Зоркина Я.А.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр психиатрии и наркологии В.П. Сербского» Минздрава России;
ГБУЗ «Психиатрическая клиническая больница №1 им. Н.А. Алексеева Департамента здравоохранения Москвы»

Голубева Е.А.

ГБУЗ «Психиатрическая клиническая больница №1 им. Н.А. Алексеева Департамента здравоохранения Москвы»

О. И. Гурина

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр психиатрии и наркологии В.П. Сербского» Минздрава России

Резник А.М.

ГБУЗ «Психиатрическая клиническая больница №1 им. Н.А. Алексеева Департамента здравоохранения Москвы»

Морозова А.Ю.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр психиатрии и наркологии В.П. Сербского» Минздрава России;
ГБУЗ «Психиатрическая клиническая больница №1 им. Н.А. Алексеева Департамента здравоохранения Москвы»

Генетические варианты, ассоциированные с развитием стрессовых расстройств по данным GWAS

Авторы:

Зоркина Я.А., Голубева Е.А., Гурина О.И., Резник А.М., Морозова А.Ю.

Подробнее об авторах

Прочитано: 1878 раз


Как цитировать:

Зоркина Я.А., Голубева Е.А., Гурина О.И., Резник А.М., Морозова А.Ю. Генетические варианты, ассоциированные с развитием стрессовых расстройств по данным GWAS. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2025;125(3):12‑26.
Zorkina YA, Golubeva EA, Gurina OI, Reznik AM, Morozova AY. Genetic variants associated with the development of stress disorders: A systematic review of GWAS. S.S. Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry. 2025;125(3):12‑26. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/jnevro202512503112

Рекомендуем статьи по данной теме:
Стресс и сон: ней­ро­би­оло­ги­чес­кие ас­пек­ты и сов­ре­мен­ные воз­мож­нос­ти те­ра­пии ин­сом­нии. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2025;(5-2):14-21
Рус­ско­языч­ная вер­сия шка­лы деп­рес­сии, тре­во­ги и стрес­са. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(5):103-107
Фак­то­ры под­дер­жа­ния хро­ни­чес­ко­го вос­па­ле­ния при пси­хи­чес­ких за­бо­ле­ва­ни­ях. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(8):7-15

Посттравматическое стрессовое расстройство (ПТСР) — это психическое заболевание, которое развивается после переживания или свидетельства какого-либо травматического события. Стресс после травматического события — это нормальная реакция, однако сохранение симптомов в течение длительного периода (более 1 мес) и негативное влияние на повседневную жизнь могут свидетельствовать о ПТСР или каком-либо другом стрессовом расстройстве. ПСТР характеризуется целым рядом симптомов [1, 2], которые можно разделить на четыре основные категории. Навязчивые мысли или воспоминания: повторяющиеся мучительные воспоминания о травматическом событии, флешбэки, кошмары или навязчивые мысли, которые вызывают значительный дистресс. Избегание: индивиды с ПТСР пытаются избежать напоминаний о травмирующем событии, например избегают определенные места, людей или виды деятельности, которые вызывают неприятные ассоциации, разговоры или мысли о событии. Негативная настроенность: негативные мысли или убеждения о себе или мире, эмоции (страх, гнев или чувство вины), чувство отстраненности от окружающих и снижение интереса к деятельности, которая раньше доставляла удовольствие. Гипервозбудимость и реактивность: при ПТСР часто наблюдается повышенная возбудимость, включая трудности со сном, раздражительность, вспышки гнева, повышенную бдительность (постоянная настороженность) и преувеличенную реакцию на испуг [2].

ПТСР возникает у 5—10% лиц, переживших сильное травматическое событие, такой процент больше у ветеранов войн [3]. Индивидуальные нейробиологические особенности человека обусловливают разную реакцию на одно и то же травмирующее событие, около 30% развития ПТСР определяются генетическими факторами [2, 4].

Среди исследований генетических вариантов, ассоциированных с заболеваниями, наиболее значимыми являются полногеномные анализы ассоциаций (GWAS). GWAS — это тип исследовательского подхода, используемый для выявления генетических вариаций, связанных с определенными признаками или состояниями. Исследования GWAS, связанные с ПТСР, направлены на выявление конкретных генетических вариаций, которые могут способствовать предрасположенности человека к развитию этого состояния после пережитой травмы. Дизайн таких исследований обычно сводится к анализу «случай-контроль».

Настоящий обзор посвящен исследованиям GWAS, касающимся ПТСР, и цель его — анализ тех генов, которые являются наиболее вероятными кандидатами (маркерами) предрасположенности к ПТСР.

В анализ были включены исследования GWAS, найденные в базах данных PubMed и NHGRI-EBI Catalog. Всего было включено 20 статей, не рассматривались исследования, где проводился поиск генетических коррелятов с другими психическими или соматическими заболеваниями. Девять исследований были проведены на выборках ветеранов войн, где ПТСР встречается чаще, чем при других видах травмирующего стресса.

Помимо ПТСР, существуют и другие расстройства, связанные со стрессом, такие как острое стрессовое расстройство и расстройство адаптации. Острое стрессовое расстройство — это состояние, схожее с ПТСР, но возникающее в течение 1 мес после травмирующего события и длящееся не так долго. Расстройство адаптации — это связанное со стрессом состояние, которое возникает, когда трудно справиться со стрессовым событием в жизни или приспособиться к нему. Авторы проводили поиск литературы и по данным состояниям, однако таких исследований найдено не было. Возможно, это объясняется тем, что ПТСР в зарубежной литературе имеет более общее значение и включает все расстройства, связанные с переживанием сильного травмирующего события [4].

Для исследования GWAS выбирают p<5·(10–8), которое называют общегеномной значимостью, что позволяет исключить ошибки, связанные с множественными сравнениями. В некоторых исследованиях авторы не находили ассоциаций с общегеномной значимостью, однако приводили те ассоциации, которые имели наиболее сильные отличия. В настоящем обзоре такие генетические варианты не учитывались.

Функции генов, показывающие ассоциации при ПТСР

При суммировании всех исследований выделено несколько групп генов, генетические вариации которых ассоциированы с ПТСР. Гены, кодирующие белки, участвующие в развитии нервной системы: AUTS2, BMP2 [5], TCF4 [6], TLL1 [7], RORA [8], JARID2 [9]. Гены, кодирующие ДНК-связывающие белки, а также гены, кодирующие белки с «цинковыми пальцами». Это небольшие белки, содержащие цинк, которые связываются с ДНК, и, таким образом, регулируют экспрессию генов. Среди генов, кодирующие такие белки, ассоциации были показаны с ZNF626 [10] и ZMYM4 [11], ZNF804A [12], ZNF813 [13]. Гены, кодирующие белки, участвующие в передаче сигналов в клетке: ABCC4 [9], PDE4B [14], FAM120A [11], GNGT1 [12], ZDHHC14 [13]. Гены, кодирующие белки, участвующие в межбелковых взаимодействиях, благодаря этому помогающие в реализации множества функций в клетке: ANKRD55 [10], PALS2 [11], PRKN [13]. Гены, кодирующие белки, участвующие в процессах клеточного деления: SCAND3 [11], MAD1L1 [15], ANAPC4 [12]. Гены, кодирующие белки, участвующие в синаптической пластичности, росте и функционировании нейронов: CAMKV, KCNIP4 [6], KCNB2, [12]. Гены, кодирующие белки, участвующие в функционировании цитоскелета: COBL [7], BLTP1, ACTN1, FES, MAPT [12]. Гены, кодирующие молекулы клеточной адгезии: LRFN5, PCDHA, NCAM1, DCC [12], CNTN6 [5]. Регуляторы сплайсинга мРНК, транскрипции, экспрессии генов: SRPK2, KANSL1 [6], SP4, SOX6 [12], FOXP2 [11]. Однонуклеотидные полиморфизмы, находящиеся в межгенных областях или на последовательности ДНК, на которой транскрибируются некодирующие РНК: rs717947 [16], lincRNA AC068718.1 [17], rs6773270 (C5orf67 — lncRNA), rs6798512, rs7700424 [9], rs7519147 [6], rs4233093, MIR5007 [13], LINC01680, rs4073950, rs28758576, rs11933210, rs2509805, LINC01470, LINC01023, LINC03003, LINC02743 [12]. Ген, участвующий в сборке рибосом митохондрий: METTL15 [5]. Ген, кодирующий белок синтаз оксида азота, выполняющий роль нейромедиатора в нервной системе NOS1 [12]. Другие: HSD17B11 [6], CLEC18B [12], KAZN, HLA-B [13], PRTFDC1 [18].

Подробную информацию о функциях каждого гена можно найти в таблице.

Исследования GWAS, связанные со стрессовыми расстройствами

Исследование

Когорта

Вид стресса

Ассоциации

Репликация

Функции белка, который кодирует ген

Stein M.B. и соавт. 2016 [10]

1312 АА, 1413 Испанцы и ЛА, 5049 ЕА 2140 Е случай, 497 АА случай, 530 ЛА случай, 2909 Е с травмой без ПТСР, 815 АА с травмой без ПТСР, 883 ЛА с травмой без ПТСР

Ветераны войн

rs159572 ANKRD55 в группе АА

rs11085374 ZNF626 в группе ЕА

672 Е случай, 97 АА случай, 178 ЛА случай, 3335 Е с травмой без ПТСР, 570 АА с травмой без ПТСР, 1064 ЛА с травмой без ПТСР.

Ассоциации не повторились

ANKRD55 белок, содержащий анкирин повторный домен 55, участвует в межбелковых взаимодействиях, экспрессируется в яичниках, семенниках, эндометрии [19].

