Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Гончаров Е.Н.

ФГБНУ «Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского» Минобрнауки России

Коваль О.А.

ФГБНУ «Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского» Минобрнауки России

Безуглов Э.Н.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Гончаров Н.Г.

ФГБОУ ДПО «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Минздрава России

Старостенков А.Н.

ФГБНУ «Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского» Минобрнауки России

Никифорова А.Е.

ФГБОУ ДПО «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Минздрава России

Лечение остеоартрита коленного сустава аутологичной стромально-васкулярной фракцией жировой ткани: обзор зарубежной литературы

Авторы:

Гончаров Е.Н., Коваль О.А., Безуглов Э.Н., Гончаров Н.Г., Старостенков А.Н., Никифорова А.Е.

Подробнее об авторах

Прочитано: 1262 раза


Как цитировать:

Гончаров Е.Н., Коваль О.А., Безуглов Э.Н., Гончаров Н.Г., Старостенков А.Н., Никифорова А.Е. Лечение остеоартрита коленного сустава аутологичной стромально-васкулярной фракцией жировой ткани: обзор зарубежной литературы. Восстановительные биотехнологии, профилактическая, цифровая и предиктивная медицина. 2024;1(4):27‑37.
Goncharov EN, Koval OA, Bezuglov EN, Goncharov NG, Starostenkov AN, Nikiforova AE. Treatment of knee osteoarthritis with autologous stromal-vascular fraction of adipose tissue. Regenerative Biotechnologies, Preventive, Digital and Predictive Medicine. 2024;1(4):27‑37. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/rbpdpm2024104127

Рекомендуем статьи по данной теме:
Кон­сер­ва­тив­ное ле­че­ние при авас­ку­ляр­ном нек­ро­зе го­лов­ки бед­рен­ной кос­ти: сис­те­ма­ти­чес­кий об­зор. Вос­ста­но­ви­тель­ные би­отех­но­ло­гии, про­фи­лак­ти­чес­кая, циф­ро­вая и пре­дик­тив­ная ме­ди­ци­на. 2024;(4):52-67
Ис­поль­зо­ва­ние стан­дар­ти­зи­ро­ван­ной и мас­шта­би­ру­емой ме­то­ди­ки по­лу­че­ния стро­маль­но-вас­ку­ляр­ной фрак­ции из жи­ро­вой тка­ни. Вос­ста­но­ви­тель­ные би­отех­но­ло­гии, про­фи­лак­ти­чес­кая, циф­ро­вая и пре­дик­тив­ная ме­ди­ци­на. 2024;(4):76-81

Введение

Остеоартрит коленного сустава (ОКС) является одним из наиболее распространенных и инвалидизирующих заболеваний суставов в мировой популяции. Старение населения, рост числа людей с избыточной массой тела, что само по себе является известными рисками, угрожает всплеском проблемы ОКС в ближайшие годы. Это заболевание, весьма характерное для возрастных популяций, само по себе ухудшает качество жизни за счет боли и ограничения мобильности пораженных им людей [1, 2].

Патогенез ОКС существенно глубже только лишь дегенерации и механического износа суставного хряща, в развитие данного патологического состояния включены все структуры сустава, изменения регистрируются в синовиальной жидкости, субхондральной кости, связках и околосуставных мышечно-сухожильных структурах. В настоящий момент фокус восприятия патологических процессов, определяющих ОКС, сместился с механистического понимания в сторону рассмотрения воспалительных процессов как ведущих и определяющих его течение [3].

Основные методы консервативного лечения, такие как применение нестероидных противовоспалительных средств (НПВС), местное (в том числе инъекционное) использование глюкокортикостероидов (ГКС), физиотерапия, в основном имеют симптоматический характер и мало влияют на основные причины развития и прогрессирования данной патологии. Более того, продленное применение таковых средств и методов лечения может привести к ряду осложнений, таких как НПВС-ассоциированная гастропатия, либо к прямому повреждению суставного хряща при внутрисуставном введении ГКС [4].

Реконструктивная хирургия, в особенности эндопротезирование коленного сустава, является ультимативным лечением для запущенных случаев ОКС, однако такому лечению присущи известные риски, и оно не всегда может быть приемлемым или предпочтительным для каждого пациента, в частности из-за его возраста, наличия и выраженности сопутствующей патологии, даже индивидуальных предпочтений. Эти обстоятельства демонстрируют наличие некоего разрыва в спектре методов лечения, остро обозначая необходимость в отыскании новых, пригодных не только для борьбы с последствиями развития ОКС, но и потенциально способных обратить вспять процесс его развития у конкретного пациента [5, 6].

Аутологичная стромально-васкулярная фракция жировой ткани (SVF) представляет собой гетерогенную клеточную популяцию, которая состоит не только из мультипотентных клеток жировой фракции, она также имеет в своем составе макрофаги, эндотелиоциты, перициты и другие клеточные линии. Столь разнообразный состав SVF представляется перспективным для воздействия как на дегенеративный, так и на воспалительный элементы патогенеза ОКС. Собственно мультипотентные клетки жировой ткани могут иметь потенциал хондрогенеза и репаративной регенерации для окружающих тканей, тогда как остальные клеточные продукты могут оказывать воздействие на воспалительный аспект развития остеоартрита [7].

Последние достижения регенеративной медицины выявили возможности SVF не только как симптоматического средства, но и как перспективного средства для изменения направления течения патологического процесса. Данные свойства могут изменить подход к консервативному лечению ОКС, выведя его за рамки сугубо симптоматических усилий [8].

Более того, аутологичный характер SVF минимизирует иммунологические риски и обеспечивает уровень безопасности, сопоставимый с наиболее распространенными на данный момент консервативными методами лечения за счет использования исключительно собственных клеток пациента. С учетом таких рисков, как старение населения, распространение ожирения, особенно востребованными становятся инновационные методы лечения, что позволило бы не только улучшать состояние пациентов, но и существенно влиять на само течение патологического процесса [6, 9, 10].

SVF-терапия является новым и многообещающим методом регенеративной медицины, основанным на применении аутологичных клеточных продуктов жировой ткани пациента.

Цель обзора — осуществить критическую оценку массива сведений о клинических эффектах SVF-терапии при лечении ОКС, представленных в зарубежной (англоязычной) литературе.

Рассмотрены следующие аспекты:

— Влияние потенциала SVF-терапии как средства улучшения качества жизни определенных групп населения на проблему ОКС как фактора здоровья современной человеческой популяции, подверженной старению, распространению ожирения и связанных с ним метаболических нарушений.

— Симптоматическое воздействие. Традиционные методы консервативного (НПВС, ГКС и прочее) и оперативного (эндопротезирование коленного сустава) лечения в основном имеют симптоматическую направленность и сопровождаются рядом ограничений и рисков. В свою очередь, SVF-терапия фокусируется на более глубоких звеньях патогенеза ОКС, что потенциально может не только существенно затормозить развитие патологического процесса, но и в целом изменить характер развития остеоартрита, вплоть до принятия им обратимого характера.

