Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Бойко А.Н.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России;
ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» Федерального медико-биологического агентства России

Долгушин М.Б.

ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» Федерального медико-биологического агентства России

Каралкина М.А.

ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» Федерального медико-биологического агентства России

Новые методы нейровизуализации оценки активности нейровоспаления при рассеянном склерозе

Авторы:

Бойко А.Н., Долгушин М.Б., Каралкина М.А.

Подробнее об авторах

Прочитано: 2331 раз


Как цитировать:

Бойко А.Н., Долгушин М.Б., Каралкина М.А. Новые методы нейровизуализации оценки активности нейровоспаления при рассеянном склерозе. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. Спецвыпуски. 2023;123(7‑2):8‑14.
Boyko AN, Dolgushin MB, Karalkina MA. New neuroimaging methods in assessing the activity of neuroinflammation in multiple sclerosis. S.S. Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry. 2023;123(7‑2):8‑14. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/jnevro20231230728

Рекомендуем статьи по данной теме:
Ла­зер­ная те­ра­пия при рас­се­ян­ном скле­ро­зе: обос­но­ва­ние и оп­ти­ми­за­ция ме­то­дик при­ме­не­ния. (Об­зор ли­те­ра­ту­ры). Воп­ро­сы ку­рор­то­ло­гии, фи­зи­оте­ра­пии и ле­чеб­ной фи­зи­чес­кой куль­ту­ры. 2024;(5):45-56
Хи­рур­ги­чес­кое ле­че­ние вто­рич­ной три­ге­ми­наль­ной нев­рал­гии. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(11):203-209
Ка­чес­тво жиз­ни па­ци­ен­тов с рас­се­ян­ным скле­ро­зом в Смо­лен­ской об­лас­ти. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(12):36-40
Гор­мо­наль­ные ме­то­ды кон­тра­цеп­ции и рас­се­ян­ный скле­роз. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(1):24-30
Эпи­де­ми­оло­гия рас­се­ян­но­го скле­ро­за в Но­во­си­бир­ске. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(1):119-127
Кли­ни­чес­кий слу­чай X-сцеп­лен­ной ад­ре­но­лей­ко­дис­тро­фии. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(4):102-107

В настоящее время достигнут существенный прогресс в изучении факторов возникновения рассеянного склероза (РС). В современном понимании РС — это хроническое заболевание ЦНС с аутоиммунно-воспалительными и нейродегенеративными механизмами развития [1]. Активное изучение патогенеза РС способствовало разработке и внедрению уже более 20 лекарственных препаратов таргетного лечения РС, доказанно влияющих на течение заболевания [2]. Подавляющее большинство этих лекарственных средств действует системно, модулируя или подавляя определенные компоненты иммунитета, что обусловливает достаточно широкий спектр нежелательных явлений [3]. Участие врожденного иммунитета в патогенезе запуска и поддержания аутоиммунно-воспалительных и нейродегенеративных процессов в мозге в настоящее время является предметом активного изучения [4—6], но до сих пор нет широко используемых методов диагностики, позволяющих объективизировать активность патологического процесса непосредственно в мозге. МРТ широко применяется в диагностике и контроле эффективности лечения РС, но не позволяет полностью оценить выраженность локального и диффузного нейровоспаления в ткани мозга. Наиболее информативным является патологическое накопление парамагнитного контрастного препарата на T1-взвешенных изображениях в «новых» очагах демиелинизации или вокруг них, что указывает на повышение проницаемости гематоэнцефалического барьера (ГЭБ). Следует отметить, что само патологическое накопление контрастного препарата не отражает активность локальных иммунных реакций, выраженность демиелинизации и ремиелинизации [7]. Наиболее широко используемый лабораторный маркер РС — выявление повышенного синтеза IgG в цереброспинальной жидкости (ЦСЖ) с образованием олигоклональных полос — имеет высокую чувствительность в плане диагностики РС (>85%), но низкую специфичность (не более 60%), и также практически не отображает активность патологического процесса при РС [8, 9]. Другой широко внедряемый маркер — качественное и количественное определение содержания легких цепей нейрофиламентов — также является неспецифичным, так как указывает на тяжесть (объем) поражения, а не на активность процесса [10, 11]. Вышесказанное не позволяет в полной мере утверждать, что использование этих маркеров возможно для прогноза течения патологического процесса непосредственно в ткани мозга.

Позитронно-эмиссионная компьютерная томография (ПЭТ-КТ) и однофотонная эмиссионная компьютерная томография (ОФЭКТ) сейчас все шире внедряются в практическую неврологию как объективные методы визуализации основных компонентов патологического процесса при РС. В данном обзоре представлены традиционные подходы и новые данные по использованию ПЭТ-КТ и ОФЭКТ с различными изотопами и радиофармацевтическими препаратами (РФП) для оценки тяжести и прогноза течения патологического процесса в ткани мозга пациентов с РС. Эти подходы позволяют оценивать иммуномодулирующую и противовоспалительную активность in situ препаратов, изменяющих течение РС (ПИТРС), в частности таблетированной формы Кладрибина.

