Кокорина О.В.

ФГБВОУ ВО «Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова» Минобороны России

Боева В.И.

ФГБВОУ ВО «Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова» Минобороны России

Апалько С.В.

СПб ГБУЗ «Городская больница №40 Курортного района»

Вологжанин Д.А.

СПб ГБУЗ «Городская больница №40 Курортного района»;
ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный университет» Правительства Российской Федерации

Дворянчиков В.В.

ФГБУ «Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт уха, горла, носа и речи» Минздрава России

Щербак С.Г.

ФГБОУ ВПО «Санкт-Петербургский государственный университет»;
ГБУЗ «Городская больница №40»

Цитокиновый профиль хронического риносинусита без полипов

Авторы:

Кокорина О.В., Боева В.И., Апалько С.В., Вологжанин Д.А., Дворянчиков В.В., Щербак С.Г.

Подробнее об авторах

Прочитано: 2438 раз


Как цитировать:

Кокорина О.В., Боева В.И., Апалько С.В., Вологжанин Д.А., Дворянчиков В.В., Щербак С.Г. Цитокиновый профиль хронического риносинусита без полипов. Вестник оториноларингологии. 2022;87(4):51‑55.
Kokorina OV, Boeva VI, Apalko SV, Vologzhanin DA, Dvoryanchikov VV, Sherbak SG. Cytokine profile of chronic rhinosinusitis without polyps. Russian Bulletin of Otorhinolaryngology. 2022;87(4):51‑55. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/otorino20228704151

Рекомендуем статьи по данной теме:
Биомар­ке­ры ате­рот­ром­бо­ти­чес­ко­го и кар­диоэм­бо­ли­чес­ко­го под­ти­пов ос­тро­го ише­ми­чес­ко­го ин­суль­та. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2024;(12-2):20-26

Введение

При хроническом риносинусите (ХРС) выделяют два основных фенотипа заболевания: ХРС с полипами (ХРСсП) и ХРС без полипов (ХРСбП) [1, 2]. В свою очередь, ХРСбП также имеет различные клинические варианты, этиопатогенез которых остается недостаточно изученным, несмотря на то что 80% пациентов с ХРС имеют этот фенотип [3].

Современные взгляды на гетерогенную природу ХРС сформулированы в трех тезисах: 1) воспалительный процесс при ХРС запускается дисфункциональным взаимодействием между экзогенными агентами, вдыхаемыми через нос, и иммунной системой человека; 2) важность конкретных причинных факторов неодинакова у отдельных пациентов, что приводит к формированию различных типов воспаления тканей (эндотипов); 3) клинические характеристики (фенотипы) заболевания и реакция на лечение будут зависеть от первых двух пунктов [4, 5]. В зависимости от преобладающего типа воспаления выявлены следующие эндотипы ХРС: воспаление типа Т2, воспаление типа не-Т2 и эпителиальный эндотип. Каждый тип воспаления характеризуется составом и активированных клеточных элементов, и принимающих в нем участие цитокинов — биологически активных веществ, представляющих собой регуляторные пептиды, продуцируемые клетками организма и оказывающие иммуномодулирующее и регуляторное действие на клетки организма как на местном, так и на системном уровнях. К настоящему моменту известно более 200 полипептидных веществ, относящихся к цитокинам. Из-за перекреста биологических функций многих молекул и особенностей строения их рецепторов классификация цитокинов является сложной задачей. Согласно структурно-функциональной классификации цитокинов, предложенной А.С. Симбирцевым (2004), выделяют 13 семейств цитокинов, отличающихся основными биологическими функциями: интерфероны: INF-α, INF-β, INF-γ и т.д. (противовирусная активность, антипролиферативное, иммуномодулирующее действие); суперсемейство интерлейкина 1-го типа и фактора роста фибробластов: IL-1α, IL-1β, IL-18, IL-33 и др. (провоспалительное действие, активация специфического иммунитета); хемокины: СС, СХС (IL-8), СХЗС, С (регуляция хемотаксиса различных типов лейкоцитов); цитокины Т-хелперных клонов и регулирующие функции лимфоцитов: Т-хелперы 1-го типа (IL-2, IL-15, IL-21, INF-γ, TNF) (активация мононуклеарного воспаления и клеточного иммунитета), Т-хелперы 2-го типа (IL-4, IL-5, IL-10, IL-13) (активация аллергического воспаления и гуморального иммунитета), Т-хелперы 17-го типа (IL-17A, IL-22) (активация нейтрофильного воспаления и иммунитета против грибов) и др. [6].

