Аверяскина М.Н.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет)

Бахтияров К.Р.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Влияние различных хирургических техник миомэктомии на репродуктивные исходы (обзор литературы)

Авторы:

Аверяскина М.Н., Бахтияров К.Р.

Подробнее об авторах

Журнал: Проблемы репродукции. 2024;30(1): 109‑115

Прочитано: 1554 раза


Как цитировать:

Аверяскина М.Н., Бахтияров К.Р. Влияние различных хирургических техник миомэктомии на репродуктивные исходы (обзор литературы). Проблемы репродукции. 2024;30(1):109‑115.
Averiaskina MN, Bakhtiyarov KR. The effect of various surgical techniques in myomectomy on reproductive outcomes (A review). Russian Journal of Human Reproduction. 2024;30(1):109‑115. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/repro202430011109

Рекомендуем статьи по данной теме:
Дис­кус­си­он­ные воп­ро­сы адъю­ван­тной те­ра­пии пос­ле ми­омэк­то­мии. Рос­сий­ский вес­тник аку­ше­ра-ги­не­ко­ло­га. 2024;(5):101-107
Псо­ри­аз у бе­ре­мен­ных. Кли­ни­чес­кая дер­ма­то­ло­гия и ве­не­ро­ло­гия. 2024;(5):517-524

Введение

Миома матки является одним из самых распространенных среди женщин доброкачественных заболеваний. Точно установить количество пациенток с данной патологией сложно, поскольку во многих случаях она остается не диагностированной. Миома матки наблюдается у 70% женщин репродуктивного возраста [1] и может быть единственной причиной бесплодия в 2—3% случаев [2]. Несмотря на отсутствие влияния миомы матки на уровень антимюллерова гормона, частота наступления беременности после миомэктомии при ранее диагностированном бесплодии значительно возрастает [3]. В связи с этим пациенткам с бесплодием, с субсерозными узлами размером более 5—7 см или интрамуральными узлами более 4—5 см, деформирующими полость матки, рекомендована миомэктомия [4, 5], но по-прежнему остается отрытым вопрос о технике проведения миомэктомии [6].

Цель обзора — оценка репродуктивных исходов после использования различных негистероскопических техник миомэктомии.

Влияние лапароскопического и лапаротомного доступа на репродуктивные исходы

Наиболее применяемыми при миомэктомии в сегодняшней практике являются лапароскопия (ЛС) и лапаротомия (ЛТ), кроме того, внедряются методики робот-ассистированных операций и ЛС через один порт. Каждый из этих методов обладает как преимуществами, так и недостатками. Считается, что ЛТ является лучшим методом при выполнении миомэктомии с целью реализации репродуктивной функции, поскольку улучшаются возможности тщательного послойного сопоставления краев раны при ушивании ложа узла, особенно при вскрытии полости матки, а также в случаях множественных узлов и их больших размеров [7, 8]. Так, узлы более 6 см или их количество более 3 почти всегда удаляются с помощью ЛТ. Помимо этого, с помощью ЛТ следует удалять крупные узлы, деформирующие полость матки, для предотвращения дальнейшего разрыва матки по рубцу [9].

Есть мнение, что при ЛС создается предпосылка для разрыва матки во время последующей гестации с возможным летальным исходом плода и матери [7]. С другой стороны, ЛС при миомэктомии характеризуется малой травматичностью, четкостью визуализации тканей, более короткими сроками госпитализации, меньшим риском развития послеоперационного спаечного процесса, что делает этот подход ведущим в лечении миомы матки [10].

В систематическом обзоре, включавшем пациенток с интрамуральным или субсерозным расположением узлов, которым провели миомэктомию с помощью лапароскопии, лапаротомии или роботизированной операции, оценены репродуктивные исходы. Так, при сравнении техник ЛС и ЛТ в одном из исследуемых рандомизированных контролируемых исследований со 131 участницей существенной разницы в частоте наступления беременности не было (56% при ЛТ и 54% при ЛС), при этом в двух других когортных исследованиях выделили тенденцию к увеличению частоты наступления беременности при технике ЛС. Частота преждевременных родов в обеих группах была примерно равной, а случаи разрыва матки не отмечены [11].

В ретроспективном исследовании, в котором приняли участие 86 женщин, в пациенткам группы A (n=42) проведена лапароскопическая миомэктомия, а пациенткам группы B (n=44) лапаротомная. В среднем у пациенток обеих групп количество узлов варьировало от 2,75 до 2,94, а их максимальный размер достигал 7,47±2,60 (группа A) и 7,07±2,54 (группа B). Проведено сравнение двух групп по следующим показателям: интраоперационная кровопотеря, длительность пребывания в стационаре, уровень боли по визуальной аналоговой шкале (ВАШ), IL-6, IFN-γ. Если интраоперационная кровопотеря, длительность пребывания в стационаре, уровень боли по ВАШ были значительно ниже при лапароскопическом доступе, то относительно других показателей такой разницы не было.

Что касается беременности, то ее частота в группе A (ЛС) через 24 мес составила 90,48% (38 из 42), а в группе B (ЛТ) в этот же промежуток времени 59,09% (26 из 44). Осложнения после операции (спаечный процесс, инфекции мочеполовых путей, боль в месте шва) также статистически значимо чаще встречались у пациенток группы B. Однако в данном исследовании не проведено сравнение по частоте разрыва матки (вероятно, у пациенток он не фиксировался) [12].

Различие в частоте наступления беременности, выявленное еще в одном исследовании (у пациенток группы ЛС она наступала в 85% случаев, а группы ЛТ — в 75%), было статистически незначимым [13]. Количество и размер удаленных миом также влияли на частоту наступления беременности: при большем числе узлов беременность наступала реже, а при размере самого крупного узла более 8 см вероятность наступления беременности снижалась на 20%. Статистически значимой разницы между частотой кесарева сечения (КС) и выкидышей не наблюдалось.

Статистически значимых различий в частоте наступления беременности, родов живым плодом и выкидышей, по данным ряда авторов, не было [14—16].

Что касается российского опыта, то при проведении ретроспективного анализа репродуктивных исходов после ЛТ при выполнении миомэктомии выяснено, что беременность наступила у 18,7% пациенток [7]. Показаниями к операции служили миома, деформирующая полость матки, миома больших размеров, привычное невынашивание беременности, субсерозный узел на ножке. Всем пациенткам выполнена миомэктомия с ЛТ, после операции проводилась гормональная терапия с применением агонистов гонадотропин-рилизинг-гормона (аГНРГ), комбинированных оральных контрацептивов. Тем не менее следует отметить, что в данном исследовании не было контрольной группы, применено комплексное лечение (медикаментозное и хирургическое), а само исследование насчитывало только 32 участницы, поэтому адекватно оценить результаты сложно.