ZNF626 — цинковый палец. Предполагается, что он обеспечивает активность ДНК-связывающего фактора транскрипции, активность связывания ДНК. Предполагается, что он участвует в регуляции транскрипции, матрице ДНК

Logue M.W. и соавт. 2013 [8]

Белые неиспаноязычные участники 295 случаев и 196 контроль

Ветераны вооруженных сил США

rs8042149 RORA

Не проводилась

RORA — альфа-рецептор, связанный с ретиноидами, является членом подсемейства ядерных рецепторов гормонов NR1. Ключевой регулятор эмбрионального развития, клеточной дифференцировки, иммунитета, циркадного ритма, а также метаболизма липидов, стероидов, ксенобиотиков и глюкозы [20]. Играет важную роль в нейропротекции [21]. Изменения уровней RORA могут снижать способность нейронов реагировать на окислительный стресс, изменения стероидных гормонов, а также воспаление, часто вызываемое травмой [22]

Исследования GWAS, связанные со стрессовыми расстройствами. (Продолжение)

Исследование

Когорта

Вид стресса

Ассоциации

Репликация

Функции белка, который кодирует ген

Nievergelt C.M. и соавт. 2015 [18]

2554 контроль, 940 случаев. Участники оценивались 1 раз перед развертыванием и через 3 и/или 6 мес после развертывания

Ветераны войн.

Морские пехотинцы США, подвергшиеся боевым действиям, запланированным к развертыванию в Ираке и/или Афганистане

rs6482463 PRTFDC1

491 образец ветеранов войн из исследования Logue 2012 [8]. Ассоциация доказана на репликативной выборке

PRTFDC1 — фосфорибозилтрансфераза.

Обеспечивает активность гомодимеризации белка. Предполагается, что он участвует в синтезе пуриновых нуклеотидов из промежуточных продуктов их деградации [23].

Полиморфизмы гена PRTFDC1 могут быть связаны с такими важными морфологическими признаками, как объем мозга, толщина коры головного мозга и измерение микроструктуры белого вещества.

Wolf E.J. и соавт.

2014 [24]

293 случай, 191 контроль. Белые неиспаноязычные ветераны, подвергшиеся травмам, и их партнеры

Ветераны войн

Не проводилась

Ни один SNP не соответствовал полногеномным критериям значимости

Almli L.M. и соавт. 2015 [16]

32 ЛА случай, 16 АА случай АА, 14 Е случай, 1 случай другой национальности, 25 ЛА контроль, 6 азиаты контроль, 19 АА контроль, 31 ЕА контроль, 3 другие национальности контроль

Ветераны войн

rs717947 Участок в межгенной области

Участники исследования Ressler, 2011. Преимущественно женщины с высоким уровнем ПТСР, 2006 человек. В репликации rs717947 связан с диагнозом у женщин, но не у мужчин

SNP rs717947 также оказался локусом количественного признака метилирования в образце репликации. Кроме того, аллель риска rs717947 был связан со снижением медиальной и дорсолатеральной корковой активации на реакцию на испуганные лица в образце репликации

Ashley-Koch A.E. и соавт. 2015 [25]

385 случай, 564 контроль неиспаноязычные А; 325 Е случай, 434 контроль

Ветераны войн. Метаанализ

Не проводилась

Ни один отдельный SNP не имел общегеномной значимости в анализе

Stein M.B. и соавт. 2021 [5]

E

36 301 случай 178 107 контроль

А 11 920 случай 39116 контроль

Ветераны войн

Е

rs10767744 METTL15;

rs137999048 AUTS2;

rs7680 MAD1L1

А

rs4684090 CNTN6;

rs112149412 BMP2

общая когорта

rs10767744

rs137999048

На данных из исследования Nievergelt 2019 подтвердилась для rs7680 MAD1L1

METTL15 — участвует в стабилизации сворачивания 12S рРНК, тем самым облегчая сборку малых рибосомальных субъединиц митохондрий [26, 27].

AUTS2 — участвует в развитии нервной системы и является геном-кандидатом для многочисленных неврологических расстройств, включая расстройства аутистического спектра [28], умственную отсталость и задержку развития [29]. В цитоплазме играет роль в удлинении аксонов и дендритов, а также в миграции нейронов во время эмбрионального развития мозга [30]. Способствует реорганизации актинового цитоскелета, образованию ламеллиподий и удлинению нейритов [31].

MAD1L1 — компонент контрольной точки сборки веретена, который предотвращает начало анафазы до тех пор, пока все хромосомы не выровняются должным образом в метафазной пластинке. Взаимодействует с белками митотического контроля, регулирует митоз и геномную стабильность [31], а также может дестабилизировать p53 [32, 33], важного участника клеточного ответа на стресс

Исследования GWAS, связанные со стрессовыми расстройствами. (Продолжение)

Исследование

Когорта

Вид стресса

Ассоциации

Репликация

Функции белка, который кодирует ген

CNTN6 — является членом суперсемейства иммуноглобулинов, который действует как молекула клеточной адгезии. Он может играть роль в формировании аксонных связей в развивающейся нервной системе и генерации олигодендроцитов [34].

BMP2 — фактор роста суперсемейства трансформирующий фактор роста-бета, который играет важную роль во многих процессах развития, включая кардиогенез, нейрогенез и остеогенез [35—37]

Gelernter J. и соавт. 2019 [6]

146660 ЕА and 19983 АА

Ветераны войн

rs7519147 LINC01360;

rs2777888 CAMKV;

rs4697248 KCNIP4;

rs7688962 HSD17B11;

rs10235664 MAD1L1;

rs67529088 SRPK2;

rs2532252 KANSL1;

rs2123392 TCF4

117 900 субъектов Е

Только

TCF4 rs2123392 показал ассоциации

CAMKV — псевдокиназа, принадлежащая к семейству Ca2+/кальмодулин-зависимых киназ. Экспрессируется преимущественно в головном мозге и нервной ткани. CAMKV является субстратом CDK5 в развивающемся мозге [38] и участвует в поддержании дендритных отростков, синаптической пластичности гиппокампа. Отвечает за ремоделирование синапсов в процессе обучения, способствуя стабилизации и обогащению дендритных отростков [39].

KCNIP4 — член семейства белков, взаимодействующих с потенциал-управляемыми калиевыми (Kv) каналами (KCNIP) [40]. Члены семейства KCNIP представляют собой небольшие кальций-связывающие белки. Они могут регулировать токи А-типа и, следовательно, возбудимость нейронов в ответ на изменения внутриклеточного кальция [41].

HSD17B11 — короткоцепочечные алкогольдегидрогеназы метаболизируют вторичные спирты и кетоны, может участвовать в метаболизме андрогенов [42].

MAD1L1 — см. Stein 2021

SRPK2 — богатая серином/аргинином протеинспецифическая киназа, которая специфически фосфорилирует свои субстраты по остаткам серина, расположенным в областях, богатых аргинин/сериновыми дипептидами [43]. Широко экспрессируется в нервной ткани, влияет на апоптоз нейронов, является важным регулятором конститутивного и альтернативного сплайсинга пре-мРНК [44].

KANSL1 — ядерный белок, который является субъединицей двух белковых комплексов, участвующих в ацетилировании гистонов, участвует в регуляции транкскрипции [45].

TCF4 — фактор транскрипции, который связывается с мотивом энхансера иммуноглобулина Mu-E5/KE5. Участвует в инициации дифференцировки нейронов [46]

Wendt F.R. и соавт. 2022 [12]

497803 Е

Ветераны войн

rs4233093;

rs1246683 LINC01680;

rs4073950

RNA5SP87 (псевдоген);

rs62176173 ZNF804A;

rs28758576 SDHBP1 (псевдоген);

rs45510091 BLTP1;

rs11933210 RN7SL101P (псевдоген);

rs34811474 ANAPC4;

rs11949077

Не проводилась

ZNF804A — цинковый палец. Может оказывать влияние на реакцию дифференцирующихся нейронов на воспалительные цитокины [47], а также был ранее ассоциирован с развитием шизофрении [48], тревожных расстройств и психоза [49] в полногеномных исследованиях.

BLTP1 — трубкообразующий липидный транспортный белок, который обеспечивает фосфатидилэтаноламин для синтеза якоря гликозилфосфатидилинозитола в эндоплазматическом ретикулуме (вероятно). Играет роль в эндосомальном транспорте и рециркуляции эндосом. Также участвует в структурной динамике актинового цитоскелета и ресничек [50].

ANAPC4 — компонент комплекса/циклосомы, способствующего анафазе (APC/C), убиквитинлигазы E3, регулирующей клеточный цикл, которая контролирует митоз и фазу G1 клеточного цикла. Его дисфункция может способствовать накоплению клеточных повреждений [51]

Исследования GWAS, связанные со стрессовыми расстройствами. (Продолжение)

Исследование

Когорта

Вид стресса

Ассоциации

Репликация

Функции белка, который кодирует ген

LINC01023;

rs2910032 rs2910032

LINC01470;

rs251350

PCDHA;

rs145108206

LINC03003;

rs10235664

MAD1L1;

rs6466488

FOXP2;

rs12704688

GNGT1;

rs4722031 SP4;

rs10105545

BIN3, EGR3;

rs6472716

KCNB2;

rs10992729

FAM120AOS;

rs1575973

DMRTA1 и CDKN2B-AS1;

rs2509805

OR5BA1P (псевдоген);

rs10791303 LINC02743;

rs4937872

NCAM1;

rs931774

SOX6;

rs2271985

NOS1;

rs2012820

ACTN1;

rs1684713

LRFN5;

rs2071382

FES;

rs62056018

CLEC18B;

rs62056789

MAPT;

rs599550

TCF4;

rs17408393

DCC

PCDHA — кластер генов протокадгерина альфа. Эти белки нейронной адгезии, скорее всего, играют решающую роль в установлении и функционировании специфических межклеточных связей в мозге [52].

MAD1L1 — см.Stein 2021

FOXP2 — см. Maihofer 2022

GNGT1 — G-белки, участвуют в качестве модулятора или преобразователя в различных трансмембранных сигнальных системах.

SP4 — белок, кодируемый этим геном, представляет собой фактор транскрипции [53].

KCNB2 — потенциал-управляемый калиевый канал, который обеспечивает трансмембранный транспорт калия в возбудимых мембранах, прежде всего в мозге и гладкомышечных клетках [54].

FAM120AOS функция неизвестна.

NCAM1 — компонент цитоскелета и внеклеточного матрикса [55], также участвует в процессах клеточной адгезии и нейрогенеза, его дисфункция может нарушать межнейрональные взаимодействия и активацию сигнальных путей, таких как MAPK и FAK, дезрегуляция которых ассоциирована с ПТСР и нейропсихиатрическими заболеваниями [56, 57].