Как правило, у здоровых людей в биологических жидкостях и тканях организма цитокины определяются в чрезвычайно малых концентрациях, часто недоступных для регистрации. Развитие и прогрессирование патологического процесса приводит к изменению уровня отдельных цитокинов, необходимых для формирования воспалительного ответа, благодаря чему обеспечивается процесс блокирования и элиминации патогена из организма [6].

Цель исследования — определить особенности цитокинового профиля в сыворотке крови у пациентов с ХРСбП.

Материал и методы

Проведено обследование 75 пациентов, которым проводилось хирургическое вмешательство в полости носа. Из них 32 пациентам (основная группа) проведено оперативное лечение по поводу ХРСбП, 43 пациентам (группа сравнения) выполнена плановая хирургическая коррекция перегородки носа (септопластика).

В группу с ХРСбП включены пациенты с длительностью заболевания более 3 мес (от 3 до 18 мес). Большинство пациентов обратились к оториноларингологу самостоятельно по поводу периодической или постоянной заложенности носа (28 человек), у 2 из них были жалобы на головную боль, периодические слизистые выделения из носа отмечали все пациенты; 4 человека направлены стоматологом-ортопедом, так как при обследовании выявлены изменения в верхнечелюстных пазухах (кисты). Критерии исключения: 1) наличие полипов, установленное эндоскопически и (или) рентгенологически; 2) системное или местное противовоспалительное лечение за 6 мес до обследования в связи с сопутствующей одонтогенной и (или) соматической патологией (бронхиальная астма, сахарный диабет, атопия и проч.); 3) операции в полости носа в анамнезе; 4) одонтогенная патология.

Пациенты распределены по группам на основании данных компьютерной томографии околоносовых пазух (КТ ОНП). У пациентов группы сравнения признаков нарушения пневматизации околоносовых пазух не было. Пациенты с ХРСбП разделены на две группы: 1-я группа («киста») — 17 человек, у которых отмечалось утолщение слизистой оболочки верхнечелюстных пазух с четким, ровным, выпуклым верхним контуром, однородной структуры; 2-я группа («отек») — 15 человек, у которых отмечалось снижение пневматизации верхнечелюстных пазух за счет пристеночного утолщения слизистой оболочки. Группы сопоставимы по полу и возрасту: медиана возраста пациентов 1-й группы составила 24 года (от 21 до 23 лет), 2-й группы — 29 лет (от 22 до 45 лет), группы сравнения — 24 года (от 22 до 33 лет), мужчин в группах больше, чем женщин, — 82%, 87%, 81% соответственно.

Все пациенты подписали форму информированного добровольного согласия на обследование.

Для исследования концентрации цитокинов проведен забор венозной крови из кубитальной вены утром натощак. Кровь доставляли в лабораторию в течение 20 мин, центрифугировали, полученный образец сыворотки замораживали и хранили при температуре –80°C. Длительность хранения образцов до исследования составила не более 6 мес. Содержание цитокинов определяли с помощью мультиплексного иммунофлуоресцентного анализа на базе платформы xMap (Luminex) с использованием панели HCYTOMAG-60K (Merck Millipore), диапазон количественного определения метода — 1—10 000 пг/мл. В эксперименте использовали замороженные образцы сыворотки крови. Подготовку и анализ проб проводили согласно инструкции производителя. Измерены уровни цитокинов: IL-1α, IL-1RA, IL-1β, IL-2, IL-3, IL-4, IL-5, IL-6, IL-7, IL-8, IL-9, IL-10, IL-12р40, IL-12р70, IL-13, IL-15, IL-17, IFN-α2, IFN-γ, GM-CSF.

Статистическая обработка полученных данных проведена с помощью программ Microsoft Excel и R Statistics с использованием методов описательной статистики номинальных переменных. Определены частотные и количественные характеристики биомаркеров у пациентов всех групп. Полученные данные представлены в виде медианы, межквартильного размаха. Попарное сравнение групп выполнено с помощью U-критерия Манна—Уитни. Статистически значимыми считали различия при p<0,05.