— Репаративный потенциал. Изучение возможностей SVF-терапии находится на передовой исследований в области регенеративной медицины. SVF, полученная из собственной жировой ткани пациента, содержит разнообразные клеточные линии, вызывающие регенеративный, противовоспалительный и иммуномодулирующий эффекты. Аутологичный характер клеточного продукта минимизирует риск иммунопатологических реакций, обеспечивает более безопасный и персонализированный подход к лечению пациента, чем традиционные методы, упомянутые выше.

Материал и методы

Поиск и отбор публикаций, опубликованных за период с 2017 по 2023 г., осуществлялся по электронным базам в системах PubMed, Medline и Scopus, кроме того, производился дополнительный поиск исследований на основании списков литературы обнаруженных таким образом статей, дабы исключить пропуск не индексированных в этих системах публикаций. Поиск производился среди англоязычных публикаций, ключевые слова: «Stromal Vascular Fraction», и/или «SVF» вместе с «Knee Osteoarthritis», и/или «Adipose-derived stem cells», «Regenerative Medicine», и «Intra-articular Injection». Протокол обзора (ID 485428), база PROSPERO.

Критерии включения: оригинальные исследования, посвященные применению SVF-терапии для лечения ОКС; исследования клинических результатов применения SVF-терапии при лечении ОКС, как рандомизированные, так и наблюдательные исследования, в любом случае со сроком наблюдения не менее 3 мес.

Критерии исключения: из рассмотрения помимо дублей исключены исследования на животных, выборки меньше 10 пациентов, обзоры, метаанализы, публикации, в которых помимо SVF-терапии применялись и иные лечебные методы репаративной медицины (вследствие невозможности выделения специфических эффектов SVF-терапии), публикации дискуссионного, комментирующего и общего характера (включая редакционные статьи), не содержащие оригинальных исследовательских данных.

Анализу подвергались следующие представленные в отобранных публикациях данные: дата публикации, тип исследования, объем выборки, основные выводы и осложнения (нежелательные явления). Извлечение данных проводилось для каждой публикации независимо двумя исследователями из авторского коллектива, все расхождения полученных данных проходили процедуру согласования. Все включенные в обзор исследования оценивались по критериям качества с применением для рандомизированных контролируемых исследований методики оценки риска предвзятости Cochrane (Cochrane Risk of Bias tool) и шкалы Newcastle-Ottawa (Newcastle-Ottawa Scale) для наблюдательных исследований, что позволило оценить методическую основу обозреваемых исследований на предмет надежности и объективности, убедиться в достоверности их результатов.

Принципы поиска, критерии включения и исключения. Поиск по нескольким базам (PubMed, Medline и Scopus) обеспечил всесторонний и в достаточной мере полный охват опубликованных по изучаемому вопросу исследовательских научных данных профильного характера. Дополнительный поиск по библиографии обнаруженных в указанных выше системах публикаций позволил свести к минимуму объем упущенных из вида оригинальных исследований. Критерии включения и исключения сформулированы четко, соответствуют целям исследования и повышают уровень его объективности, прозрачности и воспроизводимости.

Потенциальные ограничения/уязвимости исследования: исследование ограничено англоязычным массивом данных, в результате чего возможен пропуск имеющих существенное значение результатов из источников иного происхождения, ограничения по объему выборки в 10 пациентов потенциально могли привести к игнорированию предварительных результатов, заслуживающих интереса, либо пилотных исследований.

Обработка и оценка данных. Надежность обработки данных обеспечивалась независимой работой над ними двух исследователей. Применение методик оценки объективности исследований, в частности методики оценки риска предвзятости Cochrane (Cochrane Risk of Bias tool) и шкалы Newcastle-Ottawa (Newcastle-Ottawa Scale), обеспечивает высокий уровень доверия к полученным результатам. Сохраняется некоторый уровень риска субъективной интерпретации данных исследователями и упущений при согласовании разногласий.

Исследование полностью соответствует действующим нормам биомедицинской этики, в том числе Хельсинкской декларации, так как основывается на опубликованных исследованиях, прошедших этическую оценку по соответствующим принципам, основанным на надлежащим образом оформленном добровольном участии испытуемых, а сам обзор не содержит оригинальной работы с испытуемыми.

Результаты

В результате систематического поиска получена в общей сложности 181 статья. После исключения дублирующих публикаций и оценки аннотаций отобраны 104 полнотекстовые оригинальные статьи, из них для дальнейшего исследования — 22 [11—33], соответствующие критериям включения. Включенные исследования содержат ретроспективные и проспективные наблюдательные исследования, рандомизированные контролируемые исследования и обзоры. Таким образом, получена методологически надежная основа для всестороннего систематического исследования литературы об использовании SVF-терапии для лечения ОКС с достаточно полной оценкой эффектов и потенциала метода в лечении ОКС в частности и в регенеративной медицине в целом.

Возможности SVF-терапии для лечения остеоартрита коленного сустава в последнее время привлекают широкий интерес со стороны исследовательского сообщества. Аутологичная стромально-васкулярная фракция жировой ткани, состоящая из мультипотентных клеток жировой фракции, перицитов, гладкомышечных клеток, продемонстрировала обнадеживающие результаты в плане противовоспалительного, иммуномодулирующего и репаративного эффектов (табл. 1). Первоочередное значение в целях клинического применения имеет метод получения SVF, в ходе которого необходимо добиться удаления потенциально небезопасных либо нефункциональных, в том числе сопутствующих, элементов для обеспечения максимально обогащенного желаемой фракцией состава, безопасного и эффективного для дальнейшего использования у пациента [34]. Оценка клеточного и молекулярного состава полученной фракции является обязательным этапом оценки качества и уровня очистки приготовленного продукта стромально-васкулярной фракции. Клеточный состав фракции оценивается методом проточной цитометрии, позволяющим по специфическим маркерам количественно оценить гистотипы клеток, в частности мультипотентные клетки жировой ткани (CD34+, CD31, CD45), эндотелиоциты (CD31+), иммунные клетки (CD45+). Кроме того, для этих целей полезны и такие методы, как цитологическое и иммуногистохимическое исследование фракции, обеспечивающие получение визуализированных данных о клеточном составе [34, 35].

Таблица 1. Клеточный состав SVF [34, 36—43]

Тип клеток

Функции

Авторы, дата [ссылка]

Мезенхимальные мультипотентные/стволовые клетки

Обновление и дифференциация в определенные клеточные линии, поддержание клеточных популяций посредством паракринной секреции

Francis S.L. и соавт., 2018 [36]

Лимфоциты

Многообразные функции иммунного ответа.