SOX6 — транскрипционный фактор, который играет ключевую роль в нескольких процессах развития, включая нейрогенез, дифференцировку хондроцитов и образование хрящей [58].

NOS1 — белок, кодируемый этим геном, принадлежит к семейству синтаз оксида азота, которые синтезируют оксид азота из L-аргинина. Оксид азота представляет собой реактивный свободный радикал, который действует как биологический медиатор в нескольких процессах, включая нейротрансмиссию, а также антимикробную и противоопухолевую активность. В головном мозге и периферической нервной системе оксид азота проявляет многие свойства нейромедиатора [59].

LRFN5 — белки, содержащие богатые лейцином повторы и домен фибронектина типа III. Молекула клеточной адгезии, которая обеспечивает гомофильную межклеточную адгезию Са(2+) независимым способом. Способствует росту нейритов в нейронах [60] и образованию синапсов [61]. Сниженная экспрессия Lrfn5 может способствовать нейровоспалению [62].

ACTN1 — связывает актиновые филаменты, поддерживает клеточную структуру и модулирует клеточную адгезию, что важно для поддержания нейрональной стабильности и взаимодействия между нейронами и астроцитами, нарушаемыми при ПТСР и часто сопутствующих ЧМТ [63].

FES — тирозин-протеинкиназа, играет роль в регуляции актинового цитоскелета, сборки микротрубочек, прикрепления клеток и распространения клеток, модулирует сигнальные пути, участвующие в ответе на клеточный стресс [64].

CLEC18B — Предполагается, что он активирует связывающую активность полисахаридов [65].

MAPT — способствует сборке и стабильности микротрубочек и может участвовать в установлении и поддержании полярности нейронов. Также может способствовать нейродегенерации, влияя на структуру и функцию тау-белка [66].

TCF4 — см. Gelernter 2019

DCC — трансмембранный белок является членом суперсемейства иммуноглобулинов молекул клеточной адгезии и опосредует направление аксонов конусов роста нейронов к источникам лиганда нетрина 1 [67].

Исследования GWAS, связанные со стрессовыми расстройствами. (Продолжение)

Исследование

Когорта

Вид стресса

Ассоциации

Репликация

Функции белка, который кодирует ген

Guffanti G. и соавт. 2013 [17]

94 АА женщины случай, 319 контроль с травмой

Травмы в течение жизни

rs10170218

lincRNA AC068718.1

ЕА женщины 578 случаев, 1963 контроль с травмой

Ассоциации подтверждены

С длинных некодирующих РНК не идет транскрипция белка, являются регуляторами экспрессии генов

Xie P. и соавт. 2013 [7]

1278 ЕА контроль, 300 ЕА случай

2322 АА контроль, 444 случай

12 типов травмирующих событий: переживание прямого боя на войне; серьезное физическое нападение; физическое насилие в детстве; пренебрежение в детстве; изнасилование; сексуальное домогательство или насилие; угрожали оружием; плен или похищение; свидетель того, как кто-то был тяжело ранен или убит; попал в наводнение, пожар или другое стихийное бедствие; попал в опасную для жизни аварию; пережил сильное потрясение из-за того, что одно из вышеперечисленных событий произошло с кем-то из близких

rs406001 COBL; rs450378 COBL; rs6812849; TLL1 rs7691872 TLL1

207 Е случай,

1,692 Е контроль,

89 АА случай,

655 АА контроль

Результаты были воспроизведены для двух SNP в первом интроне TLL1, rs6812849 и rs7691872. Для объединенной выборки показаны ассоциации с rs6812849.

Для АА значимых ассоциаций не наблюдалось

TLL1 — протеаза, которая обрабатывает C-пропептиды проколлагена, такие как хордин, пробигликан и пролизилоксидаза. Необходим для эмбрионального развития.

COBL — играет важную роль в реорганизации актинового цитоскелета. Регулирует морфогенез нейронов и увеличивает ветвление аксонов и дендритов. COBL участвует в динамике актина, развитии клеток Пуркинье и формировании дендритных шипиков [68]

Wilker S. и соавт. 2018 [9]

924 А, из них диагноз ПТСР в течение жизни у 644, текущий у 263

Выжившие в войне повстанцы в Северной Уганде:

похищения, принудительная вербовка, убийства, нанесение увечий и сексуальное насилие,

репликативная выборка — пережившие геноцид в Руанде

rs570877 APOB;

rs6773270; rs6798512; rs3852144 (C5orf67lncRNA);

rs7700424: rs2237110 JARID2;

rs2892713 ABCC4

371 А, из них диагноз ПТСР в течение жизни у 195, текущий у 158

rs3852144 была воспроизведена в независимой выборке

rs3852144 может играть роль в консолидации высокоэмоциональных воспоминаний после травматического стресса.

APOB — белок, входит в состав липопротеидов низкой плотности.

JARID2 — кодирует белок, участвующий в подавлении транскрипции генов через взаимодействие с Polycomb Repressive Complex 2, это взаимодействие контролирует дифференциацию клеток-предшественников в различные типы нейронов в процессе развития нервной системы, регулируя как последовательность, так и временные рамки формирования различных нейрональных клеток [69].

ABCC4 — АТФ-зависимый транспортер, активно выталкивающий из клеток физиологические соединения и ксенобиотики. Транспортирует ряд эндогенных молекул, которые играют ключевую роль в клеточной коммуникации и передаче сигналов [70].

Swart P.C. и соавт. 2021 [71]

260 случай, 343 контроль жители ЮАР

Стресс в течение жизни

Не проводилась

Ни один отдельный SNP не имел общегеномной значимости в анализе

Исследования GWAS, связанные со стрессовыми расстройствами. (Продолжение)

Исследование

Когорта

Вид стресса

Ассоциации

Репликация

Функции белка, который кодирует ген

Shen H. и соавт. 2020 [72]

1698 случай, 1716 контроль. Граждане Перу

Последствия межличностного насилия и других форм травм среди перуанских женщин

Не проводилась

Ни один отдельный SNP не имел общегеномной значимости в анализе

Saenz de Viteri S. и соавт. 2023 [73]

3510 Е, 1468 А

(31% с алкогольной зависимостью)

Риск ПТСР в семьях, в которых часто встречаются расстройства, связанные с употреблением алкоголя

Не проводилась

Ни один отдельный SNP не имел общегеномной значимости в анализе

Meier S.M. и соавт. 2019 [14]

19 225 контроль,

9831 — расстройство, связанное со стрессом

Стресс в течение жизни

rs7528604 PDE4B

Не проводилась

PDE4B — гидролизует вторичный мессенджер цАМФ, который является ключевым регулятором многих важных физиологических процессов. Белок регулирует клеточную концентрацию циклических нуклеотидов и тем самым играет роль в передаче сигнала [74]. Может участвовать в опосредовании эффектов на центральную нервную систему терапевтических средств, начиная от антидепрессантов и заканчивая противоастматическими и противовоспалительными средствами [75]

Maihofer A.X. и соавт. 2022 [11]

182 199 Е

Метаанализ данных других исследователей

rs72657988 ZMYM4;

rs146918648SCAND3;

rs2721816 PALS2;

rs10266297 FOXP2;

rs10821140 FAM120A

Не проводилась

ZMYM4 — цинковый палец. Предполагается, что он обеспечит активность связывания ДНК. Участвует в организации цитоскелета и регуляции морфогенеза клеток [76].

SCAND3 ma участвует в регуляции перехода клеточного цикла через фазу G1/S и активирует сигнальный путь AKT/GSK-3β [77], который играет важную роль в поддержании клеточной выживаемости и пластичности нервной системы, нарушение этой функции может способствовать нейрональной дисфункции при ПТСР [78].

PALS2 — члены семейства периферических мембран-ассоциированных гуанилаткиназ, участвуют в межбелковых взаимодействиях с белками цитоскелета [79].

FOXP2 — транскрипционный фактор, этот ген необходим для правильного развития речевых и языковых областей мозга во время эмбриогенеза [80].

FAM120A — компонент передачи сигналов выживания, индуцированной окислительным стрессом. Связывает РНК IGF2 и способствует выработке белка IGF2 [81]

Duncan L.E. и соавт. 2018 [82]

ЕА 2588 случай, 7366 контроль,

АА 2423 случай, 7268 контроль,

ЛА 98 случай, 600 контроль,

А из ЮАР 132 случай, 255 контроль

Метаанализ данных других исследователей

Не проводилась

Ни один из вариантов не достиг общегеномной значимости ни в трансэтническом, ни в метаанализе

Исследования GWAS, связанные со стрессовыми расстройствами. (Окончание)

Исследование

Когорта

Вид стресса

Ассоциации

Репликация

Функции белка, который кодирует ген

Nievergelt C.M. и соавт. 2019 [13]

30 000 случай, 170 000 контроль,

23 212 Е, 4363 А, 1981 ЛА и США, 151 447 Е, 10 976 А, 3722 ЛА и США

Метаанализ данных других исследователей

E

rs34517852 TMEM242-DTlncРНК, ZDHHC14;

rs9364611 PRKN;

rs571848662

ZNF813 мужчины

rs148757321

KAZN мужчины А

rs115539978

HNF4GP1 (псевдоген), MIR5007;

rs142174523

LINC02571, HLA-B мужчины

Не проводилась

ZDHHC14 — пальмитоилтрансфераза, которая может катализировать добавление пальмитата к различным белковым субстратам. Может обладать пальмитоилтрансферазной активностью по отношению к бета-2-адренергическому рецептору/ADRB2 и тем самым регулировать передачу сигналов рецептора, связанного с G-белком [83].

PRKN — компонент мультипротеинового комплекса убиквитинлигазы E3 [84], катализирующего ковалентное прикрепление фрагментов убиквитина к белкам-субстратам. Участвует в удалении и/или детоксикации аномально свернутых или поврежденных белков, действует как положительный регулятор аутофагии, в том числе митохондриальной [85].

ZNF813 — цинковый палец.

KAZN — компонент ороговевшей оболочки кератиноцитов. Может участвовать во взаимодействии между адгезионными соединениями и десмосомами [86].

MIR5007 — микро-РНК, некодирующая РНК, участвующая в посттранскрипционной регуляции экспрессии генов.

