Роль микроРНК в патогенезе заболеваний, связанных с нарушением функции слезной железы

Закрыть метаданные

Рекомендуем статьи по данной теме:

Оценка точности предикторов периоперационных сердечно-сосудистых осложнений в онкохирургии. Анестезиология и реаниматология. 2023;(3):37-44

Новейшие биомаркеры псориатического артрита: возможности применения. Клиническая дерматология и венерология. 2023;(3):231-235

Исследование маркеров слюны при воспалительных заболеваниях пародонта. Российская стоматология. 2023;(2):46-50

Современные возможности ранней диагностики болезни Альцгеймера у пациентов с первичной открытоугольной глаукомой. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2023;(6):121-128

Значение опухолевого микроокружения и молекулярно-биологических параметров в оценке прогноза заболевания у больных раком желудка на ранних стадиях. Онкология. Журнал им. П.А. Герцена. 2023;(4):78-85

Роль микроРНК в норме и при патологии эндометрия. Российский вестник акушера-гинеколога. 2023;(4):27-34

Особенности аминокислотного профиля фолликулярной жидкости у пациенток после COVID-19. Проблемы репродукции. 2023;(5):25-36

Васкулогенная мимикрия. Архив патологии. 2023;(6):62-69

Определение прогностической значимости предсердного натрийуретического пептида у кардиохирургических пациентов. Анестезиология и реаниматология. 2023;(6):36-42

В настоящее время механизм, ведущий к развитию дисфункции слезной железы (СЖ), до конца не изучен. При заболеваниях, ассоциированных с поражением СЖ (синдром Шегрена, саркоидоз, IgG4-связанное заболевание и др.), выявлены повышенный клеточный апоптоз, продукция аутоантител к железистой ткани, увеличение уровней провоспалительных цитокинов, нарушения в работе сигнальных молекул, приводящие к изменению слезопродукции. Сложности в проведении дифференциальной диагностики дисфункции СЖ при вышеперечисленных заболеваниях обусловлены, с одной стороны, сходностью клинической картины офтальмологических проявлений, а с другой — трудностью морфологической интерпретации изменений в ткани железы. В этом аспекте перспективным диагностическим и прогностическим маркером, необходимым для проведения дифференциальной диагностики и определения последующей тактики лечения, может служить микроРНК. Методы молекулярного профилирования и выявление «молекулярных фенотипов» повреждения СЖ и глазной поверхности дадут возможность использовать их в качестве потенциальных биомаркеров и прогностических факторов для персонифицированной терапии.

Ключевые слова:

хронический неспецифический дакриоаденит

синдром Шегрена

саркоидоз

IgG4-связанное заболевание

микроРНК

биомаркеры

Авторы:

Сафонова Т.Н.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней им. М.М. Краснова»

ORCID: 0000-0002-4601-0904

Зайцева Г.В.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней им М.М. Краснова»

ORCID: 0000-0001-8575-3076

Бурденный А.М.

ФГБНУ «НИИ общей патологии и патофизиологии»

ORCID: 0000-0002-9398-8075

Дата поступления:

16.09.2022

Дата принятия в печать:

17.10.2022

Список литературы:

Сафонова Т.Н., Патеюк Л.С. Система глазной поверхности. Вестник офтальмологии. 2015;131(1):96-103. https://doi.org/10.17116/oftalma2015131196-102
Craig JP, Nelson JD, Azar DT, et al., TFOS DEWS II Report Executive Summary. Ocul Surf. 2017;15(4):802-812. https://doi.org/10.1016/j.jtos.2017.08.003
Singh S, Selva D. Non-infectious Dacryoadenitis. Surv Ophthalmol. 2022; 67(2):353-368. https://doi.org/10.1016/j.survophthal.2021.05.011
Bikbov MM, Kazakbaeva GM, Rakhimova EM, Rusakova IA, Fakhretdinova AA, Tuliakova AM, et al. The prevalence of dry eye in a very old population. Acta Ophthalmol. 2022;100(3):262-268. Epub 2021 Jun 14. https://doi.org/10.1111/aos.14937
Schuh JCL. Mucosa-Associated Lymphoid Tissue and Tertiary Lymphoid Structures of the Eye and Ear in Laboratory Animals. Toxicol Pathol. 2021; 49(3):472-482. https://doi.org/10.1177/0192623320970448
Liu Y, Zhu R, Jin X, Wang Y, Shi Y, Zhang N, Wang J, Dong Y, Zhang H. Activation of Conjunctiva-Associated Lymphoid Tissue in Patients with Infectious Keratitis Using In Vivo Confocal Microscopy. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2021;62(10):27. https://doi.org/10.1167/iovs.62.10
Hsu CR, Chen YY, Yao M, Wei YH, Hsieh YT, Liao SL. Orbital and ocular adnexal lymphoma: a review of epidemiology and prognostic factors in Taiwan. Eye (Lond). 2021;35(7):1946-1953. https://doi.org/10.1038/s41433-020-01198-y
Oya Y, Kimura S, Nakamura Y, Ishihara N, Takano S, Morita R, Endo M, Hase K. Characterization of M Cells in Tear Duct-Associated Lymphoid Tissue of Mice: A Potential Role in Immunosurveillance on the Ocular Surface. Front Immunol. 2021;22(12):779709. https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.779709
Kugadas A, Wright Q, Geddes-McAlister J, Gadjeva M. Role of Microbiota in Strengthening Ocular Mucosal Barrier Function Through Secretory IgA. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2017;58(11):4593-4600. https://doi.org/10.1167/iovs.17-22119
Yang K, Kallies A. Tissue-specific differentiation of CD8+ resident memory T cells. Trends Immunol. 2021;42(10):876-890. https://doi.org/10.1016/j.it.2021.08.002
Ali MJ, Mulay K, Pujari A, Naik MN. Derangements of lacrimal drainage-associated lymphoid tissue (LDALT) in human chronic dacryocystitis. Ocul Immunol Inflamm. 2013;21(6):417-423. https://doi.org/10.3109/09273948.2013.797473
Ahn C, Kang S, Sa HS. Clinicopathologic features of biopsied lacrimal gland masses in 95 Korean patients. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2019;257(7): 1527-1533. https://doi.org/10.1007/s00417-019-04327-w
Ferry JA, Klepeis V, Sohani AR, Harris NL, Preffer FI, Stone JH, Grove A, Deshpande VSingh S, Selva D. Non-infectious Dacryoadenitis. Surv Ophthalmol. 2022;67(2):353-368. https://doi.org/10.1016/j.survophthal.2021.05.01
Ferry JA, Klepeis V, Sohani AR, Harris NL, Preffer FI, Stone JH, Grove A, Deshpande V. IgG4-related Orbital Disease and Its Mimics in a Western Population. Am J Surg Pathol. 2015;39(12):1688-1700. https://doi.org/10.1097/PAS.0000000000000497
Roca M, Moro G, Broseta R, Roca B. Sarcoidosis presenting with acute dacryoadenitis. Postgrad Med. 2018;130(2):284-286. https://doi.org/10.1080/00325481.2018.1418141
Go H, Kim JE, Kim YA, et al. Ocular adnexal IgG4-related disease: comparative analysis with mucosa-associated lymphoid tissue lymphoma and other chronic inflammatory conditions. Histopathology. 2012;60:296-312. https://doi.org/10.1111/j.1365-2559.2011.04089.x
Sa HS, Lee JH, Woo KI, Kim YD. IgG4-related disease in idiopathic sclerosing orbital inflammation. Br J Ophthalmol. 2015;99(11):1493-1497. https://doi.org/10.1136/bjophthalmol-2014-305528
Xin Y, Xu XL, Li Y, Ding JW, Li DM. Clinical histopathologic characteristics of lacrimal glands in lacrimal gland prolapse with blepharochalasis. Zhonghua Yan Ke Za Zhi. 2020;56(3):205-210. (In Chinese.). https://doi.org/10.3760/cma.j.issn.0412-4081.2020.03.008