Российские авторы в отделении эндоскопической хирургии в ГБУЗ МОНИИАГ после проведенных 721 миомэктомий оценили репродуктивные исходы [17]. Суммарно беременность наступила в 51,6% случаев, однако по группам (ЛС, ЛТ) результаты не оценивали. Кроме того, отмечен один случай разрыва матки по рубцу, но вид доступа не указан.

Минилапаротомия — компромиссное решение?

Минилапаротомный доступ обладает преимуществами перед лапаротомическим и лапароскопическим доступами. С одной стороны, по сравнению с ЛТ существенно улучшается косметический эффект, снижается время госпитализации, с другой стороны, при ЛТ улучшаются обзор операционного поля, доступ и возможность адекватно наложить швы в области миоматозного узла, что при ЛС является достаточно сложной задачей и требует большого опыта хирурга.

Для сравнения минилапаротомного доступа и ЛС выбраны две группы пациенток. По большинству параметров они были однородными, однако у женщин группы с минилапаротомией были существенно выше индекс массы тела и больше диаметр самой крупной миомы (4,6±2,2 при ЛС и 8,3±2,0 при минилапаротомии). Репродуктивные результаты существенно не различались. Оценка риски повторного возникновения миоматозных узлов показала, что из всех параметров достоверно снижало этот риск только применение ГнРГ после операции, оперативный доступ влияния не оказывал [18].

В систематическом обзоре также проводилось сравнение минилапаротомии и ЛС. Результаты в связи с небольшой выборкой пациенток противоречивы: в одном рандомизированном контролируемом исследовании (РКИ) частота наступления беременности в группе с ЛС была на 24% выше, чем при минилапаротомии, однако в другом когортном исследовании они были сопоставимы (51% при минилапаротомии и 56% при ЛС) [11].

При сравнении ультраминилапаротомии (доступ длиной менее 4 см) и стандартной ЛС выяснено, что повторные миоматозые узлы чаще возникали после ЛС, однако это различие исчезало после 10 лет наблюдения. В большинстве случаев узлы возникали на передней стенке, дне матки и латеральных ее стенках. Беременность у пациенток обеих групп наступала одинаково часто, всем пациенткам проведено КС вне зависимости от типа миомэктомии [19].

К похожим выводам пришли авторы сравнительной статьи [20] и метаанализа [21]: различий между частотой наступления беременности, родов живым плодом или количеством самопроизвольных абортов в группах минилапаротомии и ЛС не было.

Лапароскопия через один порт — возможности метода

Одним из перспективных методов удаления миом является миомэктомия через один порт. Она позволяет улучшить косметический эффект, снизить частоту раневой инфекции (грыжа, расхождение шва, геморрагия). Однако этот метод имеет ряд серьезных ограничений. С помощью такой техники можно оперировать единичные миомы небольшого диаметра. В связи с ограниченностью манипуляций часто приходится использовать дополнительный порт, что в свою очередь увеличивает операционное время, кровопотерю и продолжительность пребывания в больнице. Оценка частоты наступления беременности указывает на то, что данная техника не влияет ни на этот показатель, ни на частоту осложнений при беременности или при родах [22, 23].

В следующем исследовании проводили оценку ЛС через один порт, контрольной группы не было [24]. Относительно репродуктивных исходов можно отметить, что среди всех участниц, которые активно выражали желание иметь детей, забеременели 75%, роды живым плодом были у 69,6%. Из акушерских осложнений у 10 пациенток наблюдались предлежание плаценты, атония матки, преждевременные роды и кровотечения во втором триместре. Однако, поскольку в данном исследовании не было контрольной группы и выборка беременных была небольшой, авторы указывают на необходимость дальнейших исследований.

При сравнении традиционной ЛС и однопортовой ЛС существенной разницы в частоте наступления беременности, родов через естественные родовые пути или самопроизвольных абортов исследователи не обнаружили [25].

Что касается расположения миом, то у пациенток с деформацией полости матки (узлы 2, 3, 4, 5 и 2—5 по FIGO) после миомэктомии возрастала статистически значимо частота зачатия по сравнению с пациентками без изменения строения полости матки. Количество узлов также влияет на частоту наступления беременности: у перенесших миомэктомию пациенток с шестью и более узлами беременность наступала реже, чем у пациенток с количеством узлов менее шести.

Робот-ассистированная миомэктомия

Роботические операции могут обладать преимуществами по сравнению с традиционной ЛС, поскольку они улучшают доступ к операционному полю и обзор, обладая сопоставимым косметическим эффектом. Нужно отметить, что при такой технике существенно возрастают стоимость и продолжительность операции. При этом статистически значимого различия в репродуктивных исходах по сравнению с ЛС выделить нельзя. В отношении случаев разрыва можно утверждать, что это крайне редкое осложнение, которое тем не менее нельзя исключать [26, 27].

Сравнение трех методов миомэктомии — ЛТ, ЛС и роботизированной операции — указывает на более высокую частоту наступления беременности в группах ЛС и роботизированной операции, однако авторы связывают это не с выбором доступа, а с количеством узлов (количество и размер узлов в группе ЛТ существенно выше). Чем меньше узлов, тем выше вероятность наступления беременности, однако все же рекомендуется прибегать к малоинвазивным техникам, поскольку в таком случае снижаются кровопотеря и риск осложнений [28].

При сравнении робот-ассистированной операции с традиционной ЛС и ЛТ различия в частоте наступления беременности не выявлены [11]. В одной статье описано повышение частоты родов через естественные родовые пути после роботической операции, однако группы пациенток в данном исследовании были неоднородными, что повлияло на получение таких результатов. По данным рада авторов, частота наступления беременности у женщин, перенесших робот-ассистированную миомэктомию, составила от 70% [29] до 75% [30], однако число участниц было небольшим.

Техника шва

Лапароскопическое ушивание дефекта во время миомэктомии является сложной манипуляцией, для выполнения которой необходимы опыт хирурга и соответствующие навыки. Одной из альтернатив, предложенных в последнее время, стал шовный материал с микровыступами, при использовании которого не требуется завязывание узлов. В следующих работах рассмотрено влияние шовного материала на репродуктивные исходы и вероятность тяжелых осложнений, связанных с несостоятельностью шва на матке.

У женщин группы с обычной техникой шва и группы шва с микровыступами беременность наступила в примерно равной доле случаев (52,5% у женщин первой группы и 49,4% — второй группы, p=0,670). КС статистически значимо чаще выполняли у женщин группы с обычной техникой шва (71,1% для шва с микровыступами и 91,1% для обычного). Осложнения беременности встречались примерно с одинаковой частотой [31]. В других статьях не отмечены статистически значимые различия в частоте наступления беременности и частоте КС при сравнении обычной техники шва и шва с микровыступами [32, 33].

Есть указания на значительное повышение частоты наступления беременности у женщин, у которых при выполнении миомэктомии использован шов с микровыступами (71%). КС проведено в 90% случаев [34].