HLA-B — молекула антигенпредставляющего главного комплекса гистосовместимости I.

Примечание. АА — афроамериканцы, ЕА — американцы европейского происхождения, Е — европейцы, ЛА — латиноамериканцы, А — африканцы.

В формировании ПТСР ключевую роль играют процессы консолидации памяти. Для возникновения ПТСР необходимо, чтобы воспоминание о травмирующем событии закрепилось в памяти. Считается, что в переходе памяти, зависимой от контекста, из кратковременной в долговременную участвуют гиппокамп и медиальная префронтальная кора [87]. Миндалина участвует в закреплении эмоционально окрашенных воспоминаний [88]. Нарушения консолидации памяти могут приводить к развитию симптомов ПТСР: постоянному навязчивому вспоминанию травмирующего события. В этих процессах велика роль синаптической пластичности [89, 90]. В образовании контактов между нейронами и установлении синаптических связей также участвуют молекулы клеточной адгезии [91]. В норме воспоминания о травмирующем событии со временем угасают в связи с деградацией белков, отвечающих за формирование долговременной памяти, изменением экспрессии генов, снижением количества рецепторов на мембране нейронов [92]. На клеточном уровне для формирования памяти нейроны отращивают дендритные шипики, которые исчезают при забывании информации. В процессах образования дендритных шипиков участвует клеточный цитоскелет. Астроциты являются участниками иммунного ответа мозга, могут поддерживать хроническое воспаление и прогрессирующую нейродегенерацию мозга, в результате чего возникает астроглиоз. Астроглиоз характеризуется повышенной экспрессией генов иммунного ответа, компонентов цитоскелета и внеклеточного матрикса, таких как NCAM1 [55], с последующими морфологическими и функциональными изменениями. Нарушения в регуляции генов, участвующих в процессах клеточного деления, могут приводить к дисбалансу нейрональной пластичности, хроническому воспалению и окислительному стрессу, что ассоциируется с нейродегенерацией, характерной для ПТСР.

Одиночное или повторное воздействие острого стресса, который приводит к развитию ПТСР, может вызвать окислительный стресс. В патофизиологии ПТСР повышенный уровень активных форм кислорода может вызывать гибель клеток через апоптоз [93]. Считается, что митохондрии являются основным производителем активных форм кислорода в большинстве клеток. Кроме того, митохондрии могут быть вовлечены в развитие нейровоспаления и его поддержание при ПТСР [93]. Роль нейровоспаления при ПТСР подтверждена многими исследователями. Изменения в экспрессии митохондриальных белков при ПТСР могут влиять на уровни гормонов, участвующих в развитии ПТСР, также повреждения митохондрий запускают развитие воспаления [93]. Таким образом, дисфункция митохондрий и нейровоспаление могут быть факторами, способствующими развитию ПТСР.

В формировании ПТСР велика роль гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой (ГГН) оси [94]. Оксид азота в нервной системе может функционировать как нейромедиатор [59]. Путь оксида азота напрямую связан с ГГН осью и играет неотъемлемую роль в развитии ПТСР [95]. Повышенный уровень оксида азота вызывает снижение общего уровня ГАМК, что приводит к дисфункции обратной связи ГГН оси и повышению уровня глутамата, вызывающего эксайтотоксичность в гиппокампе [96]. Кроме того, недавние исследования показывают, что может быть прямая связь между синтазой оксида азота 1 (NOS1) и регуляцией глюкокортикоидов [97].

Показано, что нарушение развития нервной системы в онтогенезе может приводить к развитию таких психических заболеваний, как аутизм [98] и шизофрения [99]. Генетические вариации в AUTS2 также ассоциированы с возникновением аутизма и умственной отсталости [100]. Найдены общие патогенетические пути аутизма и ПТСР [101]. Хотя не было доказано связи нарушения эмбрионального развития с повышенным риском развития симптомов ПТСР, было показано, что нарушение нейрогенеза в гиппокампе и нарушение консолидации памяти во взрослом возрасте могут также принимать участие в развитии ПТСР [102]. В исследованиях на животных также показано, что усиление нейрогенеза в гиппокампе является протективным фактором для развития стрессовых расстройств [103]. Относительная задержка созревания префронтальной и подкорковых областей частично лежит в основе повышенной эмоциональной реактивности в подростковом возрасте [104]. Таким образом, нарушения генов, участвующих в развитии и созревании нервной системы, могут играть роль в формировании ПТСР.

Регуляторы сплайсинга мРНК, транскрипции, экспрессии генов, белки с «цинковыми пальцами», которые участвуют в регуляции экспрессии генов через взаимодействие с ДНК и играют роль в контроле транскрипции и хроматиновых ремоделирующих процессах, а также белки, участвующие в межбелковых взаимодействиях, регулируют множество клеточных процессов и могут реализовывать свое действие на развитие ПТСР на многих этапах патогенеза.

Не все белки, кодируемые генами, где были обнаружены значимые ассоциации, экспрессируются в нервной системе. Это может объяснять высокую коморбидность ПТСР с соматическими заболеваниями. Однако найдены и гены, специфически экспрессируемые в нервной системе, влияющие на морфогенез, синаптическую пластичность и рост аксонов и дендритов нейронов [103]. Также найдены единичные гены, на первый взгляд, не связанные с психопатологией: HSD17B11 кодирует белок, участвующий в метаболизме андрогенов [6], CLEC18B активирует связывающую активность полисахаридов [12], KAZN кодирует белок-компонент ороговевшей оболочки кератиноцитов [13], HLA-B — молекулу антиген главного комплекса гистосовместимости I [13]. Участие белков, кодируемых этими генами, в патофизиологии ПТСР требует дальнейшего изучения.

Перекрывающиеся результаты между исследованиями

Несмотря на большое количество проведенных исследований, найдена только одна генетическая вариация, ассоциированная с ПТСР и подтвержденная хотя бы в двух исследованиях. Это rs10235664 в гене MAD1L1, она была обнаружена в исследованиях на выборке ветеранов войн разных этнических групп: европейцев [12], афроамериканцев и американцев европейского происхождения [6].

Белок, кодируемый этим геном, принимает участие в делении клетки. Это компонент контрольной точки сборки веретена деления, который предотвращает начало анафазы митоза, ингибируя комплекс, способствующий анафазе, пока все хромосомы не займут свое место должным образом в метафазной пластинке [32]. Исследования GWAS показали ассоциации вариаций этого гена с шизофренией, биполярным расстройством и депрессивными фенотипами [105]. В нескольких исследованиях были идентифицированы генетические локусы, которые показали связь с более чем одним психическим заболеванием [105]. Однако для rs10235664 ассоциации были показаны только с ПТСР. Также взаимосвязи с этим же полиморфизмом продемонстрированы в исследовании M. Stein и соавт. [15] при сравнении субфенотипов ПТСР. В этом же исследовании была показана ассоциация с rs7680 в этом же гене, в том числе на репликативной выборке из исследования [13].

Хотя участие белка в митозе не может объяснить механизмы патогенеза стрессовых расстройств и депрессии, нельзя не обратить внимание на множество найденных ассоциаций со стрессовыми и депрессивными расстройствами, поэтому эти механизмы должны быть дополнительно исследованы.

Еще два варианта, rs34517852 и rs9364611 [13], также показали ассоциации в исследовании S. Zhou и соавт. [106]. Однако эта работа не была включена в обзор, поскольку в ней изучали общую генетическую архитектуру ПТСР и заболеваний желудочно-кишечного тракта.

Было найдено два гена, подтвердивших ассоциацию в 2 независимых исследованиях. Генетические вариации в гене FOXP2 ассоциированы с ПТСР в работах [12] и [11], в гене TCF4 — в работах [12] и [6]. Оба белка, кодируемые этими генами, являются транскрипционными факторами, регулирующими уровни экспрессии генов. FOXP2 участвует в механизмах развития речи, также является репрессором транскрипции и экспрессируется в эпителии легкого и кишечника [80]. TCF4 участвует в инициации дифференцировки нейронов и играет важную роль в развитии нервной системы [46].

Таким образом, найден только один маркер, ассоциации которого независимо обнаружены несколькими исследовательскими группами, и два гена с полиморфизмами в разных локусах, также обнаруженные независимо друг от друга. Отсутствие согласованных данных можно объяснить различными критериями постановки диагноза ПТСР, применяемыми учеными разных стран из-за гетерогенной симптоматики самих стрессовых расстройств. Этим может объясняться и различная распространенность ПТСР, отмеченная исследователями по всему миру. Этническая принадлежность также может вносить свой вклад, ведь различные генетические вариации встречаются с разной частотой у разных этнических групп [107]. Единственная повторяющаяся ассоциация была показана на популяциях из США и Европы.

Исследования с репликативными выборками

Помимо различия в выборках и критериях заболевания, а также гетерогенности популяций, среди проблем GWAS также можно выделить статистическую мощность (некоторые GWAS могут иметь недостаточную статистическую мощность для обнаружения ассоциаций между геномными вариантами и фенотипами из-за малого размера выборки); множественные тесты (при анализе большого количества генетических вариантов возникает проблема ложноположительных результатов из-за множественных сравнений, что требует коррекции уровня значимости); наличие редких вариантов (GWAS обычно фокусируются на общих генетических вариантах, но редкие варианты могут играть роль в некоторых фенотипах); различие в методологии подсчета (использование различных статистических моделей и способов интерпретации данных).

Из-за этих факторов репликация результатов GWAS является важным компонентом исследования, необходимым для подтверждения обнаруженных ассоциаций и выявления более надежных генетических связей. Для того чтобы исключить методические различия, многие исследователи проводят доказательства на репликативной выборке. Репликация результатов GWAS является важным шагом для подтверждения обнаруженных генетических ассоциаций и повышения уверенности в их значимости. В случае успешной репликации результатов можно говорить о более надежной связи между конкретным геномным вариантом и изучаемым фенотипом. Для репликации результатов GWAS обычно используются независимые выборки пациентов. Это позволяет проверить, сохраняется ли ассоциация между конкретным геномным вариантом и фенотипическим признаком при повторном анализе на другой группе людей.

