALK опухолевыми клетками, выявляемая с помощью клонов антител ALK1 и D5F3, является специфичной для данной нозологии (локализация ALK может быть различной и зависит от присутствующего в клетках химерного гена) [37]. Кроме того, обнаруживаются мембранная и точечная цитоплазматическая экспрессия CD30 [38], экспрессия CD3, CD5, CD2, CD4, CD8, TIA1, Granzyme B, Perforin и других T-клеточных маркеров [1, 13, 35, 39—42]. В некоторых случаях встречается экспрессия маркеров миелоидной дифференцировки (CD13, HLA-DR) [43].

Прогноз

При использовании классических многокомпонентных схем химиотерапии 5-летняя выживаемость без прогрессии для пациентов с ALK+АККЛ приближается к 70%, а общая выживаемость достигает 80% и более [1, 44]. Частота рецидивов у детей и подростков после терапии первой линии составляет 25—35% [45, 46]. Обнадеживающие результаты демонстрируют недавние исследования, в которых к схемам лечения были добавлены кризотиниб (низкомолекулярный ингибитор тирозинкиназ) или брентуксимаб ведотин (конъюгат антимитотического агента монометила ауристатина E и моноклонального антитела к CD30). 2-летняя общая выживаемость составляет 95,2 и 97% соответственно, кроме того, не сообщалось о случаях рефрактерного или рецидивирующего течения [47, 48].

Заключение

В данной статье представлены два клинических случая ALK+АККЛ с типичной морфологией и иммунофенотипом с вовлечением придаточных пазух носа у детей 11 и 4 лет (необходимо отметить, что в случае 2 достоверно установить, являлось ли поражение верхнечелюстной пазухи первичным, не представляется возможным). Данная локализация не является характерной для этого заболевания и, по нашим сведениям, ранее не была описана в литературе. Информированность специалистов о возможности обнаружения ALK+АККЛ в соответствующих экстранодальных зонах может оказать влияние на спектр нозологий, учитываемых в дифференциальной диагностике, и выбор назначаемой на этапе диагностики панели иммуногистохимических маркеров.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Falini B, Lamant L, Campo E, Jaffe ES, Gascoyne RD, Stein H et al. Anaplastic large cell lymphoma, alk positive. In: Swerdlow SH, Campo E, Harris NL, Jaffe ES, Pileri SA, Stein H, eds. Who Classification of Tumors of Hematopoietic and Lymphoid Tissues. Lyon (France): IARC; 2017;413-418. 
  2. Chiarle R, Voena C, Ambrogio C, Piva R, Inghirami G. The anaplastic lymphoma kinase in the pathogenesis of cancer. Nat Rev Cancer. 2008;8(1):11-23.  https://doi.org/10.1038/NRC2291
  3. Stein H, Foss HD, Durkop H, Marafioti T, Delsol G, Pulford K et al. CD30+ anaplastic large cell lymphoma: a review of its histopathologic, genetic, and clinical features. Blood. 2000;96(12):3681-3695. https://doi.org/10.1182/BLOOD.V96.12.3681
  4. Greer JP, Kinney MC, Collins RD, Salhany KE, Wolff SN, Hainsworth JD et al. Clinical features of 31 patients with Ki-1 anaplastic large-cell lymphoma. J Clin Oncol. 2016;9(4):539-547.  https://doi.org/10.1200/JCO.1991.9.4.539
  5. Falini B, Pileri S, Zinzani PL, Carbone A, Zagonel V, Wolf-Peeters C et al. ALK+ Lymphoma: Clinico-Pathological Findings and Outcome. Blood. 1999;93(8):2697-2706. https://doi.org/10.1182/BLOOD.V93.8.2697
  6. Stadler S, Singh VK, Knörr F, Damm-Welk C, Woessmann W. Immune Response against ALK in Children with ALK-Positive Anaplastic Large Cell Lymphoma. Cancers (Basel). 2018;10(4): E114-E114. https://doi.org/10.3390/CANCERS10040114
  7. Lakshmaiah K, Guruprasad B, Shah A, Kavitha S, Abraham L, Govindbabu K et al. Anaplastic large cell lymphoma: a single institution experience from India. J Cancer Res Ther. 2013;9(4):649-652.  https://doi.org/10.4103/0973-1482.126468
  8. Xie Y, Pittaluga S, Jaffe ES. The Histological Classification of Diffuse Large B-cell Lymphomas. Semin Hematol. 2015;52(2):57.  https://doi.org/10.1053/J.SEMINHEMATOL.2015.01.006
