Омарова М.А.

ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» Федерального медико-биологического агентства России;
ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Роговский В.С.

ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» Федерального медико-биологического агентства России;
ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Садеков Т.Ш.

ФБУН «Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского» Роспотребнадзора

Садекова Г.И.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Жиленкова О.Г.

ФБУН «Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского» Роспотребнадзора

Бойко А.Н.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России;
ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» Федерального медико-биологического агентства России

Исследование содержания маркеров микробиоты в цельной крови и цереброспинальной жидкости пациентов с различными типами течения рассеянного склероза и лиц с радиологически изолированным синдромом

Авторы:

Омарова М.А., Роговский В.С., Садеков Т.Ш., Садекова Г.И., Жиленкова О.Г., Бойко А.Н.

Подробнее об авторах

Прочитано: 2051 раз


Как цитировать:

Омарова М.А., Роговский В.С., Садеков Т.Ш., Садекова Г.И., Жиленкова О.Г., Бойко А.Н. Исследование содержания маркеров микробиоты в цельной крови и цереброспинальной жидкости пациентов с различными типами течения рассеянного склероза и лиц с радиологически изолированным синдромом. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. Спецвыпуски. 2023;123(7‑2):96‑102.
Omarova MA, Rogovskii VS, Sadekov TSh, Sadekova GI, Zhilenkova OG, Boyko AN. Microbiota markers level in the blood and cerebrospinal fluid of patients with different types of multiple sclerosis and radiologically isolated syndrome. S.S. Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry. 2023;123(7‑2):96‑102. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/jnevro202312307296

Рекомендуем статьи по данной теме:
Диаг­нос­ти­ка ней­ро­ин­фек­ций у де­тей. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2024;(11-2):51-59
Хи­рур­ги­чес­кое ле­че­ние вто­рич­ной три­ге­ми­наль­ной нев­рал­гии. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(11):203-209
Ка­чес­тво жиз­ни па­ци­ен­тов с рас­се­ян­ным скле­ро­зом в Смо­лен­ской об­лас­ти. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(12):36-40
Гор­мо­наль­ные ме­то­ды кон­тра­цеп­ции и рас­се­ян­ный скле­роз. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(1):24-30
Эпи­де­ми­оло­гия рас­се­ян­но­го скле­ро­за в Но­во­си­бир­ске. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(1):119-127

Рассеянный склероз (РС) — это воспалительное иммуноопосредованное и нейродегенеративное заболевание центральной нервной системы (ЦНС), характеризующееся демиелинизацией, повреждением аксонов и прогрессирующей инвалидизацией. Этиология и патогенез РС сложны и остаются неясными, хотя в этом участвуют как генетические факторы, так и факторы окружающей среды.

Кишечная микробиота как важный модулятор иммунного ответа и работы головного мозга может быть одной из причин повышения риска РС [1]. Предполагается, что нарушенная бактериальная и вирусная микробиота кишечника является важной составляющей патогенеза и опосредует аутоиммунный механизм заболевания через измененную ось «кишечник—иммунитет—мозг» [2, 3]. Ось «кишечник—иммунитет—мозг» можно определить как путь двусторонней связи между ЦНС, желудочно-кишечным трактом и кишечной микробиотой, опосредованный продуктами жизнедеятельности бактерий, действующими на системном уровне, вовлекая эндокринную и нервную системы [4—6]. ЦНС обладает способностью регулировать перистальтику кишечника, а также управлять местным иммунитетом с помощью нейромедиаторов посредством блуждающего нерва и гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой системы. В свою очередь пищеварительная система может регулировать нейропсихологические функции, оказывая влияние на аппетит или настроение [7].

Для классификации кишечной микробиоты с середины 1980-х годов используется ключевой идентификатор, ген 16s рРНК. Этот ген содержит постоянные и вариабельные участки, которые обеспечивают конструирование универсального праймера и определяют различие между разными видами. Ген 16s рРНК содержит приблизительно 1500 пар оснований. Постоянные участки этого гена позволяют амплифицировать его и маркировать в образце микроорганизма с использованием метода полимеразной цепной реакции (ПЦР) [8].