Результаты

По данным КТ ОНП, у пациентов 1-й группы («киста») процесс чаще был односторонним — 12 (71%) случаев, двусторонним он был у 5 (29%) человек. Процесс носил односторонний характер у 5 (33%) человек 2-й группы («отек»), двусторонний — у 10 (67%) человек.

По своей локализации кисты находились на нижнелатеральной и задненижней стенке у 8 (47%) человек, в альвеолярной бухте — у 6 (35%), на медиальной стенке — у 3 (18%). Размеры кист (при замере максимального диаметра коронарной проекции) были от 15 до 28 мм. Пациентам выполняли эндоскопическое удаление кисты через естественное соустье с использованием шейверной системы. Показанием к оперативному вмешательству были: санация верхнечелюстной пазухи перед дентальной имплантацией — у 4 (23%) человек, жалобы на головную боль, выраженную заложенность носа — у 2 (12%) человек, требования к состоянию здоровья для некоторых профессий — у 11 (65%) человек. Интраоперационно киста в пазухе представляла собой округлое образование с выраженным сосудистым рисунком на поверхности, содержащее жидкость желтоватого цвета. По результатам гистологического исследования операционный материал представлен фрагментами соединительной ткани, выстланной респираторным эпителием, — 12 случаев, в 3 случаях он охарактеризован как хронический синусит с кистозной трансформацией, в 2 случаях материал не получен (затянут в хирургический аспиратор).

Установлено, что частота обнаружения цитокинов у пациентов обследованных групп различается (таблица).

Таблица. Частота обнаружения и концентрация основных цитокинов в сыворотке крови пациентов с хроническим риносинуситом без полипов

Показатель

Частота определения, %

Концентрация*, пг/мл

1-я группа («киста»)** (n=17)

2-я группа («отек») ** (n=15)

группа сравнения (n=43)

1-я группа («киста»)** (n=17)

2-я группа («отек»)** (n=15)

группа сравнения (n=43)

IL-1α

82,4

33,3

55,8

12,0 (4,1—19,2)

3,3 (0—10,2)

8,0 (0,8—22,6)

IL-1β

11,8

6,7

16,3

0,8 (0—4,1)

0,2 (0—1,9)

0,6 (0—2,5)

IL-1RA

52,9

60

65,1

15,7 (0,9—90,5)

19,8 (3,2—27)

13,3 (1,4—147)

IL-2

29,4

13,3

37,2

1,3 (0—3,6)

0,6 (0—2,8)

1,8 (0—3,8)

IL-3

0

0

7

0

0

0,3 (0 — 2,7)

IL-4

94,1

100

95,3

20,3 (14—25)

17 (8,9—28,1)

16,5 (11,7—31)

IL-5

17,6

6,7

23,3

1,0 (0—3,7)

0,9 (0—7,4)

1,0 (0—3,2)

IL-6

29,4

20

30,2

1,5 (0—4)

0,9 (0—3)

1,4 (0—4,10)

IL-7

5,9

0

16,3

0,4 (0—3,8)

0

0,8 (0—3,4)

IL-8

76,5

73,3

60,5

7,3 (4,4—12)

4,3 (2,4—7,1)

5,2 (0,8—22,3)

IL-9

11,8

13,3

18,6

1,3 (0—6,7)

0,6 (0—2,7)

0,9 (0—3,3)

IL-10

41,2

26,7

32,6

2,5 (0—6,3)

1,2 (0—3,4)

1,5 (0—4,1)

IL-12P40

41,2

26,7

32,6

4,4 (0—26)

4,6 (0—13,1)

2,2 (0—10,2)

IL-12P70

52,9

66,7

53,5

4,0 (0,2—14,4)

7,1 (2,5—17)

3,7 (0,2—10,6)

IL-13

52,9

20

30,2

7,2 (0,4—33,2)

1,0 (0—3,4)

4,3 (0—18,9)

IL-15

29,4

20

27,9

1,9 (0—5,1)

0,8 (0—2,7)

1,4 (0—4,2)

IL-17

76,5

80

65,1

10,4 (6,2—15,2)

5,6 (3,6—15)