Вырабатывают антитела, осуществляют прямое клеточно-опосредованное уничтожение инфицированных вирусом и/или опухолевых клеток, регулируют иммунные реакции

Busato A. и соавт., 2020 [37]

Гладкомышечные клетки

Непроизвольная сократительная активность, сокращение стенок, структурная функция внутренних органов

Guimarães-Camboa N. и соавт., 2017 [38]

Мультипотентные клетки жировой ткани

Секреция цитокинов, факторов роста, антиоксидантов, межклеточная регуляция, цитопротективный имунномодулирующий, в том числе противовоспалительный эффект

Bora P. и соавт., 2017 [34]

Преадипоциты

Рост адипоцитов, дифференцировка в зрелые метаболически активные адипоциты. Пролиферирующие преадипоциты также могут проявлять фагоцитарную активность по отношению к микроорганизмам и вести себя подобно макрофагоподобным клеткам

Matsuo F.S. и соавт., 2020 [39]

Макрофаги 2-го типа (Mφ2)

Макрофаги 2-го типа (Mφ2) вырабатываются иммунным ответом Т-хелперов 2-го типа и играют противовоспалительную роль, обычно характеризующуюся увеличением продукции интерлейкинов (IL-4, IL-5, IL-9 и IL-13). Они также напрямую участвуют в процессах регенерации и восстановления тканей, которые происходят после травм

Contreras G.A. и соавт., 2015 [40];

Dey A. и соавт., 2021 [41]

T-клетки

Являясь важнейшими компонентами реагирования иммунной системы, отвечают за уничтожение инфицированных клеток организма, активацию других иммунных клеток и секрецию цитокинов

Dulong J. и соавт., 2022 [42]

Эндотелиальные предшественники и эндотелиоциты

Дифференцируются в эндотелиальные клетки, встраиваясь в поврежденный эндотелий с образованием функциональных кровеносных сосудов и посредством локальной секреции проангиогенных факторов с паракринным эффектом на клетки, которые формируют сосудистую стенку. Играют важную роль в сосудистом гомеостазе, а также в физиологических или патологических процессах, таких как тромбоз, воспаление и ремоделирование сосудистой стенки

Gulyaeva O.

и соавт., 2019 [43]

В настоящей работе представлены результаты ряда исследований, посвященных эффективности и безопасности применения SVF-терапии в лечении ОКС, ключевые наблюдения из которых можно резюмировать следующим образом.

Эффективность и безопасность. Большинство исследований сообщают о разнообразных положительных эффектах — от анальгезирующего до хондрорепаративного. A. Russo и соавт. [11] и K.W. Labarre и соавт. [12] подчеркивают безопасность и практичность метода, отсутствие нежелательных явлений. J.P. Lapuente и соавт. [13], J.R. Garza и соавт. [14], N. Yokota и соавт. [15] утверждают, что внутрисуставное введение SVF сопровождалось снижением уровня болевого синдрома и улучшением функции сустава. B.B. Rothrauff и соавт. продемонстрировали улучшение регенерации и регресс проявлений остеоартрита при дополнении оперативного восстановления менисков интраоперационным введением ферментативно подготовленной SVF на гидрогелевом носителе [16]. Y.S. Kim и соавт. сообщают о получении данных в пользу процессов регенерации хрящевой ткани у пациентов, получавших SVF-терапию [20, 21]. Полученные результаты выглядят многообещающими в плане разработки концепции консервативного и минимально инвазивного лечения пациентов с ОКС [42] (табл. 2).

Таблица 2. Эффекты SVF-терапии на клеточном уровне [39—41, 43—45]

Провоспалительные молекулярные факторы

Снижение уровня IL-1b и IL-6 [39]

Экстрацеллюлярный матрикс гиалинового хряща

Рост уровня гликозаминогликанов [40]

Эффекты IL-1Ra

Снижает катаболический эффект IL-1 [41]

ADAMTS-4, -5

Нормализация уровня [43]

Противовоспалительный

Уменьшение тканевого отека [44]

Тканевый апоптоз

Снижение темпов [44]

TIMPs-1, -3, -4 металлопротеиназы

Нормализация уровня [45]

Примечание. ADAMTS — A Disintegrin and Metalloproteinase with Thrombospondin Motifs; TIMPs — Tissue Inhibitors of Metalloproteinases.

Отдаленная эффективность. S. Zhang и соавт. сообщают о том, что эффекты от SVF-терапии в их наблюдениях прослеживались на протяжении порядка 5 лет после введения препарата, что представляет особую важность при лечении столь протяженных во времени процессов, как дегенеративно-дистрофические процессы с элементами хронического воспаления, остеоартрит, в частности коленного сустава [27]. Однако данные последних исследований все же отмечают истончение суставного хряща в отдаленном периоде, причем на сопоставимом с контрольными группами уровне, что вызывает вопросы о продолжительности лечебного эффекта от SVF-терапии.

Нежелательные явления. Отмечается невысокий уровень нежелательных явлений после SVF-терапии. В этом отношении P.D. Nguyen и соавт. несколько отстоят от общей тенденции, они докладывают о таких нежелательных явлениях, как боль в груди и артериальная гипертензия, развившиеся после процедуры [18], однако подобные явления могут и не иметь прямой связи с SVF, будучи следствием индивидуальных особенностей пациента или выполнения самой процедуры, что требует отдельного предметного рассмотрения в конкретных случаях, а принципиальность и тщательность исследователей, безусловно, делают им честь. S. Santoprete и соавт. также сообщают о развитии транзиторного отека сустава в 7% случаев [26].

Этапы получения SVF. Процесс получения продукта аутологичной стромально-васкулярной фракции жировой ткани может быть представлен следующими этапами: а) забор жировой ткани (липосакция); б) механическая обработка (сепарация); в) первичная фиксация; г) отмывание; д) окончательная фиксация; е) концентрация; ж) оценка качества препарата (табл. 3).

Таблица 3. Этапы и методики получения SVF [46—48]

Этап

Стандартная методика

Модифицированная методика

Получение жировой ткани

— Передняя брюшная стенка.

— Многоразовая канюля.

— Раствор Klein (модифицированный).

— Раствор Klein (500 мл NaCl 0,9%, 20 мл Lidocaine, 2% Epinephrine, 2 мл Bicarbonate).

— Шприц 50 мл

— Передняя брюшная стенка.

— Одноразовая канюля типа Coleman.

— Раствор Klein (модифицированный).

— Раствор Klein (500 мл NaCl 0,9%, 20 мл Lidocaine, 2% Epinephrine, 2 мл Bicarbonate).

— Шприц 50 мл

Механическая обработка

Измельчение встряхиванием в емкости со стеклянным измельчителем (интенсивность и длительность по ситуации)

Сепарация в шнековом механизме со стандартными оборотами и временем

Предварительная фильтрация

Фильтрация через полиэтиленовую мембрану с отверстиями 100 микрометров

Фильтрация через полиэтиленовую мембрану с отверстиями 100 микрометров с полимерной или металлической каркасной основой

Отмывание

Отмывание в специальном аппарате

Окончательная фильтрация

-10-микрометровый полиэтиленовый фильтр, шприц 10 мл

Гравитационная флотирующая фильтрация (подъем отфильтрованной и сепарованной фракции на поверхность)

Концентрация SVF

Без смены резервуара

В специальном сепараторе

Оценка качества фракции и подсчет клеток

Подсчет числа клеток, оценка жизнеспособности, характеристик и гистотипа

Подсчет числа клеток, оценка жизнеспособности, характеристик и гистотипа

Медицинские изделия, предназначенные для получения аутологичной стромально-васкулярной фракции жировой ткани [47, 49, 50], представлены в табл. 4. Данные системы надлежащим образом допущены к применению и безопасно используются в пластической, реконструктивной и эстетической хирургии [51], а также нередко применяются в лечении повреждений пяточного сухожилия, вращательной манжеты плеча, сухожилий кисти, остеохондральных повреждений и т.д. Тем не менее молекулярный механизм действия SVF на суставной хрящ еще изучен не до конца [52].

