Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Труфанов С.В.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней»

Шахбазян Н.П.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России

Зайцев А.В.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней»

Розинова В.Н.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней»

Хирургические методы лечения инфекционных кератитов

Авторы:

Труфанов С.В., Шахбазян Н.П., Зайцев А.В., Розинова В.Н.

Подробнее об авторах

Журнал: Вестник офтальмологии. 2021;137(4): 128‑135

Прочитано: 5559 раз


Как цитировать:

Труфанов С.В., Шахбазян Н.П., Зайцев А.В., Розинова В.Н. Хирургические методы лечения инфекционных кератитов. Вестник офтальмологии. 2021;137(4):128‑135.
Trufanov SV, Shakhbazyan NP, Zaitsev AV, Rozinova VN. Surgical management of infectious keratitis. Russian Annals of Ophthalmology. 2021;137(4):128‑135. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/oftalma2021137041128

Рекомендуем статьи по данной теме:

Инфекционный кератит является одной из наиболее распространенных причин слепоты во всем мире [1, 2]. Несмотря на наличие широкого арсенала достаточно эффективных местных антимикробных лекарственных средств, существуют резистентные формы бактериальных и вирусных кератитов. Развитые стадии акантамебного и грибкового поражения роговицы, а также смешанные формы инфекции обычно плохо поддаются консервативному лечению [3—5]. Действующие антимикробные вещества и консерванты, входящие в состав препаратов, применяемых местно в виде глазных капель и мазей, часто бывают токсичны, особенно при длительном использовании, и препятствуют регенерации роговицы [6]. Выраженный иммунный ответ также может способствовать прогрессирующему разрушению роговичной ткани. В таких случаях при дальнейшем развитии микробного процесса существует риск перфорации роговицы, распространения инфекции на склеру или глубжележащие структуры глаза с высокой вероятностью необратимых функциональных нарушений или анатомической гибели глаза.

Таким образом, при отсутствии эффекта от проводимой медикаментозной терапии, прогрессировании патологического процесса необходим своевременный переход к оперативному вмешательству.

Основная цель хирургического лечения — сохранение структурной целостности глазного яблока и купирование инфекционного процесса. Согласно данным литературы, неотложную операцию приходится выполнять в 7,5% случаев при бактериальных кератитах, в 12—38% — при грибковых, в 7—28% — при акантамебных [7—11].

Кросслинкинг роговицы

Кросслинкинг роговицы (CXL) на сегодняшний день широко и успешно используется при прогрессирующих кератэктазиях. Еще одно направление его эффективного применения — микробные кератиты. Известен и ряд других патологических изменений роговицы, при которых возможно использование данного метода [12—15]. Антибактериальный эффект CXL объясняется как действием рибофлавина, так и влиянием ультрафиолетового излучения. При фотоактивации рибофлавина высвобождаются активные формы кислорода, воздействующие на нуклеиновые кислоты (ДНК и РНК) и клеточные мембраны микроорганизмов. Ультрафиолетовое излучение, в свою очередь, также обладает выраженным антимикробным действием, повреждая ДНК и РНК микроорганизмов и препятствуя их размножению. Кроме того, за счет увеличения количества ковалентных связей межклеточного матрикса при CXL повышается устойчивость стромы к воздействию протеолитических ферментов [16—20].

P. Iseli и соавт. [21] в 2008 г. провели первое клиническое исследование применения CXL в лечении инфекционных кератитов различной этиологии. Включенные в данное исследование пациенты в дальнейшем не нуждались в экстренной кератопластике.

На 9-м Международном конгрессе по кросслинкингу роговицы (9th International Congress of Corneal Cross-Linking) в 2013 г. была предложена новая терминология, касающаяся применения CXL при инфекционных кератитах, — PACK-CXL (Photo-Activated Chromophore for Keratitis — Corneal Cross-Linking) [22]. Применение PACK-CXL в лечении инфекционных кератитов возможно как в качестве первой линии лечения, так и в случаях, резистентных к консервативной терапии. В 2011 г. K. Makdoumi и соавт. [23] в проспективном нерандомизированном клиническом исследовании эффективно лечили таким методом пациентов с бактериальным кератитом, которые ранее не получали антибактериальную терапию. Согласно исследованию, проведенному L. Papaioannou и соавт. [24], PACK-CXL дает хорошие результаты при лечении бактериальных кератитов, плохо поддающихся медикаментозному лечению. Купировать патологический процесс удалось в среднем в 88% случаев.