Изменения в комменсальной микробиоте кишечника связаны со многими воспалительными процессами. Многочисленные исследования показали как истощение, так и обогащение микробиоты кишечника определенными бактериями у пациентов с РС по сравнению со здоровыми лицами из контрольной группы. Предполагается, что определенные таксоны могут быть связаны либо с патогенезом, либо с прогрессированием заболевания. Остается неясным, является ли изменение кишечной микробиоты этиологическим фактором заболевания или же следствием патогенетических изменений при РС [1].

Одно из направлений исследований механизмов микробной регуляции работы мозга было сосредоточено на обнаружении и характеристике бактериальных токсинов, обладающих способностью проникать в кровоток и через гематоэнцефалический барьер (ГЭБ) достигать паренхимы головного мозга. Примером может служить выработка эпсилон-токсина (ETX) Clostridium perfringens, представителем семейства Clostridiales, которая, как было обнаружено, повышена у пациентов с РС или заболеваниями спектра оптиконевромиелита (ЗСОНМ). Однако ETX обнаруживается лишь у небольшого процента пациентов с РС, что позволяет предположить наличие других механизмов [6].

В рамках международного исследования микробиома при РС (iMSMS) был изучен микробиом кишечника 576 пациентов с РС (36% пациентов не получали лечения) и 1152 здоровых лиц контрольной группы. По результатам данного исследования в группе пациентов с РС без лечения наблюдалось значительное увеличение доли Akkermansia muciniphila, Ruthenibacterium lactatiformans, Hungatella hathewayi и Eisenbergiella tayi и уменьшение количества видов Faecalibacterium prausnitzii и Blautia. Путь деградации фитатов был значимо увеличен у пациентов с РС, не получавших лечение, в то время как пути метаболизма углеводов, продуцирующих пируват, были значительно снижены. Состав, функции микробиома и производные метаболиты также различались в зависимости от патогенетического лечения. Отчетливые микробные сети наблюдались у нелеченных пациентов с РС и здоровых лиц контрольной группы. Эти результаты убедительно подтверждают связь специфического микробиома кишечника с риском развития РС, течением и прогрессированием, а также ответом на терапию [1].

При изучении видового состава микробиома у пациентов с РС в стадии обострения обнаружены отличия от пациентов в стадии ремиссии или группы здоровых. Так, было показано, что при обострении РС кишечная микробиота менее обогащена актинобактериями родов Adlercreutzia и Collinsella. Обогащение бактероидами родов Pedobacter и Flavobacterium у больных РС было больше, тогда как бактероидами рода Parabacteroides — напротив, меньше. Содержание фирмикутных бактерий родов Blautia и Dorea было выше у больных РС, в то время как содержание других фирмикутов (Erysipelotrichaceae, Lachnospiraceae, Veillonellaceae) — ниже. Содержание протеобактерий Pseudomonas и Mycoplana было выше у больных РС, а содержание Haemophilus — в группе здоровых пациентов [9]. В исследовании, проведенном в 2018 г. среди населения Испании, была предпринята попытка продемонстрировать различия между пациентами с РС не получавшими и получавшими лечение, для чего исследование было гомогенизировано с участием 15 пациентов, получавших интерферон-β1b (ИФН-β1b), 15 — не получавших лечения, и 14 контрольных субъектов. В этом исследовании в дополнение к различиям в таксонах (типы Euryarchaeota, Firmicutes, Proteobacteria, Actinobacteria и Lentisphaerae), связанным с наличием или отсутствием заболевания, были также обнаружены различия между пациентами с лечением и без него по присутствию одного вида, Prevotella copri, ранее считавшегося фактором защиты от РС. У пациентов с РС, получавших лечение, кишечная микробиота была сходной с таковой у лиц контрольной группы [4]. Полученные данные могут указывать на эффективность ИФН-β1b и его влияние на кишечную микробиоту, наблюдаемое у пациентов с РС, получающих это лечение [5].

Говоря о составе цереброспинальной жидкости (ЦСЖ) пациентов с РС, нами ранее было обнаружено, что в ней содержится повышенное количество различных микробных маркеров, что может свидетельствовать о возможной ассоциации РС с полимикробной инфекцией. Было обнаружено увеличение микробной нагруженности у пациентов с РС, свидетельствующее о возможной ассоциации РС с полимикробной инфекцией. В частности, обнаружено увеличение содержания маркеров Streptococcus, а также тенденция трехкратного увеличения содержания кампестерола, маркера кампестерол-продуцирующих микрогрибов, в ЦСЖ пациентов с РС по сравнению с контрольной группой (диагностические пункции, различные заболевания нервной системы неаутоиммунного или воспалительного характера, неострые состояния) [10].

