Замятина С.В.

ФГБОУ ВО «Алтайский государственный медицинский университет» Минздрава России

Ельчанинова С.А.

ФГБОУ ВО «Алтайский государственный медицинский университет» Минздрава России

Раевских В.М.

ФГБОУ ВО «Алтайский государственный медицинский университет» Минздрава России

Дударева Ю.А.

ФГБОУ ВО «Алтайский государственный медицинский университет» Минздрава России

Раченкова Т.В.

ФГБОУ ВО «Алтайский государственный медицинский университет» Минздрава России

Цитокины при нормальном течении беременности и невынашивании

Авторы:

Замятина С.В., Ельчанинова С.А., Раевских В.М., Дударева Ю.А., Раченкова Т.В.

Подробнее об авторах

Журнал: Проблемы репродукции. 2024;30(1): 72‑81

Прочитано: 1464 раза


Как цитировать:

Замятина С.В., Ельчанинова С.А., Раевских В.М., Дударева Ю.А., Раченкова Т.В. Цитокины при нормальном течении беременности и невынашивании. Проблемы репродукции. 2024;30(1):72‑81.
Zamyatina SV, Elchaninova SA, Raevskikh VM, Dudareva YuA, Rachenkova TV. Cytokines in normal pregnancy and miscarriage. Russian Journal of Human Reproduction. 2024;30(1):72‑81. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/repro20243001172

Рекомендуем статьи по данной теме:
Псо­ри­аз у бе­ре­мен­ных. Кли­ни­чес­кая дер­ма­то­ло­гия и ве­не­ро­ло­гия. 2024;(5):517-524
Ран­няя по­те­ря бе­ре­мен­нос­ти: вли­яние эн­до­ген­ных фак­то­ров рис­ка. Рос­сий­ский вес­тник аку­ше­ра-ги­не­ко­ло­га. 2024;(6):50-58
Сек­су­аль­ная фун­кция жен­щин во вре­мя бе­ре­мен­нос­ти. Рос­сий­ский вес­тник аку­ше­ра-ги­не­ко­ло­га. 2024;(6):112-117

Введение

Установление и исход беременности во многом зависят от взаимодействия между клетками на границе мать-плод, которое, с одной стороны, обеспечивает защиту аллоантигенного эмбриона/плода от атак материнской иммунной системы, а с другой стороны, поддерживает иммунитет против патогенов [1].

Согласно современной концепции репродуктивной иммунологии, нормальная беременность сопровождается адаптивными изменениями иммунной системы женщины и иммунной микросреды мать-плод под влиянием «гормонов беременности» — прогестерона, хорионического гормона и других [2—4]. На ранних сроках беременности воспалительный характер этой микросреды, необходимый для инвазии трофобласта в материнскую децидуальную оболочку, ремоделирования маточных спиральных артерий, формирования плаценты, сменяется толерантным, способствующим росту и развитию плода. В поздние сроки беременности иммунная микросреда вновь постепенно трансформируется в воспалительную микросреду с максимальной активностью в предродовом периоде и родах. Нарушения иммунной микросреды мать-плод могут приводить не только к осложнениям беременности, но и к невынашиванию — самопроизвольному прерыванию беременности в сроки от зачатия до 37 недель [2, 4].

Самопроизвольным прерыванием заканчивается около 15—20% диагностируемых беременностей [5]. Невынашивание беременности связано с множеством факторов, включающих генетические, эндокринные, инфекционные, анатомические отклонения, тромбофилии. Вместе с тем для патогенеза этой многофакторной репродуктивной патологии характерны нарушения в иммунной системе на различных уровнях [5]. В связи с этим важным является вопрос о маркерах гестационной адаптации иммунной системы, а также ее дезадаптации на доклинической стадии. В последние годы предпринимаются попытки найти и применить на практике такие биомаркеры, как генетические полиморфизмы, комплекс показателей клеточного и гуморального иммунитета при исследовании крови, в частности, интерфероновый статус, субпопуляционный анализ T-клеточного звена иммунитета с определением активированных NK-клеток [3, 4, 6].

Еще один подход к решению этого вопроса состоит в оценке иммунной микросреды на границе между матерью и плодом. Последняя формируется в основном децидуальными стромальными и эпителиальными клетками, трофобластом, иммунными клетками децидуальной оболочки и продуцируемыми этими клетками цитокинами [2]. Исследование состава и фенотипа этих клеток, вовлеченных в локальный, критически значимый для развития беременности иммунитет, затруднено. Поэтому в качестве показателей функциональной активности этих клеток рассматриваются продуцируемые ими цитокины [2, 3].