Традиционные методы ПЭТ-КТ для оценки демиелинизации и ремиелинизации

Возможности ПЭТ-КТ-визуализации для оценки выраженности демиелинизации и ремиелинизации изучаются уже более 10 лет как на экспериментальных моделях демиелинизирующих заболеваний (экспериментальный аутоиммунный энцефалит, ЭАЭ), так и в реальной клинической практике у пациентов с РС. Первым радионуклидным трейсером для этих целей был 1,4-бис(п-аминостирил)-2-метоксибензол, меченный 11C, получивший название Case Imaging Compound (CIC). CIC-маркер продемонстрировал высокую информативность в моделях демиелинизации, однако не оправдал надежды в клинических исследованиях [12, 13]. У другого экспериментального маркера — 11C-N-methyl-4,4′-diaminostilbene (MeDAS) — уровень накопления на моделях ЭАЭ снижался в зонах воспалительной демиелинизации и прогрессирующе увеличивался во время последующей спонтанной ремиелинизации, что согласовывалось с результатами гистологического и клинического обследования [14, 15]. Этот маркер имел высокое сродство к белому веществу мозга, но наличие слабой контрастности на изображениях между серым и белым веществом и короткий период полураспада 11C ограничили дальнейшие разработки при РС.

В качестве потенциальных маркеров демиелинизации при РС рассматривались специфические радионуклидные трейсеры, отражающие отложение амилоида при нейродегенеративных заболеваниях [16, 17]. Было высказано предположение, что бета-листовая структура, которая присутствует как в амилоидном пептиде, так и в основном белке миелина, является общей мишенью для амилоидных ПЭТ-маркеров [18]. При острых поражениях белого вещества головного мозга наблюдается гипофиксация маркеров амилоида по сравнению с интактным белым веществом, что отражает обширную потерю миелина в очагах поражения. Показано снижение активности накопления РФП, связывающихся с амилоидом, в гипоинтенсивных очагах на T1-взвешенных изображениях МРТ (T1-ВИ) — так называемых черных дырах, имеющих повышенный сигнал на T2-ВИ [19]. На сегодняшний день наиболее часто используемыми ПЭТ-трейсерами оценки накопления амилоида для изучения активности процесса демиелинизации являются производные тиофлавин-T2-(4’-метиламинофенил)-6-гидроксибензотиазола, меченные 11C, в первую очередь Питтсбургская субстанция (Pittsburgh compound B, PiB) [20]. Показано снижение накопления PiB при РС не только в самих очагах поражения, но и в ткани вокруг них, в кажущемся нормальном белом веществе мозга (КНБВ) — поглощение радиометки прогрессивно уменьшается при нарастании демиелинизации. Выявлена связь когнитивных нарушений, особенно выраженных расстройств при прогрессирующем течении и неблагоприятном прогнозе РС, с очаговой гипофиксацией PiB в коре головного мозга [21]. Значимым ограничением, обусловленным коротким (20 мин) периодом полураспада 11C, является невозможность транспортировки РФП и необходимость наличия собственного циклотрона для его синтеза.

Разработка и широкое внедрение фторированных 18F амилоидных ПЭТ-КТ-трейсеров с более длительным (до 110 мин) периодом полураспада, также активно используемых, например при болезни Альцгеймера, расширяет клиническое использование ПЭТ-КТ с маркерами амилоида для визуализации демиелинизации и ремиелинизации. В последние 5 лет интенсивно проводятся работы по визуализации активности амилоида у пациентов с РС с 18F-флуметамолом, 18F-флорбетапиром и 18F-флорбетабеном [22, 23]. При сравнении двух радионуклидных трейсеров: 18F-флутеметамола и 11C-PiB, показаны лучшая дифференцировка очагов с КНБВ и большая диагностическая точность 18F-флутеметамола, в том числе независимо от возраста пациентов с РС. Учитывая более длительный период полураспада РФП, коммерческую доступность и высокий диагностический потенциал, 18F-флутеметамол представляется наиболее перспективным РФП для ПЭТ-КТ-диагностики РС [24, 25].

ПЭТ-КТ с 18F-флорбетабеном показала высокую информативность в оценке гиперинтенсивных очагов на T2-ВИ и FLAIR при МРТ-исследовании не только в белом веществе, но и в коре головного мозга и мозжечке, особенно при прогрессирующих формах РС [22]. При обострении РС показана прямая корреляционная связь между содержанием β-амилоида 1–42 (Aβ) в ЦСЖ, объемом мозга и интенсивностью накопления 18F-флорбетабена [23]. Такая связь гипофиксации 18F-флорбетабена при ПЭТ-КТ и уровнем Aβ в ЦСЖ делает возможными диагностику активности воспалительной демиелинизации и оценку вероятности прогрессирования патологического процесса. Также опубликовано много исследований о роли ПЭТ-КТ с 18F-флорбетапиром для изучения выраженности демиелинизации и ремиелинизации при РС [26, 27]. В исследованиях с применением данного маркера амилоида показано, что признаки демиелинизации при РС имеются не только в очагах, выявляемых на МРТ, но и в КНБВ. Примечательно, что уже на ранних стадиях заболевания демиелинизация может визуализироваться в сером веществе коры головного мозга и мозжечке, что подтверждается наличием характерных для РС мелких очагов в коре мозга по результатам исследований, проведенных на высокопольных МРТ [28].

При сопоставлении данных МРТ и ПЭТ-КТ описана также область, локализующаяся между очагами и КНБВ (окружающая зона отека или «полутени»), в которой содержание 18F-флорбетапира ниже, чем в КНБВ, что позволяет предположить, что в этой зоне нейровоспаления имеет место различная степень демиелинизации [24]. Динамические наблюдения показали возможность ремиелинизации при РС, так как после устранения воспаления интенсивность накопления 18F-флорбетапира в очагах повышается по сравнению с исходным уровнем [24]. Комбинация высокопольной МРТ и ПЭТ-КТ с 18F-флорбетапиром позволила установить постепенное снижение накопления радиометки по ходу белого вещества мозга от КНБВ к центру очага на T2-ВИ МРТ, а также связь накопления 18F-флорбетапира с уровнем фракционной анизотропии и показателями средней, осевой и радиальной диффузии в пределах T2-ВИ очага (коэффициенты корреляции K=–0,15, p<0,001, K=–0,12, p<0,001 и K=–0,16, p<0,001 соответственно) [27].