Количество швов, наложенных на ложе миоматозного узла, не влияет на сопоставление тканей, и даже однорядный шов не приводит к несостоятельности рубца во время беременности [35, 36], однако повсеместное использование электрокоагуляции, ведущее к нарушению васкуляризации и, в свою очередь, к несостоятельности шва, однозначно может быть причиной разрыва матки.

Отмечено, что одного узлового шва достаточно для нормального заживления раны, и это не ведет в дальнейшем к несостоятельности шва, а также не влияет на перинатальные исходы [37].

Оптимальное время зачатия и метод родоразрешения после миомэктомии

В существующих руководствах и клинических рекомендациях нет сведений, основанных на научных исследованиях, о времени зачатия после операции и связи этого фактора с возможным разрывом матки. Данные выглядят противоречиво, ввиду того что это осложнение является крайне редким. С одной стороны, время зачатия не является дополнительным фактором, который может способствовать разрыву матки после миомэктомии вне зависимости от вида вмешательства, поэтому основным ограничением являются физиологические особенности самой женщины (беременность у женщин, перенесших миомэктомию, наступала в среднем после 17 месяцев, медиана составила 13 месяцев) [38]. С другой стороны, слишком длительное откладывание беременности может привести к рецидиву миомы и ухудшению других репродуктивных показателей. Однако авторы более крупного популяционного исследования в Южной Корее пришли к другим выводам: они отметили снижение частоты разрывов матки по рубцу с течением времени. Так, при наступлении беременности в течение первого года она составила 0,71%, а уже на 2—3-й год снизилась до 0,35%. Тем не менее авторы считают, что показатель разрыва матки сложно оценивать даже на такой крупной выборке, поскольку это редкое осложнение [39].

В отношении выбора метода родоразрешения также нельзя выделить однозначную позицию. С одной стороны, частота КС после миомэктомии в анамнезе достигает 85—90% вне зависимости от техники операции [40, 39], однако есть ряд авторов [41], которые считают, что миомэктомия не является абсолютным противопоказанием для родов через естественные родовые пути. Так, у 90,4% пациенток, которым предложены роды через естественные родовые пути, они протекали без тяжелых осложнений и без смены акушерской тактики в пользу КС [42]. При этом факты разрыва матки не зафиксированы, а различий в частоте КС между ЛТ и ЛС не было.

Разрыв матки после миомэктомии

Разрыв матки по рубцу является одним из самых грозных осложнений в акушерско-гинекологической практике, которое может привести как к гибели плода, так и к смерти матери. Поэтому важно оценивать возможные факторы риска данного осложнения. Одной из причин может стать несостоятельность шва после миомэктомии. Наиболее часто это происходит после лапароскопического вмешательства [31]. Этот факт подтверждается и состоянием шва после ЛТ и ЛС, оцененным во время КС [43]. После ЛС по сравнению с ЛТ шов часто тоньше окружающих тканей, асимметричный и с неровными краями. Разрыв матки осложняет примерно 0,05% всех беременностей [44]. При этом после миомэктомии риск значительно возрастает — до 0,6—0,75% [45, 46].

Врастание и предлежание плаценты после ЛТ и ЛС миомэктомии встречается одинаково редко, а прибегать к ручному отделению плаценты приходится в 62,2% при ЛС и в 69,7% при ЛТ (разница статистически незначима). Врастание плаценты после миомэктомии — крайне редкое осложнение, связанное с тем, что после миомэктомии по сравнению с операцией КС сохраняется рубец небольшого размера [47, 48].

Описан случай разрыва матки на 28-й неделе гестации после лапароскопической миомэктомии субсерозного узла размером 10 см за 3 месяца до зачатия. Миометрий ушит двурядным швом, осложнений во время операции не было. В ходе экстренной операции КС обнаружен разрыв на задней стенке. Плод был живой, но недоношенный. Авторы приходят к выводу, что решение о миомэктомии у молодых женщин, которые планируют беременность, должно быть хорошо взвешенным, поскольку шансы забеременеть увеличиваются, но при этом значительно возрастает риск разрыва матки. Кроме того, авторы подчеркивают, что электрокоагуляция препятствует нормальной васкуляризации тканей [49].

В ходе оценки репродуктивных исходов после миомэктомии с применением ЛС в исследовании, насчитывавшем 523 пациентки, разрыв матки по рубцу среди всех забеременевших произошел только у 3 (0,6%) пациенток, а аномалии плацентации (предлежание и плотное прикрепление) описаны у 22 (4,2%). При этом отдельно отмечено, что после удаления миоматозного узла в 67,1% случаев ложе узла было ушито и в 31,5% коагулировано [50].

Большинство случаев разрыва происходило поле удаления единственной миомы. Узел чаще располагался на задней стенке субсерозно или на ножке, при этом ушивание ложа узла проводили только в 63,3% случаев. Разрыв чаще происходил на 17—40-й неделе беременности [51].

Возможными факторами риска разрыва матки являются однорядный шов, использование электрохирургии [52] и недостаточные навыки хирурга в завязывании швов при лапароскопическом доступе [52, 53].

Заключение

Выбор доступа при миомэктомии зависит от размеров, локализации и количества миоматозных узлов и практически не влияет на репродуктивные исходы при последующих беременностях. Тем не менее многие авторы отмечают, что при лапароскопической операции необходимо тщательно ушивать ложе миоматозного узла для дальнейшей нормальной васкуляризации тканей. Повсеместное использование электрокоагуляции и недостаточный опыт хирурга в применении лапароскопической техники могут служить факторами риска для несостоятельности шва во время беременности. Если же хирург не обладает достаточными навыками, то следует прибегнуть к безузловому ушиванию матки или альтернативному доступу (лапаротомному либо минилапаротомному).

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования — Аверяскина М.Н., Бахтияров К.Р.

Сбор и обработка материала — Аверяскина М.Н.

Написание текста — Аверяскина М.Н.