Цитокины — это небольшие (5—50 кДа) сигнальные пептиды или белки, которые индуцибельно синтезируются, секретируются большей частью в экстрацеллюлярное пространство и осуществляют межклеточные взаимодействия через специфические рецепторы [2, 7].

Основная цель исследований цитокинов при беременности — выявление ранних прогностических маркеров риска самопроизвольного прерывания беременности для своевременной коррекции состояния женщины и пролонгирования гестации. В обзоре представлен анализ данных об эффектах цитокинов при нормальной беременности, ее невынашивании, а также об использовании концентраций цитокинов в качестве прогностических биомаркеров невынашивания.

Методология написания обзора литературы: с помощью современных информационных баз данных выполнены отбор источников, анализ полученной информации, систематизация материалов и представление выводов. Проведен электронный поиск публикаций, идентифицированных в следующих базах данных: eLIBRARY.RU, Google Scholar, PubMed.

Физиологическая роль цитокинов при беременности

При нормальной беременности в организме женщины происходит трансформация иммуноопосредованных процессов, которая сопровождается изменением баланса между провоспалительными и воспалительными цитокинами [7—9]. По мере развития беременности этот баланс перенастраивается, но, в целом, в течение всего периода гестации отмечается усиление продукции ряда провоспалительных цитокинов с сохранением иммунной толерантности между плодом и матерью [9—11].

На протяжении беременности паттерны цитокинов изменяются из-за различий динамики концентраций отдельных цитокинов. Так, в одном из многоцентровых проспективных исследований показано, что при нормальной беременности концентрации в плазме крови интерлейкинов (interleukin, IL) IL-6, IL-1α, IL-1β, а также уровень C-реактивного белка не изменялись, но регистрировалось возрастание уровня фактора некроза опухоли (tumor necrosis factor, TNF-α) на всем протяжении беременности, тогда как концентрация IL-8 возрастала, начиная со второго триместра [8, 9]. Изменения содержания этих провоспалительных цитокинов сопровождались нарастанием на всем протяжении беременности концентрации в плазме крови уровня противовоспалительного IL-10 [8, 9].

Изменение концентрации цитокинов регистрируется не только в крови, но и во влагалищной жидкости (ВЖ, цервико-вагинальная жидкость) [8, 9]. Соотношение уровней отдельных цитокинов в плазме крови и ВЖ различно. В цитируемых исследованиях [8, 9] концентрации IL-1α, IL-1β, IL-6, IL-8 в ВЖ превышали таковые в плазме крови независимо от триместра, тогда как содержание TNF-α в ВЖ, напротив, было значительно ниже значений в плазме крови на протяжении всей беременности.

Можно полагать, что различие в накоплении цитокинов в разных биологических жидкостях при беременности связано с усилением их продукции клетками многих гистотипов, включая, прежде всего, клетки иммунной системы. Изменение экспрессии IL-6 и IL-8 и их рецепторов наблюдается в различных типах клеток плацентарного русла: клетках стромы миометрия, железистого эпителия, интерстициальных экстравиллезных клетках трофобласта, гладкомышечных клетках кровеносных сосудов и эндотелиоцитов [12—14].

Баланс цитокинов и баланс клеток, вовлеченных в морфогенез и иммунные реакции при беременности, взаимосвязаны. С одной стороны, макрофаги и трофобласты реципрокно регулируют друг друга посредством цитокинов [7, 13, 15]. С другой стороны, цитокиногенез при беременности в значительной степени зависит от соотношения Т-хелперов (Th) разных типов, продуцирующих цитокины с противонаправленными эффектами [16—19]. Цитокины, продуцируемые Th 2-го типа (Th2), блокируют реакции клеточного иммунитета, и, таким образом, способствуют развитию и инвазии трофобласта. Цитокины, продуцируемые Th 1-го типа (Th1), напротив, ограничивают инвазию трофобласта и потенцируют в отношении трофобласта цитотоксические эффекты натуральных киллеров (NK-клетки), которые являются преобладающей популяцией лейкоцитов в децидуальной оболочке [13, 16, 20].

В качестве основных факторов соотношения Th1/Th2 и модуляции продукции цитокинов этими клетками на всех сроках беременности рассматривается влияние эстрогенов и прогестинов [21, 22].