С целью идентификации нейротоксичных метаболитов, потенциально способных повлиять на аксональное повреждение, проведен функциональный ксеногенный анализ Achilles Ntranos, в ходе которого культивированные нейроны крыс подвергли воздействию образцов ЦСЖ, собранных у пациентов с РС до и после лечения диметилфумаратом, а затем провели метаболомный анализ образцов плазмы и ЦСЖ для выявления метаболитов с различным содержанием. Анализ взвешенной корреляционной сети выявил наличие метаболитов фенола и индольной группы бактериального происхождения (п-крезолсульфата, индоксилсульфата и N-фенилацетилглутамина) как потенциально нейротоксичных, которые уменьшаются при лечении РС. Хроническое воздействие этих метаболитов на культивируемые нейроны снижало скорость их возбуждения и индуцировало повреждение аксонов, независимое от митохондриальной дисфункции и окислительного стресса, тем самым выявляя новый путь нейротоксичности. Уровни идентифицированных метаболитов бактериального происхождения (п-крезолсульфат, индоксилсульфат и N-фенилацетилглутамин) были обратно пропорциональны показателю объема коры головного мозга, полученного с помощью магнитно-резонансной томографии (МРТ), и напрямую коррелировали с уровнями легких цепей нейрофиламентов — установленного биомаркера нейродегенерации. Полученные данные свидетельствуют о том, что производные фенола и индола, образующиеся в результате катаболизма триптофана и фенилаланина, являются метаболитами микробного происхождения, которые могут опосредовать связь между кишечником и мозгом и вызывать нейротоксическое влияние при РС [6].

Цель исследования — оценка уровня микробиотических маркеров в цельной крови и ЦСЖ пациентов с различными типами течения РС, лиц с радиологически изолированным синдромом (РИС) и контрольной группы.

Материал и методы

В текущей работе мы выполнили первоначальную оценку маркеров микробиоты в крови и ЦСЖ пациентов с впервые диагностированным РС, ранее не получавших терапию препаратами, изменяющими течение РС (ПИТРС), среди которых пациенты с ремиттирующим РС (РРС) в стадии ремиссии (27 образцов), в стадии обострения (35), с первично-прогрессирующим РС — ППРС (7), лица с РИС (10) и контрольной группы (47 диагностических образцов — различные заболевания нервной системы неаутоиммунного или воспалительного характера, неострые состояния), с использованием хромато-масс-спектрометрического исследования [11]. Все образцы были собраны для диагностических целей в соответствии со стандартным протоколом и одобрением локального Этического комитета. Все пациенты подписали письменное информированное согласие для участия в исследовании. Пациенты с диагнозом РС имели ремиттирующее и первично-прогрессирующее течение, диагноз был установлен на основании клинических, нейровизуализационных и лабораторных данных.

Анализ микробных маркеров заключается в прямом извлечении ионов жирных кислот, альдегидов и стеринов из крови и ЦСЖ, их хроматографическом разделении и последующем масс-спектрометрическом обнаружении [12]. Для анализа образец ЦСЖ в количестве 80 мкл подсушивали в термостате при 80 °C с добавлением 80 мкл метанола для ускорения сушки, образец крови в количестве 40 мкл подсушивали в термостате при 80 °C с добавлением 40 мкл метанола для ускорения сушки. Анализ был проведен согласно методике, описанной Г.А. Осиповым и соавт. [13]. Жирные кислоты высвобождались в виде метиловых эфиров и диметилацеталей в результате метанолиза. Полученные продукты экстрагировали и подвергли дериватизации для улучшения хроматографической подвижности гидроксикислот и стеролов. На этапе пробоподготовки в пробу вводился внутренний стандарт — дейтерированная тридекановая кислота, по которому в дальнейшем происходил количественный расчет. Аналит в количестве 2 мкл вводили в систему ГХ-МС Maestro 7820 A с масс-селективным детектором (детектор серии 5975 «Agilent Technologies», США) [13]. Масс-спектрометр работал в режиме селективного сканирования ионов, регистрируя 37 спектральных линий (масс-ионов). Алгоритм определения масс-спектральных параметров биологического образца может обнаруживать около 200 известных микробных маркеров, что достаточно для выявления и анализа более 170 таксонов клинически значимых микроорганизмов на уровне рода или вида. Точный подбор временных интервалов и оптимизированный набор детектируемых ионов позволяет избирательно регистрировать минорные компоненты микробного происхождения на фоне подавляющих сигналов молекул биоматериала (биоматрицы) и химических соединений, содержащихся в средствах отбора. Это позволяет устранить эффекты хроматографического наложения пиков [14].