В 8 исследованиях была репликационная когорта [6, 7, 9, 10, 13, 16—18]. В большинстве случаев найденные ассоциации были доказаны полностью. В первую очередь это достигается стандартизацией методологии и критериями отбора пациентов как для основной, так и для репликационной когорт. Лишь 1 исследование не показало результатов на репликативной выборке [10].

Таким образом, одинаковый дизайн исследования способствует повторению найденных ассоциаций, однако это не говорит о достоверности данных, поскольку исследователи могут повторять свои ложноположительные и ложноотрицательные результаты.

Результаты метаанализов

Исследования делились на две категории: фактические исследования GWAS, где авторы исследования участвовали в наборе групп пациентов, и исследования, выполненные на основе предыдущих данных, где авторы использовали когорты пациентов из других исследований и, таким образом, формировали большие выборки.

У каждого из таких подходов есть свои преимущества и недостатки. Когда исследователи используют свои когорты пациентов, они хоть и получаются не такими значительными, однако представляют собой более однородные выборки, поэтому найти в них какие-то генетические корреляции может быть проще. Кроме того, у представителей различных национальностей также может быть разное распределение аллелей и для каждой популяции генетические вариации, ассоциированные с болезнью, могут быть разные. Такие исследования могут быть более предпочтительны, когда рассматриваются различные виды травмирующего стресса.

Исследования GWAS по имеющимся базам данных, скорее предполагают не поиск новых генов-кандидатов, а подтверждение найденных ассоциаций на большой группе пациентов. Часто ассоциации, найденные в определенных когортах, не подтверждаются в этих анализах. Однако это не может говорить о том, что данная ассоциация не связана с болезнью, возможно, она имеет определенное значение именно для конкретной этнической группы.

Всего было проведено 4 метаанализа, 2 из них не обнаружили ассоциаций, достигших общегеномной значимости. Одно было проведено на 2312 ветеранах войн [25], второе включало около 10 000 участников различного происхождения [82]. Также ни один полиморфизм не достиг общегеномной значимости еще в 4 исследованиях [24, 71—73].

Оставшиеся 2 метаанализа были проведены на существенно больших выборках — 182 199 [11] и 200 000 человек [13]. Стоит отметить, что найденные авторами ассоциации были различными для 2 исследований.

Эти ассоциации касаются генов ZMYM4, SCAND3, PALS2, FOXP2, FAM120A [11] и ZDHHC14, PRKN, ZNF813, KAZN, MIR5007, HLA-B [13].

Далее мы подробно остановимся на исследовании C. Nievergelt и соавт. [1], проведенном в 2024 г. Это новое исследование по данной проблеме, являющееся метаанализом, в нем найдено 95 локусов, ассоциированных с ПТСР. Анализ был проведен на самой масштабной выборке — 1 222 882 человек, причем этнический состав исследовательских когорт был очень разнообразным. Были идентифицированы 43 локуса, ассоциированные со стрессовыми расстройствами: находящиеся в генах, кодирующих нейротрансмиттеры и синаптические модуляторы ионных каналов (например, GRIA1, GRM8 и CACNA1E), гены, участвующие в развитии, и факторы транскрипции (например, FOXP2, EFNA5 и DCC), синаптические факторы и функциональные гены (например, PCLO, NCAM1 и PDE4B), эндокринные или иммунные регуляторы (например, ESR1, TRAF3 и TANK).

Данное исследование является метаанализом 88 работ. Из 95 локусов 88 (114 однонуклеотидных полиморфизмов) показали значимые ассоциации со стрессовыми расстройствами на мультиэтнической выборке.

Далее авторы провели полный транскиптомный анализ тканей головного мозга и выявили 16 локусов в 9 генах, кодирующих различные белки, количественное содержание которых было значимо ассоциировано с ПТСР. В других работах, рассмотренных нами, эти локусы не встречались, большинство из относится к иммунной системе. Гены, кодирующие факторы иммунной системы, — HLA-E, MICB, MICA, CD40, С2, TNFRSF13C, LY75. Гены, кодирующие белки клеточной адгезии, — CDH6, CGREF1. Ген, кодирующий белок, который является членом суперсемейства интегринов. Члены этого семейства представляют собой рецепторы адгезии, которые выполняют функцию передачи сигналов от внеклеточного матрикса к клетке, — ITGB6. Ген, кодирующий лизосомальную гиалуронидазу. Гиалуронидазы внутриклеточно разрушают гиалуронан, один из основных гликозаминогликанов внеклеточного матрикса. Считается, что гиалуронан участвует в пролиферации, миграции и дифференцировке клеток — HYAL1. Ген, кодирующий протеогликан клеточной поверхности, несущий гепарансульфат. Эти белки могут играть роль в контроле деления клеток и регуляции роста — GPC5. Ген, кодирующий аполипопротеин M и член семейства белков липокалина. Он связан с липопротеинами высокой плотности и в меньшей степени с липопротеинами низкой плотности и липопротеинами, богатыми триглицеридами, — APOM. Ген, кодирующий секретируемый лиганд суперсемейства белков TGF-β (трансформирующий фактор роста-бета). Регулирует потребление пищи, расход энергии и массу тела в ответ на метаболические и токсин-индуцированные стрессы — GDF15. Ген, кодирующий рецептор конечного продукта гликозилирования, — AGE. Белок, кодируемый этим геном, является членом суперсемейства иммуноглобулинов рецепторов клеточной поверхности. Это мультилигандный рецептор, который, помимо AGE, взаимодействует с другими молекулами, участвующими в гомеостазе, развитии и воспалении, а также некоторых заболеваниях, таких как диабет и болезнь Альцгеймера, — AGER. Ген, кодирующий мембранный белок, экспрессируемый на поверхности клеток олигодендроцитов и на внешней поверхности миелиновых оболочек, — MOG.

Далее авторами был проведен анализ генетической корреляции ПТСР с биполярным расстройством, депрессией и шизофренией, и было обнаружено, что генетически ПТСР имеет наибольшее сходство с депрессией.

По сравнению с предыдущими GWAS ПТСР, которые рассматриваются в этом обзоре, rs28758576 в SDHBP1 (псевдоген); rs34811474 в ANAPC4; rs4722031 в SP4 из работы F. Wendt и соавт. [12] были также ассоциированы с ПТСР и в исследовании C. Nievergelt и соавт. [1]. Среди повторяющихся генов были: CAMKV, CDHR4, DCC, FAM120A, FOXP2, MAD1L1, MAPT, NCAM1, NOS1, SP4, ZMYM4.

Таким образом, это новое и наиболее масштабное исследование, результатом которого является выявление большого количества новых генетических ассоциаций, что существенно меняет представления о генетике ПТСР [1].

Полигенный риск

ПТСР с точки зрения генетики является полигенным заболеванием, где каждая генетическая вариация обладает слабым влиянием на фенотипические проявления. Не будет выявлено какого-то одного гена предрасположенности, а скорее выявится набор определенных генетических вариаций, которые могут с какой-то вероятностью прогнозировать повышенный или пониженный риск развития ПТСР по сравнению с общей популяцией.

Полигенный риск (PRS) — это сумма всех аллелей риска, взвешенная по величине их эффекта для определенного признака [71]. PRS представляет собой аддитивный эффект тысяч и сотен тысяч генетических вариантов как единую меру генетического риска на индивидуальном уровне в отношении развития определенного признака. Ценность PRS может быть не в контексте поиска патогенетических путей и фундаментальной науки. PRS имеет большее значение для клинической практики. Персонализированный риск может использоваться для конкретного пациента для поиска индивидуальной стратегии терапии и реабилитации, даже сразу после того, как пациент столкнулся с травмирующим стрессовым воздействием и до развертывания полной картины заболевания. Оценка PRS также проводится для определения генетической коморбидности различных заболеваний.

В обзоре рассмотрено 10 исследований, в которых изучали PRS ПТСР для различных целей.

Семь исследований были посвящены анализу генетической коморбидности [12, 14, 18, 71, 72, 73, 82]. Так, в исследовании [18] было показано, что диагноз ПТСР связан с риском возникновения биполярного расстройства. В работе [82] была показана генетическая коморбидность биполярного расстройства и шизофрении. В исследовании [72] — коморбидность депрессии и ПТСР с наличием суицидальных мыслей. В исследовании [14] показали сильную генетическую корреляцию с тревожными и связанными со стрессом расстройствами. F. Wendt и соавт. [12] также показали связь PRS с генерализованным тревожным расстройством на выборке из работы M. Stein и соавт. [15]. В работе S. Saenz de Viteri и соавт. [73] PRS ПТСР также был связан с повышенным риском алкогольной и кокаиновой зависимости. Еще одно исследование касалось не психических заболеваний, а метаболического синдрома, где генетическая корреляция также была показана [71].

C. Nievergelt и соавт. [13] оценивали PRS на выборке из исследования J. Gelernter и соавт. [6] и показали, что их модель в значительной степени предсказывает повторное возникновение симптомов, хотя определенные локусы не реплицировались. Оценка PRS в работе M. Stein и соавт. [5] была проведена с целью оценки возможности использования PRS, полученного в европейской выборке, на африканской популяции. Исследователи делают вывод, что в этом случае их модель не дает хороших прогнозов. PRS объяснял 0,7—0,8% дисперсии в популяции, что является очень низким процентом. J. Gelernter и соавт. [6] получили значения 0,4% для своей модели PRS. Исследование B. Misganaw и соавт. [108] не было включено в наш обзор, поскольку было посвящено оценке PRS по сводным статистическим данным GWAS, но в этой работе PRS объяснил 4,68% вариаций. Авторы объясняют, что модель PRS, построенная на основе опубликованных в настоящее время результатов GWAS, обладает значительной, хотя и недостаточной для клинического использования, способностью к дискриминации и стратификации для прогнозирования диагноза ПТСР, а также тяжести симптомов [108]. На общей выборке в новом исследовании [1] PRS объяснил 6,6% фенотипических вариаций ПТСР, что является самым большим процентом среди рассмотренных работ.

Таким образом, была показана высокая генетическая коморбидность ПТСР с другими психическими заболеваниями. Однако разные модели PRS не всегда работают на разных популяционных группах, что объясняет небольшой процент дисперсии.