Относительно недавно предложен метод оценки выраженности демиелинизации и нейродегенерации по данным ПЭТ-КТ с 1-11C-ацетатом. У пациентов с РС показано повышение скорости вымывания 1-11C-ацетата из белого вещества головного мозга, что позволяет оценить выраженность диффузных нейродегенеративных изменений, так как отражает скорость метаболизма астроцитов в трактах нейронных волокон, а также снижение фракционной анизотропии [29].

ПЭТ-КТ в оценке нейровоспаления и состояния врожденного иммунитета in situ

В качестве маркеров активации врожденного иммунитета и нейровоспаления при РС было исследовано несколько радионуклидных трейсеров. В частности, было предложено использовать маркеры связывания циклооксигеназы-2, но они не показали своей информативности при РС [30]. Также предлагалось оценивать состояние микроглии по данным мониторинга изменений в метаболизме глюкозы [31]. 18F-фтордезоксиглюкоза (18F-ФДГ) отражает потребление глюкозы различными структурами мозга и может позволить классифицировать очаги поражения в белом веществе мозга как острые (гиперметаболические) или хронические (гипометаболические) в зависимости от степени накопления РФП [32]. Высокий уровень физиологического поглощения глюкозы в головном мозге представляет серьезное ограничение и приводит к низкому соотношению «очаг-фон», препятствующему использованию ПЭТ-КТ с 18F-ФДГ в качестве маркера активности процесса при РС в клинической практике.

В настоящее время наиболее перспективными с точки зрения патогенетических механизмов являются маркеры на основе белковых молекул, связанных с активацией микроглии, в частности митохондриального транслокаторного белка TSPO. TSPO наиболее высокоэкспрессируется в митохондриях и является маркером воспаления, отображая активацию микроглии и макрофагов при РС [33, 34]. TSPO — 11C-PBR28 позволяет выявлять очаги воспаления в мозжечке, которые не визуализируются при рутинной МРТ и могут быть выявлены только при индукции магнитного поля в 7 Тл [35]. Эти очаги чаще выявляются при вторичном прогрессировании РС (ВПРС), чем на ранних стадиях ремиттирующего течения РС. Авторами показано, что распространенность и активность накопления 11C-PBR28 при ПЭТ-КТ у пациентов с РС напрямую коррелируют со степенью инвалидизации (оценивалась по шкале EDSS, связь статистически значима, p=0,02) [35].

У пациентов с ремиттирующим РС или ВПРС выявлен повышенный захват TSPO как в определяемых с помощью МРТ очагах поражения белого вещества, так и в КНБВ. Это позволило предположить, что ПЭТ-КТ с маркерами TSPO может позволить оценить патофизиологические процессы при очаговых и диффузных изменениях белого и серого вещества, не различимых на МРТ [36]. Действительно, исследования по выявлению повышенной экспрессии TSPO подтвердили, что молекулярные изменения, обнаруженные при ПЭТ-КТ с маркерами TSPO, предшествуют структурным изменениям, обнаруженным с помощью МРТ [37]. В дополнение к более высокому сигналу в очагах, выявляемых по МРТ, в КНБВ при РС также отмечается повышенное накопление радионуклидных трейсеров TSPO по сравнению с результатами обследования контрольной группы соответствующего возраста [38]. Уровень накопления прямо связан с последующим прогрессированием атрофии мозга и скоростью инвалидизации [39, 40].

Двухлетнее динамическое наблюдение за 37 пациентами с РС с комбинированным использованием МРТ и ПЭТ-КТ с 18F-DPA-714 (пиразолпиримидин, маркер TSPO в микроглии) показало, что с более тяжелым течением РС прямо связаны такие параметры, как общее увеличение количества очагов повышенного накопления 18F-DPA-714 (ОР=1,13; p=0,009), интенсивность накопления 18F-DPA-714 в зоне КНБВ и в области T1-ВИ гипоинтенсивных очагов («черные дыры») (ОР=1,16; p=0,009) [36]. Скорость инвалидизации, измеряемая большим изменением шкалы EDSS за 2 года наблюдения, была достоверно связана с каждым из следующих параметров: процент аккумуляции 18F-DPA-714 и количество вокселов в КГБВ (ОР=1,16; p=0,009), процент аккумуляции 18F-DPA-714 и количество вокселов в очагах на T1-ВИ («черные дыры») (ОР=1,06; p= 0,036) и суммарное количество 18F-DPA-714-активных очагов (ОР=1,13; p=0,009). Ни один из параметров МРТ или ПЭТ-КТ не был достоверно связан с уровнем EDSS при начале исследования [36]. Ключевым выводом этого исследования было то, что большое количество очагов белого вещества, классифицированных как активные на основании результатов ПЭТ-КТ с 18F-DPA-714 (37,1% от всех очагов на T2-ВИ), не визуализировалось при МРТ с контрастированием (Gd+ очаги на T1-ВИ), т.е. как активные очаги по данным МРТ (только 0,2% очагов на T2-ВИ). Эти результаты свидетельствуют о том, что у больных с РС применение ПЭТ-КТ с 18F-DPA-714 позволяет выявлять подострые и хронические активные поражения, независимо от формы клинической эволюции.