  9. Kolokotronis A, Konstantinou N, Christakis I, Papadimitriou P, Matiakis A, Zaraboukas T et al. Localized B-cell non-Hodgkin’s lymphoma of oral cavity and maxillofacial region: A clinical study. Oral Surgery, Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endodontology. 2005;99(3):303-310.  https://doi.org/10.1016/j.tripleo.2004.03.028
  10. Khalil MO, Morton LM, Devesa SS, Check DP, Curtis RE, Weisenburger DD et al. Incidence of marginal zone lymphoma in the United States, 2001—2009 with a focus on primary anatomic site. Br J Haematol. 2014;165(1):67-77.  https://doi.org/10.1111/BJH.12730
  11. Lin P, Molina TJ, Cook JR, Swerdlow SH. Lymphoplasmacytic Lymphoma and Other Non—Marginal Zone Lymphomas With Plasmacytic Differentiation. Am J Clin Pathol. 2011;136(2):195-210.  https://doi.org/10.1309/AJCP8FOIVTB6LBER
  12. Swerdlow SH, Kuzu I, Dogan A, Dirnhofer S, Chan JKC, Sander B et al. The many faces of small B cell lymphomas with plasmacytic differentiation and the contribution of MYD88 testing. Virchows Arch. 2016;468(3):259-275.  https://doi.org/10.1007/S00428-015-1858-9/FIGURES/11
  13. Lamant L, McCarthy K, D’Amore E, Klapper W, Nakagawa A, Fraga M et al. Prognostic impact of morphologic and phenotypic features of childhood ALK-positive anaplastic large-cell lymphoma: results of the ALCL99 study. J Clin Oncol. 2011;29(35):4669-4676. https://doi.org/10.1200/JCO.2011.36.5411
  14. Fraga M, Brousset P, Schlaifer D, Payen C, Robert A, Rubie H et al. Bone Marrow Involvement in Anaplastic Large Cell Lymphoma: Immunohistochemical Detection of Minimal Disease and Its Prognostic Significance. Am J Clin Pathol. 1995;103(1):82-89.  https://doi.org/10.1093/AJCP/103.1.82
  15. Pasqualini C, Minard-Colin V, Saada V, Lamant L, Delsol G, Patte C et al. Clinical analysis and prognostic significance of haemophagocytic lymphohistiocytosis‐associated anaplastic large cell lymphoma in children. Br J Haematol. 2014;1(165):117-125.  https://doi.org/10.1111/BJH.12728
  16. Tole S, Wheaton L, Alexander S. Pediatric Anaplastic Large Cell Lymphoma — A Review. Oncol Hematol Rev. 2018;14(1):21-27. 
  17. Armitage JO. Staging Non-Hodgkin Lymphoma. CA Cancer J Clin. 2005;55(6):368-376.  https://doi.org/10.3322/CANJCLIN.55.6.368
  18. Morris SW, Kirstein MN, Valentine MB, Dittmer KG, Shapiro DN, Saltman DL et al. Fusion of a Kinase Gene, ALK, to a Nucleolar Protein Gene, NPM, in Non-Hodgkin’s Lymphoma. Science (80-). 1994;263(5151):1281-1284. https://doi.org/10.1126/SCIENCE.8122112
  19. Grisendi S, Mecucci C, Falini B, Pandolfi PP. Nucleophosmin and cancer. Nat Rev Cancer. 2006;6(7):493-505.  https://doi.org/10.1038/NRC1885
  20. Cools J, Wlodarska I, Somers R, Mentens N, Pedeutour F, Maes B et al. Identification of novel fusion partners of ALK, the anaplastic lymphoma kinase, in anaplastic large-cell lymphoma and inflammatory myofibroblastic tumor. Genes Chromosomes Cancer. 2002;34(4):354-362.  https://doi.org/10.1002/GCC.10033
  21. Hernández L, Beà S, Bellosillo B, Pinyol M, Falini B, Carbone A et al. Diversity of genomic breakpoints in TFG-ALK translocations in anaplastic large cell lymphomas: identification of a new TFG-ALK(XL) chimeric gene with transforming activity. Am J Pathol. 2002;160(4):1487-1494. https://doi.org/10.1016/S0002-9440(10)62574-6
  22. Lamant L, Dastugue N, Pulford K, Delsol G, Mariamé B. A new fusion gene TPM3-ALK in anaplastic large cell lymphoma created by a (1;2)(q25;p23) translocation. Blood. 1999;93(9):3088-3095. https://doi.org/10.1182/blood.v93.9.3088.409k30_3088_3095
  23. Meech SJ, McGavran L, Odom LF, Liang X, Maltesen L, Gump J et al. Unusual childhood extramedullary hematologic malignancy with natural killer cell properties that contains tropomyosin 4 — anaplastic lymphoma kinase gene fusion. Blood. 2001;98(4):1209-1216. https://doi.org/10.1182/BLOOD.V98.4.1209