Заключение

Для полигенных заболеваний, каким является ПТСР, исследователи часто проводят оценку полигенного риска, которая дает нам знания о генетической коморбидности заболеваний, а также о возможности использования моделей на различных популяциях. Взаимосвязь с тревогой, биполярным расстройством была подтверждена в нескольких работах. Однако разработанные авторами модели объясняют малый процент дисперсии и слабо повторяются на других выборках. Вероятно, решить эту проблему можно, используя большие выборки и более четкие однородные критерии включения. Так как генотип человека остается неизменным с течением жизни, определение генетических вариаций, ассоциированных с ПТСР, может быть полезно для прогнозирования риска развития ПТСР и снижения нетрудоспособности у человека, пережившего сильный травматический стресс. Это поможет предотвратить тяжелые проявления заболевания путем раннего наблюдения врачом-психиатром.

Результаты GWAS ПТСР все еще неоднозначны, и для полного понимания сложной взаимосвязи между генетикой, факторами окружающей среды и риском развития ПТСР необходимы дальнейшие исследования. В целом исследования GWAS представляют собой важный инструмент в раскрытии генетических компонентов ПТСР и в конечном итоге могут привести к разработке более целенаправленных и эффективных мер вмешательства для людей, страдающих этим заболеванием. Эти исследования могут позволить получить ценные сведения о генетической основе ПТСР и пролить свет на потенциальные биологические пути, участвующие в развитии этого расстройства.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Nievergelt CM, Maihofer AX, Atkinson EG, et al. Genome-wide association analyses identify 95 risk loci and provide insights into the neurobiology of post-traumatic stress disorder. Nat Genet. 2024;56(5):792-808.  https://doi.org/10.1038/s41588-024-01707-9
  2. Резник А.М. Обзор исследований внешних факторов и генетических предпосылок боевого посттравматического стрессового расстройства. Вестник Медицинского института непрерывного образования. 2022;(4):46-54.  https://doi.org/10.46393/27821714_2022_4_46
  3. Gates MA, Holowka DW, Vasterling JJ, et al. Posttraumatic stress disorder in veterans and military personnel: epidemiology, screening, and case recognition. Psychol Serv. 2012;9(4):361-382.  https://doi.org/10.1037/a0027649
  4. Han X, Shen Q, Hou C, et al. Disease clusters subsequent to anxiety and stress-related disorders and their genetic determinants. Nat Commun. 2024;15(1):1209. Published 2024 Feb 8.  https://doi.org/10.1038/s41467-024-45445-2
  5. Stein MB, Levey DF, Cheng Z, et al. Genome-wide association analyses of post-traumatic stress disorder and its symptom subdomains in the Million Veteran Program. Nat Genet. 2021;53(2):174-184.  https://doi.org/10.1038/s41588-020-00767-x
  6. Gelernter J, Sun N, Polimanti R, et al. Genome-wide association study of post-traumatic stress disorder reexperiencing symptoms in>165,000 US veterans. Nat Neurosci. 2019;22(9):1394-1401. https://doi.org/10.1038/s41593-019-0447-7
  7. Xie P, Kranzler HR, Yang C, et al. Genome-wide association study identifies new susceptibility loci for posttraumatic stress disorder. Biol Psychiatry. 2013;74(9):656-663.  https://doi.org/10.1016/j.biopsych.2013.04.013
  8. Logue MW, Baldwin C, Guffanti G, et al. A genome-wide association study of post-traumatic stress disorder identifies the retinoid-related orphan receptor alpha (RORA) gene as a significant risk locus. Mol Psychiatry. 2013;18(8):937-942.  https://doi.org/10.1038/mp.2012.113
  9. Wilker S, Schneider A, Conrad D, et al. Genetic variation is associated with PTSD risk and aversive memory: Evidence from two trauma-Exposed African samples and one healthy European sample. Transl Psychiatry. 2018;8(1):251.  https://doi.org/10.1038/s41398-018-0297-1
  10. Stein MB, Chen CY, Ursano RJ, et al. Genome-wide Association Studies of Posttraumatic Stress Disorder in 2 Cohorts of US Army Soldiers. JAMA Psychiatry. 2016;73(7):695-704.  https://doi.org/10.1001/jamapsychiatry.2016.0350
  11. Maihofer AX, Choi KW, Coleman JRI, et al. Enhancing Discovery of Genetic Variants for Posttraumatic Stress Disorder Through Integration of Quantitative Phenotypes and Trauma Exposure Information. Biol Psychiatry. 2022;91(7):626-636.  https://doi.org/10.1016/j.biopsych.2021.09.020
  12. Wendt FR, Pathak GA, Deak JD, et al. Using phenotype risk scores to enhance gene discovery for generalized anxiety disorder and posttraumatic stress disorder. Mol Psychiatry. 2022;27(4):2206-2215. https://doi.org/10.1038/s41380-022-01469-y
  13. Nievergelt CM, Maihofer AX, Klengel T, et al. International meta-analysis of PTSD genome-wide association studies identifies sex- and ancestry-specific genetic risk loci. Nat Commun. 2019;10(1):4558. https://doi.org/10.1038/s41467-019-12576-w
  14. Meier SM, Trontti K, Purves KL, et al. Genetic Variants Associated With Anxiety and Stress-Related Disorders: A Genome-Wide Association Study and Mouse-Model Study. JAMA Psychiatry. 2019;76(9):924-932.  https://doi.org/10.1001/jamapsychiatry.2019.1119
  15. Stein MB, Levey DF, Cheng Z, et al. Genomic Characterization of Posttraumatic Stress Disorder in a Large US Military Veteran Sample. Nature Genetics. 2020:764001.
  16. Almli LM, Stevens JS, Smith AK, et al. A genome-wide identified risk variant for PTSD is a methylation quantitative trait locus and confers decreased cortical activation to fearful faces. Am J Med Genet B Neuropsychiatr Genet. 2015;168B(5):327-336.  https://doi.org/10.1002/ajmg.b.32315
  17. Guffanti G, Galea S, Yan L, et al. Genome-wide association study implicates a novel RNA gene, the lincRNA AC068718.1, as a risk factor for post-traumatic stress disorder in women. Psychoneuroendocrinology. 2013;38(12):3029-3038. https://doi.org/10.1016/j.psyneuen.2013.08.014
  18. Nievergelt CM, Maihofer AX, Mustapic M, et al. Genomic predictors of combat stress vulnerability and resilience in U.S. Marines: A genome-wide association study across multiple ancestries implicates PRTFDC1 as a potential PTSD gene. Psychoneuroendocrinology. 2015;51:459-471.  https://doi.org/10.1016/j.psyneuen.2014.10.017
  19. Alloza I, Otaegui D, de Lapuente AL, et al. ANKRD55 and DHCR7 are novel multiple sclerosis risk loci. Genes Immun. 2012;13(3):253-257.  https://doi.org/10.1038/gene.2011.81
  20. Kojetin DJ, Burris TP. REV-ERB and ROR nuclear receptors as drug targets. Nat Rev Drug Discov. 2014;13(3):197-216.  https://doi.org/10.1038/nrd4100
  21. Jolly S, Journiac N, Naudet F, et al. Cell-autonomous and non-cell-autonomous neuroprotective functions of RORα in neurons and astrocytes during hypoxia. J Neurosci. 2011;31(40):14314-14323. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.1443-11.2011
  22. Banerjee SB, Morrison FG, Ressler KJ. Genetic approaches for the study of PTSD: Advances and challenges. Neurosci Lett. 2017;649:139-146.  https://doi.org/10.1016/j.neulet.2017.02.058
  23. Welin M, Egeblad L, Johansson A, et al. Structural and functional studies of the human phosphoribosyltransferase domain containing protein 1. FEBS J. 2010;277(23):4920-4930. https://doi.org/10.1111/j.1742-4658.2010.07897.x
  24. Wolf EJ, Rasmusson AM, Mitchell KS, et al. A genome-wide association study of clinical symptoms of dissociation in a trauma-exposed sample. Depression and anxiety. 2014;31(4):352-360.  https://doi.org/10.1002/da.22260
  25. Ashley-Koch AE, Garrett ME, Gibson J, et al. Genome-wide association study of posttraumatic stress disorder in a cohort of Iraq-Afghanistan era veterans. J Affect Disord. 2015;184:225-234.  https://doi.org/10.1016/j.jad.2015.03.049
  26. Chen H, Shi Z, Guo J, et al. The human mitochondrial 12S rRNA m4C methyltransferase METTL15 is required for mitochondrial function. J Biol Chem. 2020;295(25):8505-8513. https://doi.org/10.1074/jbc.RA119.012127
  27. Van Haute L, Hendrick AG, D’Souza AR, et al. METTL15 introduces N4-methylcytidine into human mitochondrial 12S rRNA and is required for mitoribosome biogenesis. Nucleic Acids Res. 2019;47(19):10267-10281. https://doi.org/10.1093/nar/gkz735
  28. Sultana R, Yu CE, Yu J, et al. Identification of a novel gene on chromosome 7q11.2 interrupted by a translocation breakpoint in a pair of autistic twins. Genomics. 2002;80(2):129-134.  https://doi.org/10.1006/geno.2002.6810
  29. Beunders G, Voorhoeve E, Golzio C, et al. Exonic deletions in AUTS2 cause a syndromic form of intellectual disability and suggest a critical role for the C terminus. Am J Hum Genet. 2013;92(2):210-220.  https://doi.org/10.1016/j.ajhg.2012.12.011
  30. Hori K, Nagai T, Shan W, et al. Cytoskeletal regulation by AUTS2 in neuronal migration and neuritogenesis. Cell Rep. 2014;9(6):2166-2179. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2014.11.045
  31. Hori K, Shimaoka K, Hoshino M. AUTS2 Gene: Keys to Understanding the Pathogenesis of Neurodevelopmental Disorders. Cells. 2021;11(1):11. Published 2021 Dec 21.  https://doi.org/10.3390/cells11010011