Данные о применении PACK-CXL в лечении грибкового и акантамебного кератита довольно противоречивы. Так, Y.A. Khan и соавт. [25] и L. Garduño-Vieyra и соавт. [26] сообщают об успешном применении PACK-CXL в лечении акантамебного кератита, рефрактерного к традиционным методам терапии. При кератитах грибковой этиологии показатель выздоровления может достигать 78%, при акантамебном кератите положительный эффект отмечен в 10 из 11 случаев, однако пятерым пациентам в дальнейшем потребовалось повторное лечение [24]. Но есть сообщения и о неспособности PACK-CXL уничтожить Acanthamoeba, как in vivo, так и in vitro в качестве монотерапии или в комбинации с медикаментозным лечением [27, 28]. Также есть сведения об отсутствии влияния PACK-CXL на цистную и трофозоидную формы Acanthamoeba [29, 30]. Герпетические кератиты являются противопоказанием к выполнению PACK-CXL [24].

Помимо возбудителя инфекционного процесса на эффективность проведения процедуры существенное влияние оказывает глубина расположения инфильтрата. Так, известно, что глубина воздействия CXL составляет 250—300 мкм, при этом 50% энергии поглощается в первых 100 мкм ткани роговицы [31]. Возможные осложнения, развивающиеся после проведения процедуры PACK-CXL, проявляются в виде усиления конъюнктивальной инъекции, опалесценции влаги передней камеры, появления или увеличения уровня гипопиона. Описаны случаи прогрессирования микробного кератита, включающие перфорацию роговицы или обострение герпетического кератита. При глубоких язвах существует потенциальный риск потери эндотелиальных клеток и усиления отека роговицы.

Микродиатермокоагуляция

Простым, доступным в амбулаторных условиях подходом в лечении инфекционных кератитов герпетической, бактериальной, грибковой и смешанной этиологии является метод микродиатермокоагуляции. За счет коагуляции зоны инфильтрации и механического удаления образованного детрита с раневой поверхности удается добиться эрадикации инфекции с ускорением регенерации поврежденного участка роговицы [32, 33].

Микродиатермокоагуляция оказалась эффективной и безопасной в лечении периферических и парацентральных поверхностных инфильтратов и язв передних слоев стромы роговицы. Также метод может быть применен и при длительно текущих процессах в центральной зоне роговицы, когда формирование помутнения неизбежно. При глубоких язвах и инфильтратах, резистентных к консервативному лечению, метод следует применять с крайней осторожностью, учитывая риск вероятной перфорации. Этот риск может быть оправдан, когда имеется возможность выполнить ургентную кератопластику в случае перфорации. При диатермокоагуляции глубоких язв и инфильтратов для стимуляции процессов регенерации целесообразно сочетание метода с аутоконъюнктивопластикой зоны поражения либо с покрытием роговицы реципиента корнеосклеральным лоскутом [32, 33].

Разновидностью диатермокоагуляции является фульгурация, основанная на бесконтактном равномерном воздействии на ткань пучком плазмы, формируемой током высокой частоты. В процессе процедуры физического контакта активного электрода с тканью оперируемого участка не происходит. Патологически измененная ткань подвергается термическому воздействию пучком плазмы более поверхностно, нежели при обычной коагуляции, что предотвращает воздействие на глубжележащие ткани, способствуя менее выраженному рубцеванию. В ФГБНУ «НИИ глазных болезней» предложен способ лечения рефрактерных кератитов с изъязвлением комбинацией методов PACK-CXL и фульгурации. Так, согласно предварительным результатам проведенного исследования, предложенная комбинация хирургических методов для лечения фармакорезистентной формы акантамебного кератита показала эффективность в 60% случаев.

Тканевые клеи

В современной офтальмологической практике наиболее часто применяются и промышленно производятся три вида клеев: синтетические — цианоакрилатный и полиэтиленгликолевый (ПЭГ), а также биологический — фибриновый. Цианоакрилат обладает высокой прочностью на растяжение, быстро полимеризуется при контакте с любой жидкостью, но может быть более токсичным в сравнении с другими вышеупомянутыми формами, особенно в обильно васкуляризированных тканях. Фибриновый клей является биосовместимым и биодеградируемым и, таким образом, менее токсичен и вызывает меньшую воспалительную реакцию. Кроме того, можно контролировать время его полимеризации, так как скорость реакции определяется концентрацией тромбина. Тем не менее исследования прочности на растяжение показали, что фибриновый клей не так прочен, как цианоакрилат, и меньше подходит для лечения перфораций роговицы [34]. Также недостатками фибринового клея являются риск передачи трансмиссивных заболеваний и его дороговизна [35]. ПЭГ-клей работает за счет связывания ПЭГ-полиэфиров с тканевыми белками. Этот клей нетоксичен и относительно прочен [36]. ПЭГ-клей медицинского назначения в России на сегодняшний день недоступен.