Для определения статистической значимости использовался U-тест Манна—Уитни. Значения p<0,05 принимались как статистически значимые.

Результаты

Нами обнаружен ряд отличий между содержанием микробиотических маркеров в ЦСЖ контрольной группы и пациентов с РС. Данные по маркерам с наибольшими отличиями от контрольной группы представлены в табл. 1.

Таблица 1. Концентрация микробных маркеров в ЦСЖ пациентов с РС (РРС-ремиссия, РРС-обострение, ППРС), лиц с РИС и контрольной группы, нмоль/г

Маркер

Предполагаемый источник

Контрольная группа

РС ремиссия

РС обострение

ППРС

РИС

i12

Peptostreptococcus anaerobius

0,29 [0,15—0,56]

0,57 [0,29—1,17]*

0,23 [0,09—0,49]

0,42 [0,3—0,69]

0,42 [0,3—0,9]

2h12

Pseudomonas aeruginosa

0,1 [0,04—0,2]

0,19 [0,09—0,4]*

0,1 [0,06—0,23]

0,07 [0,05—0,6]

0,23 [0,11—0,48]*

20:1d11

Streptococcus (anaerobic)

0,09 [0,03—0,18]

0,15 [0,07—0,2]

0,07 [0,04—0,15]

0,08 [0,04—0,3]

0,22 [0,09—0,43]

Campesterol

Кампестерол-продуцирующие микрогрибы

0,9 [0,61—1,77]

2,01 [0,73—3,84]

0,93 [0,55—2,54]

1,0 [0,82—3,23]

0,98 [0,46—4,16]

3h12

p. Acinetobacter, Pseudomonas, Vibrio, Neisseria, Moraxella, Kingella, Ps pertucinogena

0,02 [0,01—0,03]

0,04 [0,02—0,13]*

0,03 [0,01—0,05]

0,06 [0,04—0,08]*

0,04 [0,02— 0,07]*

Coprostanol

Eubacterium

0,26 [0,18—0,69]

0,57 [0,29—1,45]*

0,47 [0,2—0,84]

0,48 [0,4—3,1]

0,37 [0,18—0,76]

i14a

Bifidobacterium, Butirivibrio

0,22 [0,12—0,46]

0,72 [0,29—1,41]*

0,33 [0,15—0,73]

0,71 [0,25—1,1]

0,52 [0,5—0,55]

а13

Bacillus cereus, Brevibacterium

0,023 [0,01—0,05]

0,03 [0,02—0,06]

0,02 [0,01—0,05]

0,09 [0,02—0,25]

0,05 [0,03—0,07]

i14

Peptostreptococcus anaerobius

0,36 [0,06—0,68]

0,39 [0,16—0,61]

0,18 [0,04—0,57]

0,1 [0,02—1,5]

0,4 [0,11—0,47]*

15:1d9

Clostridium propionicum, Bacteroides hypermegas

0,15 [0,06—0,24]

0,16 [0,11—0,33]

0,11 [0,08—0,17]

0,07 [0,04—0,71]

0,21 [0,14—0,32]

18:1d11

Lactobacillus, Streptococcus, Pseudomonas, Cardiobacterium hominis

1,76 [0,4—5,12]

3,1 [1,34—6,57]

0,94 [0,21—2,74]

0,67 [0,29—2,68]

1,54 [0,45—5,93]

18:1d11a

Eubacterium

1,61 [0,67—4,6]

1,3 [0,59—3,6]

1,37 [0,79—3,46]

5,36 [2,95—16,72]

1,3 [0,66—3,87]

Epstein—Barr

0,23 [0,1—0,45]

0,46 [0,2—0,8]*

0,26 [0,13—0,63]

0,18 [0,17—1,28]

0,56 [0,33—0,74]*

i15a

Butyrivibrio, Lactobacillus (rumen), Propionibacterium acnes

0,17 [0,07—0,34]

0,43 [0,17—0,94]*

0,18 [0,08—0,27]

0,22 [0,12—1,37]