Aure MR, Vitelli V, Jernström S, Kumar S, Krohn M. Integrative clustering reveals a novel split in the luminal A subtype of breast cancer with impact on outcome. Breast Cancer Res. 2017;19(1):44. https://doi.org/10.1186/s13058-017-0812-y
Kim KC, Yun J, Son DJ, Kim JY, Jung JK, Choi JS, Kim YR, Song JK, Kim SY, Kang SK, Shin DH, Roh YS, Han SB, Hong JT. Suppression of metastasis through inhibition of chitinase 3-like 1 expression by miR-125a-3p-mediated up-regulation of USF1. Theranostics. 2018;8(16):4409-4428. https://doi.org/10.7150/thno.26467
Wang J, Chen J, Sen S. MicroRNA as biomarkers and diagnostics. J Cell Physiol. 2016;23:25-30. https://doi.org/21.10.1002/jcp.25056
Tang X, Tang J, Liu X, et al. Downregulation of miR-129-2 by promoter hypermethylation regulates breast cancer cell proliferation and apoptosis. Oncol Rep. 2016;35(5):2963-2969. https://doi.org/10.3892/or.2016.4647
McGuire A, Brown JA, Kerin MJ. Metastatic breast cancer: the potential of miRNA for diagnosis and treatment monitoring. Cancer Metastasis Rev. 2015;4:145-155. https://doi.org/10.1007/s10555-015-9551-7
Malan-Müller S, Hemmings SM. The Big Role of Small RNAs in Anxiety and Stress-Related Disorders. Vitam Horm. 2017;103:85-129. https://doi.org/10.1016/bs.vh.2016.08.00
Guo L, Lu Z. The fate of miRNA strand through evolutionary analysis: Implication for degradation as merely carrier strand or potential regulatory molecule? PLoS ONE. 2010;5(6):e11387. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0011387
Nabih A, Sobotka JA, Wu MZ, Wedeles CJ, Claycomb JM. Examining the intersection between splicing, nuclear export and small RNA pathways. Acta Gen Subj. 2017;1861(11):2948-2955. https://doi.org/10.1016/j.bbagen.2017.05.027
Sin C, Chiarugi D, Valleriani A. Single-molecule modeling of mRNA degradation by miRNA: Lessons from data. BMC Syst Biol. 2015;9(3):2. https://doi.org/10.1186/1752-0509-9-S3-S2
Wu PH, Zamore PD. To Degrade a MicroRNA, Destroy Its Argonaute Protein. Mol Cell. 2021;81(2):223-225. https://doi.org/10.1016/j.molcel.2020.12.043
Liu Q, Novak MK, Pepin RM, Eich T, Hu W. microRNA-mediated regulation of microRNA machinery controls cell fate decisions. Elife. 2021;10: 722-789. https://doi.org/10.7554/eLife.72289
Bedewy AML, Elmaghraby SM, Shehata AA, Kandil NS. Prognostic Value of miRNA-155 Expression in B-Cell Non-Hodgkin Lymphoma. Turk J Haematol. 2017;34(3):207-212. https://doi.org/10.4274/tjh.2016.0286
Hawke DC, Watson AJ, Betts DH. Extracellular vesicles, microRNA and the preimplantation embryo: non-invasive clues of embryo well-being. Reprod Biomed Online. 2021;42(1):39-54. https://doi.org/10.1016/j.rbmo.2020.11.011
Al-Kafaji G, Said HM, Alam MA, Al Naieb ZT. Blood-based microRNAs as diagnostic biomarkers to discriminate localized prostate cancer from benign prostatic hyperplasia and allow cancer-risk stratification. Oncol Lett. 2018;16(1):1357-1365. https://doi.org/10.3892/ol.2018.8778
Nielsen LB, Wang C, Sorensen K, Bang-Berthelsen CH, Hansen L, Andersen ML, Hougaard P, Juul A, Zhang CY, Pociot F, Mortensen HB Circulating levels of microRNA from children with newly diagnosed type 1 diabetes and healthy controls: evidence that miR-25 associates to residual beta-cell function and glycaemic control during disease progression. Exp Diabetes Res. 2012;89(6)362. https://doi.org/33.10.1155/2012/896362
Koopaie M, Manifar S, Lahiji SS. Assessment of MicroRNA-15a and MicroRNA-16-1 Salivary Level in Oral Squamous Cell Carcinoma Patients. Microrna. 2021;10(1):74-79. https://doi.org/10.2174/2211536610666210506125036
Kontomanolis EN, Kalagasidou S, Fasoulakis Z. MicroRNAs as Potential Serum Biomarkers for Early Detection of Ectopic Pregnancy. Cureus. 2018; 10(3):2344. https://doi.org/10.7759/cureus.2344
Church RJ, Kullak-Ublick GA, Aubrecht J, Bonkovsky HL, Chalasani N, Fontana RJ, Goepfert JC. Candidate biomarkers for the diagnosis and prognosis of drug-induced liver injury: An international collaborative effort. Hepatology. 2019;69(2):760-773. https://doi.org/10.1002/hep.29802