  32. Ji W, Luo Y, Ahmad E, Liu ST. Direct interactions of mitotic arrest deficient 1 (MAD1) domains with each other and MAD2 conformers are required for mitotic checkpoint signaling. J Biol Chem. 2018;293(2):484-496.  https://doi.org/10.1074/jbc.RA117.000555
  33. Wan J, Block S, Scribano CM, et al. Mad1 destabilizes p53 by preventing PML from sequestering MDM2. Nat Commun. 2019;10(1):1540. Published 2019 Apr 4.  https://doi.org/10.1038/s41467-019-09471-9
  34. Zuko A, Oguro-Ando A, van Dijk R, et al. Developmental role of the cell adhesion molecule Contactin-6 in the cerebral cortex and hippocampus. Cell Adh Migr. 2016;10(4):378-392.  https://doi.org/10.1080/19336918.2016.1155018
  35. Lavery K, Swain P, Falb D, Alaoui-Ismaili MH. BMP-2/4 and BMP-6/7 differentially utilize cell surface receptors to induce osteoblastic differentiation of human bone marrow-derived mesenchymal stem cells. J Biol Chem. 2008;283(30):20948-20958. https://doi.org/10.1074/jbc.M800850200
  36. Tanaka K, Kaji H, Yamaguchi T, et al. Involvement of the osteoinductive factors, Tmem119 and BMP-2, and the ER stress response PERK-eIF2α-ATF4 pathway in the commitment of myoblastic into osteoblastic cells. Calcif Tissue Int. 2014;94(4):454-464.  https://doi.org/10.1007/s00223-013-9828-1
  37. Seeherman HJ, Berasi SP, Brown CT, et al. A BMP/activin A chimera is superior to native BMPs and induces bone repair in nonhuman primates when delivered in a composite matrix. Sci Transl Med. 2019;11(489):eaar4953. https://doi.org/10.1126/scitranslmed.aar4953
  38. Shah K, Rossie S. Tale of the Good and the Bad Cdk5: Remodeling of the Actin Cytoskeleton in the Brain. Mol Neurobiol. 2018;55(4):3426-3438. https://doi.org/10.1007/s12035-017-0525-3
  39. Liang Z, Zhan Y, Shen Y, et al. The pseudokinase CaMKv is required for the activity-dependent maintenance of dendritic spines. Nat Commun. 2016;7:13282. https://doi.org/10.1038/ncomms13282
  40. Morohashi Y, Hatano N, Ohya S, et al. Molecular cloning and characterization of CALP/KChIP4, a novel EF-hand protein interacting with presenilin 2 and voltage-gated potassium channel subunit Kv4. J Biol Chem. 2002;277(17):14965-14975. https://doi.org/10.1074/jbc.M200897200
  41. An WF, Bowlby MR, Betty M, et al. Modulation of A-type potassium channels by a family of calcium sensors. Nature. 2000;403(6769):553-556.  https://doi.org/10.1038/35000592
  42. Brereton P, Suzuki T, Sasano H, et al. Pan1b (17betaHSD11)-enzymatic activity and distribution in the lung. Mol Cell Endocrinol. 2001;171(1-2):111-117.  https://doi.org/10.1016/s0303-7207(00)00417-2
  43. Hong Y, Jang SW, Ye K. The N-terminal fragment from caspase-cleaved serine/arginine protein-specific kinase2 (SRPK2) translocates into the nucleus and promotes apoptosis. J Biol Chem. 2011;286(1):777-786.  https://doi.org/10.1074/jbc.M110.193441
  44. Jang SW, Liu X, Fu H, et al. Interaction of Akt-phosphorylated SRPK2 with 14-3-3 mediates cell cycle and cell death in neurons. J Biol Chem. 2009;284(36):24512-24525. https://doi.org/10.1074/jbc.M109.026237
  45. Radzisheuskaya A, Shliaha PV, Grinev VV, et al. Complex-dependent histone acetyltransferase activity of KAT8 determines its role in transcription and cellular homeostasis. Mol Cell. 2021;81(8):1749-1765.e8.  https://doi.org/10.1016/j.molcel.2021.02.012
  46. Li H, Zhu Y, Morozov YM, et al. Disruption of TCF4 regulatory networks leads to abnormal cortical development and mental disabilities. Mol Psychiatry. 2019;24(8):1235-1246. https://doi.org/10.1038/s41380-019-0353-0
  47. Chen J, Lin M, Hrabovsky A, et al. ZNF804A Transcriptional Networks in Differentiating Neurons Derived from Induced Pluripotent Stem Cells of Human Origin. PLoS One. 2015;10(4):e0124597. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0124597
  48. Riley B, Thiselton D, Maher BS, et al. Replication of association between schizophrenia and ZNF804A in the Irish Case-Control Study of Schizophrenia sample. Mol Psychiatry. 2010;15(1):29-37.  https://doi.org/10.1038/mp.2009.109
  49. Steinberg S, Mors O, Børglum AD, et al. Expanding the range of ZNF804A variants conferring risk of psychosis. Mol Psychiatry. 2011;16(1):59-66.  https://doi.org/10.1038/mp.2009.149
  50. Kane MS, Diamonstein CJ, Hauser N, et al. Endosomal trafficking defects in patient cells with KIAA1109 biallelic variants. Genes Dis. 2019;6(1):56-67.  https://doi.org/10.1016/j.gendis.2018.12.004
  51. de Boer HR, Guerrero Llobet S, van Vugt MA. Controlling the response to DNA damage by the APC/C-Cdh1. Cell Mol Life Sci. 2016;73(5):949-960.  https://doi.org/10.1007/s00018-015-2096-7
  52. Ing-Esteves S, Kostadinov D, Marocha J, et al. Combinatorial Effects of Alpha- and Gamma-Protocadherins on Neuronal Survival and Dendritic Self-Avoidance. J Neurosci. 2018;38(11):2713-2729. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.3035-17.2018
  53. Sheehan K, Lee J, Chong J, et al. Transcription factor Sp4 is required for hyperalgesic state persistence. PLoS One. 2019;14(2):e0211349. Published 2019 Feb 27.  https://doi.org/10.1371/journal.pone.0211349
  54. Yadav P, Ahmed T, Park S, et al. EZH2 and matrix co-regulate phenotype and KCNB2 expression in bladder smooth muscle cells. Am J Clin Exp Urol. 2023;11(4):293-303. 
  55. Wang P, Anderson DE, Ye Y. PI3K-AKT activation resculpts integrin signaling to drive filamentous tau-induced proinflammatory astrogliosis. Cell Biosci. 2023;13(1):179.  https://doi.org/10.1186/s13578-023-01128-x
  56. Bommaraju S, Dhokne MD, Arun EV, et al. An insight into crosstalk among multiple signalling pathways contributing to the pathophysiology of PTSD and depressive disorders. Prog Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry. 2024;131:110943. https://doi.org/10.1016/j.pnpbp.2024.110943
  57. Bian YY, Yang LL, Zhang B, et al. Identification of key genes involved in post-traumatic stress disorder: Evidence from bioinformatics analysis. World J Psychiatry. 2020;10(12):286-298.  https://doi.org/10.5498/wjp.v10.i12.286
  58. Pereira Luppi M, Azcorra M, Caronia-Brown G, et al. Sox6 expression distinguishes dorsally and ventrally biased dopamine neurons in the substantia nigra with distinctive properties and embryonic origins. Cell Rep. 2021;37(6):109975. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2021.109975
  59. Nasyrova RF, Moskaleva PV, Vaiman EE, et al. Genetic Factors of Nitric Oxide’s System in Psychoneurologic Disorders. Int J Mol Sci. 2020;21(5):1604. https://doi.org/10.3390/ijms21051604
  60. Nam J, Mah W, Kim E. The SALM/Lrfn family of leucine-rich repeat-containing cell adhesion molecules. Semin Cell Dev Biol. 2011;22(5):492-498.  https://doi.org/10.1016/j.semcdb.2011.06.005
  61. Cappello V, Marchetti L, Parlanti P, et al. Ultrastructural Characterization of the Lower Motor System in a Mouse Model of Krabbe Disease. Sci Rep. 2016;6(1):1.  https://doi.org/10.1038/s41598-016-0001-8
  62. Zhu Y, Yao S, Augustine MM, et al. Neuron-specific SALM5 limits inflammation in the CNS via its interaction with HVEM. Sci Adv. 2016;2(4):e1500637. https://doi.org/10.1126/sciadv.1500637
  63. Babcock KJ, Abdolmohammadi B, Kiernan PT, et al. Interface astrogliosis in contact sport head impacts and military blast exposure. Acta Neuropathol Commun. 2022;10(1):52.  https://doi.org/10.1186/s40478-022-01358-z
  64. Laurent CE, Smithgall TE. The c-Fes tyrosine kinase cooperates with the breakpoint cluster region protein (Bcr) to induce neurite extension in a Rac- and Cdc42-dependent manner. Exp Cell Res. 2004;299(1):188-198.  https://doi.org/10.1016/j.yexcr.2004.05.010
  65. Huang YL, Pai FS, Tsou YT, et al. Human CLEC18 Gene Cluster Contains C-type Lectins with Differential Glycan-binding Specificity. J Biol Chem. 2015;290(35):21252-21263. https://doi.org/10.1074/jbc.M115.649814
  66. Zhang CC, Xing A, Tan MS, et al. The Role of MAPT in Neurodegenerative Diseases: Genetics, Mechanisms and Therapy. Mol Neurobiol. 2016;53(7):4893-4904. https://doi.org/10.1007/s12035-015-9415-8
  67. Vosberg DE, Leyton M, Flores C. The Netrin-1/DCC guidance system: dopamine pathway maturation and psychiatric disorders emerging in adolescence. Mol Psychiatry. 2020;25(2):297-307.  https://doi.org/10.1038/s41380-019-0561-7
  68. Haag N, Schwintzer L, Ahuja R, et al. The actin nucleator Cobl is crucial for Purkinje cell development and works in close conjunction with the F-actin binding protein Abp1. J Neurosci. 2012;32(49):17842-17856. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.0843-12.2012
  69. Zhang J, Roberts JM, Chang F, et al. Jarid2 promotes temporal progression of retinal progenitors via repression of Foxp1. Cell Rep. 2023;42(4):112416. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2023.112416