0,45 [0,27—1,1]*

16:1d11

Ruminococcus

0,1 [0,04—0,24]

0,12 [0,06—0,3]

0,09 [0,05—0,29]

0,14 [0,08—1,15]

0,21 [0,12—0,29]

a15a

Butyrivibrio, Eubacterium, Frigoribacterium, Propionibacterium freudenreichii, Propionibacterium jensenii

0,11 [0,06—0,19]

0,29 [0,08—0,64]

0,1 [0,07—0,18]

0,11 [0,09—0,69]

0,2 [0,11—0,28]

Cholestadienon

Cytomegalovirus

0,02 [0,01—0,05]

0,02 [0,02—0,05]

0,02 [0,01—0,05]

0,03 [0,01—0,05]

0,03 [0,02—0,07]

20:1

Actinomyces/Actinomyces viscosus, Propionibacterium jensenii, Streptococcus (анаэробные), Streptococcus thermophilus, St. salivarius, St. mutans

0,18 [0,11—0,51]

0,43 [0,28—0,69]*

0,23 [0,12—0,4]

0,29 [0,08—1,07]

0,4 [0,18—0,72]

2h26

Грибы Aspergillus spp.

0,53 [0,2—1,07]

0,85 [0,47—1,32]

0,55 [0,32—1,09]

1,37 [0,38—2,6]

0,53 [0,32—0,74]

Бактериальный плазмалоген

0,11 [0,04—0,48]

0,53 [0,23—1,21]*

0,12 [0,06—0,37]

0,69 [0,13—0,94]

0,25 [0,11—0,69]

Эндотоксин

0,99 [0,61—1,71]

1,44 [1,09—2,71]*

1,01 [0,62—1,69]

0,96 [0,68—3,96]

1,45 [1,06—2,69]

Примечание. * — различия между РС (РРС-ремиссия, РРС-обострение, ППРС), РИС и контрольной группой статистически значимы (p<0,05, двусторонний критерий Манна—Уитни). Данные представлены в виде медианы и интерквартильного размаха (25-й и 75-й процентили). i12 — изолауриновая, 2h12 — 2-гидроксилауриновая, 15:1d9 — 9,10-пентадеценовая, 19cyc — циклононадекановая, 20:1d11 — 11-эйкозановая, 14:1d7 — 7,8-тетрадеценовая, 20:1 — арахиновая, 3h12 — 3-гидроксилауриновая, i14a — изомиристиновый; а13 — антеизодекановая; i14 — изомирамистиновая; 15:1d9 — 9,10-пентадеценовая; 18:1d11 — цис-вакценовая кислота, 18:1d11a — 11-октадеценовый альдегид; 16:1d11 — 11,12-гексадеценовая; a15a — антеизопентадекановая; 20:1 — арахиновая.

У пациентов с РС в стадии ремиссии обнаружено статистически значимое увеличение содержания эндотоксина и плазмалогена, источником которых могут быть различные виды микроорганизмов. Так, уровень плазмалогена у пациентов с РС в стадии ремиссии повышен более чем в 4,5 раза по сравнению с контрольной группой. Бактериальный плазмалоген синтезируется, в частности, у многих анаэробных и некоторых факультативно анаэробных бактерий [15]. Эндотоксин представляет собой липополисахарид (ЛПС), составляющий большую часть наружной мембраны грамотрицательных бактерий [16]. Таким образом, увеличение уровня плазмалогена и эндотоксина, как правило, свидетельствует об увеличении содержания различных типов микроорганизмов.

Это увеличение может подтверждаться повышением уровня содержания в ЦСЖ различных маркеров, специфичных для определенных микроорганизмов. Наибольшее количество отличий в содержании маркеров, в отличие от контрольной группы, выявлено у пациентов с РС в стадии ремиссии. В частности, у таких пациентов выявлено статистически значимое повышение, примерно в 2 раза и более, уровня микробиотических маркеров, характерных для Peptostreptococcus anaerobius, Pseudomonas aeruginosa, Eubacterium, Bifidobacterium, Butirivibrio, Moraxella, Acinetobacter, Propionibacterium acnes, а также маркеры вируса Эпштейна—Барр. Помимо этого, характерна тенденция к повышению кампестерола, вероятным источником которого являются кампестерол-продуцирующие микрогрибы.