Редактирование — Аверяскина М.Н., Бахтияров К.Р.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Серов В.Н., Сухих Г.Т. Клинические рекомендации. Акушерство и гинекология. 4-е изд. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2017.
  2. Zepiridis LI, Grimbizis GF, Tarlatzis BC. Infertility and uterine fibroids. Best Practice and Research. Clinical Obstetrics and Gynaecology. 2016;34:66-73.  https://doi.org/10.1016/j.bpobgyn.2015.12.001
  3. Practice Committee of the American Society for Reproductive Medicine. Removal of myomas in asymptomatic patients to improve fertility and/or reduce miscarriage rate: a guideline. Fertility and Sterility. 2017;108(3):416-425.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2017.06.034
  4. Milazzo GN, Catalano A, Badia V, Mallozzi M, Caserta D. Myoma and myomectomy: Poor evidence concern in pregnancy The Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 2017;43(12): 1789-1804. https://doi.org/10.1111/jog.13437
  5. Casini ML, Rossi F, Agostini R, Unfer V. Effects of the position of fibroids on fertility. Gynecological Endocrinology. 2006;22(2): 106-109.  https://doi.org/10.1080/09513590600604673
  6. Краснопольский В.И., Попов А.А., Федоров А.А. Определение метода выполнения миомэктомии у пациенток репродуктпвного возраста. Пособие для врачей. М.: МАКС Пресс; 2017.
  7. Памфамиров Ю.К., Самойленко А.В., Волох А.А. Органосохраняющее лечение миомы матки у пациенток репродуктивного возраста. Вестник науки и образования. 2017;2(26):97-99. 
  8. Подгорная А.С., Захарко А.Ю., Козлова А.И., Коршунова Л.П., Марченко А.В., Мурашко О.В. Консервативная миомэктомия у пациенток с репродуктивными планами. Практическое пособие для врачей. Гомель: ГУ «РНПЦ РМ и ЭЧ»; 2017.
  9. Dubuisson JB. Management of leiomyomata. Human Reproduction Update. 2000;6(6):587.  https://doi.org/10.1093/humupd/6.6.587
  10. Тарабанова О.В., Крутова В.А., Коваленко Я.А., Мелконьянц Т.Г., Баширов Э.В., Ордокова А.А., Титова А.Н. Опыт органосохраняющих операций у пациенток с миомой матки. ДокторРу. 2017;13(142)-14(143):12-18. 
  11. Orlando M, Kollikonda S, Hackett L, Kho R. Non-hysteroscopic Myomectomy and Fertility Outcomes: A Systematic Review. Journal of Minimally Invasive Gynecology. 2021;28(3):598-618.e1.  https://doi.org/10.1016/j.jmig.2020.10.006
  12. Kan X, Shen X, Feng L, Hu Y, Yu J, Yang X. Comparison of safety and efficacy between laparoscopic myomectomy and traditional laparotomy for patients with uterine fibroids and their effect on pregnancy rate after surgery. Experimental and Therapeutic Medicine. 2021;22(3):913.  https://doi.org/10.3892/etm.2021.10345
  13. Kundu S, Iwanuk C, Staboulidou I, Garcia-Rocha GJ, Soergel P, Hertel H, Hillemanns P, Schippert C. Morbidity, fertility and pregnancy outcomes after myoma enucleation by laparoscopy versus laparotomy. Archives of Gynecology and Obstetrics. 2018;297(4):969-976.  https://doi.org/10.1007/s00404-018-4697-5
  14. Palomba S, Zupi E, Falbo A, Russo T, Marconi D, Tolino A, Manguso F, Mattei A, Zullo F. A multicenter randomized, controlled study comparing laparoscopic versus minilaparotomic myomectomy: reproductive outcomes. Fertility and Sterility. 2007;88(4):933-941.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2006.12.047
  15. Cezar C, Becker S, di Spiezio Sardo A, Herrmann A, Larbig A, Tanos V, de la Roche LAT, Verhoeven HC, Wallwiener M, De Wilde RL. Laparoscopy or laparotomy as the way of entrance in myoma enucleation. Archives of Gynecology and Obstetrics. 2017;296(4):709-720.  https://doi.org/10.1007/s00404-017-4490-x
  16. Kim MS, Uhm YK, Kim JY, Jee BC, Kim YB. Obstetric outcomes after uterine myomectomy: Laparoscopic versus laparotomic approach. Obstetrics and Gynecology Science. 2013;56(6):375-381.  https://doi.org/10.5468/ogs.2013.56.6.375
  17. Попов А.А., Федоров А.А., Логинова Е.А., Мананникова Т.Н., Коваль А.А. Миома матки: в пользу оперативного лечения при бесплодии. Медицинский алфавит. 2017;3(23):46-49. 
  18. Shin DG, Yoo HJ, Lee YA, Kwon IS, Lee KH. Recurrence factors and reproductive outcomes of laparoscopic myomectomy and minilaparotomic myomectomy for uterine leiomyomas. Obstetrics and Gynecology Science. 2017;60(2):193-199.  https://doi.org/10.5468/ogs.2017.60.2.193
  19. Wen KC, Sung PL, Chang WH, Horng HC, Chen YJ, Lee WL, Wang PH. A case-control study to compare the outcome of women treated by two minimally invasive procedures-ultraminilaparotomy myomectomy and laparoscopic myomectomy. Taiwan Journal of Obstetrics and Gynecology. 2018;57(2):264-269.  https://doi.org/10.1016/j.tjog.2018.02.016
  20. Wen KC, Chen YJ, Sung PL, Wang PH. Comparing uterine fibroids treated by myomectomy through traditional laparotomy and 2 modified approaches: ultraminilaparotomy and laparoscopically assisted ultraminilaparotomy. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 2010;202(2):144.e1-148.  https://doi.org/10.1016/j.ajog.2009.10.872
  21. Shen Q, Chen M, Wang Y, Zhou Q, Tao X, Zhang W, Zhu X. Effects of laparoscopic versus minilaparotomic myomectomy on uterine leiomyoma: a meta-analysis. Journal of Minimally Invasive Gynecology. 2015;22(2):177-184.  https://doi.org/10.1016/j.jmig.2014.09.007
  22. Greaves N, Nicholson J. Single incision laparoscopic surgery in general surgery: a review. Annals of the Royal College of Surgeons of England. 2011;93(6):437-440.  https://doi.org/10.1308/003588411X590358
  23. Kang M, Kim J, Kim TJ, Lee JW, Kim BG, Bae DS, Choi CH. Long-term outcomes of single-port laparoscopic myomectomy using a modified suture technique. Obstetrics and Gynecology Science. 2020;63(2):164-172.  https://doi.org/10.5468/ogs.2020.63.2.164
  24. Hong YH, Song E, Kim SK, Lee JR, Suh CS. Operative and Obstetric Outcomes after Single-port Laparoscopic Myomectomy: A Retrospective Single-center Analysis of 504 Cases. Journal of Minimally Invasive Gynecology. 2021;28(12):2080-2088. https://doi.org/10.1016/j.jmig.2021.06.011
  25. Lee D, Lee JR, Suh CS, Kim SH. A systematic review and meta-analysis comparing single port laparoscopic myomectomy with conventional laparoscopic myomectomy. European Journal of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Biology. 2019;239:52-59.  https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2019.06.001