Таблица 4. Представленные в исследованиях медицинские изделия для получения SVF [28, 53—71]

Изделие (наименование)

Производитель

Исследование

Cha-Station

Somnotec

https://www.somnotec.net

[53]

Octagone D200

Endecotts Ltd.

https://www.endecotts.com

[54]

AdiPrep

Harvest

https://www.harvest.co.kr/clinician/clinician-home/adiprep/advantages/quality.html

[55]

Lipokit

Medi-Khan

https://www.medikanint.com

[56, 57]

Puregraft 250

Puregraft LLC

https://www.puregraft.com

[58]

Lipogems

Lipogems

https://understandlipogems.com

[59, 60]

MyStem

MyStem LLC

https://mystem.eu

[61, 62]

Arthrex SVF

https://www.arthrex.com/orthobiologics

[63]

Adinizer

BSL

https://biosl.com/?ckattempt=1

[64]

Microlyser

Tlab

https://tlab.com.tr/en/products/microlyzer-svf-kit

[65]

SEFFIE

Advanced-Maes

https://www.advanced-maes.com

[66]

LIPOCUBE

STEMC

https://lipocube.com

[67, 68]

Q-Graft

Human Med AG

https://www.humanmed.com/en/products/q-graft

[28]

Tulip Nanotransfer

Tulip Medical

https://tulipmedical.com

[69]

Lipocell

Tissyou

https://www.tissyou.com/portfolio_page/lipocell

[70]

LipiVage

Genesis Biosystems

https://www.genesisbiosystems.com/lipivagesystem-autologous-fat-transfer

[71]

Особенности клинического эффекта. Y.G. Koh и соавт. сообщают о том, что выраженность эффекта от применения SVF тем выше, чем более запущенной является стадия ОКС, при котором она применяется [17]. В случае подтверждения этих данных возможны существенные перспективы в создании персонализированных программ лечения ОКС, базирующихся на стадии и тяжести развития этого патологического состояния, отыскании баланса между ультимативными хирургическими и консервативными методами лечения в каждом конкретном индивидуальном случае.

Потенциал влияния на течение заболевания. Наиболее заманчивы результаты, свидетельствующие о потенциальной возможности SVF-терапии в качестве средства достижения обратимости патогенеза остеоартрита. В частности, Y.S. Kim и соавт. заявляют о получении данных о регенерации суставного хряща на фоне SVF-терапии, что трактуется как обратное развитие патологического процесса, а не только как симптоматический эффект от лечения [20]. C. Aletto и соавт. также отмечают большую выраженность эффекта у пациентов с ОКС более высокой стадии (Kellgren-Lawrence 3) по сравнению с эффектом на более умеренной стадии (Kellgren-Lawrence 2) [25].

Взаимообусловленность структурного и функционального аспектов развития ОКС и его лечения дают почву для применения сложных расчетно-прогнозирующих персонализированных моделей, в особенности на основе искусственного интеллекта, для создания индивидуализированных ранних, малоинвазивных и точных схем лечения пациентов, включающих все этапы медицинской и регенеративной реабилитации [72—77]. Подобный подход особо актуален для лечения ОКС, когда наиболее раннее начало определяет его эффективность, вплоть до полного исключения необходимости в масштабных инвазивных хирургических методах, формирования инвалидизирующих нарушений функции сустава благодаря предотвращению высоких стадий развития патологического процесса.

Результаты, полученные в ходе нашего исследования, обнадеживают и представляют перспективу полного изменения характера подхода к лечению столь распространенной и актуальной суставной патологии, как ОКС. К основным возможностям, выделенным нами в ходе исследования, можно отнести следующее.

Инновационный подход к лечению. Представляется, что в лице SVF-терапии найдено не только средство симптоматического лечения или разрыва порочного круга патогенеза ОКС, но даже возможность обеспечения структурной репарации наиболее вовлеченных в патологический процесс тканей и элементов коленного сустава, что, в свою очередь, может перевести ОКС в разряд обратимых патологий, и это выглядит довольно революционно.

Персонализированное лечение. Использование собственных тканей пациента соответствует принципам персонализации применяемых лечебных средств и методов, в том числе обеспечивая постоянную доступность ключевых действующих лечебных факторов. Индивидуализированный подход принципиален в поисках наиболее эффективных и безопасных методов лечения той или иной патологии и реализуется, таким образом, в наибольшей мере.

Долгосрочная эффективность. Получены данные о длительном характере терапевтического эффекта SVF-терапии, способной существенно замедлить или даже приостановить течение ОКС. В случае достижения подобных результатов в широкой клинической практике возможно снижение актуальности проблемы ОКС в масштабах всей популяции и, следовательно, системы здравоохранения.

Безопасность. Минимальный характер манипуляций при получении клеточного продукта SVF, его аутологичный характер практически исключают нежелательные реакции иммунного характера. Это ключевой момент, позволяющий рассчитывать на широкое распространение данного метода в лечении весьма разнообразного спектра пациентов с ОКС.

Ограничения исследования

Несмотря на весьма обнадеживающие результаты, должны быть приняты во внимание и ограничения, характерные для методики текущего обзора. В него включены разнообразные по дизайну и размаху исследования, от слепых рандомизированных контролируемых исследований до ретроспективных и проспективных наблюдательных исследований и отчетов о сериях клинических наблюдений, что, в свою очередь, создает известные трудности в единообразной оценке представленных их авторами результатов и построении на их основе выводов. Объем выборок варьировал в широких пределах, что могло дать неравнозначные результаты с учетом того, что исследования с наиболее широкой выборкой и длительным периодом наблюдения обеспечивают наиболее достоверные результаты. Существует и проблема предвзятости. Вполне ожидаемо, что позитивные результаты тех или иных исследований на актуальные темы имеют больший шанс на опубликование в приоритетном порядке, нежели исследования с нейтральным либо неуверенным результатом, что, в свою очередь, создает известный перекос в доступных для анализа данных литературы. Кроме того, не все из представленных исследований, в особенности наблюдательных, носят контролируемый характер (содержат контрольные группы пациентов), что затрудняет оценку связи зафиксированных результатов с проведенной SVF-терапией.

Кроме того, не очевидна возможность масштабирования представленных данных на широкий объем популяции. Различия в демографических характеристиках, географии исследований, методологии и целях исследований могут ограничить ценность полученных результатов. Необходимо отдавать отчет в том, что, несмотря на продемонстрированный высокий уровень безопасности, далеко не все нежелательные явления, в особенности расцененные как малозначимые либо минимально выраженные, могли быть надлежащим образом зафиксированы и включены в опубликованные результаты исследований.