Синтетический цианоакрилатный клей применяется в офтальмологии с 60-х годов прошлого столетия. Его использовали для лечения глубоких язв и перфораций, пластики фильтрационных подушек, окклюзии слезных точек, для кожных лоскутов в окулопластике, временной тарзоррафии и ряде других ситуаций [37].

В то время полимерный клей имел короткую углеродную формулу, быстро распадался на цианоацетат и формальдегид, был достаточно токсичным и накапливался в тканях [38]. Современные цианоакрилатные клеи имеют более сложный химический состав, лучше биосовместимы. Они представляют собой мономеры, которые затвердевают, полимеризуясь при контакте с водой или слабым основанием. Основа цианоакрилатных клеев — эфиры альфа-цианакриловой кислоты. Достаточно длинные алкильные цепи имеющихся в настоящее время клеев (до 10 атомов углерода) значительно замедляют их деградацию, ограничивая накопление токсичных побочных продуктов [37—39].

Считается, что цианоакрилатный клей может подавлять прогрессирующий лизис стромы в зоне изъязвления за счет ингибирования полиморфноядерных лейкоцитов, обладающих выраженной коллагенолитической и протеолитической активностью [40]. Кроме того, одним из преимуществ цианоакрилатного клея является его способность проявлять бактериостатическую активность, главным образом, против грамположительных микроорганизмов [41].

Показаниями к применению цианоакрилатного клея для лечения роговицы считаются перфорации, обычно не превышающие 2—3 мм в диаметре, и десцеметоцеле различной этиологии. При перфорации большего диаметра существует риск попадания клея в переднюю камеру, его токсического влияния на эндотелий и хрусталик при непосредственном контакте с этими структурами, формирования задних и передних синехий [42, 43]. При таких перфорациях вместе с клеем могут быть использованы амниотическая мембрана, фрагменты склеры, синтетические ткани [44]. Считается, что фиброзная ткань с прорастанием сосудов формируется в роговице под клеевым сгустком, постепенно вытесняя и фрагментируя его. Некоторые авторы рекомендуют удалять остаток клея через 4—6 нед для уменьшения риска инфекционных осложнений [37—44].

Трансплантация амниотической мембраны

Трансплантация амниотической мембраны (АМ) является одним из эффективных методов, связанных с ускорением процесса регенерации при заживлении ран. Первое упоминание принадлежит J. Davis (1910), который использовал АМ во время трансплантации кожи. В 1940 г. трансплантация AM была с успехом выполнена при лечении персистирующих язв роговицы [45]. АМ содержит высокоорганизованный коллаген, противовоспалительные цитокины, иммуномодуляторы, факторы роста и матриксные белки, обладает противовоспалительными, антиангиогенными, иммуномодулирующими, антибактериальными свойствами. Она низко иммуногенна, способна предотвращать процессы грубого рубцевания. Трансплантация АМ улучшает заживление дефектов эпителия, поскольку АМ служит базальной мембраной для роста эпителиальных клеток, а также обеспечивает растущий эпителий факторами роста и цитокинами, которые стимулируют адгезию клеток, дифференцировку и подавляют апоптоз в кератоцитах [46]. В офтальмологии АМ используется для реконструкции переднего отрезка глаза, включая лечение стойких дефектов эпителия, рецидивирующих эрозий и незаживающих язв роговицы, перфораций, десцеметоцеле, буллезной кератопатии, а также нарушений роговицы, ассоциированных с дефицитом лимбальных стволовых клеток, птеригиума, реконструкций конъюнктивы, при антиглаукоматозных операциях. В лечении инфекционных язв роговицы в зависимости от глубины поражения возможно применение как однослойного, так и многослойного трансплантата. Для фиксации могут быть использованы либо швы, либо фибриновый клей. АМ постепенно интегрируется в роговичную ткань [46—48]. Считается, что при лечении инфекционных язв в дополнение к продолжающемуся противомикробному консервативному лечению трансплантация АМ способна уменьшить боль, воспаление, обеспечить эпителизацию роговичного дефекта. Тем не менее некоторые авторы не рекомендуют применять трансплантацию АМ на фоне выраженной инфильтрации роговицы [48]. В таких случаях возможно сочетание трансплантации АМ и микродиатермокоагуляции.

Аутоконъюнктивопластика роговицы

Аутоконъюнктивальная пластика — простой и эффективный способ лечения прогрессирующих язв роговицы, особенно периферической локализации. Первые описания метода, сделанные H. Scholer, датированы 1877 г., позднее подобные описания встречаются в работе H. Kuhnt. В 1958 г. T. Gundersen усовершенствовал и популяризировал аутоконъюнктивальную пластику. Существует несколько разновидностей техники операции. При глубоких язвах лоскут может включать в свой состав и тенонову оболочку.