  26. Huberlant S, Lenot J, Neron M, Ranisavljevic N, Letouzey V, De Tayrac R, Masia F, Warembourg S. Fertility and obstetrical outcomes after robot-assisted laparoscopic myomectomy. The International Journal of Medical Robotics + Computer Assisted Surgery: MRCAS. 2020;16(1):e2059. https://doi.org/10.1002/rcs.2059
  27. Mahajan N, Moretti ML, Lakhi NA. Spontaneous early first and second trimester uterine rupture following robotic-assisted myomectomy. Journal of Obstetrics and Gynecology. 2019;39(2):278-280.  https://doi.org/10.1080/01443615.2018.1466112
  28. Morales HSG, López RR, López GGP, Mondragón PJC, Cortés DV, Hernández HS, Guiot ML, Camacho FMR. Surgical approach to uterine myomatosis in patients with infertility: open, laparoscopic, and robotic surgery; results according to the quantity of fibroids. JBRA Assisted Reproduction. 2022;26(1):44-49.  https://doi.org/10.5935/1518-0557.20210049
  29. Hur C, Falcone T. Fertility and Pregnancy Outcomes after Robotic-assisted Laparoscopic Myomectomy in a Canadian Cohort. Journal of Minimally Invasive Gynecology. 2022;29(1):1-2.  https://doi.org/10.1016/j.jmig.2021.11.001
  30. Kang SY, Jeung IC, Chung YJ, Kim HK, Lee CR, Mansukhani TS, Kim MR. Robot-assisted laparoscopic myomectomy for deep intramural myomas. The International Journal of Medical Robotics + Computer Assisted Surgery: MRCAS. 2017;13(2):10.1002/rcs.1742. https://doi.org/10.1002/rcs.1742
  31. Paul PG, Mehta S, Annal A, Chowdary KA, Paul G, Shilotri M. Reproductive Outcomes after Laparoscopic Myomectomy: Conventional versus Barbed Suture. Journal of Minimally Invasive Gynecology. 2022;29(1):77-84.  https://doi.org/10.1016/j.jmig.2021.06.014
  32. Aksin S, Andan C, Tunc S, Goklu MR. Pregnancy outcomes of patients undergoing single-layer sutured laparoscopic myomectomy. International Journal of Clinical Practice. 2021;75(11):e14870. https://doi.org/10.1111/ijcp.14870
  33. Racca A, Alessandri F, Leone Roberti Maggiore U, Fausta S, Venturini PL, Ferrero S. Unidirectional Knotless Barbed Suture for Laparoscopic Myomectomy: Fertility, Pregnancy and Delivery Outcomes. Journal of Minimally Invasive Gynecology. 2015;22(6S):S233. https://doi.org/10.1016/j.jmig.2015.08.820
  34. Pepin K, Dmello M, Sandberg E, Hill-Verrochi C, Maghsoudlou P, Ajao M, Cohen SL, Einarsson JI. Reproductive Outcomes following Use of Barbed Suture during Laparoscopic Myomectomy. Journal of Minimally Invasive Gynecology. 2020;27(7):1566-1572. https://doi.org/10.1016/j.jmig.2020.02.005
  35. Jain N, Sahni P. Multiple Layer Closure of Myoma Bed in Laparoscopic Myomectomy. Journal of Gynecological Endoscopy and Surgery. 2011;2(2):85-90.  https://doi.org/10.4103/0974-1216.114079
  36. Paul PG, Koshy AK, Thomas T. Pregnancy outcomes following laparoscopic myomectomy and single-layer myometrial closure. Human Reproduction. 2006;21(12):3278-3281. https://doi.org/10.1093/humrep/del296
  37. Prapas Y, Zikopoulos A, Petousis S, Xiromeritis P, Tinelli A, Ravanos K, Margioula-Siarkou C, Chalkia-Prapa EM, Prapas N. Single layer suturing in intracapsular myomectomy of intramural myomas is sufficient for a normal wound healing. European Journal of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Biology. 2020;248:204-210.  https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2020.03.042
  38. Margueritte F, Adam C, Fauconnier A, Gauthier T. Time to conceive after myomectomy: should we advise a minimum time interval? A systematic review. Reproductive BioMedicine Online. 2021; 43(3):543-552.  https://doi.org/10.1016/j.rbmo.2021.05.016
  39. Lee SJ, Ko HS, Na S, Bae JY, Seong WJ, Kim JW, Shin J, Cho HJ, Choi GY, Kim J, Cho GJ, Park IY. Nationwide population-based cohort study of adverse obstetric outcomes in pregnancies with myoma or following myomectomy: retrospective cohort study. BMC Pregnancy Childbirth. 2020;20(1):716.  https://doi.org/10.1186/s12884-020-03406-9
  40. Weibel HS, Jarcevic R, Gagnon R, Tulandi T. Perspectives of obstetricians on labour and delivery after abdominal or laparoscopic myomectomy. Journal of Obstetrics and Gynaecology Canada. 2014; 36(2):128-132.  https://doi.org/10.1016/s1701-2163(15)30658-7
  41. La Verde M, Cobellis L, Torella M, Morlando M, Riemma G, Schiattarella A, Conte A, Ambrosio D, Colacurci N, De Franciscis P. Is Uterine Myomectomy a Real Contraindication to Vaginal Delivery? Results from a Prospective Study. Journal of Investigative Surgery. 2022;35(1):126-131.  https://doi.org/10.1080/08941939.2020.1836289
  42. Gambacorti-Passerini ZM, Penati C, Carli A, Accordino F, Ferrari L, Berghella V, Locatelli A. Vaginal birth after prior myomectomy. European Journal of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Biology. 2018;231:198-203.  https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2018.10.007
  43. Cobellis L, Pecori E, Cobellis G. Comparison of intramural myomectomy scar after laparotomy or laparoscopy. International Journal of Gynecology and Obstetrics. 2004;84(1):87-88.  https://doi.org/10.1016/s0020-7292(03)00301-1
  44. Holmgren CM. Uterine rupture associated with VBAC. Clinical Obstetrics and Gynecology. 2012;55(4):978-987.  https://doi.org/10.1097/GRF.0b013e31826fd9b0
  45. Kim HS, Oh SY, Choi SJ, Park HS, Cho GJ, Chung JH, Seo YS, Jung SY, Kim JE, Chae SH, Hwang HS. Uterine rupture in pregnancies following myomectomy: A multicenter case series. Obstetrics and Gynecology Science. 2016;59(6):454-462.  https://doi.org/10.5468/ogs.2016.59.6.454
  46. Fukuda M, Tanaka T, Kamada M, Hayashi A, Yamashita Y, Terai Y, Ohmichi M. Comparison of the perinatal outcomes after laparoscopic myomectomy versus abdominal myomectomy. Gynecologic and Obstetric Investigation. 2013;76(4):203-208.  https://doi.org/10.1159/000355098