  24. Lamant L, Gascoyne RD, Duplantier MM, Armstrong F, Raghab A, Chhanabhai M et al. Non-muscle myosin heavy chain (MYH9): a new partner fused to ALK in anaplastic large cell lymphoma. Genes Chromosomes Cancer. 2003;37(4):427-432.  https://doi.org/10.1002/GCC.10232
  25. Touriol C, Greenland C, Lamant L, Pulford K, Bernard F, Rousset T et al. Further demonstration of the diversity of chromosomal changes involving 2p23 in ALK-positive lymphoma: 2 cases expressing ALK kinase fused to CLTCL (clathrin chain polypeptide-like). Blood. 2000;95(10):3204-3207. https://doi.org/10.1182/blood.v95.10.3204.010k04_3204_3207
  26. Colleoni GWB, Bridge JA, Garicochea B, Liu J, Filippa DA, Ladanyi M. ATIC-ALK: A novel variant ALK gene fusion in anaplastic large cell lymphoma resulting from the recurrent cryptic chromosomal inversion, inv(2)(p23q35). Am J Pathol. 2000; 156(3):781-789.  https://doi.org/10.1016/S0002-9440(10)64945-0
  27. Tort F, Pinyol M, Pulford K, Roncador G, Hernandez L, Nayach I et al. Molecular characterization of a new ALK translocation involving moesin (MSN-ALK) in anaplastic large cell lymphoma. Lab Invest. 2001;81(3):419-426.  https://doi.org/10.1038/LABINVEST.3780249
  28. Wang H, Wei W, Zhang JP, Song Z, Li Y, Xiao W et al. A novel model of alternative NF-κB pathway activation in anaplastic large cell lymphoma. Leukemia. 2020;35(7):1976-1989. https://doi.org/10.1038/S41375-020-01088-Y
  29. Kasprzycka M, Marzec M, Liu X, Zhang Q, Wasik MA. Nucleophosmin/anaplastic lymphoma kinase (NPM/ALK) oncoprotein induces the T regulatory cell phenotype by activating STAT3. Proc Natl Acad Sci. 2006;103(26):9964-9969. https://doi.org/10.1073/PNAS.0603507103
  30. Matsuyama H, Suzuki HI, Nishimori H, Noguchi M, Yao T, Komatsu N et al. miR-135b mediates NPM-ALK — driven oncogenicity and renders IL-17—producing immunophenotype to anaplastic large cell lymphoma. Blood. 2011;118(26):6881-6892. https://doi.org/10.1182/BLOOD-2011-05-354654
  31. Eckerle S, Brune V, Döring C, Tiacci E, Bohle V, Sundström C et al. Gene expression profiling of isolated tumour cells from anaplastic large cell lymphomas: insights into its cellular origin, pathogenesis and relation to Hodgkin lymphoma. Leukemia. 2009;23(11): 2129-2138. https://doi.org/10.1038/LEU.2009.161
  32. Laurent C, Lopez C, Desjobert C, Berrebi A, Damm-Welk C, Delsol G et al. Circulating t(2;5)-positive cells can be detected in cord blood of healthy newborns. Leukemia. 2011;26(1):188-190.  https://doi.org/10.1038/LEU.2011.209
  33. Moti N, Malcolm T, Hamoudi R, Mian S, Garland G, Hook CE et al. Anaplastic large cell lymphoma-propagating cells are detectable by side population analysis and possess an expression profile reflective of a primitive origin. Oncogene. 2014;34(14):1843-1852. https://doi.org/10.1038/ONC.2014.112
  34. Malcolm TIM, Villarese P, Fairbairn CJ, Lamant L, Trinquand A, Hook CE et al. Anaplastic large cell lymphoma arises in thymocytes and requires transient TCR expression for thymic egress. Nat Commun. 2016;7:10087-10087. https://doi.org/10.1038/NCOMMS10087
  35. Benharroch D, Meguerian-Bedoyan Z, Lamant L, Amin C, Brugières L, Terrier-Lacombe MJ et al. ALK-positive lymphoma: A single disease with a broad spectrum of morphology. Blood. 1998; 91(6):2076-2084. https://doi.org/10.2/JQUERY.MIN.JS
  36. Pandiar D, Smitha T. The “hallmark” cells. J Oral Maxillofac Pathol. 2019;23(2):176-177.  https://doi.org/10.4103/JOMFP.JOMFP_177_19
  37. Swerdlow SH, Campo E, Harris NL, Jaffe ES, Pileri SA, Stein H et al. eds. World Health Organization (WHO) classification of tumours of haematopoietic and lymphoid tissues. Lyon (France): IARC; 2008.