6,4 (1,3—14,1)

IFN-α2

76,5

53,3

65,1

19,9 (5,2—37,6)

3,2 (0,2—45)

18,8 (2,3—63)

IFN-γ

82,4

86,7

79,1

15,4 (4,7—25,9)

11,8 (4—20,9)

11,2 (4—23,2)

GM-CSF

64,7

40

48,8

6,8 (1,5—14,2)

4,3 (0—8,1)

3,3 (0—12,1)

Примечание. * — статистически значимых различий между группами нет (p>0,05); ** — разделение группы пациентов с хроническим риносинуситом без полипов выполнено на основании результатов компьютерной томографии околоносовых пазух: 1-я группа («киста») — клиническая картина у пациентов характеризовалась утолщением слизистой оболочки верхнечелюстных пазух с четким, ровным, выпуклым верхним контуром, однородной структуры; 2-я группа («отек») — пристеночным отеком слизистой оболочки верхнечелюстных пазух.

Практически у всех пациентов всех групп определены IL-4 (частота обнаружения 93,3—95,3%) и IFN-γ (79,1—86,7%). При этом существенных различий между группами нет. У 70% пациентов с ХРС выявлены IL-8 (73,3—76,5%) и IL-17 (76,5—80,0%). Частота выявления этих цитокинов у пациентов группы сравнения несколько ниже: 60,5% и 65,5% соответственно. С высокой частотой, но только у пациентов с наличием кистоподобных образований обнаружены цитокины IL-1α (82,4%) и IFN-α2 (76,5%). Сравнительно редко, менее чем у 30% пациентов всех групп, определяли IL-1β, IL-5, IL-7, IL-9, IL-15; у пациентов с кистоподобным образованием — IL-2 и IL-6; у пациентов с пристеночным отеком — IL-10, IL-12р40, IL-13. При количественном сравнении концентрации интерлейкинов статистически значимые различия между группами не установлены.

Обсуждение

При сравнении двух форм ХРСбП, первая из которых характеризуется подушкообразным утолщением слизистой оболочки верхнечелюстных пазух с формированием кистоподобных образований (1-я группа («киста»)), а вторая — пристеночным отеком слизистой оболочки верхнечелюстных пазух (2-я группа («отек»)), статистически значимых различий концентрации цитокинов не получено, но выявлены некоторые тенденции.

Так, у пациентов с формированием кистоподобного образования отмечены более высокие уровни IL-4 и IL-13, являющихся основными цитокинами Т2. Известно, что эти цитокины обычно рассматриваются как неспецифический маркер ХРСсП [7]. Вместе с тем обращает на себя внимание частое определение цитокинов IL-1α и IL-1β, имеющих провоспалительную активность. При этом IL-1α определялся в сыворотке крови у 82,4% пациентов, что, по имеющимся данным, происходит при более тяжелом течении заболеваний [8, 9], а сам этот цитокин рассматривается в качестве ключевого «тревожного сигнала» клетки, предупреждающего о ее повреждении [8—12].

Кроме этого, у пациентов 1-й группы («киста») выявлены более высокие показатели IL-8, который относится к семейству хемокинов, имеет многофакторную систему активации и является мощным аттрактантом и стимулятором нейтрофилов. IL-8 продуцируется моноцитами, макрофагами и эндотелиальными клетками под воздействием многочисленных стимулов как непосредственно различных патогенов и их структурных компонентов, так и других цитокинов, медиаторов воспаления (это IL-1, IL-6, TNF, компоненты системы комплемента и кинины) и при внутрисосудистом свертывании в области повреждения тканей. Считается, что IL-8 играет ключевую роль в эпителиальной и физиологической дисфункции [13].

Напротив, пациенты 2-й группы («отек») характеризуются низкими уровнями практически всех провоспалительных цитокинов, что, возможно, отражает более вялое течение воспалительного процесса. Данное предположение подкрепляется еще и тем, что у пациентов этой группы отмечена наибольшая продукция антагониста рецепторов IL-1 (IL-1Ra), который блокирует активность IL-1, модулируя его провоспалительные эффекты по принципу обратной связи [14].