  47. Gyamfi-Bannerman C, Gilbert S, Landon MB, Spong CY, Rouse DJ, Varner MW, Caritis SN, Meis PJ, Wapner RJ, Sorokin Y, Carpenter M, Peaceman AM, O’Sullivan MJ, Sibai BM, Thorp JM, Ramin SM, Mercer BM, Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Health and Human Development (NICHD) Maternal-Fetal Medicine Units (MFMU) Network (2012). Risk of uterine rupture and placenta accreta with prior uterine surgery outside of the lower segment. Obstetrics and Gynecology. 2012;120(6):1332-1337. https://doi.org/10.1097/aog.0b013e318273695b
  48. Mohr-Sasson A, Timor I, Meyer R, Stockheim D, Orvieto R, Mashiach R. Placenta accreta spectrum in subsequent pregnancy following myomectomy. The journal of Maternal-Fetal and Neonatal Medicine. 2022;35(22):4332-4337. https://doi.org/10.1080/14767058.2020.1849114
  49. Tomczyk KM, Wilczak M, Rzymski P. Uterine rupture at 28 weeks of gestation after laparoscopic myomectomy — a case report Przeglad Menopauzalny = Menopause review. 2018;17(2):101-104.  https://doi.org/10.5114/pm.2018.77314
  50. Koo YJ, Lee JK, Lee YK, Kwak DW, Lee IH, Lim KT, Lee KH, Kim TJ. Pregnancy Outcomes and Risk Factors for Uterine Rupture after Laparoscopic Myomectomy: A Single-Center Experience and Literature Review. Journal of Minimally Invasive Gynecology. 2015;22(6):1022-1028. https://doi.org/10.1016/j.jmig.2015.05.016
  51. Banas T, Klimek M, Fugiel A, Skotniczny K. Spontaneous uterine rupture at 35 weeks’ gestation, 3 years after laparoscopic myomectomy, without signs of fetal distress. The Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 2005;31(6):527-530.  https://doi.org/10.1111/j.1447-0756.2005.00331.x
  52. Hasbargen U, Summerer-Moustaki M, Hillemanns P, Scheidler J, Kimmig R, Hepp H. Uterine dehiscence in a nullipara, diagnosed by MRI, following use of unipolar electrocautery during laparoscopic myomectomy: Case report. Human Reproduction. 2002;17(8): 2180-2182. https://doi.org/10.1093/humrep/17.8.2180
  53. Bernardi TS, Radosa MP, Weisheit A, Diebolder H, Schneider U, Schleussner E, Runnebaum IB.Laparoscopic myomectomy: a 6-year follow-up single-center cohort analysis of fertility and obstetric outcome measures. Archives of Gynecology and Obstetrics. 2014;290(1): 87-91.  https://doi.org/10.1007/s00404-014-3155-2
  • Hartman EK, Eslick GD. The prognosis of women diagnosed with breast cancer before, during and after pregnancy: a meta-analysis. Breast Cancer Research and Treatment. 2016;160(2):347-360.  https://doi.org/10.1007/s10549-016-3989-3
  • Khazzaka A, Rassy E, Sleiman Z, Boussios S, Pavlidis N. Systematic review of fetal and placental metastases among pregnant patients with cancer. Cancer Treatment Reviews. 2022;104:102356. https://doi.org/10.1016/j.ctrv.2022.102356
  • National Cancer Insitute. Accessed January 17, 2024. https://www.cancer.gov/about-cancer/causes-prevention/genetics/
  • Michaan N, Leshno M, Cohen Y, Safra T, Peleg-Hasson S, Laskov I, Grisaru D. Preimplantation genetic testing for BRCA gene mutation carriers: a cost effectiveness analysis. Reproductive Biology and Endocrinology. 2021;19(1):153.  https://doi.org/10.1186/s12958-021-00827-9
  • Hartnett KP, Mertens AC, Kramer MR, Lash TL, Spencer JB, Ward KC, Howards PP. Pregnancy after cancer: Does timing of conception affect infant health? Cancer. 2018;124(22):4401-4407. https://doi.org/10.1002/cncr.31732
  • Buonomo B, Brunello A, Noli S, Miglietta L, Del Mastro L, Lambertini M, Peccatori FA. Tamoxifen Exposure during Pregnancy: A Systematic Review and Three More Cases. Breast Care. 2020;15(2): 148-156.  https://doi.org/10.1159/000501473
  • Braems G, Denys H, De Wever O, Cocquyt V, Van den Broecke R. Use of tamoxifen before and during pregnancy. The Oncologist. 2011;16(11):1547-51.  https://doi.org/10.1634/theoncologist.2011-0121
  • Egashira K, Hiasa K, Yokota N, Kawamura T, Matsushita T, Okugawa K, Yahata H, Sonoda K, Kato K. Infertility after abdominal trachelectomy. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 2018; 97(11):1358-1364. https://doi.org/10.1111/aogs.13429
  • Schimberni M, Morgia F, Colabianchi J, Giallonardo A, Piscitelli C, Giannini P, Montigiani M, Sbracia M. Natural-cycle in vitro fertilization in poor responder patients: a survey of 500 consecutive cycles. Fertility and Sterility. 2009;92(4):1297-1301. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2008.07.1765
  • De Marco MP, Montanari G, Ruscito I, Giallonardo A, Ubaldi FM, Rienzi L, Costanzi F, Caserta D, Schimberni M, Schimberni M. Natural Cycle Results in Lower Implantation Failure than Ovarian Stimulation in Advanced-Age Poor Responders Undergoing IVF: Fertility Outcomes from 585 Patients. Reproductive Sciences. 2021; 28(7):1967-1973. https://doi.org/10.1007/s43032-020-00455-5
  • Chan JL, Johnson LN, Efymow BL, Sammel MD, Gracia CR. Outcomes of ovarian stimulation after treatment with chemotherapy. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2015;32(10):1537-1545. https://doi.org/10.1007/s10815-015-0575-2
  • Checa Vizcaíno MA, Corchado AR, Cuadri ME, Comadran MG, Brassesco M, Carreras R. The effects of letrozole on ovarian stimulation for fertility preservation in cancer-affected women. Reproductive Biomedicine Online. 2012;24(6):606-610.  https://doi.org/10.1016/j.rbmo.2012.02.020
  • Oktay K, Türkçüoğlu I, Rodriguez-Wallberg KA. GnRH agonist trigger for women with breast cancer undergoing fertility preservation by aromatase inhibitor/FSH stimulation. Reproductive Biomedicine Online. 2010;20(6):783-788.  https://doi.org/10.1016/j.rbmo.2010.03.004
  • Azim AA, Costantini-Ferrando M, Oktay K. Safety of fertility preservation by ovarian stimulation with letrozole and gonadotropins in patients with breast cancer: a prospective controlled study. Journal of Clinical Oncology. 2008;26(16):2630-2635. https://doi.org/10.1200/JCO.2007.14.8700
  • Turan V, Bedoschi G, Moy F, Oktay K. Safety and feasibility of performing two consecutive ovarian stimulation cycles with the use of letrozole-gonadotropin protocol for fertility preservation in breast cancer patients. Fertility and Sterility. 2013;100(6):1681-5.e1.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2013.08.030
  • Rosenberg E, Fredriksson A, Einbeigi Z, Bergh C, Strandell A. No increased risk of relapse of breast cancer for women who give birth after assisted conception. Human Reproduction Open. 2019;(4): hoz039. https://doi.org/10.1093/hropen/hoz039