  70. Van Aubel RA, Smeets PH, van den Heuvel JJ, Russel FG. Human organic anion transporter MRP4 (ABCC4) is an efflux pump for the purine end metabolite urate with multiple allosteric substrate binding sites. Am J Physiol Renal Physiol. 2005;288(2):F327-F333. https://doi.org/10.1152/ajprenal.00133.2004
  71. Swart PC, van den Heuvel LL, Lewis CM, et al. A Genome-Wide Association Study and Polygenic Risk Score Analysis of Posttraumatic Stress Disorder and Metabolic Syndrome in a South African Population. Front Neurosci. 2021;15:677800. Published 2021 Jun 10.  https://doi.org/10.3389/fnins.2021.677800
  72. Shen H, Gelaye B, Huang H, et al. Polygenic prediction and GWAS of depression, PTSD, and suicidal ideation/self-harm in a Peruvian cohort. Neuropsychopharmacology. 2020;45(10):1595-1602. https://doi.org/10.1038/s41386-020-0603-5
  73. Saenz de Viteri S, Zhang J, Johnson EC, et al. Genomic risk for post-traumatic stress disorder in families densely affected with alcohol use disorders. Mol Psychiatry. 2023;28(8):3391-3396. https://doi.org/10.1038/s41380-023-02117-9
  74. Zhang KY, Card GL, Suzuki Y, et al. A glutamine switch mechanism for nucleotide selectivity by phosphodiesterases. Mol Cell. 2004;15(2):279-286.  https://doi.org/10.1016/j.molcel.2004.07.005
  75. Świerczek A, Jankowska A, Chłoń-Rzepa G, et al. Advances in the Discovery of PDE10A Inhibitors for CNS-Related Disorders. Part 2: Focus on Schizophrenia. Curr Drug Targets. 2019;20(16):1652-1669. https://doi.org/10.2174/1389450120666190801114210
  76. Cibis H, Biyanee A, Dörner W, et al. Characterization of the zinc finger proteins ZMYM2 and ZMYM4 as novel B-MYB binding proteins. Sci Rep. 2020;10(1):8390. Published 2020 May 21.  https://doi.org/10.1038/s41598-020-65443-w
  77. Zhang X, Zhou H, Zhang Y, et al. ZNF452 facilitates tumor proliferation and invasion via activating AKT-GSK3β signaling pathway and predicts poor prognosis of non-small cell lung cancer patients. Oncotarget. 2017;8(24):38863-38875. https://doi.org/10.18632/oncotarget.16408
  78. Dahlhoff M, Siegmund A, Golub Y, et al. AKT/GSK-3beta/beta-catenin signalling within hippocampus and amygdala reflects genetically determined differences in posttraumatic stress disorder like symptoms. Neuroscience. 2010;169(3):1216-1226. https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2010.05.066
  79. Ivanova S, Gregorc U, Vidergar N, et al. MAGUKs, scaffolding proteins at cell junctions, are substrates of different proteases during apoptosis. Cell Death Dis. 2011;2(1):e116. https://doi.org/10.1038/cddis.2010.92
  80. Richter G, Gui T, Bourgeois B, et al. β-catenin regulates FOXP2 transcriptional activity via multiple binding sites. FEBS J. 2021;288(10):3261-3284. https://doi.org/10.1111/febs.15656
  81. Tanaka M, Sasaki K, Kamata R, et al. A novel RNA-binding protein, Ossa/C9orf10, regulates activity of Src kinases to protect cells from oxidative stress-induced apoptosis. Mol Cell Biol. 2009;29(2):402-413.  https://doi.org/10.1128/MCB.01035-08
  82. Duncan LE, Ratanatharathorn A, Aiello AE, et al. Largest GWAS of PTSD (N=20 070) yields genetic overlap with schizophrenia and sex differences in heritability. Mol Psychiatry. 2018;23(3):666-673.  https://doi.org/10.1038/mp.2017.77
  83. Adachi N, Hess DT, McLaughlin P, Stamler JS. S-Palmitoylation of a Novel Site in the β2-Adrenergic Receptor Associated with a Novel Intracellular Itinerary. J Biol Chem. 2016;291(38):20232-20246. https://doi.org/10.1074/jbc.M116.725762
  84. Shimura H, Hattori N, Kubo Si, et al. Familial Parkinson disease gene product, parkin, is a ubiquitin-protein ligase. Nat Genet. 2000;25(3):302-305.  https://doi.org/10.1038/77060
  85. Barazzuol L, Giamogante F, Brini M, Calì T. PINK1/Parkin Mediated Mitophagy, Ca2+ Signalling, and ER-Mitochondria Contacts in Parkinson’s Disease. Int J Mol Sci. 2020;21(5):1772. https://doi.org/10.3390/ijms21051772
  86. Groot KR, Sevilla LM, Nishi K, et al. Kazrin, a novel periplakin-interacting protein associated with desmosomes and the keratinocyte plasma membrane. J Cell Biol. 2004;166(5):653-659.  https://doi.org/10.1083/jcb.200312123
  87. Sekeres MJ, Winocur G, Moscovitch M. The hippocampus and related neocortical structures in memory transformation. Neurosci Lett. 2018;680:39-53.  https://doi.org/10.1016/j.neulet.2018.05.006
  88. Roesler R, Parent MB, LaLumiere RT, McIntyre CK. Amygdala-hippocampal interactions in synaptic plasticity and memory formation. Neurobiol Learn Mem. 2021;184:107490. https://doi.org/10.1016/j.nlm.2021.107490
  89. Goto A. Synaptic plasticity during systems memory consolidation. Neurosci Res. 2022;183:1-6.  https://doi.org/10.1016/j.neures.2022.05.008
  90. He M, Wei JX, Mao M, et al. Synaptic Plasticity in PTSD and associated Comorbidities: The Function and Mechanism for Diagnostics and Therapy. Curr Pharm Des. 2018;24(34):4051-4059. https://doi.org/10.2174/1381612824666181120094749
  91. Dityatev A, Bukalo O, Schachner M. Modulation of synaptic transmission and plasticity by cell adhesion and repulsion molecules. Neuron Glia Biol. 2008;4(3):197-209.  https://doi.org/10.1017/S1740925X09990111
  92. Cullen PK, Ferrara NC, Pullins SE, Helmstetter FJ. Context memory formation requires activity-dependent protein degradation in the hippocampus. Learn Mem. 2017;24(11):589-596.  https://doi.org/10.1101/lm.045443.117
  93. Kmita H, Pinna G, Lushchak VI. Potential oxidative stress related targets of mitochondria-focused therapy of PTSD. Front Physiol. 2023;14:1266575. https://doi.org/10.3389/fphys.2023.1266575
  94. Dunlop BW, Wong A. The hypothalamic-pituitary-adrenal axis in PTSD: Pathophysiology and treatment interventions. Prog Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry. 2019;89:361-379.  https://doi.org/10.1016/j.pnpbp.2018.10.010
  95. Freudenberg F, Alttoa A, Reif A. Neuronal nitric oxide synthase (NOS1) and its adaptor, NOS1AP, as a genetic risk factors for psychiatric disorders. Genes Brain Behav. 2015;14(1):46-63.  https://doi.org/10.1111/gbb.12193
  96. Bruenig D, Morris CP, Mehta D, et al. Nitric oxide pathway genes (NOS1AP and NOS1) are involved in PTSD severity, depression, anxiety, stress and resilience. Gene. 2017;625:42-48.  https://doi.org/10.1016/j.gene.2017.04.048
  97. Chen HJ, Spiers JG, Sernia C, Lavidis NA. Acute restraint stress induces specific changes in nitric oxide production and inflammatory markers in the rat hippocampus and striatum. Free Radic Biol Med. 2016;90:219-229.  https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2015.11.023
  98. Ploeger A, Raijmakers ME, van der Maas HL, Galis F. The association between autism and errors in early embryogenesis: what is the causal mechanism? Biol Psychiatry. 2010;67(7):602-607.  https://doi.org/10.1016/j.biopsych.2009.10.010
  99. Debnath M, Venkatasubramanian G, Berk M. Fetal programming of schizophrenia: select mechanisms. Neurosci Biobehav Rev. 2015;49:90-104.  https://doi.org/10.1016/j.neubiorev.2014.12.003
  100. Hori K, Shimaoka K, Hoshino M. AUTS2 Gene: Keys to Understanding the Pathogenesis of Neurodevelopmental Disorders. Cells. 2021;11(1):11.  https://doi.org/10.3390/cells11010011
  101. Haruvi-Lamdan N, Horesh D, Golan O. PTSD and autism spectrum disorder: Co-morbidity, gaps in research, and potential shared mechanisms. Psychol Trauma. 2018;10(3):290-299.  https://doi.org/10.1037/tra0000298
  102. Terranova JI, Ogawa SK, Kitamura T. Adult hippocampal neurogenesis for systems consolidation of memory. Behav Brain Res. 2019;372:112035. https://doi.org/10.1016/j.bbr.2019.112035
  103. Fujikawa R, Ramsaran AI, Guskjolen A, et al. Neurogenesis-dependent remodeling of hippocampal circuits reduces PTSD-like behaviors in adult mice. Mol Psychiatry. 2024. https://doi.org/10.1038/s41380-024-02585-7
  104. Cisler JM, Herringa RJ. Posttraumatic Stress Disorder and the Developing Adolescent Brain. Biol Psychiatry. 2021;89(2):144-151.  https://doi.org/10.1016/j.biopsych.2020.06.001
  105. Sokolov AV, Manu DM, Nordberg DOT, et al. Methylation in MAD1L1 is associated with the severity of suicide attempt and phenotypes of depression. Clin Epigenetics. 2023;15(1):1.  https://doi.org/10.1186/s13148-022-01394-5
  106. Zhou S, Luo H, Tian Y, et al. Investigating the shared genetic architecture of post-traumatic stress disorder and gastrointestinal tract disorders: a genome-wide cross-trait analysis. Psychol Med. 2023;53(16):7627-7635. https://doi.org/10.1017/S0033291723001423
  107. Morozova A, Ushakova V, Pavlova O, et al. BDNF, DRD4, and HTR2A Gene Allele Frequency Distribution and Association with Mental Illnesses in the European Part of Russia. Genes (Basel). 2024;15(2):240.  https://doi.org/10.3390/genes15020240
  108. Misganaw B, Guffanti G, Lori A, et al. Polygenic risk associated with post-traumatic stress disorder onset and severity. Transl Psychiatry. 2019;9(1):165.  https://doi.org/10.1038/s41398-019-0497-3

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.