У 76,5% пациентов 1-й группы («киста») в сыворотке крови определен IFN-α2, уровень данного цитокина в несколько раз выше, чем у пациентов 2-й группы («отек»). Следует отметить, что IFN-α оказывают плейотропное действие, которое включает в себя широкий спектр противовирусной активности, антипролиферативные и иммуномодулирующие эффекты, влияние на клеточную дифференцировку, регуляцию экспрессии основного антигена гистосовместимости на клеточной поверхности и индукцию ряда других цитокинов [15, 16].

Уровень IFN-α2 у пациентов группы «отек» значительно ниже, чем в двух остальных группах, что, возможно, также является свидетельством более слабого по интенсивности воспалительного процесса и делает необходимым исследование противовирусного иммунитета.

Заключение

Полученные данные указывают на то, что гетерогенность клинического течения хронического риносинусита без полипов подтверждается особенностями цитокинового профиля пациентов. Результаты исследования позволяют предполагать, что в случае хронического риносинусита, протекающего с формированием кист верхнечелюстных пазух, имеет место воспаление типа Т2, а при хроническом риносинусите с преобладанием отека слизистой оболочки — воспаление по смешанному типу.

Можно предположить, что формирование кист является признаком более высокой интенсивности воспаления и является результатом более выраженного повреждения тканей. При хроническом риносинусите без полипов с преобладанием отека слизистой оболочки с учетом низких уровней практически всех провоспалительных цитокинов воспалительный процесс характеризуется более вялым течением.