  • Sonigo C, Sermondade N, Calvo J, Benard J, Sifer C, Grynberg M. Impact of letrozole supplementation during ovarian stimulation for fertility preservation in breast cancer patients. European Journal of Obstetrics and Gynecology and Reproductive Biology. 2019;4:100049. https://doi.org/10.1016/j.eurox.2019.100049
  • Bonardi B, Massarotti C, Bruzzone M, Goldrat O, Mangili G, Anserini P, Spinaci S, Arecco L, Del Mastro L, Ceppi M, Demeestere I, Lambertini M. Efficacy and Safety of Controlled Ovarian Stimulation With or Without Letrozole Co-administration for Fertility Preservation: A Systematic Review and Meta-Analysis. Frontiers in Oncology. 2020;10:574669. https://doi.org/10.3389/fonc.2020.574669
  • Chian RC, Buckett WM, Tulandi T, Tan SL. Prospective randomized study of human chorionic gonadotrophin priming before immature oocyte retrieval from unstimulated women with polycystic ovarian syndrome. Human Reproduction. 2000;15(1):165-170.  https://doi.org/10.1093/humrep/15.1.165
  • Holzer H, Scharf E, Chian RC, Demirtas E, Buckett W, Tan SL. In vitro maturation of oocytes collected from unstimulated ovaries for oocyte donation. Fertility and Sterility. 2007;88(1):62-67.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2006.11.087
  • Kedem A, Yerushalmi GM, Brengauz M, Raanani H, Orvieto R, Hourvitz A, Meirow D. Outcome of immature oocytes collection of 119 cancer patients during ovarian tissue harvesting for fertility preservation. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2018;35(5): 851-856.  https://doi.org/10.1007/s10815-018-1153-1
  • Park CW, Lee SH, Yang KM, Lee IH, Lim KT, Lee KH, Kim TJ. Cryopreservation of in vitro matured oocytes after ex vivo oocyte retrieval from gynecologic cancer patients undergoing radical surgery. Clinical and Experimental Reproductive Medicine. 2016;43(2):119-125.  https://doi.org/10.5653/cerm.2016.43.2.119
  • Kawamura K, Cheng Y, Kawamura N, Takae S, Okada A, Kawagoe Y, Mulders S, Terada Y, Hsueh AJ. Pre-ovulatory LH/hCG surge decreases C-type natriuretic peptide secretion by ovarian granulosa cells to promote meiotic resumption of pre-ovulatory oocytes. Human Reproduction. 2011;26(11):3094-3101. https://doi.org/10.1093/humrep/der282
  • Mohsenzadeh M, Khalili MA, Tabibnejad N, Yari N, Agha-Rahimi A, Karimi-Zarchi M. Embryo Cryopreservation Following In-Vitro Maturation for Fertility Preservation in a Woman with Mullerian Adenosarcoma: A Case Report. Journal of Human Reproductive Sciences. 2017;10(2):138-141.  https://doi.org/10.4103/jhrs.JHRS_93_16
  • Kirillova A, Bunyaeva E, Van Ranst H, Khabas G, Farmakovskaya M, Kamaletdinov N, Nazarenko T, Abubakirov A, Sukhikh G, Smitz JEJ. Improved maturation competence of ovarian tissue oocytes using a biphasic in vitro maturation system for patients with gynecological malignancy: a study on sibling oocytes. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2021;38(6):1331-1340. https://doi.org/10.1007/s10815-021-02118-z
  • Sanchez F, Le AH, Ho VNA, Romero S, Van Ranst H, De Vos M, Gilchrist RB, Ho TM, Vuong LN, Smitz J. Biphasic in vitro maturation (CAPA-IVM) specifically improves the developmental capacity of oocytes from small antral follicles. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2019;36(10):2135-2144. https://doi.org/10.1007/s10815-019-01551-5
  • De Roo C, Tilleman K. In Vitro Maturation of Oocytes Retrieved from Ovarian Tissue: Outcomes from Current Approaches and Future Perspectives. Journal of Clinical Medicine. 2021;10(20):4680. https://doi.org/10.3390/jcm10204680
  • Диникина Ю.В., Белогурова М.Б., Говоров И.Е., Гамзатова З.Х., Первунина Т.М., Комличенко Э.В. Криоконсервация ткани яичника у девочек с онкологической патологией: мультидисциплинарная программа. Российский журнал детской гематологии и онкологии. 2019;6(3):59-67.  https://doi.org/10.21682/2311-1267-2019-6-3-59-67
  • Абакушина Е.В., Отой Т., Каприн А.Д. Возможности восстановления репродуктивной функции онкологических больных за счет трансплантации криоконсервированной ткани яичника. Гены и клетки. 2015;10(1):18-27. 
  • Gougeon A, Chainy GB. Morphometric studies of small follicles in ovaries of women at different ages. Journal of Reproduction and Fertility. 1987;81(2):433-442.  https://doi.org/10.1530/jrf.0.0810433
  • Dolmans MM, von Wolff M, Poirot C, Diaz-Garcia C, Cacciottola L, Boissel N, Liebenthron J, Pellicer A, Donnez J, Andersen CY. Transplantation of cryopreserved ovarian tissue in a series of 285 women: a review of five leading European centers. Fertility and Sterility. 2021;115(5):1102-1115. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2021.03.008
  • Donnez J, Dolmans MM. Ovarian cortex transplantation: 60 reported live births brings the success and worldwide expansion of the technique towards routine clinical practice. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2015;32(8):1167-1170. https://doi.org/10.1007/s10815-015-0544-9
  • Roness H, Meirow D. Fertility preservation: Follicle reserve loss in ovarian tissue transplantation. Reproduction. 2019;158(5):F35-F44.  https://doi.org/10.1530/REP-19-0097
  • Nisolle M, Casanas-Roux F, Qu J, Motta P, Donnez J. Histologic and ultrastructural evaluation of fresh and frozen-thawed human ovarian xenografts in nude mice. Fertility and Sterility. 2000;74(1): 122-129.  https://doi.org/10.1016/s0015-0282(00)00548-3
  • Tanaka A, Nakamura H, Tabata Y, Fujimori Y, Kumasawa K, Kimura T. Effect of sustained release of basic fibroblast growth factor using biodegradable gelatin hydrogels on frozen-thawed human ovarian tissue in a xenograft model. The Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 2018;44(10):1947-1955. https://doi.org/10.1111/jog.13726
  • Wallace WH, Kelsey TW. Human ovarian reserve from conception to the menopause. PLoS One. 2010;5(1):e8772. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0008772