  38. Stein H, Mason DY, Gerdes J, O’connor N, Wainscoat J, Pallesen G et al. The expression of the Hodgkin’s disease associated antigen Ki-1 in reactive and neoplastic lymphoid tissue: evidence that Reed-Sternberg cells and histiocytic malignancies are derived from activated lymphoid cells. Blood. 1985;66(4):848-858.  https://doi.org/10.1182/BLOOD.V66.4.848.848
  39. Bonzheim I, Geissinger E, Roth S, Zettl A, Marx A, Rosenwald A et al. Anaplastic large cell lymphomas lack the expression of T-cell receptor molecules or molecules of proximal T-cell receptor signaling. Blood. 2004;104(10):3358-3360. https://doi.org/10.1182/BLOOD-2004-03-1037
  40. Foss HD, Anagnostopoulos I, Araujo I, Assaf C, Demel G, Kummer JA et al. Anaplastic Large-Cell Lymphomas of T-Cell and Null-Cell Phenotype Express Cytotoxic Molecules. Blood. 1996;88(10):4005-4011. https://doi.org/10.1182/BLOOD.V88.10.4005.BLOODJOURNAL88104005
  41. Krenacs L, Wellmann A, Sorbara L, Himmelmann AW, Bagdi E, Jaffe ES et al. Cytotoxic Cell Antigen Expression in Anaplastic Large Cell Lymphomas of T- and Null-Cell Type and Hodgkin’s Disease: Evidence for Distinct Cellular Origin. Blood. 1997;89(3):980-989. https://doi.org/10.1182/BLOOD.V89.3.980 
  42. Abramov D, Oschlies I, Zimmermann M, Konovalov D, Damm-Welk C, Wössmann W et al. Expression of CD8 is associated with non-common type morphology and outcome in pediatric anaplastic lymphoma kinase-positive anaplastic large cell lymphoma. Haematologica. 2013;98(10):1547-1553. https://doi.org/10.3324/HAEMATOL.2013.085837
  43. Popnikolov NK, Payne DA, Hudnall SD, Hawkins HK, Kumar M, Norris BA et al. CD13-positive anaplastic large cell lymphoma of T-cell origin — a diagnostic and histogenetic problem. Arch Pathol Lab Med. 2000;124(12):1804-1808. https://doi.org/10.5858/2000-124-1804-CPALCL
  44. Sibon D, Nguyen DP, Schmitz N, Suzuki R, Feldman AL, Gressin R et al. ALK-positive anaplastic large-cell lymphoma in adults: an individual patient data pooled analysis of 263 patients. Haematologica. 2019;104(12):e562. https://doi.org/10.3324/HAEMATOL.2018.213512
  45. Seidemann K, Tiemann M, Schrappe M, Yakisan E, Simonitsch I, Janka-Schaub G et al. Short-pulse B — non-Hodgkin lymphoma — type chemotherapy is efficacious treatment for pediatric anaplastic large cell lymphoma: a report of the Berlin-Frankfurt-Münster Group Trial NHL-BFM 90. Blood. 2001;97(12):3699-3706. https://doi.org/10.1182/BLOOD.V97.12.3699
  46. Brugières L, Le Deley MC, Rosolen A, Williams D, Horibe K, Wrobel G et al. Impact of the methotrexate administration dose on the need for intrathecal treatment in children and adolescents with anaplastic large-cell lymphoma: results of a randomized trial of the EICNHL Group. J Clin Oncol. 2009;27(6):897-903.  https://doi.org/10.1200/JCO.2008.18.1487
  47. Lowe EJ, Reilly AF, Lim MS, Gross TG, Saguilig L, Barkauskas DA et al. Brentuximab vedotin in combination with chemotherapy for pediatric patients with ALK+ ALCL: results of COG trial ANHL12P1. Blood. 2021;137(26):3595-3603. https://doi.org/10.1182/BLOOD.2020009806
  48. Lowe EJ, Reilly AF, Lim MS, Gross TG, Saguilig L, Barkauskas DA et al. Crizotinib in Combination With Chemotherapy for Pediatric Patients With ALK+ Anaplastic Large-Cell Lymphoma: The Results of Children’s Oncology Group Trial ANHL12P1. J Clin Oncol. 2022;41(11):2043-2053. https://doi.org/10.1200/JCO.22.00272

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.