Заключение

Всесторонний обзор опубликованных данных об эффективности SVF-терапии в лечении остеоартрита коленного сустава обеспечил получение весьма ценной информации касательно потенциальной роли данного метода в арсенале лечебных средств. Большинство авторов предоставили обнадеживающие данные об эффективности и безопасности метода, от симптоматических эффектов, таких как снижение болевого синдрома, улучшение функции сустава, до признаков обратного развития патологического процесса, включая регенерацию суставного хряща. Примечательно, что нежелательные реакции при SVF-терапии носили эпизодический, минимально выраженный характер либо вовсе не зарегистрированы. При этом необходимо отдавать отчет в том, что исследования широко различаются по выборке, продолжительности наблюдения и методическим основам, что требует внимательного отношения при анализе их результатов, в массе своей весьма оптимистичных. Включение SVF-терапии в широкую клиническую практику лечения остеоартрита коленного сустава выглядит вполне обоснованным и многообещающим. Вместе с тем выработка оптимальных лечебных протоколов, принципиальные ограничения SVF-терапии, потенциальные долгосрочные риски и эффекты, не выявленные к настоящему моменту, означают необходимость продолжения исследований, в особенности более длительных, широкомасштабных и методически единообразных. Расширение роли SVF-терапии для лечения остеоартрита коленного сустава должно базироваться на прочной и проработанной научной методологической основе и быть обусловлено только приверженностью интересам пациентов.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Michael JW, Schlüter-Brust KU, Eysel P. The epidemiology, etiology, diagnosis, and treatment of osteoarthritis of the knee. Deutsches Arzteblatt International. 2010;107(9):152-162.  https://doi.org/10.3238/arztebl.2010.0152
  2. Kan HS, Chan PK, Chiu KY, Yan CH, Yeung SS, Ng YL, Shiu KW, Ho T.Non-surgical treatment of knee osteoarthritis. Hong Kong Medical Journal. 2019;25(2):127-133.  https://doi.org/10.12809/hkmj187600
  3. Skvortsov D, Kaurkin S, Prizov A, Altukhova A, Goncharov E, Nikitin A. Gait analysis and knee joint kinematics before a and 6 months after of corrective valgus osteotomy at patients with medial knee arthritis. International Orthopaedics (SICOT). 2022;46(7):1573-1582. https://doi.org/10.1007/s00264-022-05370-9
  4. Krakowski P, Karpiński R, Jojczuk M, Nogalska A, Jonak J. Knee MRI Underestimates the Grade of Cartilage Lesions. Applied Sciences. 2021;11:1552.
  5. Carr AJ, Robertsson O, Graves S, Price AJ, Arden NK, Judge A, Beard DJ. Knee replacement. Lancet. 2012;379(9823):1331-1340. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(11)60752-6
  6. Hunter DJ, Bierma-Zeinstra S. Osteoarthritis. Lancet. 2019;393(10182): 1745-1759. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(19)30417-9
  7. Agaverdiev M, Shamsov B, Mirzoev S, Vardikyan A, Ramirez ME, Nurmukhametov R, Beilerli A, Zhang B, Gareev I, Pavlov V. MiRNA regulated therapeutic potential of the stromal vascular fraction: Current clinical applications — A systematic review. Non-Coding RNA Research. 2023;8(2):146-154.  https://doi.org/10.1016/j.ncrna.2022.12.003
  8. Yang Y, Lan Z, Yan J, Tang Z, Zhou L, Jin D, Jin Q. Effect of intra-knee injection of autologous adipose stem cells or mesenchymal vascular components on short-term outcomes in patients with knee osteoarthritis: An updated meta-analysis of randomized controlled trials. Arthritis Research and Therapy. 2023;25(1):147.  https://doi.org/10.1186/s13075-023-03134-3
  9. Reynoso JP, De Jesus Encarnacion M, Nurmukhametov R, Melchenko D, Efe IE, Goncharov E, Taveras AA, Ramirez Pena IJ, Montemurro N. Anatomical Variations of the Sciatic Nerve Exit from the Pelvis and Its Relationship with the Piriformis Muscle: A Cadaveric Study. Neurology International. 2022;14(4):894-902.  https://doi.org/10.3390/neurolint14040072
  10. Rodriguez-Merchan EC. Autologous and Allogenic Utilization of Stromal Vascular Fraction and Decellularized Extracellular Matrices in Orthopedic Surgery: A Scoping Review. The Archives of Bone and Joint Surgery. 2022;10(10):827-832.  https://doi.org/10.22038/ABJS.2022.59635.2943
  11. Russo A, Condello V, Madonna V, Guerriero M, Zorzi C. Autologous and micro-fragmented adipose tissue for the treatment of diffuse degenerative knee osteoarthritis. Journal of Experimental Orthopaedics. 2017;4(1):33.  https://doi.org/10.1186/s40634-017-0108-2
  12. Labarre KW, Zimmermann G. Infiltration of the Hoffa’s fat pad with stromal vascular fraction in patients with osteoarthritis of the knee — Results after one year of follow-up. Bone Reports. 2022;16:101168. https://doi.org/10.1016/j.bonr.2022.101168
  13. Lapuente JP, Dos-Anjos S, Blázquez-Martínez A. Intra-articular infiltration of adipose-derived stromal vascular fraction cells slows the clinical progression of moderate-severe knee osteoarthritis: Hypothesis on the regulatory role of intra-articular adipose tissue. Journal of Orthopaedic Surgery and Research. 2020;15(1):137.  https://doi.org/10.1186/s13018-020-01664-z
  14. Garza JR, Campbell RE, Tjoumakaris FP, Freedman KB, Miller LS, Santa Maria D, Tucker BS. Clinical Efficacy of Intra-articular Mesenchymal Stromal Cells for the Treatment of Knee Osteoarthritis: A Double-Blinded Prospective Randomized Controlled Clinical Trial. The American Journal of Sports Medicine. 2020;48(3):588-598.  https://doi.org/10.1177/0363546519899923
  15. Yokota N, Hattori M, Ohtsuru T, Otsuji M, Lyman S, Shimomura K, Nakamura N. Comparative Clinical Outcomes After Intra-articular Injection With Adipose-Derived Cultured Stem Cells or Noncultured Stromal Vascular Fraction for the Treatment of Knee Osteoarthritis. The American Journal of Sports Medicine. 2019;47(11):2577-2583. https://doi.org/10.1177/0363546519864359