B.E. Abdulhalim и соавт. [49] в большом проспективном рандомизированном исследовании сравнили результаты пластики роговичного дефекта аутоконъюнктивой на двух ножках и трансплантации АМ в лечении резистентных к медикаментозной терапии невирусных инфекционных кератитов (бактериальных, грибковых и акантамебных). Эффективность обоих хирургических методов была сравнимой и достигала 90%. Аутоконъюнктивальный лоскут является для язвенного дефекта источником кровеносных и лимфатических сосудов, что позволяет локально усилить воздействие клеточного и гуморального иммунитета, транспортировать питательные вещества к поверхности роговицы, уменьшить уровень местных провоспалительных медиаторов и протеаз, обеспечить зону поражения факторами роста, необходимыми для адекватной регенерации. Аутоконъюнктивальная пластика роговицы чаще применяется при герпетических язвах роговицы, нейротрофической кератопатии, тяжелых краевых аутоиммунных язвах и химических ожогах, реже — при резистентных бактериальных и грибковых изъязвлениях [50]. В последних случаях для снижения риска прогрессирования инфекции под конъюнктивальным лоскутом и более быстрого заживления целесообразно перед его шовной фиксацией произвести удаление некротической и инфицированной ткани роговицы. Это может быть успешно выполнено также посредством диатермокоагуляции. Как возможные осложнения аутоконъюнктивопластики описываются ретракция лоскута (его сползание с зоны дефекта) и прогрессирование инфекции под ним [51].

Покрытие роговицы корнеосклеральным трансплантатом

Лечение инфекционных кератитов послойным донорским корнеосклеральным трансплантатом (метод Н.А. Пучковской) в качестве покрытия пораженной роговицы способствует стабилизации патологического процесса и стимулирует регенерацию роговичной ткани [52]. В отличие от аутоконъюнктивальной пластики метод позволяет сохранить собственную конъюнктиву пациента интактной. Он чаще используется при центральных поражениях. Для его выполнения необходим консервированный корнеосклеральный лоскут донора, который позволяет, пусть и недостаточно четко, контролировать течение патологического процесса под ним. Качество эндотелиального слоя донорского лоскута при проведении таких операций не имеет значения. Для длительного хранения лоскута можно использовать метод высушивания на силикогеле либо криоконсервацию. Обычно приготовленную таким образом ткань фиксируют 4—6 узловыми швами к эписклере трансконъюнктивально. Как и при аутоконъюнктивальной пластике, целесообразно сочетанное проведение диатермокоагуляции зоны инфильтрации. В среднем лоскут удерживается на роговице реципиента 2—4 мес, постепенно частично рассасываясь, и в дальнейшем должен быть удален.

Лечебная кератопластика

Наиболее радикальный метод борьбы с инфекционным кератитом — выполнение лечебной сквозной или послойной кератопластики.

Лечебная кератопластика — неотложное органосохраняющее хирургическое вмешательство, основной целью которого является иссечение инфекционного очага роговицы и ее восстановление за счет трансплантации донорской роговичной ткани [53]. Согласно данным глазных банков за 2016 г., 20% всех трансплантаций роговицы были выполнены по поводу инфекционного кератита; инфекционные кератиты стали ведущим показанием к кератопластике в 24% стран [54]. Абсолютным показанием к проведению лечебной кератопластики является прогрессирование инфекционного процесса с риском развития эндофтальмита, прогрессирующее изъязвление с угрозой перфорации, десцеметоцеле или перфорация. Однако каждая методика кератопластики имеет свои показания, решающим фактором является глубина и площадь поражения. При выполнении лечебной кератопластики необходимо наиболее полное удаление инфицированной ткани, что возможно в большинстве случаев бактериального кератита. Однако в случаях грибковых или акантамебных поражений иссечь всю инфицированную область полностью часто оказывается невозможно. Таким образом, кератопластика в этих условиях выполняется для ослабления «инфекционной нагрузки», позволяя антимикробным препаратам действовать более эффективно [55]. По данным разных источников, успешность проведения кератопластики в борьбе с бактериальным кератитом составляет свыше 90%. N. Sharma и соавт. [55] оценили результаты лечебной сквозной кератопластики, выполненной по поводу инфекционного кератита на 506 глазах при прогрессирующем поражении роговицы с перфорацией и без нее. Органосохраняющий эффект был достигнут на 454 глазах (89,7%), при этом у пациентов с бактериальным кератитом — в 94% случаев, с грибковым кератитом — в 89%, при выявлении кератита смешанного генеза показатель успешности составил 71%. При этом острота зрения выше 0,1 была получена только у 15% прооперированных. Считается, что лечебный эффект операции при бактериальном кератите достигается в 90—100% случаев, при грибковом — в 69—90%, при акантамебном — в 45—81%. Процент прозрачного приживления трансплантата при длительном наблюдении существенно ниже [56]. Также было определено, что при использовании трансплантата меньше 9 мм результаты оказались лучше, чем при использовании более крупных трансплантатов (9—11 мм; больше 11 мм) [57]. Ряд авторов считают, что сквозная кератопластика обеспечивает лучшую санацию, чем послойная. Несмотря на то что сквозная кератопластика остается «золотым стандартом» в лечении фармакорезистентных форм инфекционного кератита, послойная кератопластика все чаще используется в лечении поверхностных инфекций. W. Shi и соавт. [58] опубликовали результаты проведенного исследования, где пациентам с грибковым кератитом, устойчивым к этиотропной терапии, выполняли послойную пересадку. Купирование грибковой инфекции было достигнуто у 64 (94%) пациентов, в 4 случаях (6%) отмечали рецидивы. E. Sarnicola и соавт. [59] выполняли переднюю послойную кератопластику на 11 глазах с акантамебным кератитом, при этом не отмечали ни рецидивов инфекционного процесса, ни отторжения кератотрансплантата. A. Anshu и соавт. [60] сравнили терапевтический эффект лечебной послойной и сквозной кератопластики. В исследование было включено 126 глаз с фармакорезистентным инфекционным кератитом бактериальной, грибковой и акантамебной этиологии. Купирование инфекционного процесса при выполнении лечебной послойной кератопластики было достигнуто в 84,6% случаев, в группе сквозной кератопластики — в 88%. Авторы пришли к выводу, что послойная кератопластика может обеспечить аналогичный лечебный эффект. При этом риск послеоперационных осложнений, включая реакцию тканевой несовместимости, будет существенно меньше [58—60].