По разнообразию увеличения микробиотических маркеров пациенты с РИС находятся на втором месте после пациентов с РС в стадии ремиссии. Так, у пациентов с РИС выявлено статистически значимое увеличение уровня маркеров вируса Эпштейна—Барр, бактерий Propionibacterium acnes, а также Pseudomonas, Moraxella и Acinetobacter. Увеличение маркера 3h12, характерного для Pseudomonas, Moraxella, Acinetobacter показано нами для пациентов всех групп, за исключением группы пациентов с РС в стадии обострения.

Помимо анализа уровня микробиотических маркеров в ЦСЖ, нами выполнен анализ микробиотических маркеров в цельной крови пациентов с РС в стадии ремиссии, обострения и контрольной группы (табл. 2). Мы не обнаружили статистически значимых различий между указанными группами и контрольной группой.

Таблица 2. Концентрация микробных маркеров в цельной крови пациентов с РС в стадии ремиссии и обострения, и контрольной группы, нмоль/г

Маркер

Контрольная группа

РС ремиссия

РС обострение

Эндотоксин

0,49 [0,36—0,63]

0,45 [0,43—0,52]

p=0,67

0,48 [0,43—0,69]

p=0,69

Бактериальный плазмалоген

29,52 [23,82—39,24]

26,07 [24,32—33,87]

p=0,86

27,11 [22,50—33,87]

p=0,56

Примечание. Представлены данные по содержанию плазмалогена и эндотоксина. Данные представлены в виде медианы и интерквартильного размаха (25-й и 75-й процентили). Статистически значимых различий не обнаружено.

Обсуждение

В настоящей работе нами исследовано содержание микробиотических маркеров в ЦСЖ и цельной крови у значительной группы пациентов с РС. Полученные данные во многом согласуются с результатами нашего предварительного исследования по анализу микробиотических маркеров в ЦСЖ у пациентов с РС в стадии ремиссии и РИС [10]. С одной стороны, полученные в наших работах данные свидетельствуют в пользу гипотезы о важности полимикробного инфицирования в развитии РС. С другой стороны, стоит отметить повышение в основном маркеров одних и тех же групп микроорганизмов в проведенных исследованиях, что может говорить о возможном определенном инфекционном паттерне, характерном для ЦНС при РС, механизм возникновения которого и патогенетическую роль еще предстоит определить. На данном этапе можно отметить возможные патогенетические последствия повышения уровня отдельных групп микроорганизмов и их компонентов, что будет рассмотрено ниже.

В настоящем исследовании наибольшее количество статистически значимых отличий от контрольной группы обнаружено в содержании маркеров в ЦСЖ пациентов с РС в стадии ремиссии. В стадии обострения, напротив, нами не обнаружено статистически значимых различий по сравнению с контрольной группой.

Крайне интересным представляется сопоставление данных по содержанию микробиотических маркеров в ЦСЖ и крови. В то время как содержание различных микробиотических маркеров в ЦСЖ увеличено у пациентов с РС по сравнению с контрольной группой, содержание этих маркеров в цельной крови, скорее, не изменяется. Таким образом, можно говорить об изменении показателей микробиотической нагрузки именно на уровне ЦНС (что показывает их увеличение в ЦСЖ), но не на уровне всего организма (так как в цельной крови увеличения микробиотических маркеров не обнаруживается).

Среди обнаруженных различий важное значение может иметь повышение маркера Pseudomonas aeruginosa у пациентов с РС в стадии ремиссии и лиц с РИС. В литературе имеются данные о возможной молекулярной мимикрии между антигенами Pseudomonas aeruginosa и компонентами миелиновой оболочки. Антитела к мимикрирующим пептидам Acinetobacter, Pseudomonas aeruginosa, основному белку миелина (MBP) и миелиновому олигодендроцитарному гликопротеину были значительно повышены у пациентов с РС по сравнению с контрольной группой. Антисыворотки против MBP реагировали как с пептидами Acinetobacter, так и с Pseudomonas [17]. Стоит отметить, что бактерии Acinetobacter локализованы на коже человека и в носовых пазухах [18].