  16. Rothrauff BB, Sasaki H, Kihara S, Overholt KJ, Gottardi R, Lin H, Fu FH, Tuan RS, Alexander PG. Point-of-Care Procedure for Enhancement of Meniscal Healing in a Goat Model Utilizing Infrapatellar Fat Pad-Derived Stromal Vascular Fraction Cells Seeded in Photocrosslinkable Hydrogel. The American Journal of Sports Medicine. 2019;47(14):3396-3405. https://doi.org/10.1177/0363546519880468
  17. Koh YG, Choi YJ, Kwon SK, Kim YS, Yeo JE. Clinical results and second-look arthroscopic findings after treatment with adipose-derived stem cells for knee osteoarthritis. Knee Surgery, Sports Traumatology, Arthroscopy. 2015;23(5):1308-1316. https://doi.org/10.1007/s00167-013-2807-2
  18. Nguyen PD, Tran TD, Nguyen HT, Vu HT, Le PT, Phan NL, Vu NB, Phan NK, Van Pham P. Comparative Clinical Observation of Arthroscopic Microfracture in the Presence and Absence of a Stromal Vascular Fraction Injection for Osteoarthritis. Stem Cells Translational Medicine. 2017;6(1):187-195.  https://doi.org/10.5966/sctm.2016-0023
  19. Muñoz-Criado I, Meseguer-Ripolles J, Mellado-López M, Alastrue-Agudo A, Griffeth RJ, Forteza-Vila J, Cugat R, García M, Moreno-Manzano V. Human Suprapatellar Fat Pad-Derived Mesenchymal Stem Cells Induce Chondrogenesis and Cartilage Repair in a Model of Severe Osteoarthritis. Stem Cells International. 2017;2017:4758930. https://doi.org/10.1155/2017/4758930
  20. Kim YS, Suh DS, Tak DH, Kwon YB, Koh YG. Adipose-Derived Stromal Vascular Fractions Are Comparable With Allogenic Human Umbilical Cord Blood-Derived Mesenchymal Stem Cells as a Supplementary Strategy of High Tibial Osteotomy for Varus Knee Osteoarthritis. Arthroscopy, Sports Medicine, and Rehabilitation. 2023;5(3):e751-e764. https://doi.org/10.1016/j.asmr.2023.04.002
  21. Kim YS, Oh SM, Suh DS, Tak DH, Kwon YB, Koh YG. Arthroscopic Implantation of Adipose-Derived Stromal Vascular Fraction Improves Cartilage Regeneration and Pain Relief in Patients With Knee Osteoarthritis. Arthroscopy, Sports Medicine, and Rehabilitation. 2023;5(3):e707-e716. https://doi.org/10.1016/j.asmr.2023.03.013
  22. Boada-Pladellorens A, Avellanet M, Pages-Bolibar E, Veiga A. Stromal vascular fraction therapy for knee osteoarthritis: A systematic review. Therapeutic Advances in Musculoskeletal Disease. 2022;14:1759720X221117879. https://doi.org/10.1177/1759720X221117879
  23. Kim YS, Oh SM, Suh DS, Tak DH, Kwon YB, Koh YG. Cartilage lesion size and number of stromal vascular fraction (SVF) cells strongly influenced the SVF implantation outcomes in patients with knee osteoarthritis. Journal of Experimental Orthopaedics. 2023;10(1):28.  https://doi.org/10.1186/s40634-023-00592-1
  24. Yokota N, Lyman S, Hanai H, Shimomura K, Ando W, Nakamura N. Clinical Safety and Effectiveness of Adipose-Derived Stromal Cell vs Stromal Vascular Fraction Injection for Treatment of Knee Osteoarthritis: 2-Year Results of Parallel Single-Arm Trials. The American Journal of Sports Medicine. 2022;50(10):2659-2668. https://doi.org/10.1177/03635465221107364
  25. Aletto C, Giordano L, Quaranta M, Zara A, Notarfrancesco D, Maffulli N. Short-term results of intra-articular injections of stromal vascular fraction for early knee osteoarthritis. Journal of Orthopaedic Surgery and Research. 2022;17(1):310.  https://doi.org/10.1186/s13018-022-03196-0
  26. Santoprete S, Marchetti F, Rubino C, Bedini MG, Nasto LA, Cipolloni V, Pola E.Fresh autologous stromal tissue fraction for the treatment of knee osteoarthritis related pain and disability. Orthopedic Reviews. 2021;13(1):9161. https://doi.org/10.4081/or.2021.9161
  27. Zhang S, Xu H, He B, Fan M, Xiao M, Zhang J, Chen D, Tong P, Mao Q. Mid-term prognosis of the stromal vascular fraction for knee osteoarthritis: A minimum 5-year follow-up study. Stem Cell Research and Therapy. 2022;13(1):105.  https://doi.org/10.1186/s13287-022-02788-1
  28. Simunec D, Salari H, Meyer J. Treatment of Grade 3 and 4 Osteoarthritis with Intraoperatively Separated Adipose Tissue-Derived Stromal Vascular Fraction: A Comparative Case Series. Cells. 2020;9(9):2096. https://doi.org/10.3390/cells9092096
  29. Şahin AA, Değirmenci E, Özturan KE, Fırat T, Kükner A. Effects of adipose tissue-derived stromal vascular fraction on osteochondral defects treated by hyaluronic acid-based scaffold: An experimental study. Joint Diseases and Related Surgery. 2021;32(2):347-354.  https://doi.org/10.52312/jdrs.2021.19
  30. Mehling B, Hric M, Salatkova A, Vetrak R, Santora D, Ovariova M, Mihalyova R, Manvelyan M. A Retrospective Study of Stromal Vascular Fraction Cell Therapy for Osteoarthritis. Journal of Clinical Medicine Research. 2020;12(11):747-751.  https://doi.org/10.14740/jocmr4354
  31. Hudetz D, Borić I, Rod E, Jeleč Ž, Kunovac B, Polašek O, Vrdoljak T, Plečko M, Skelin A, Polančec D, Zenić L, Primorac D. Early results of intra-articular micro-fragmented lipoaspirate treatment in patients with late stages knee osteoarthritis: A prospective study. Croatian Medical Journal. 2019;60(3):227-236.  https://doi.org/10.3325/cmj.2019.60.227
  32. Hong Z, Chen J, Zhang S, Zhao C, Bi M, Chen X, Bi Q. Intra-articular injection of autologous adipose-derived stromal vascular fractions for knee osteoarthritis: A double-blind randomized self-controlled trial. International Orthopaedics. 2019;43(5):1123-1134. https://doi.org/10.1007/s00264-018-4099-0
  33. Tran TDX, Wu CM, Dubey NK, Deng YH, Su CW, Pham TT, Thi Le PB, Sestili P, Deng WP. Time- and KellgreñLawrence Grade-Dependent Changes in Intra-Articularly Transplanted Stromal Vascular Fraction in Osteoarthritic Patients. Cells. 2019;8(4):308.  https://doi.org/10.3390/cells8040308
  34. Bora P, Majumdar AS. Adipose tissue-derived stromal vascular fraction in regenerative medicine: A brief review on biology and translation. Stem Cell Research and Therapy. 2017;8(1):145.  https://doi.org/10.1186/s13287-017-0598-y
  35. Baer PC, Geiger H. Adipose-derived mesenchymal stromal/stem cells: Tissue localization, characterization, and heterogeneity. Stem Cells International. 2012;2012:812693. https://doi.org/10.1155/2012/812693