Также представляется перспективным ПЭТ-маркер TSPO 11C‐PK11195 (PKPET), показавший прямую связь избыточной аккумуляции в КНБВ с прогрессированием РС (ОР=4,26; p=0,048) [41]. У 15 пациентов с прогрессирующим РС проводилась динамическая ПЭТ-КТ с 11CPK11195, группу контроля составили 16 здоровых добровольцев. По результатам наблюдения в течение 12 мес выявлено, что у пациентов с РС показатели накопления 11C‐PK11195 достоверно увеличились: в КНБВ (p=0,01), коре головного мозга (p=0,04), таламусе (p=0,04) и скорлупе (p=0,02). Такие изменения трактовались как продолженная активация микроглии, т.е. клеток врожденного иммунитета, в сером веществе головного мозга [42]. Таким образом, применение ПЭТ-КТ с маркерами TSPO в настоящее время является наиболее чувствительным методом визуализации для выявления нейровоспаления и активации локального иммунитета, даже по сравнению с «золотым стандартом» — МРТ.

ПЭТ-КТ и ОФЭКТ в оценке мозгового кровотока как предиктора активности аутоиммунного воспаления

Патологический процесс при РС традиционно связывали с нарушением кровоснабжения. Гистологические и патолого-анатомические исследования показали, что бляшки при РС возникают на определенных сегментах крупных эпивентрикулярных вен, данные высокопольных МРТ-исследований подтвердили тесную связь между основными церебральными венами и воспалительными бляшками [43]. В результате острого воспаления, отека и локального сдавления ткани развивается нарушение кровообращения; ему могут способствовать воспалительные изменения в стенке сосуда с активацией свертывающей системы крови или прямое повреждение эндотелия [44].

Для оценки перфузии головного мозга применяется ОФЭКТ с РФП 99mTc-ECD или 99mTc-HMPAO. РФП распределяется пропорционально мозговому кровотоку и стабильно фиксируется в ткани серого вещества головного мозга. Методом ОФЭКТ было показано значительное снижение перфузии у пациентов с РС как в очагах демиелинизации, выявляемых на МРТ, так и в структурах головного мозга вокруг очагов [45]. По данным ПЭТ-КТ подтверждено, что мозговой кровоток снижается в областях повреждения белого вещества у больных РС, показано достоверное различие при сравнении с группой контроля (–10,9%, p=0,005) [46]. Также была выявлена прямая корреляционная связь между снижением регионального мозгового кровотока и прогрессированием инвалидизации, особенно у пациентов с нарушениями когнитивных функций при РС [47].

Оценка объема хориоидальных сплетений как предиктора активности нейровоспаления

Показано, что при РС характерно увеличение объема хориоидальных сплетений (ХС) уже на ранних стадиях демиелинизирующего процесса при радиологически изолированном синдроме [48, 49]. В исследовании с участием 37 больных РС и 19 здоровых проведено комбинированное обследование — МРТ с напряженностью магнитного поля 3 Тл и ПЭТ-КТ с 18F-DPA-714. Объемы ХС сегментировались на трехмерных T1-ВИ. Было показано увеличение объема ХС у больных РС: на 35% больше (0,00159±0,00045 мл), чем у пациентов в группе контроля (0,00118±0,00038 мл; p=0,004). Также показано, что увеличение объема ХС было более значимым у пациентов с активными поражениями при МРТ (при наличии Gd+ очагов на T1-ВИ 0,00182±0,00049 мл против 0,00149±0,0004 мл у пациентов без выраженных очагов (p<0,001)) и коррелировало с объемом очагов в белом веществе мозга (r=0,39; 95% ДИ 0,20—0,55; p<0,001), а также с уровнем связывания 18F-DPA-714 в таламусе (r=0,44; 95% ДИ 0,22—0,72; p=0,04). Увеличение объема ХС было прямо также связано со среднегодовой частотой обострений (r=0,37; 95% ДИ 0,1—0,55; p=0,005). Авторы сделали вывод, что объем ХС увеличивается, а сами сплетения ассоциированы с воспалением, особенно при обострении заболевания [48]. В другом исследовании (97 пациентов с РС, группа контроля — 44 здоровых) гибридное ПЭТ-КТ/МРТ-исследование выявило увеличение объема сосудистого сплетения и достоверно более высокое накопление 18F-ФДГ при РС по сравнению с группой контроля. Авторами было предложено считать изменения объема ХС в качестве ключевых признаков активного нейровоспаления [49]. В одном из исследований авторы оценивали объем ХС методом МРТ у 180 пациентов с РС, 98 — с заболеваниями спектра оптиконейромиелита (ЗСОНМ), 47 — с мигренью и 94 здоровых лиц группы контроля (участвовали 4 центра в Швейцарии, Германии и Японии). Показано, что объем ХС при РС достоверно больше (медиана (Me) 1690 мкл, межквартильный диапазон (IQR) 648 мкл), чем при ЗСОНМ (Me 1403 мкл, IQR 510 мкл), у здоровых людей (Me 1533 мкл, IQR 570 мкл). В то же время не было показано достоверных различий объемов ХС у больных ЗСОНМ, пациентов с мигренью (Me 1404 мкл, IQR 524 мкл; p<0,001) и в группе контроля, даже с поправкой на возраст, пол и общий внутричерепной объем. В отличие от ЗСОНМ, увеличение объема сосудистого сплетения при РС прямо коррелировало с количеством очагов на T2-ВИ в линейной модели, скорректированной с учетом возраста, пола, общего внутричерепного объема, продолжительности заболевания, количества обострений за год до МРТ, типа течения заболевания, показателя тяжести состояния (по шкале EDSS), вида принимаемого ПИТРС (β=4,4; 95% ДИ 0,78–8,1; p=0,018) [50].