Провоспалительные цитокины при беременности участвуют во многих ключевых морфофункциональных преобразованиях, включая имплантацию бластоцисты, ремоделирование маточных спиральных артерий и формирование трофобласта. Так, IL-6 и IL-8 способствуют инвазии трофобласта посредством активации матриксных металлопротеиназ, гидролизующих компоненты внеклеточного матрикса [13]. Кроме того, IL-8 активирует инвазию экстравиллезных клеток трофобласта через инфильтрацию NK-клетками децидуализированного слоя матки [12, 23]. Согласно результатам экспериментов in vitro, IL-6 и IL-8 вовлечены и в процесс морфологической организации гладкомышечных клеток средней оболочки при ремоделировании спиральных артерий матки. Ангиогенная активность IL-6 проявляется также стимуляцией пролиферации и роста гладкомышечных клеток кровеносных сосудов, эндотелиоцитов посредством взаимодействия с рецепторами IL-6Rα и gp130 [12, 13, 24, 25].

Иммуноопосредованные процессы с участием цитокинов вовлечены в реализацию родового акта [26]. Множественные цитокиновые сигналы в децидуальной оболочке и миометрии могут координировать сроки родов [7, 27]. Установлено, что роды связаны с инфильтрацией миометрия нейтрофилами, макрофагами и активацией провоспалительных цитокинов, в том числе IL-1β, IL-8 и TNF-α. Под действием этих цитокинов в лейкоцитах децидуальной оболочки происходят транскрипционные изменения, связанные с активацией внутриклеточных сигнальных путей NF-κB и Nod-подобных рецепторов [7, 28, 29]. Цитокины, включая IL-1β, могут вызывать сокращение матки через стимуляцию притока кальция в гладкомышечные клетки миометрия, повышение активности фосфодиэстеразы и продукции простагландина F, способствующего возрастанию уровня окситоцина в матке [7, 30, 31]. Ремоделирование и расширение шейки матки при инициации родового акта также связаны с эффектами провоспалительных цитокинов IL-1β, IL-6, IL-8 и TNF-α, усиленно продуцируемых лейкоцитами, которые инфильтрируют ткани шейки матки [32—34]. Наряду с описанными процессами провоспалительные цитокины стимулируют накопление в шейке матки простагландинов, регулирующих процессы ее созревания [35, 36].

Таким образом, нормальная беременность и своевременные роды сопровождаются усилением продукции и плейотропных влияний провоспалительных цитокинов, ведущих к многочисленным морфофункциональным изменениям [7—14]. Выраженность этих влияний на разных этапах гестации во многом зависит от баланса клеток иммунной системы и в норме ограничивается противодействующими эффектами противовоспалительных цитокинов, синтез которых, так же как провоспалительных цитокинов, нарастает в период гестации [7—9].

Дисбаланс цитокинов при патологическом течении беременности

Предполагают, что цитокиновый дисбаланс вследствие отклонений в соотношении и функциональной активности иммунокомпетентных клеток может спровоцировать поздние выкидыши на 10—216 неделях беременности и преждевременные роды (прерывание беременности, начиная с 22—366 недели гестации) [7, 9—11, 37]. Об этом свидетельствуют результаты не только клинических наблюдений, но и экспериментальных исследований, в которых введение рекомбинантных цитокинов беременным мышам сопровождалось гибелью плода и преждевременными родами. В моделях нечеловекообразных приматов интраамниотическая инфузия IL-1β и TNF-α, но не IL-6 или IL-8, индуцировала преждевременные роды [7, 38].

Установлены отдельные триггеры и механизмы реализации патогенетических эффектов цитокинового дисбаланса при преждевременных родах. Около 25% преждевременных родов связаны с инфекцией, которая инициирует в маточно-плацентарном бассейне иммунологические процессы, ведущие к патологическим сдвигам цитокиногенеза в сторону провоспалительных цитокинов [7, 39, 40]. Эти сдвиги выявляются не только в плазме крови женщин, но и во влагалище, и в амниотической жидкости [41—43].

Так, в клинических исследованиях установлена связь патогенной бактериальной флоры во влагалище и усиления индукции синтеза провоспалительных цитокинов IL-1β, IL-6, IL-8 и TNF-α у женщин с истмико-цервикальной недостаточностью, создающей высокий риск невынашивания беременности [32]. Увеличение продукции TNF-α у беременных женщин зарегистрировано не только при бактериальной, но при кандидозной инфекции [44]. В моделях на животных показано, что воспаление хориодецидуальной оболочки с накоплением провоспалительных цитокинов также может приводить к ускоренному созреванию шейки матки, разрыву плодных оболочек и преждевременным родам [41, 45, 46].

При наличии инфекционно-воспалительного фактора уровень цитокинов может превышать референтные значения во много раз как отражение активации адаптивного ответа на патоген. По результатам одного из исследований, уровень TNF-α в крови и цервикальной слизи возрастал в 11 раз, IL-1 — в 5 раз, а IL-6 — в 3 раза [47].