В послеоперационном периоде вышеперечисленных методов лечения инфекционных кератитов необходимо продолжение этиотропной терапии, длительность которой должна определяться индивидуально. В большинстве случаев целесообразным считается назначение стероидов местно (после кератопластики — обязательно) и нестероидных противовоспалительных препаратов, которые могут применяться как системно, так и местно. Одним из высокоэффективных нестероидных противовоспалительных препаратов в глазной форме является индоколлир (действующее вещество — индометацин). Гидрофобная молекула индометацина в этом препарате окружена гидрофобным циклодекстрином, обеспечивающим необходимое проникновение в переднюю камеру и уменьшающим побочные реакции. Также для улучшения регенерации роговицы обычно назначается гель с дексапантенолом и слезозаместители.

Заключение

Тяжелые прогрессирующие формы инфекционного кератита часто сопряжены с риском нарушения структурной целостности глазного яблока и развитием эндофтальмита. При отсутствии положительной динамики на фоне консервативной этиотропной терапии целесообразно использовать хирургические методы, которые должны быть адаптированы к каждому конкретному случаю. Выбор метода должен зависеть от этиологии, размера и глубины поражения, его локализации, зрительного прогноза, соматического статуса больного. Лечебная кератопластика — наиболее радикальный и эффективный способ оперативного вмешательства, позволяющий добиться максимальной эрадикации инфекционного очага и наиболее полно восстановить структурную целостность глазного яблока. Тем не менее в ряде случаев из-за недоступности донорского материала или высокого риска операции и непрозрачного приживления трансплантата целесообразно пользоваться альтернативными хирургическими подходами, а кератопластику при необходимости проводить в отдаленном «спокойном» периоде уже с оптической целью.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

The authors declare no conflicts of interest.

Литература / References:

  1. Raj A, Bahadur H, Dhasmana R. Outcome of therapeutic penetrating keratoplasty in advanced infectious keratitis. J Curr Ophthalmol. 2018;30(4): 315-332.  https://doi.org/10.1016/j.joco.2018.04.001
  2. Tuli S, Gray M. Surgical management of corneal infections. Curr Opin Ophthalmol. 2016;27(4):340-347.  https://doi.org/10.1097/ICU.0000000000000274
  3. Hernandez-Camarena JC, Graue-Hernandez EO, Ortiz-Casas M, Ramirez-MA, Navas A, Pedro-Aguilar L, Lopez-Espinosa NL, Gaona-Juarez C, Bautista-Hernandez LA, Bautista-de Lucio VM. Trends in Microbiological and Antibiotic Sensitivity Patterns in Infectious Keratitis: 10-Year Experience in Mexico City. Cornea. 2015;34(7):778-785.  https://doi.org/10.1097/ico.0000000000000428
  4. Duan R, de Vries RD, Osterhaus AD, Remeijer L, Verjans GM. Acyclovir-resistant corneal HSV-1 isolates from patients with herpetic keratitis. J Infect Dis. 2008;198(5):659-663.  https://doi.org/10.1086/590668
  5. Fernandes M, Vira D, Dey M, Tanzin T, Kumar N, Sharma S. Comparison Between Polymicrobial and Fungal Keratitis: Clinical Features, Risk Factors, and Outcome. Am J Ophthalmol. 2015;160(5):873-881.e2.  https://doi.org/10.1016/j.ajo.2015.07.028
  6. Pinheiro R, Panfil C, Schrage N, Dutescu RM. The Impact of Glaucoma Medications on Corneal Wound Healing. J Glaucoma. 2016;25(1):122-127.  https://doi.org/10.1097/IJG.0000000000000279
  7. Al-Shehri A, Jastaneiah S, Wagoner MD. Changing trends in the clinical course and outcome of bacterial keratitis at King Khaled Eye Specialist Hospital. Int Ophthalmol. 2009;29(3):143-152.  https://doi.org/10.1007/s10792-008-9206-6
  8. Pérez-Balbuena AL, Vanzzini-Rosano V, Valadéz-Virgen Jde J, Campos-Möller X. Fusarium keratitis in Mexico. Cornea. 2009;28(6):626-630.  https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e31819bc2ea
  9. Yuan X, Wilhelmus KR, Matoba AY, Alexandrakis G, Miller D, Huang AJ. Pathogenesis and outcome of Paecilomyces keratitis. Am J Ophthalmol. 2009; 147(4):691-696.  https://doi.org/10.1016/j.ajo.2008.11.016
  10. Manikandan P, Varga J, Kocsubé S, et al. Mycotic keratitis due to Aspergillus nomius. J Clin Microbiol. 2009;47(10):3382-3385. https://doi.org/10.1128/JCM.01051-09
  11. Por YM, Mehta JS, Chua JL. Acanthamoeba keratitis associated with contact lens wear in Singapore. Am J Ophthalmol. 2009;148(1):7-12.  https://doi.org/10.1016/j.ajo.2009.02.030
  12. Kolli S, Aslanides IM. Safety and efficacy of collagen crosslinking for the treatment of keratoconus. Expert Opin Drug Saf. 2010;9:949-957.  https://doi.org/10.1517/14740338.2010.495117
  13. Gkika M, Labiris G, Kozobolis V. Corneal collagen cross-linking using riboflavin and ultraviolet-A irradiation: A review of clinical and experimental studies. Int Ophthalmol. 2011;31:309-319.  https://doi.org/10.1007/s10792-011-9460-x
  14. Папанян С.С., Рикс И.А., Новиков С.А. Функциональная реабилитация пациентки с кератоконусом после коллагенового кросслинкинга с модифицированными параметрами. Офтальмологические ведомости. 2016;9(2):106-111.  https://doi.org/10.17816/OV92106-111
  15. Астахов С.Ю., Рикс И.А., Папанян С.С., Новиков С.А., Джалиашвили Г.З. О новом подходе к хирургическому лечению эндотелиальной дистрофии роговицы. Офтальмологические ведомости. 2018;11(1): 78-84.  https://doi.org/10.17816/OV11178-84
  16. Tsugita A, Okada Y, Uehara K. Photosensitized inactivation of ribonucleic acids in the presence of riboflavin. Biochim Biophys Acta. 1965;103(2): 360-363.  https://doi.org/10.1016/0005-2787(65)90182-6
  17. Goodrich RP, Edrich RA, Li J, Seghatchian J. The Mirasol PRT system for pathogen reduction of platelets and plasma: an overview of current status and future trends. Transfus Apher Sci. 2006;35(1):5-17.  https://doi.org/10.1016/j.transci.2006.01.007
  18. Marschner S, Goodrich R. Pathogen Reduction Technology Treatment of Platelets, Plasma and Whole Blood Using Riboflavin and UV Light. Transfus Med Hemother. 2011;38(1):8-18.  https://doi.org/10.1159/000324160
  19. Ruane PH, Edrich R, Gampp D, Keil SD, Leonard RL, Goodrich RP. Photochemical inactivation of selected viruses and bacteria in platelet concentrates using riboflavin and light. Transfusion. 2004;44:877-885.  https://doi.org/10.1111/j.1537-2995.2004.03355.x