  • Dolmans MM, Marinescu C, Saussoy P, Van Langendonckt A, Amorim C, Donnez J. Reimplantation of cryopreserved ovarian tissue from patients with acute lymphoblastic leukemia is potentially unsafe. Blood. 2010;116(16):2908-2914. https://doi.org/10.1182/blood-2010-01-265751
  • Diaz-Garcia C, Domingo J, Garcia-Velasco JA, Herraiz S, Mirabet V, Iniesta I, Cobo A, Remohí J, Pellicer A. Oocyte vitrification versus ovarian cortex transplantation in fertility preservation for adult women undergoing gonadotoxic treatments: a prospective cohort study. Fertility and Sterility. 2018;109(3):478-485.e2.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2017.11.018
  • Arvold ND, Taghian AG, Niemierko A, Abi Raad RF, Sreedhara M, Nguyen PL, Bellon JR, Wong JS, Smith BL, Harris JR. Age, breast cancer subtype approximation, and local recurrence after breast-conserving therapy. Journal of Clinical Oncology. 2011;29(29): 3885-3891. https://doi.org/10.1200/JCO.2011.36.1105
  • Gellert SE, Pors SE, Kristensen SG, Bay-Bjørn AM, Ernst E, Yding Andersen C. Transplantation of frozen-thawed ovarian tissue: an update on worldwide activity published in peer-reviewed papers and on the Danish cohort. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2018;35(4):561-570.  https://doi.org/10.1007/s10815-018-1144-2
  • Salim N, Tumanova K, Stolbovoy A, Zvereva D, Popodko A Nosov V. Adaptive VMAT Radiotherapy to Avoid Brachytherapy in Cervical Cancer Treatment. International Journal of Radiation Oncology and Biology and Physics. 2022;114(supp 3):e262.
  • Bystrova O, Lapina E, Kalugina A, Lisyanskaya A, Tapilskaya N, Manikhas G. Heterotopic transplantation of cryopreserved ovarian tissue in cancer patients: a case series. Gynecological Endocrinology. 2019;35(12):1043-1049. https://doi.org/10.1080/09513590.2019.1648413
  • Donnez J. Chemotherapy and decline of the ovarian reserve: How can we explain it and how to prevent it? Fertility and Sterility. 2020; 114(4):722-724.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2020.08.010
  • ESHRE Guideline Group on Female Fertility Preservation; Anderson RA, Amant F, Braat D, D’Angelo A, Chuva de Sousa Lopes SM, Demeestere I, Dwek S, Frith L, Lambertini M, Maslin C, Moura-Ramos M, Nogueira D, Rodriguez-Wallberg K, Vermeulen N. ESHRE guideline: female fertility preservation. Human Reproduction Open. 2020;2020(4):hoaa052. https://doi.org/10.1093/hropen/hoaa052
  • Kindinger LM, Kyrgiou M, MacIntyre DA, Cacciatore S, Yulia A, Cook J, Terzidou V, Teoh TG, Bennett PR. Preterm Birth Prevention Post-Conization: A Model of Cervical Length Screening with Targeted Cerclage. PLoS One. 2016;11(11):e0163793. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0163793
  • Kyrgiou M, Athanasiou A, Paraskevaidi M, Mitra A, Kalliala I, Martin-Hirsch P, Arbyn M, Bennett P, Paraskevaidis E. Adverse obstetric outcomes after local treatment for cervical preinvasive and early invasive disease according to cone depth: systematic review and meta-analysis. BMJ. 2016;354:i3633. https://doi.org/10.1136/bmj.i3633
  • Li X, Li J, Wu X. Incidence, risk factors and treatment of cervical stenosis after radical trachelectomy: A systematic review. European Journal of Cancer. 2015;51(13):1751-1759. https://doi.org/10.1016/j.ejca.2015.05.012
  • Kasuga Y, Ikenoue S, Tanaka M, Ochiai D. Management of pregnancy after radical trachelectomy. Gynecological Oncology. 2021; 162(1):220-225.  https://doi.org/10.1016/j.ygyno.2021.04.023
  • Šimják P, Cibula D, Pařízek A, Sláma J. Management of pregnancy after fertility-sparing surgery for cervical cancer. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavia. 2020;99(7):830-838.  https://doi.org/10.1111/aogs.13917
  • Sato Y, Hidaka N, Sakai A, Kido S, Fujita Y, Okugawa K, Yahata H, Kato K. Evaluation of the efficacy of vaginal progesterone in preventing preterm birth after abdominal trachelectomy. European Journal of Obstetrics Gynecology and Reproducive Biology. 2021;259: 119-124.  https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2021.02.009
  • Signorello LB, Cohen SS, Bosetti C, Stovall M, Kasper CE, Weathers RE, Whitton JA, Green DM, Donaldson SS, Mertens AC, Robison LL, Boice JD Jr. Female survivors of childhood cancer: preterm birth and low birth weight among their children. Journal of National Cancer Institute. 2006;98(20):1453-1461. https://doi.org/10.1093/jnci/djj394
  • Schumer ST, Cannistra SA. Granulosa cell tumor of the ovary. Journal of Clinical Oncology. 2003;21(6):1180-1189. https://doi.org/10.1200/JCO.2003.10.019
  • Spanos CP, Mamopoulos A, Tsapas A, Syrakos T, Kiskinis D. Female fertility and colorectal cancer. International Journal of Colorectal Diseases. 2008;23(8):735-743.  https://doi.org/10.1007/s00384-008-0483-3
  • Lopategui DM, Yechieli R, Ramasamy R. Oncofertility in sarcoma patients. Translational Andrology and Urology. 2017;6(5):951-958.  https://doi.org/10.21037/tau.2017.07.03
  • Practice Committees of the American Society for Reproductive Medicine and the Society for Assisted Reproductive Technology. Mature oocyte cryopreservation: a guideline. Fertility and Sterility. 2013;99(1):37-43.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2012.09.028
  • Ахмедова З.Б., Умарова С.Г., Ашурова М.Дж. Фертильность и лимфома Ходжкина. Вестник Авиценны. 2013;(2):167-172. 
  • Hodgson DC, Pintilie M, Gitterman L, Dewitt B, Buckley CA, Ahmed S, Smith K, Schwartz A, Tsang RW, Crump M, Wells W, Sun A, Gospodarowicz MK. Fertility among female hodgkin lymphoma survivors attempting pregnancy following ABVD chemotherapy. Hematological Oncology. 2007;25(1):11-15.  https://doi.org/10.1002/hon.802
  • Watson M, Wheatley K, Harrison GA, Zittoun R, Gray RG, Goldstone AH, Burnett AK. Severe adverse impact on sexual functioning and fertility of bone marrow transplantation, either allogeneic or autologous, compared with consolidation chemotherapy alone: analysis of the MRC AML 10 trial. Cancer. 1999;86(7):1231-1239. https://doi.org/10.1002/(sici)1097-0142(19991001)86:7<1231::aid-cncr18>3.0.co;2-y
  • Подтверждение e-mail

    На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

    Подтверждение e-mail

    Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.