Действие иммуномодулирующих препаратов в ткани мозга и возможность объективизации эффекта с помощью ПЭТ-КТ и ОФЭКТ

Одной из наиболее актуальных задач патогенетического лечения РС считается направленное воздействие на активность аутоиммунного воспаления непосредственно в ткани мозга. Известно, что в острую фазу воспаления при РС происходит повреждение ГЭБ [51, 52]. Очаговая дисфункция ГЭБ визуализируется при помощи МРТ с контрастированием гадолиний-содержащими контрастными препаратами на T1-ВИ и возникает уже на ранних стадиях образования новых очагов при РС [53, 54], что может даже предшествовать инфильтрации иммунных клеток ЦНС и повреждению миелина [55, 56]. Но даже при повреждении ГЭБ проникновение через него макромолекул зачастую остается невозможным и ограничено для средне- и низкомолекулярных соединений (возможно проникновение в вещество головного мозга не более 2% от концентрации препаратов в крови) [56, 57]. Только совсем небольшие молекулы, с молекулярной массой <0,5 кДа и высокой липофильностью, могут проникать через ГЭБ путем пассивной или трансклеточной диффузии [57]. Для трансфера более крупных или нелипофильных молекул используются рецепторные транспортные системы, функция которых при РС также часто нарушена [58, 59]. Вышеперечисленное обусловливает ряд требований к лекарственному препарату для терапии РС для обеспечения его способности проникать через ГЭБ.