  20. Reddy HL, Dayan AD, Cavagnaro J, Gad S, Li J, Goodrich RP. Toxicity testing of a novel riboflavin-based technology for pathogen reduction and white blood cell inactivation. Transfus Med Rev. 2008;22:133-153.  https://doi.org/10.1016/j.tmrv.2007.12.003
  21. Iseli HP, Thiel MA, Hafezi F, Kampmeier J, Seiler T. Ultraviolet A/riboflavin corneal cross-linking for infectious keratitis associated with corneal melts. Cornea. 2008;27:590-594.  https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e318169d698
  22. Hafezi F, Randleman B. PACK-CXL: defining CXL for infectious keratitis. J Refract Surg. 2014;30(7):438-439.  https://doi.org/10.3928/1081597X-20140609-01
  23. Makdoumi K, Mortensen J, Sorkhabi O, Malmvall BE, Crafoord S. UVA-riboflavin photochemical therapy of bacterial keratitis: a pilot study. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2012;250(1):95-102.  https://doi.org/10.1007/s00417-011-1754-1
  24. Papaioannou L, Miligkos M, Papathanassiou M. Corneal Collagen Cross-Linking for Infectious Keratitis: A Systematic Review and Meta-Analysis. Cornea. 2016;35(1):62-71.  https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000000644
  25. Khan YA, Kashiwabuchi RT, Martins SA, Castro-Combs JM, Kalyani S, Stanley P, Behrens A. Riboflavin and Ultraviolet Light A Therapy as an Adjuvant Treatment for Medically Refractive Acanthamoeba Keratitis. Ophthalmology. 2011;118(2):324-331.  https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2010.06.041
  26. Garduño-Vieyra L, Gonzalez-Sanchez CR, Hernandez-Da Mota SE. Ultraviolet-a light and riboflavin therapy for acanthamoeba keratitis: a case report. Case Rep Ophthalmol. 2011;2(2):291-295.  https://doi.org/10.1159/000331707
  27. Berra M, Galperin G, Boscaro G. Treatment of Acanthamoeba keratitis by corneal cross-linking. Cornea. 2013;32:174-178.  https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e31825cea99
  28. Del Buey MA, Cristobal JA, Casas P. Evaluation of in vitro efficacy of combined riboflavin and ultraviolet a for Acanthamoeba isolates. Am J Ophthalmol. 2012;153:399-404.  https://doi.org/10.1016/j.ajo.2011.07.025
  29. Lamy R, Chan E, Good SD, Cevallos V, Porco TC, Stewart JM. Riboflavin and ultraviolet A as adjuvant treatment against Acanthamoeba cysts. Clin Exp Ophthalmol. 2016;44:181-187.  https://doi.org/10.1111/ceo.12644
  30. Kashiwabuchi RT, Carvalho FR, Khan YA. Assessing efficacy of combined riboflavin and UV-A light (365 nm) treatment of Acanthamoeba trophozoites. Investig Ophthalmol Vis Sci. 2011;52:9333-9338. https://doi.org/10.1167/iovs.11-8382
  31. Price MO, Price FW. Corneal cross-linking in the treatment of corneal ulcers. Curr Opin Ophthalmol. 2016;27(3):250-255.  https://doi.org/10.1097/ICU.0000000000000248
  32. Каспарова Евг.А. Современные методы лечения гнойных язв роговицы. Вестник офтальмологии. 2016;132(5):125-135.  https://doi.org/10.17116/oftalma20161325125-135
  33. Каспарова Е.А., Зайцев А.В., Каспарова Евг.А., Марченко Н.Р. Сочетанное применение микродиатермокоагуляции и локальной экспресс-аутоцитокинотерапии в лечении поверхностных инфекционных язв роговицы. Вестник офтальмологии. 2012;128(6):50-53. 
  34. Panda A, Kumar S, Kumar A, Bansal R, Bhartiya S. Fibrin glue in ophthalmology. Indian J Ophthalmol 2009;57:371-379.  https://doi.org/10.4103/0301-4738.55079
  35. Everts PA, Knape JT, Weibrich G, Schönberger JP, Hoffmann J, Overdevest EP, Box HA, van Zundert A. Platelet-rich plasma and platelet gel: a review. J Extra Corpor Technol. 2006;38:174-187. 
  36. Cosgrove GR, Delashaw JB, Grotenhuis JA, et al. Safety and efficacy of a novel polyethylene glycol hydrogel sealant for watertight dural repair. J Neurosurg. 2007;106:52-58.  https://doi.org/10.3171/jns.2007.106.1.52
  37. Vote BJ, Elder MJ. Cyanoacrylate glue for corneal perforations: a description of a surgical technique and a review of the literature. Clin Exper Ophthalmol. 2000;28:437-442.  https://doi.org/10.1046/j.1442-9071.2000.00351.x
  38. Trott AT. Cyanoacrylate tissue adhesives. An advance in wound care. JAMA. 1997;277:1559-1560.
  39. Guhan S. Surgical adhesives in ophthalmology: history and current trends. Br J Ophthalmol. 2018;102:1328-1335. https://doi.org/10.1136/bjophthalmol-2017-311643