  36. Francis SL, Duchi S, Onofrillo C, Di Bella C, Choong PFM. Adipose-Derived Mesenchymal Stem Cells in the Use of Cartilage Tissue Engineering: The Need for a Rapid Isolation Procedure. Stem Cells International. 2018;2018:8947548. https://doi.org/10.1155/2018/8947548
  37. Busato A, De Francesco F, Biswas R, Mannucci S, Conti G, Fracasso G, Conti A, Riccio V, Riccio M, Sbarbati A. Simple and Rapid Non-Enzymatic Procedure Allows the Isolation of Structurally Preserved Connective Tissue Micro-Fragments Enriched with SVF. Cells. 2020;10(1):36.  https://doi.org/10.3390/cells10010036
  38. Guimarães-Camboa N, Cattaneo P, Sun Y, Moore-Morris T, Gu Y, Dalton ND, Rockenstein E, Masliah E, Peterson KL, Stallcup WB, Chen J, Evans SM. Pericytes of Multiple Organs Do Not Behave as Mesenchymal Stem Cells In Vivo. Cell Stem Cell. 2017;20(3):345-359.e5.  https://doi.org/10.1016/j.stem.2016.12.006
  39. Matsuo FS, Cavalcanti de Araújo PH, Mota RF, Carvalho AJR, Santos de Queiroz M, Baldo de Almeida B, Ferreira KCOS, Metzner RJM, Ferrari GD, Alberici LC, Osako MK. RANKL induces beige adipocyte differentiation in preadipocytes. American Journal of Physiology. Endocrinology and Metabolism. 2020;318(6):E866-E877. https://doi.org/10.1152/ajpendo.00397.2019
  40. Contreras GA, Kabara E, Brester J, Neuder L, Kiupel M. Macrophage infiltration in the omental and subcutaneous adipose tissues of dairy cows with displaced abomasum. Journal of Dairy Science. 2015;98(9):6176-6187. https://doi.org/10.3168/jds.2015-9370
  41. Dey A, Ni Z, Johnson MS, Sedger LM. A multi-colour confocal microscopy method for identifying and enumerating macrophage subtypes and adherent cells in the stromal vascular fraction of human adipose. Journal of Immunological Methods. 2021;491:112988. https://doi.org/10.1016/j.jim.2021.112988
  42. Dulong J, Loisel S, Rossille D, Léonard S, Bescher N, Bezier I, Latour M, Monvoisin C, Monnier D, Bertheuil N, Roulois D, Tarte K. CD40L-expressing CD4+ T cells prime adipose-derived stromal cells to produce inflammatory chemokines. Cytotherapy. 2022;24(5):500-507.  https://doi.org/10.1016/j.jcyt.2022.01.006
  43. Gulyaeva O, Dempersmier J, Sul HS. Genetic and epigenetic control of adipose development. Biochimica et Biophysica Acta. Molecular and Cell Biology of Lipids. 2019;1864(1):3-12.  https://doi.org/10.1016/j.bbalip.2018.04.016
  44. Mark B, Elliot L, Thomas G, Walter O, Jonathan B, Shawntae D, Sean B. Prospective Study of Autologous Adipose Derived Stromal Vascular Fraction Containing Stem Cells for the Treatment of Knee Osteoarthritis. International Journal of Stem Cell Research and Therapy. 2019;6:064. 
  45. Pers YM, Quentin J, Feirreira R, Espinoza F, Abdellaoui N, Erkilic N, Cren M, Dufourcq-Lopez E, Pullig O, Nöth U, Jorgensen C, Louis-Plence P. Injection of Adipose-Derived Stromal Cells in the Knee of Patients with Severe Osteoarthritis has a Systemic Effect and Promotes an Anti-Inflammatory Phenotype of Circulating Immune Cells. Theranostics. 2018;8(20):5519-5528. https://doi.org/10.7150/thno.27674
  46. Cho H, Kim H, Kim YG, Kim K. Recent Clinical Trials in Adipose-derived Stem Cell Mediated Osteoarthritis Treatment. Biotechnology and Bioprocess Engineering. 2019;24:839-853. 
  47. Vargel İ, Tuncel A, Baysal N, Hartuç-Çevik İ, Korkusuz F. Autologous Adipose-Derived Tissue Stromal Vascular Fraction (AD-tSVF) for Knee Osteoarthritis. International Journal of Molecular Sciences. 2022;23(21):13517. https://doi.org/10.3390/ijms232113517
  48. Pak J, Lee JH, Pak NJ, Park KS, Jeon JH, Jeong BC, Lee SH. Clinical Protocol of Producing Adipose Tissue-Derived Stromal Vascular Fraction for Potential Cartilage Regeneration. Journal of Visualized Experiments: JoVE. 2018;(139):58363. https://doi.org/10.3791/58363
  49. Lattermann C, Nakamura HMN, Kon E. Early Osteoarthritis State-of-the-Art Approaches to Diagnosis, Treatment and Controversies. Springer: Heidelberg, Germany; 2022.
  50. Maioli M, Rinaldi S, Santaniello S, Castagna A, Pigliaru G, Delitala A, Bianchi F, Tremolada C, Fontani V, Ventura C. Radioelectric asymmetric conveyed fields and human adipose-derived stem cells obtained with a nonenzymatic method and device: A novel approach to multipotency. Cell Transplantation. 2014;23(12):1489-500.  https://doi.org/10.3727/096368913X672037
  51. Montemurro N, Pierozzi E, Inchingolo AM, Pahwa B, De Carlo A, Palermo A, Scarola R, Dipalma G, Corsalini M, Inchingolo AD, Inchingolo F, Rapone B. New biograft solution, growth factors and bone regenerative approaches in neurosurgery, dentistry, and orthopedics: A review. European Review for Medical and Pharmacological Sciences. 2023;27(16):7653-7664. https://doi.org/10.26355/eurrev_202308_33419
  52. Perdisa F, Gostyńska N, Roffi A, Filardo G, Marcacci M, Kon E. Adipose-Derived Mesenchymal Stem Cells for the Treatment of Articular Cartilage: A Systematic Review on Preclinical and Clinical Evidence. Stem Cells International. 2015;2015:597652. https://doi.org/10.1155/2015/597652
  53. Aronowitz JA, Ellenhorn JDI. Adipose stromal vascular fraction isolation: A head-to-head comparison of four commercial cell separation systems. Plastic and Reconstructive Surgery. 2013;132:932e-939e. https://doi.org/10.1097/PRS.0b013e3182a80652
  54. Packer JD, Chang WT, Dragoo JL. The use of vibrational energy to isolate adipose-derived stem cells. Plastic and Reconstructive Surgery — Global Open. 2018;6(1):e1620. https://doi.org/10.1097/GOX.0000000000001620
  55. Dragoo JL, Chang W. Arthroscopic Harvest of Adipose-Derived Mesenchymal Stem Cells from the Infrapatellar Fat Pad. The American Journal of Sports Medicine. 2017;45(13):3119-3127. https://doi.org/10.1177/0363546517719454
  56. Aronowitz JA, Lockhart RA, Hakakian CS, Birnbaum ZE. Adipose stromal vascular fraction isolation: A head-to-head comparison of 4 cell separation systems# 2. Annals of Plastic Surgery. 2016;77(3):354-62.  https://doi.org/10.1097/SAP.0000000000000831