Наблюдаемое повышение уровня эндотоксина в ЦСЖ пациентов с РС также может иметь важное патогенетическое значение. Эндотоксин как прямо, так и опосредованно активирует микроглию, которая может инициировать повреждение нейронов, продуцируя активные формы азота и кислорода путем фагоцитоза синапсов и нейронов, а также продуцируя провоспалительные цитокины. В связи с этим в литературе выдвинута эндотоксиновая гипотеза нейродегенерации [16]. Важно отметить, что как в нашем исследовании, так и в литературе не обнаружено повышения уровня эндотоксина в крови и сыворотке крови у пациентов с РС по сравнению с контрольной группой [19]. Однако нами обнаружено повышение уровня эндотоксина в ЦСЖ, что может свидетельствовать о его накоплении в структурах, более анатомически близких к нервной ткани.

Тенденция к увеличению содержания маркеров микрогрибов в ЦСЖ пациентов с РС, показанная в настоящей работе, также согласуется с полученными нами ранее данными [10]. В литературе показано, что грибковый компонент микробиома, как и бактериальный, нарушается у пациентов с РС [20]. Также было показано наличие грибковой инфекции в тканях ЦНС пациентов с РС [21].

Различные препараты, применяемые при РС, обладают противомикробным и противогрибковым действием. Так, показана фунгицидная активность диметилфумарата, которая может вносить вклад в его фармакологическую активность при РС [22, 23].

Также в настоящей работе нами выявлено увеличение маркеров, характерных для вируса Эпштейна—Барр, в ЦСЖ у пациентов с РС в стадии ремиссии. В литературе показана высокая распространенность вируса Эпштейна—Барр, ассоциированная с РС. В недавнем исследовании выдвинуто предположение, что хроническая инфекция вирусом Эпштейна—Барр является основной причиной РС. Риск РС увеличивался в 32 раза после инфицирования вирусом Эпштейна—Барр, но не увеличивался после заражения другими вирусами, включая цитомегаловирус, передающийся аналогичным образом [24].

Заключение

Таким образом, нами показано достоверное увеличение содержания маркеров микробиоты в ЦСЖ пациентов с РС по сравнению с контрольной группой. Особый интерес вызывает то, что содержание различных микробиотических маркеров в ЦСЖ увеличено у пациентов с РС по сравнению с контрольной группой, в то время как содержание этих маркеров в цельной крови не изменяется. Это позволяет говорить об изменении показателей микробиотической нагрузки именно на уровне ЦНС, но не на уровне всего организма.

В целом результаты настоящей работы согласуются с гипотезой о возможной ассоциации РС и полимикробной инфекции. Также вероятно наличие определенного паттерна микробиотических и вирусных маркеров, характерного для ЦСЖ пациентов с РС, но не для плазмы крови.

Статья выполнена при финансовой поддержке РНФ, грант №22-15-00284.

This research was funded by the Russian Science Foundation, grant 22-15-00284.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

The authors declare there is no conflict of interest.

Литература / References:

  1. Zhou X, Baumann R, Gao X, et al. Gut microbiome of multiple sclerosis patients and paired household healthy controls reveal associations with disease risk and course. Cell. 2022;185(19):3467-3486. https://doi.org/10.1016/j.cell.2022.08.021
  2. Thirion F, Sellebjerg F, Fan Y, et al. The gut microbiota in multiple sclerosis varies with disease activity. Genome Medicine. 2023;15(1):1.  https://doi.org/10.1186/s13073-022-01148-1
  3. Boziki MK, Kesidou E, Theotokis P, et al. Microbiome in MS; where are we, what we know and do not know. Brain Science. 2020;10(4).pii:E234. https://doi.org/10.3390/brainsci10040234
  4. Castillo-Álvarez F, Marzo-Sola ME. Role of the gut microbiota in the development of various neurological diseases Neurología. 2022;37(6):492-498.  https://doi.org/10.1016/j.nrl.2019.03.017
  5. Castillo-Álvarez F, Pérez-Matute P, Oteo JA, Marzo-Sola ME. The influence of interferon β-1b on gut microbiota composition in patients with multiple sclerosis Neurología. 2021;36(7):495-503.  https://doi.org/10.1016/j.nrl.2018.04.006
  6. Ntranos A, Hye-Jin P, Wentling M, et al. Bacterial neurotoxic metabolites in multiple sclerosis cerebrospinal fluid and plasma. Brain. 2022;145(2):569-583.  https://doi.org/10.1093/brain/awab320
  7. Boussamet L, Rajoka MSR, Berthelot L. Microbiota, IgA and Multiple Sclerosis. Microorganisms. 2022;10(3):617.  https://doi.org/10.3390/microorganisms10030617
  8. Telalovic JH, Music A. Using data science for medical decision making case: role of gut microbiome in multiple sclerosis. BMC Medical Informatics and Decision Making. 2020;20:262.  https://doi.org/10.1186/s12911-020-01263-2
  9. Кожиева М.Х., Мельников М.В., Роговский В.С. и др. Кишечная микробиота человека и рассеянный склероз. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2017;117(10-2):11-19.  https://doi.org/10.17116/jnevro201711710211-19
  10. Бойко А.Н., Мельников М.В., Бойко О.В. и др. Исследование содержания маркеров микробиоты в цереброспинальной жидкости пациентов с рассеянным склерозом и радиологически изолированным синдромом. Неврология, нейропсихиатрия, психосоматика. 2021;13(1S):27-30.  https://doi.org/10.14412/2074-2711-2021-1S-27-30
  11. Osipov GA, Verkhovtseva NV. Study of human microecology by mass spectrometry of microbial markers. Benef Microbes. 2011;2(1):63-78.  https://doi.org/10.3920/BM2010.0017
  12. Осипов ГА. Хромато-масс-спектрометрический анализ микроорганизмов и сообществ в клинических пробах при инфекциях и дисбиозах. Химический анализ в медицинской диагностике. М.: Наука; 2010.
  13. Osipov GA, Boiko NB, Fedosova NF, et al. Comparative gas chromatography-mass spectrometry study of the composition of microbial chemical markers in feces. Microb Ecol Health Dis. 2009;21(3-4):159-171.  https://doi.org/10.3109/08910600903462657
  14. Баранов В.М., Осипов Г.А., Мухамедиева Л.Н. и др. Оценка микроэкологического статуса человека методом хроматомасс-спектрометрии. Новая медицинская технология МЗ РФ №НЮ-40006. М. 2009.
  15. Goldfine H. Plasmalogens in bacteria, sixty years on. Front Mol Biosci. 2022;9:962757. https://doi.org/10.3389/fmolb.2022.962757
  16. Brown GC. The endotoxin hypothesis of neurodegeneration. J Neuroinflammation. 2019;16(1):180.  https://doi.org/10.1186/s12974-019-1564-7
  17. Hughes LE, Smith PA, Bonell S, et al. Cross-reactivity between related sequences found in Acinetobacter sp., Pseudomonas aeruginosa, myelin basic protein and myelin oligodendrocyte glycoprotein in multiple sclerosis. J Neuroimmunol. 2003;144(1-2):105-115.  https://doi.org/10.1016/s0165-5728(03)00274-1
  18. Ebringer A, Rashid T, Wilson C. The role of Acinetobacter in the pathogenesis of multiple sclerosis examined by using Popper sequences. Med Hypotheses. 2012;78(6):763-769.  https://doi.org/10.1016/j.mehy.2012.02.026
  19. Barro C, Paul A, Saleh F, et al. Validation of Two Kinetic Assays for the Quantification of Endotoxin in Human Serum. Front Neurol. 2021;12:691683. https://doi.org/10.3389/fneur.2021.691683
  20. Mangalam AK. Fungal microbiome and multiple sclerosis: The not-so-new kid on the block. EBioMedicine. 2021;72:103621. https://doi.org/10.1016/j.ebiom.2021.103621
  21. Alonso R, Fernández-Fernández AM, Pisa D, Carrasco L. Multiple sclerosis and mixed microbial infections. Direct identification of fungi and bacteria in nervous tissue. Neurobiol Dis. 2018;117:42-61.  https://doi.org/10.1016/j.nbd.2018.05.022
  22. Wang HH, Sun DW, Kuang R. Inhibition of Escherichia coli by dimethyl fumarate. Int J Food Microbiol. 2001;65(1-2):125-130.  https://doi.org/10.1016/s0168-1605(00)00504-3
  23. Ma N, Wu Y, Xie F, et al. Dimethyl fumarate reduces the risk of mycotoxins via improving intestinal barrier and microbiota. Oncotarget. 2017;8(27):44625-44638. https://doi.org/10.18632/oncotarget.17886
  24. Bjornevik K, Cortese M, Healy BC, et al. Longitudinal analysis reveals high prevalence of Epstein-Barr virus associated with multiple sclerosis. Science. 2022;375(6578):296-301.  https://doi.org/10.1126/science.abj8222

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.