Полученные в настоящей работе данные показывают перспективность исследований цитокинового профиля отдельных форм хронических риносинуситов, что позволит выявить ключевые цитокины, которые формируют и поддерживают определенный фенотип хронического воспаления слизистой оболочки носа и околоносовых пазух.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Avdeeva K, Fokkens W. Precision Medicine in Chronic Rhinosinusitis with Nasal Polyps. Current Allergy and Asthma Reports. 2018;18(4):25.  https://doi.org/10.1007/s11882-018-0776-8
  2. Steinke JW, Borish L. Chronic rhinosinusitis phenotypes. Annals of Allergy, Asthma and Immunology. 2016;117(3):234-240.  https://doi.org/10.1016/j.anai.2016.06.006
  3. Stevens WW, Peters AT, Tan BK, Klingler AI, Poposki JA, Hulse KE, Grammer LC, Welch KC, Smith SS, Conley DB, Kern RC, Schleimer RP, Kato A. Associations Between Inflammatory Endotypes and Clinical Presentations in Chronic Rhinosinusitis. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. In practice. 2019;7(8):2812-2820.e3.  https://doi.org/10.1016/j.jaip.2019.05.009
  4. Fokkens WJ, Lund VJ, Hopkins C, Hellings PW, Kern R, Reitsma S, Toppila-Salmi S, Bernal-Sprekelsen M, Mullol J, Alobid I, Terezinha Anselmo-Lima W, Bachert C, Baroody F, von Buchwald C, Cervin A, Cohen N, Constantinidis J, De Gabory L, Desrosiers M, Diamant Z, Douglas RG, Gevaert PH, Hafner A, Harvey RJ, Joos GF, Kalogjera L, Knill A, Kocks JH, Landis BN, Limpens J, Lebeer S, Lourenco O, Meco C, Matricardi PM, O’Mahony L, Philpott CM, Ryan D, Schlosser R, Senior B, Smith TL, Teeling T, Tomazic PV, Wang DY, Wang D, Zhang L, Agius AM, Ahlstrom-Emanuelsson C, Alabri R, Albu S, Alhabash S, Aleksic A, Aloulah M, Al-Qudah M, Alsaleh S, Baban MA, Baudoin T, Balvers T, Battaglia P, Bedoya JD, Beule A, Bofares KM, Braverman I, Brozek-Madry E, Richard B, Callejas C, Carrie S, Caulley L, Chussi D, de Corso E, Coste A, El Hadi U, Elfarouk A, Eloy PH, Farrokhi S, Felisati G, Ferrari MD, Fishchuk R, Grayson W, Goncalves PM, Grdinic B, Grgic V, Hamizan AW, Heinichen JV, Husain S, Ping TI, Ivaska J, Jakimovska F, Jovancevic L, Kakande E, Kamel R, Karpischenko S, Kariyawasam HH, Kawauchi H, Kjeldsen A, Klimek L, Krzeski A, Kopacheva Barsova G, Kim SW, Lal D, Letort JJ, Lopatin A, Mahdjoubi A, Mesbahi A, Netkovski J, Nyenbue Tshipukane D, Obando-Valverde A, Okano M, Onerci M, Ong YK, Orlandi R, Otori N, Ouennoughy K, Ozkan M, Peric A, Plzak J, Prokopakis E, Prepageran N, Psaltis A, Pugin B, Raftopulos M, Rombaux P, Riechelmann H, Sahtout S, Sarafoleanu CC, Searyoh K, Rhee CS, Shi J, Shkoukani M, Shukuryan AK, Sicak M, Smyth D, Sindvongs K, Soklic Kosak T, Stjarne P, Sutikno B, Steinsvag S, Tantilipikorn P, Thanaviratananich S, Tran T, Urbancic J, Valiulius A, Vasquez de Aparicio C, Vicheva D, Virkkula PM, Vicente G, Voegels R, Wagenmann MM, Wardani RS, Welge-Lussen A, Witterick I, Wright E, Zabolotniy D, Zsolt B, Zwetsloot CP. European Position Paper on Rhinosinusitis and Nasal Polyps 2020. Rhinology. 2020;58(Suppl S29):1-464.  https://doi.org/10.4193/Rhin20.600
  5. Lam K, Schleimer R, Kern RC. The Etiology and Pathogenesis of Chronic Rhinosinusitis: A Review of Current Hypotheses. Current Allergy and Asthma Reports. 2015;15(7):41.  https://doi.org/10.1007/s11882-015-0540-2
  6. Симбирцев А.С. Цитокины: классификация и биологические функции. Цитокины и воспаление. 2004;3(2):16-23. 
  7. Schlosser RJ, Mulligan JK, Hyer JM, Karnezis TT, Gudis DA, Soler ZM. Mucous. Cytokine Levels in Chronic Rhinosinusitis — Associated Olfactory Loss. JAMA Otolaryngology — Head and Neck Surgery. 2016;142(8):731-737.  https://doi.org/10.1001/jamaoto.2016.0927
  8. Garlanda C, Dinarello CA, Mantovani A. The interleukin-1 family: back to the future. Immunity. 2013;39(6):1003-1018. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2013.11.010
  9. Калинина Н.М. Методы и диагностическая значимость определения иммунологических показателей при хронических заболеваниях ЛОР-органов. В кн.: Симбирцев А.С., Лавренова Г.В. Иммунотерапия в практике ЛОР-врача и терапевта. СПб: Диалог; 2018:98-114.  https://doi.org/10.1016/j.immuni.2013.11.010
  10. Rider P, Kaplanov I, Romzova M, Bernardis L, Braiman A, Voronov E, Apte RN. The transcription of the alarmin cytokine interleukin-1 alpha is controlled by hypoxia inducible factors 1 and 2 alpha in hypoxic cells. Frontiers in Immunology. 2012;3:290.  https://doi.org/10.3389/fimmu.2012.00290
  11. Rider P, Carmi Y, Voronov E, Apte RN. Interleukin-1α. Seminars in Immunology. 2013;25(6):430-438.  https://doi.org/10.1016/j.smim.2013.10.005
  12. Rock KL, Latz E, Ontiveros F, Kono H. The sterile inflammatory response. Annual Review of Immunology. 2010;28:321-342.  https://doi.org/10.1146/annurev-immunol-030409-101311
  13. Симбирцев А.С. Цитокины в патогенезе и лечении заболеваний человека. СПб: Фолиант; 2018.
  14. Arend WP. Interleukin-1 receptor antagonist. Advances in Immunology. 1993;54:167-227.  https://doi.org/10.1016/s0065-2776(08)60535-0
  15. Ivashkiv LB, Donlin LT. Regulation of type I interferon responses. Nature Reviews. Immunology. 2014;14(1):36-49.  https://doi.org/10.1038/nri3581
  16. Schmeisser H, Bekisz J, Zoon KC. New function of type I IFN: induction of autophagy. Journal of Interferon and Cytokine Research. 2014;34(2):71-78.  https://doi.org/10.1089/jir.2013.0128

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.