  40. Fogle JA, Kenyon KR, Foster CS. Stromal melting in the cornea. Am J Ophthalmol. 1980;89:795-802.  https://doi.org/10.1016/0002-9394(80)90168-3
  41. Eiferman RA, Snyder JW. Antibacterial effect of cyanoacrylate glue. Arch Ophthalmol. 1983;101:958-960.  https://doi.org/10.1001/archopht.1983.01040010958022
  42. Golubovic S, Parunovic A. Cyanoacrylate glue in the treatment of corneal ulcerations. Fortschr Ophthalmol. 1990;87:378-381. 
  43. Markowitz GD, Orlin SE, Frayer WC, Andrews AP, Prince RB. Corneal endothelial polymerisation of histoacryl adhesive: a report of a new intraocular complication. Ophthalm Surg. 1995;26:256-258. 
  44. Sharma A, Mohan K, Sharma R, Nirankari VS. Scleral Patch Graft Augmented Cyanoacrylate Tissue Adhesive for Treatment of Moderate-Sized Noninfectious Corneal Perforations (3.5—4.5 mm). Cornea. 2013;32:1326-1330. https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e31829cb625.
  45. De Rotth TA. Plastic repair of conjunctival defects with fetal membranes. Arch Ophthalmol 1940;23:522-525. 
  46. Lee SH, Tseng SC. Amniotic membrane transplantation for persistent epithelial defects with ulceration. Am J Ophthalmol 1997;123:303-312. 
  47. Nubile M, Dua HS, Lanzini M, et al. In vivo analysis of stromal integration of multilayer amniotic membrane transplantation in corneal ulcers. Am J Ophthalmol. 2011;151:809-822. 
  48. Stamate AC, Tătaru CP, Zemba M. Update on surgical management of corneal ulceration and perforation. Rom J Ophthalmol. 2019;63(2):166-173.  https://doi.org/10.22336/rjo.2019.25
  49. Abdulhalim BE, Wagih MM, Gad AA, Boghdadi G, Nagy RR. Amniotic membrane graft to conjunctival flap in treatment of non-viral resistant infectious keratitis: a randomised clinical study. Br J Ophthalmol. 2015;99(1): 59-63.  https://doi.org/10.1136/bjophthalmol-2014-305224
  50. Sharma A, Mohan K, Sharma R, Nirankari VS. Repositioning of pedicle conjunctival flap performed for refractory corneal ulcer. Middle East Afr J Ophthalmol. 2014;21(1):89-91.  https://doi.org/10.4103/0974-9233.124118
  51. Zhou Q, Long X, Zhu X. Improved conjunctival transplantation for corneal ulcer. Zhong Nan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2010;35(8):814-818.  https://doi.org/10.3969/j.issn.1672-7347.2010.08.007
  52. Пучковская Н.А. Лечебная кератопластика и возможности стимуляции регенераторной способности роговой оболочки. Офтальмологический журнал. 1983;2:69-71. 
  53. Donnenfeld ED, Solomon R. Therapeutic keratoplasty. In: Krachmer JH, Mannis MJ, Holland EJ, eds. Cornea. 2nd ed. Philadelphia: Elsevier; 2005. Vol. 2. P. 1695-1705.
  54. Gain P, Jullienne R, He Z, et al. Global survey of corneal transplantation and eye banking. JAMA Ophthalmol. 2016;134:167-173.  https://doi.org/10.1001/jamaophthalmol.2015.4776
  55. Sharma N, Sachdev R, Jhanji V, Titiyal JS, Vajpayee RB. Therapeutic keratoplasty for microbial keratitis. Curr Opin Ophthalmol. 2010;21(4):293-300.  https://doi.org/10.1097/ICU.0b013e32833a8e23
  56. Kitzmann AS, Goins KM, Sutphin JE, Wagoner MD. Keratoplasty for treatment of Acanthamoeba keratitis. Ophthalmology. 2009;116(5):864-869.  https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2008.12.029
  57. Sharma N, Jain M, Sehra SV, et al. Outcomes of therapeutic penetrating keratoplasty from a tertiary eye care centre in northern India. Cornea. 2014; 33(2):114-118.  https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000000025
  58. Shi W, Li S, Xie L. Treatment of fungal keratitis with partial lamellar keratoplasty. Zhonghua Yan Ke Za Zhi. 2002;38(6):347-350. 
  59. Аветисов С.Э., Сурнина З.В., Новиков И.А., Черненкова Н.А., Тюрина А.А. Влияние слезной пленки на результаты прямой оценки чувствительности роговицы. Вестник офтальмологии. 2020;136(2):81-85.  https://doi.org/10.17116/oftalma202013602181
  60. Anshu A, Parthasarathy A, Mehta JS, Htoon HM, Tan DT. Outcomes of therapeutic deep lamellar keratoplasty and penetrating keratoplasty for advanced infectious keratitis: a comparative study. Ophthalmology. 2009;116(4): 615-623.  https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2008.12.043

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.