Среди ПИТРС есть ряд низкомолекулярных соединений, способных проникать через ГЭБ и оказывать не только системное, но и локальное воздействие в ткани мозга. К ним относятся: диметилфумарат, который быстро гидролизуется в монометилфумарат, способный в небольших количествах проникать через ГЭБ [60]; финголимод и сипонимод — липофильные молекулы, до 10% их концентрации в крови проникает в ткани мозга [61, 62]; Кладрибин, как показано в ряде исследований, имеет наибольшую проницаемость через ГЭБ и до 25% концентрации препарата в крови проникает в ткань мозга [6, 63—66]. Именно прямое центральное действие Кладрибина в ткани мозга, помимо его воздействия на активированные аутоагрессивные T- и B-клетки на периферии, привлекает сейчас большое внимание. В ряде экспериментальных работ показано существенное воздействие Кладрибина на активацию микроглии, т.е. на состояние врожденного тканевого иммунитета, а также прямой нейропротективный эффект, что крайне важно для оценки патогенетического влияния препарата при РС [67, 68]. Кладрибин показал высокую клиническую эффективность и безопасность в клинических исследованиях при РС [69], действуя в рамках нового подхода к лечению этого заболевания — терапии иммунореконституции (ТИР). При применении ТИР нет необходимости использования длительных (пожизненных) курсов применения ПИТРС, а для длительного эффекта достаточно двух курсов лечения в течение 2 лет, вероятнее всего, из-за перестройки иммунорегуляции непосредственно в ткани мозга [70, 71]. Пока не проводилось достаточного объема клинических исследований по оценке патогенетических механизмов Кладрибина в ткани мозга, при этом, несомненно, новые подходы к нейровизуализации с использованием современных технологий ПЭТ-КТ и ОФЭКТ представляются наиболее интересными для изучения механизмов действия и особенностей клинического использования ТИР.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Гусев Е.И., Бойко А.Н. Рассеянный склероз. Научно-практическое руководство. Т. 1. РООИ «Здоровье человека», 2020;608 с. ISBN978-5-6044140-2-6. 
  2. Cross A, Riley C. Treatment of Multiple Sclerosis. Continuum (Minneap Minn). 2022;28(4):1025-1051. https://doi.org/10.1212/CON.0000000000001170
  3. Freeman L, Longbrake EE, Coyle PK, et al. High-Efficacy Therapies for Treatment-Naïve Individuals with Relapsing-Remitting Multiple Sclerosis. CNS Drugs. 2022;36(12):1285-1299. https://doi.org/10.1007/s40263-022-00965-7
  4. Ford RK, Juillard P, Hawke S, et al. Cladribine Reduces Trans-Endothelial Migration of Memory T Cells across an In Vitro Blood-Brain Barrier. J Clin Med. 2022;11(20):6006. https://doi.org/10.3390/jcm11206006
  5. Correale J, Halfon MJ, Jack D, et al. Acting centrally or peripherally: A renewed interest in the central nervous system penetration of disease-modifying drugs in multiple sclerosis. Mult Scler Relat Disord. 2021;56:103264. https://doi.org/10.1016/j.msard.2021.103264
  6. Hermann R, Karlsson MO, Novakovic AM, et al. The clinical pharmacology of cladribine tablets for the treatment of relapsing multiple sclerosis. Clin. Pharmacokinet. 2019;58(3):283-297.  https://doi.org/10.1007/s40262-018-0695-9
  7. Filippi M, Preziosa P, Rocca MA. MRI in multiple sclerosis: what is changing? Curr Opin Neurol. 2018;31(4):386-395.  https://doi.org/10.1097/WCO.0000000000000572
  8. Pryce G, Baker D. Oligoclonal bands in multiple sclerosis; Functional significance and therapeutic implications. Does the specificity matter? Mult Scler Relat Disord. 2018;25:131-137.  https://doi.org/10.1016/j.msard.2018.07.030
  9. Carta S, Ferraro D, Ferrari S, et al. Oligoclonal bands: clinical utility and interpretation cues. Crit Rev Clin Lab Sci. 2022;59(6):391-404.  https://doi.org/10.1080/10408363.2022.2039591
  10. Varhaug KN, Torkildsen Ø, Myhr KM, Vedeler CA. Neurofilament Light Chain as a Biomarker in Multiple Sclerosis. Front Neurol. 2019;10:338.  https://doi.org/10.3389/fneur.2019.00338
  11. Niiranen M, Kontkanen A, Jääskeläinen O, et al. Serum GFAP and NfL levels in benign relapsing-remitting multiple sclerosis. Mult Scler Relat Disord. 2021;56:103280. https://doi.org/10.1016/j.msard.2021.103280
  12. Stankoff B, Wang Y, Bottlaender M, et al. Imaging of CNS myelin by positron-emission tomography. Proc Natl Acad Sci USA. 2006;103:9304-9309. https://doi.org/10.1073/pnas.0600769103
  13. De Paula FD, Copray S, Sijbesma JW, et al. PET imaging of focal demyelination and remyelination in a rat model of multiple sclerosis: comparison of [11C] MeDAS, [11C] CIC and [11C] PIB. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2014;41:995-1003. https://doi.org/10.1007/s00259-013-2682-6
  14. Wu C, Zhu J, Baeslack J, et al. Longitudinal positron emission tomography imaging for monitoring myelin repair in the spinal cord. Ann Neurol. 2013;74:688-698.  https://doi.org/10.1002/ana.23965
  15. De Paula FD, Copray S, Buchpiguel C, et al. PET imaging in multiple sclerosis. J NeuroImmune Pharmacol. 2014;9:468-482.  https://doi.org/10.1007/s11481-014-9544-2
  16. Chandra A. Role of amyloid from a multiple sclerosis perspective: a literature review. Neuroimmunomodulation. 2015;22:343-346.  https://doi.org/10.1159/000375309
  17. Morbelli S, Bauckneht M, Capitanio S, et al. A new frontier for amyloid PET imaging: multiple sclerosis. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2019;46:276-279.  https://doi.org/10.1007/s00259-018-4232-8
  18. De Paula FD, Vlaming ML, Copray SC, et al. PET imaging of disease progression and treatment effects in the experimental autoimmune encephalomyelitis rat model. J Nucl Med. 2014;55:1330-1335. https://doi.org/10.2967/jnumed.114.137216
  19. Stankoff B, Freeman L, Aigrot MS, et al. Imaging central nervous system myelin by positron emission tomography in multiple sclerosis using [methyl-11C]-2-(4′-methylaminophenyl)- 6-hydroxybenzothiazole. Ann Neurol. 2011;69:673-680.  https://doi.org/10.1002/ana.22320