Yamaura Y, Tatsumi N, Takagi S, Tokumitsu S, Fukami T, Tajiri K, Minemura M, Yokoi T, Nakajima M. Serum microRNA profiles in patients with chronic hepatitis B, chronic hepatitis C, primary biliary cirrhosis, autoimmune hepatitis, nonalcoholic steatohepatitis, or drug-induced liver injury. Clin Biochem. 2017;50(18):1034-1039. https://doi.org/10.1016/j.clinbiochem.2017.08.010
Magayr TA, Song X, Streets AJ, Vergoz L, Chang L, Valluru MK, Yap HL, Lannoy M, Haghighi A, Simms RJ, Tam FWK, Pei Y. Global microRNA profiling in human urinary exosomes reveals novel disease biomarkers and cellular pathways for autosomal dominant polycystic kidney disease. Kidney Int. 2020;98(2):420-435. https://doi.org/10.1016/j.kint.2020.02.008
Alamdari-Palangi V, Vahedi F, Shabaninejad Z, Dokeneheifard S, Movehedpour A, Taheri-Anganeh M, Savardashtaki A. microRNA in inflammatory bowel disease at a glance. Eur J Gastroenterol Hepatol. 2021;32(2):140-148. https://doi.org/10.1097/MEG.0000000000001815
Mirzaei R, Zamani F, Hajibaba M, Rasouli-Saravani A, Noroozbeygi M, Gorgani M, Hosseini-Fard SR, Jalalifar S, Ajdarkosh H, Abedi SH, Keyvani H, Karampoor S. The pathogenic, therapeutic and diagnostic role of exosomal microRNA in the autoimmune diseases. J Neuroimmunol. 2021; 15;358:577640. https://doi.org/10.1016/j.jneuroim.2021.577640
Rassi DM, De Paiva CS, Dias LC, Módulo CM, Adriano L, Fantucci MZ, Rocha EM. Review: MicroRNAS in ocular surface and dry eye diseases. Ocul Surf. 2017;15(4):660-669. https://doi.org/10.1016/j.jtos.2017.05.007
Humphries B, Yang C. The microRNA-200 family: small molecules with novel roles in cancer development, progression and therapy. Oncotarget. 2015;(6):6472-6498. https://doi.org/10.18632/oncotarget.3052
Liu F, Wang L, Fu JL, Xiao Y, Gong X, Liu Y, Nie Q, Xiang JW, Yang L, Chen Z, Liu Y, Li DW. Analysis of Non-Sumoylated and Sumoylated Isoforms of Pax-6, the Master Regulator for Eye and Brain Development in Ocular Cell Lines. Curr Mol Med. 2018;18(8):566-573. https://doi.org/10.2174/1566524019666190111153310
Cui SY, Wang R, Chen LB. MicroRNA-145: a potent tumour suppressor that regulates multiple cellular pathways. J Cell Mol Med. 2014;18(10):1913-1926. https://doi.org/10.1111/jcmm.12358J
Wang F, Gao Y, Yuan Y, Du R, Li P, Liu F, Tian Y, Wang Y, Zhang R, Zhao B, Wang C. MicroRNA-31 Can Positively Regulate the Proliferation, Differentiation and Migration of Keratinocytes. Biomed Hub. 2020;5(2):93-104. https://doi.org/10.1159/00050861
Nagosa S, Leesch F, Putin D, Bhattacharya S, Altshuler A, Serror L, Amitai-Lange A, Nasser W, Aberdam E, Rouleau M, Tattikota SG, Poy MN, Aberdam D, Shalom-Feuerstein R. microRNA-184 Induces a Commitment Switch to Epidermal Differentiation. Stem Cell Reports. 2017;12;9(6):1991-2004. https://doi.org/10.1016/j.stemcr.2017.10.03
Andreasen S, Tan Q, Agander TK, Steiner P, Bjørndal K, Høgdall E, et al. Adenoid cystic carcinomas of the salivary gland, lacrimal gland, and breast are morphologically and genetically similar but have distinct microRNA expression profiles. Mod Pathol. 2018;31(8):1211-1225. https://doi.org/10.1038/s41379-018-0005-y
Hother C, Rasmussen PK, Joshi T, Reker D, Ralfkiær U, Workman CT, Heegaard S, Ralfkiær E, Grønbæk K. MicroRNA profiling in ocular adnexal lymphoma: a role for MYC and NFKB1 mediated dysregulation of microRNA expression in aggressive disease. Invest Ophthalmol. 2013;54(8):5169-5175. https://doi.org/10.1167/iovs.13-12272
Yan T, Shen J, Chen J, Zhao M, Guo H, Wang Y. Differential expression of miR-17-92 cluster among varying histological stages of minor salivary gland in patients with primary Sjogren’s syndrome. Clin Exp Rheumatol. 2019; 18(3):49-54.
Arger NK, O’Connor B, Koth LL. Molecular profiling in sarcoidosis. Curr Opin Pulm Med. 2020;26(5):562-567. https://doi.org/10.1097/MCP.0000000000000716
Nezu N, Usui Y, Asakage M, Shimizu H, Tsubota K, Narimatsu A, et al. Distinctive Tissue and Serum MicroRNA Profile of IgG4-Related Ophthalmic Disease and MALT Lymphoma. J Clin Med. 2020;9(8):2530. https://doi.org/10.3390/jcm9082530

Закрыть метаданные