  57. Domenis R, Lazzaro L, Calabrese S, Mangoni D, Gallelli A, Bourkoula E, Manini I, Bergamin N, Toffoletto B, Beltrami CA, Beltrami AP, Cesselli D, Parodi PC. Adipose tissue derived stem cells: In vitro and in vivo analysis of a standard and three commercially available cell-assisted lipotransfer techniques. Stem Cell Research and Therapy. 2015;6(1):2.  https://doi.org/10.1186/scrt536
  58. Fang C, Patel P, Li H, Huang LT, Wan H, Collins S, Connell TL, Xu H. Physical, biochemical, and biologic properties of fat graft processed via different methods. Plastic and Reconstructive Surgery — Global Open. 2020;8(8):e3010. https://doi.org/10.1097/GOX.0000000000003010
  59. Tremolada C, Colombo V, Ventura C. Adipose tissue and mesenchymal stem cells: State of the art and Lipogems® technology development. Current Stem Cell Reports. 2016;2(3):304-312.  https://doi.org/10.1007/s40778-016-0053-5
  60. Magnanelli S, Screpis D, Di Benedetto P, Natali S, Causero A, Zorzi C. Open-wedge high tibial osteotomy associated with lipogems® intra-articular injection for the treatment of varus knee osteoarthritis–retrospective study. Acta Bio-Medica. 2020;91(14-S):e2020022.
  61. Kavala AA, Turkyilmaz S. Autogenously derived regenerative cell therapy for venous leg ulcers. Archives of Medical Sciences. Atherosclerotic Diseases. 2018;3:e156-e163. https://doi.org/10.5114/amsad.2018.81000
  62. Lobascio P, Balducci G, Minafra M, Laforgia R, Fedele S, Conticchio M, Palasciano N. Adipose-derived stem cells (MYSTEM® EVO Technology) as a treatment for complex transsphincteric anal fistula. Techniques in Coloproctology. 2018;22(5):373-377.  https://doi.org/10.1007/s10151-018-1785-2
  63. Stevens HP, van Boxtel J, van Dijck R, van Dongen JA. Platelet Rich STROMA, the Combination of PRP and tSVF and Its Potential Effect on Osteoarthritis of the Knee. Applied Sciences. 2020;10:4691.
  64. Copcu HE. Supercharged Mechanical Stromal-cell Transfer (MEST). Plastic and Reconstructive Surgery — Global Open. 2021;9:e3552. https://doi.org/10.1097/GOX.0000000000003552
  65. Zocchi ML, Facchin F, Pagani A, Bonino C, Sbarbati A, Conti G, Vindigni V, Bassetto F. New perspectives in regenerative medicine and surgery: The bioactive composite therapies (BACTs). European Journal of Plastic Surgery. 2022;45(1):1-25.  https://doi.org/10.1007/s00238-021-01874-6
  66. Rossi M, Roda B, Zia S, Vigliotta I, Zannini C, Alviano F, Bonsi L, Zattoni A, Reschiglian P, Gennai A. Characterization of the Tissue and Stromal Cell Components of Micro-Superficial Enhanced Fluid Fat Injection (Micro-SEFFI) for Facial Aging Treatment. Aesthetic Surgery Journal. 2020;40(6):679-690.  https://doi.org/10.1093/asj/sjy142
  67. Cohen SR, Tiryaki T, Womack HA, Canikyan S, Schlaudraff KU, Scheflan M. Cellular Optimization of Nanofat: Comparison of Two Nanofat Processing Devices in Terms of Cell Count and Viability. Aesthetic Surgery Journal. Open Forum. 2019;1(4):ojz028. https://doi.org/10.1093/asjof/ojz028
  68. Tiryaki KT, Cohen S, Kocak P, Canikyan Turkay S, Hewett S. In-Vitro Comparative Examination of the Effect of Stromal Vascular Fraction Isolated by Mechanical and Enzymatic Methods on Wound Healing. Aesthetic Surgery Journal. 2020;40(11):1232-1240. https://doi.org/10.1093/asj/sjaa154
  69. Sesé B, Sanmartín JM, Ortega B, Matas-Palau A, Llull R. Nanofat Cell Aggregates: A Nearly Constitutive Stromal Cell Inoculum for Regenerative Site-Specific Therapies. Plastic and Reconstructive Surgery. 2019;144(5):1079-1088. https://doi.org/10.1097/PRS.0000000000006155
  70. Caforio M, Nobile C. Intra-Articular Administration of Autologous Purified Adipose Tissue Associated with Arthroscopy Ameliorates Knee Osteoarthritis Symptoms. Journal of Clinical Medicine. 2021;10(10):2053. https://doi.org/10.3390/jcm10102053
  71. Ferguson RE, Cui X, Fink BF, Vasconez HC, Pu LL. The viability of autologous fat grafts harvested with the LipiVage system: A comparative study. Annals of Plastic Surgery. 2008;60(5):594-597.  https://doi.org/10.1097/SAP.0b013e31817433c5
  72. Котенко К.В., Еремин И.И., Мороз Б.Б., Бушманов А.Ю., Надежина Н.М., Галстян И.А., Гринаковская О.С., Аксененко А.В., Дешевой Ю.Б., Лебедев В.Г., Слободина Т.С., Жгутов Ю.А., Лаук-Дубицкий С.Е., Еремин П.С. Клеточные технологии в лечении радиационных ожогов: опыт ФМБЦ им. А.И. Бурназяна. Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. 2012;7(2):97-102. 
  73. Kotenko K, Moroz B, Nadezhina N, Galstyan I, Eremin I, Deshevoy J, Lebedev V, Slobodina T, Grinakovskaya D, Zhgutov Y, Bushmanov A. Successful treatment of localised radiation lesions in rats and humans by mesenchymal stem cell transplantation. Radiation Protection Dosimetry. 2012;151(4):661-665.  https://doi.org/10.1093/rpd/ncs177
  74. Котенко К.В., Уйба В.В., Корчажкина Н.Б., Петрова М.С., Михайлова А.А., Галкин Г.Н. Инструкция по проведению дополнительных методов обследования и реабилитации спортсменов. М. 2012.
  75. Корчажкина Н.Б., Михайлова А.А., Ковалев С.А., Портнов В.В., Ржевский В.С. Эффективность методик ранней реабилитации в программах ускоренного выздоровления больных после хирургических вмешательств. Физиотерапия, бальнеология и реабилитация. 2019;18(6):408-411.  https://doi.org/10.17816/1681-3456-2019-18-6-408-411
  76. Корчажкина Н.Б. Третий этап медицинской реабилитации в условиях санаторно-курортных организаций. Дальнейшее развитие санаторно-курортного лечения после оказания специализированной, в том числе высокотехнологичной медицинской помощи. Курортная медицина. 2013;3:69-72. 
  77. Котенко К.В., Уйба В.В., Корчажкина Н.Б., Петрова М.С., Киш А.А., Михайлова А.А. Повышение функциональных возможностей организма спортсменов циклических видов спорта. Медицина труда и промышленная экология. 2013;9:42-44. 

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.