  20. Bodini B, Veronese M, García-Lorenzo D, et al. Dynamic imaging of individual Remyelination profiles in multiple sclerosis. Ann Neurol. 2016;79:726-738.  https://doi.org/10.1002/ana.24620
  21. Zeydan B, Lowe VJ, Schwarz CG, et al. Pittsburgh compound-B PET white matter imaging and cognitive function in late multiple sclerosis. Mult Scler. 2018;24:739-749.  https://doi.org/10.1177/1352458517707346
  22. Matías-Guiu JA, Cabrera-Martín MN, Pytel V, et al. Amyloid Positron Emission Tomography in Multiple Sclerosis: Between Amyloid Deposition and Myelin Damage. Ann Neurol. 2020;87(6):988.  https://doi.org/10.1002/ana.25759
  23. Pietroboni AM, Carandini T, Colombi A, et al. Amyloid PET as a marker of normal-appearing white matter early damage in multiple sclerosis: correlation with CSF β-amyloid levels and brain volumes. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2019;46:280-287.  https://doi.org/10.1007/s00259-018-4182-1
  24. Zhang M, Ni Y, Zhou Q, et al. 18F-florbetapir PET/MRI for quantitatively monitoring myelin loss and recovery in patients with multiple sclerosis: A longitudinal study. EClinicalMedicine. 2021;37:100982. https://doi.org/10.1016/j.eclinm.2021.100982
  25. Zeydan B, Schwarz CG, Przybelski SA, et al. Comparison of 11C-Pittsburgh Compound B and 18F-Flutemetamol White Matter Binding in PET. J Nucl Med. 2022;63(8):1239-1244. https://doi.org/10.2967/jnumed.121.263281
  26. Carotenuto A, Giordano B, Dervenoulas G, et al. [18F] Florbetapir PET/MR imaging to assess demyelination in multiple sclerosis. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2020;47(2):366-378.  https://doi.org/10.1007/s00259-019-04533-y
  27. Auvity S, Tonietto M, Caillé F, et al. Repurposing radiotracers for myelin imaging: a study comparing 18F-florbetaben, 18F-florbetapir, 18F-flutemetamol,11C-MeDAS, and 11C-PiB. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2020 Feb;47(2):490-501.  https://doi.org/10.1007/s00259-019-04516-z
  28. Park CC, Thongkham DW, Sadigh G, et al. Detection of Cortical and Deep Gray Matter Lesions in Multiple Sclerosis Using DIR and FLAIR at 3T. J Neuroimaging. 2021;31(2):408-414.  https://doi.org/10.1111/jon.12822
  29. Kato H, Okuno T, Isohashi K, et al. Astrocyte metabolism in multiple sclerosis investigated by 1-C-11 acetate PET. J Cereb Blood Flow Metab. 2021;41(2):369-379.  https://doi.org/10.1177/0271678X20911469
  30. Cortes-Salva MY, Shrestha S, Singh P, et al. 2-(4-Methylsulfonylphenyl) pyrimidines as prospective Radioligands for imaging Cyclooxygenase-2 with PET-synthesis, triage, and radiolabeling. Molecules. 2018;23(11):2850. https://doi.org/10.3390/molecules23112850
  31. Kiferle L, Politis M, Muraro PA, Piccini P. Positron emission tomography imaging in multiple sclerosis-current status and future applications. Eur J Neurol. 2011;18:226-231.  https://doi.org/10.1111/j.1468-1331.2010.03154.x
  32. Buck D, Förschler A, Lapa C, et al. 18F-FDG PET detects inflammatory infiltrates in spinal cord experimental autoimmune encephalomyelitis lesions. J Nucl Med. 2012;53:1269-1276. https://doi.org/10.2967/jnumed.111.102608
  33. Guilarte TR. TSPO in diverse CNS pathologies and psychiatric disease: a critical review and a way forward. Pharmacol Ther. 2019;194:44-58.  https://doi.org/10.1016/j.pharmthera.2018.09.003
  34. Guilarte TR, Rodichkin AN, McGlothan JL, et al. Imaging neuroinflammation with TSPO: A new perspective on the cellular sources and subcellular localization. Pharmacol Ther. 2022;234:108048. https://doi.org/10.1016/j.pharmthera.2021.108048
  35. Barletta VT, Herranz E, Treaba CA, et al. Evidence of diffuse cerebellar neuroinflammation in multiple sclerosis by 11C-PBR28 MR-PET. Mult Scler. 2020;26(6):668-678.  https://doi.org/10.1177/1352458519843048
  36. Bodini B, Poirion E, Tonietto M, et al. Individual mapping of innate immune cell activation is a candidate marker of patient-specific trajectories of disability worsening in multiple sclerosis. J Nucl Med. 2020;61:1043-1049. https://doi.org/10.2967/jnumed.119.231340
  37. Kreisl WC, Kim MJ, Coughlin JM, et al. PET imaging of neuroinflammation in neurological disorders. Lancet Neurology. 2020;19:940-950.  https://doi.org/10.1016/S1474-4422(20)30346-X
  38. Rissanen E, Tuisku J, Rokka J, et al. In vivo detection of diffuse inflammation in secondary progressive multiple sclerosis using PET imaging and the radioligand 11C-PK11195. J Nucl Med. 2014;55:939-944.  https://doi.org/10.2967/jnumed.113.131698
  39. Datta D, Colasanti A, Rabiner EA, et al. Neuroinflammation and its relationship to changes in brain volume and white matter lesions in multiple sclerosis. Brain. 2017;140:2927-2938. https://doi.org/10.1093/brain/awx228
  40. Datta D, Colasanti A, Kalk N, et al. 11C-PBR28 and 18F-PBR111 detect white matter inflammatory heterogeneity in multiple sclerosis. J Nucl Med. 2017;58:1477-1482. https://doi.org/10.2967/jnumed.116.187161
  41. Sucksdorff M, Matilainen M, Tuisku J, et al. Brain TSPO-PET predicts later disease progression independent of relapses in multiple sclerosis. Brain. 2020;143(11):3318-3330. https://doi.org/10.1093/brain/awaa275
  42. Kang Y, Pandya S, Zinger N, et al. Longitudinal change in TSPO PET imaging in progressive multiple sclerosis. Ann Clin Transl Neurol. 2021;8(8):1755-1759. https://doi.org/10.1002/acn3.51431
  43. Inglese M, Park S, Rashid W, et al. Deep Gray Matter Perfusion in Multiple Sclerosis. Dynamic Susceptibility Contrast Perfusion Magnetic Resonance Imaging at 3 T. Arch Neurol. 2007;64(2):62-68.  https://doi.org/10.1001/archneur.64.2.196
  44. Mancini M, Morra VB, Di Donato O, et al. Multiple sclerosis: cerebral circulation time. Radiology. 2012;262(3):947-955.  https://doi.org/10.1148/radiol.11111239
  45. Гусев Е.И., Бойко А.Н., Кольяк Е.В. и др. Вклад сосудистых нарушений в клинические проявления рассеянного склероза у больных старше 45 лет и возможности коррекции. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2008;108(5):25-31. 
  46. Meng H, Zheng S, Yuan S, et al. Hybrid 18F-florbetapir PET/MRI for assessing myelin recovery in GFAP-A patients. Transl Neurosci. 2022;13(1):120-124.  https://doi.org/10.1515/tnsci-2022-0223
  47. Hojjat SP, Cantrell CG, Vitorino R, et al. Regional reduction in cortical blood flow among cognitively impaired adults with relapsing-remitting multiple sclerosis patients. Mult Scler. 2016;22(11):1421-1428. https://doi.org/10.1177/1352458515622696
  48. Ricigliano VAG, Morena E, Colombi A, et al. Choroid Plexus Enlargement in Inflammatory Multiple Sclerosis: 3.0-T MRI and Translocator Protein PET Evaluation. Radiology. 2021;301(1):166-177.  https://doi.org/10.1148/radiol.2021204426
  49. Ricigliano VAG, Louapre C, Poirion E, et al. Imaging Characteristics of Choroid Plexuses in Presymptomatic Multiple Sclerosis: A Retrospective Study. Neurol Neuroimmunol Neuroinflamm. 2022;9(6):e200026. https://doi.org/10.1212/NXI.0000000000200026
  50. Müller J, Sinnecker T, Wendebourg MJ, et al. Choroid Plexus Volume in Multiple Sclerosis vs Neuromyelitis Optica Spectrum Disorder: A Retrospective, Cross-sectional Analysis. Neurol Neuroimmunol Neuroinflamm. 2022;9(3):e1147. https://doi.org/10.1212/NXI.0000000000001147
  51. Grigoriadis N, van Pesch V; ParadigMS Group. A basic overview of multiple sclerosis immunopathology. Eur J Neurol. 2015;22 Suppl 2:3-13.  https://doi.org/10.1111/ene.12798
  52. Ortiz GG, Pacheco-Moisés FP, Macías-Islas MA, et al. Role of the Blood-Brain Barrier in Multiple Sclerosis. Arch. Med. Res. 2014;45:687-697.  https://doi.org/10.1016/j.arcmed.2014.11.013
  53. Balasa R, Barcutean L, Mosora O, Manu D. Reviewing the Significance of Blood-Brain Barrier Disruption in Multiple Sclerosis Pathology and Treatment. Int J Mol Sci. 2021;22(16):8370. https://doi.org/10.3390/ijms22168370
  54. Nishihara H, Perriot S, Gastfriend BD, et al. Intrinsic blood-brain barrier dysfunction contributes to multiple sclerosis pathogenesis. Brain. 2022;145(12):4334-4348. https://doi.org/10.1093/brain/awac019
  55. Shimitzu F, Nishihara H, Kanda T. Blood-brain barrier dysfunction in immunomediated neurological diseases. Immunol. Med. 2018;41:120-128.  https://doi.org/10.1080/25785826.2018.1531190
  56. Pardridge WM. The blood-brain barrier: bottleneck in brain drug development. NeuroRx. 2005;2(1):3-14.  https://doi.org/10.1602/neurorx.2.1.3
  57. Ghersi-Egea JF, Strazielle N, Catala M, et al. Molecular anatomy and functions of the choroidal blood-cerebrospinal fluid barrier in health and disease. Acta Neuropathol. 2018;135(3):337-361.  https://doi.org/10.1007/s00401-018-1807-1
  58. Dominguéz A, Álvarez A, Hilario E, et al. Central nervous system diseases and the role of the blood-brain barrier in their treatment. Neurosci. Disc. 2013;1:3-9.  https://doi.org/10.7243/2052-6946-1-3
  59. Mikitsh JL, Chacko AM. Pathways for small molecule delivery to the central nervous system across the blood-brain barrier. Perspect Medicin Chem. 2014;6:11-24.  https://doi.org/10.4137/PMC.S13384
  60. Mills EA, Ogrodnik MA, Plave A, Mao-Draayer Y. Emerging Understanding of the Mechanism of Action for Dimethyl Fumarate in the Treatment of Multiple Sclerosis. Front Neurol. 2018;9:5-9.  https://doi.org/10.3389/fneur.2018.00005
  61. Hunter SF, Bowen JD, Reder AT. The Direct Effects of Fingolimod in the Central Nervous System: Implications for Relapsing Multiple Sclerosis. CNS Drugs. 2016;30(2):135-147.  https://doi.org/10.1007/s40263-015-0297-0
  62. Basavarajappa D, Gupta V, Chitranshi N, et al. Siponimod exerts neuroprotective effects on the retina and higher visual pathway through neuronal S1PR1 in experimental glaucoma. Neural Regen Res. 2023;18(4):840-848.  https://doi.org/10.4103/1673-5374.344952
  63. Liliemark J. The clinical pharmacokinetics of cladribine. Clin Pharmacokinet. 1997;32(2):120-131.  https://doi.org/10.2165/00003088-199732020-00003
  64. Leist TP, Weissert R. Cladribine: mode of action and implications for treatment of multiple sclerosis. Clin Neuropharmacol. 2011;34(1):28-35.  https://doi.org/10.1097/WNF.0b013e318204cd90
  65. Giovannoni G, Mathews J. Cladribine Tablets for Relapsing-Remitting Multiple Sclerosis: A Clinician’s Review. Neurol Ther. 2022;11(2):571-595.  https://doi.org/10.1007/s40120-022-00339-7
  66. Petracca M, Ruggieri S, Barbuti E, et al. Predictors of Cladribine Effectiveness and Safety in Multiple Sclerosis: A Real-World, Multicenter, 2-Year Follow-Up Study. Neurol Ther. 2022;11(3):1193-1208. https://doi.org/10.1007/s40120-022-00364-6
  67. Schroeter CB, Rolfes L, Gothan KSS, et al. Cladribine treatment improves cortical network functionality in a mouse model of autoimmune encephalomyelitis. J Neuroinflammation. 2022;19(1):270.  https://doi.org/10.1186/s12974-022-02588-7
  68. Aybar F, Julia Perez M, Silvina Marcora M, et al. 2-Chlorodeoxyadenosine (Cladribine) preferentially inhibits the biological activity of microglial cells. Int Immunopharmacol. 2022;105:108571. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2022.108571
  69. Giovannoni G, Soelberg Sorensen P, Cook S, et al. Safety and efficacy of cladribine tablets in patients with relapsing-remitting multiple sclerosis: Results from the randomized extension trial of the CLARITY study. Mult. Scler. 2018;24:1594-1604. https://doi.org/10.1177/1352458517727603
  70. Wiendl H. Cladribine — An old newcomer for pulsed immune reconstitution in MS. Nat. Rev. Neurol. 2017;13:573-574.  https://doi.org/10.1038/nrneurol.2017.119
  71. Jacobs B, Ammoscato F, Giovannoni G, et al. Cladribine: Mechanisms and mysteries in multiple sclerosis. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 2018;89:1266-1271. https://doi.org/10.1136/jnnp-2017-317411

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.