Предполагают, что усиление цитогенеза инфекционным агентом реализуется через цепь последовательных сдвигов в продукции и эффектах определенных цитокинов [48, 49]. Показано, что в децидуальной ткани патоген первоначально провоцирует образование макрофагами провоспалительных цитокинов, в первую очередь IL-1. Последний вызывает высвобождение медиаторов воспаления, включая простагландины и гистамин, и способствует синтезу протеиназ. Кроме того, IL-1 инициирует выработку TNF-α, с которым тесно связано повышение секреции IL-6. Являясь хемоаттрактантом нейтрофилов, IL-6 потенцирует дальнейшее усиление цитокиногенеза и синтез белков острой фазы воспаления, включая C-реактивный белок [20, 48].

В случае хориоамнионита провоспалительные медиаторы (IL-1β или TNF-α) и/или бактериальные продукты, включая эндотоксины, усиливают выработку IL-8, IL-6, IL-11 и других цитокинов [50].

Цитокиновый дисбаланс тесно связан не только с инфекционно-воспалительными процессами, но и с тромбофилией, ведущей к тромбообразованию в плаценте. Эти нарушения гемостаза, как известно, являются важными патогенетическими звеньями преждевременной родовой деятельности [35]. Расстройства микроциркуляции в маточно-плацентарном бассейне, дисбаланс коагуляционного гемостаза и тромботические осложнения у женщин с невынашиванием беременности ассоциируются с повышенным накоплением TNF-α и IL-6 даже при отсутствии признаков воспаления [10, 20]. При децидуальном кровоизлиянии тромбин активирует в децидуальных клетках сигнальные пути NF-κB и p38 MAPK, следствием чего является, в частности, усиление экспрессии генов IL-8 и IL-11 [50]. Эти интерлейкины, в свою очередь, рекрутируют нейтрофилы, продуцирующие различные матриксные металлопротеиназы, которые способствуют разрыву плодной оболочки и характерному для периода родов изменению шейки матки [50].

Наряду с классическими триггерами иммуноопосредованных процессов, включая инфекционные агенты, в формировании дезадаптивных воспалительных сдвигов при беременности очевидна роль таких метаболических заболеваний, как ожирение и диабет. У женщин с ожирением на фоне ряда нарушений регуляции гестации при транскрипционном анализе плаценты идентифицирована активация иммунного ответа с воспалением с повышенной экспрессией IL-1β и IL-8 [7, 51]. У детей, рожденных от матерей с ожирением, в пуповинной крови повышены уровни С-реактивного белка, IL-6 и TNF-α [7, 52].

Установлено также, что последовательное возрастание уровней IL-6 и TNF-α коррелирует с тяжестью осложняющих беременность гипертонических расстройств [53, 54]. У женщин с преэклампсией выявлен тяжелый системный воспалительный ответ, который включает возрастание лейкоцитов, активацию системы комплемента и повышение в крови уровней провоспалительных цитокинов IL-6, TNF-α и IL-8 [53, 54].

Вместе с тем показано, что с персистирующим воспалением и осложнениями беременности тесно связана недостаточность противоспалительного IL-10 [10]. Описана связь дефицита IL-10 с замершей беременностью [13]. Есть данные о связи подавления продукции IL-10 с преждевременной инициацией родового акта [41, 55]. По-видимому, определенный уровень IL-10 имеет решающее значение для пролонгирования беременности в связи со способностью подавлять продукцию провоспалительных цитокинов — IL-1, IL-6, TNF-α и простагландинов [36, 56, 57].

Эксперименты на мышах показали, что инициация преждевременных родов на фоне дезорганизации цитокиновых сигналов имеет место и при врожденных аномалиях плода, плацентарной недостаточности, отслойке плаценты [7, 39].

Механизмы реализации эффектов цитокинов при патологии беременности многообразны, так же, как и при нормальном развитии беременности. Известно, что IL-6 активирует продукцию антител и участвует в инициации острой фазы воспаления, IL-8 не только опосредует ангиогенез и инвазию трофобластов в норме, но может при этом избыточно стимулировать дегрануляцию нейтрофилов, IL-1 усиливает продукцию коллагеназ, эластаз и простагландинов [14, 58, 59]. Патологическое влияние IL-6 и TNF-α индуцирует апоптоз трофобластических клеток, а посредством изменения функциональной активности эндотелиоцитов повышает проницаемость кровеносных сосудов [54].

Многие нежелательные эффекты IL-1β, IL-6, IL-8 и TNF-α, связанные с преждевременными родами, реализуются через повышение в теле и шейке матки продукции простагландинов, матриксных металлопротеиназ и других эффекторных молекул [41, 45, 55]. Цитокин-опосредованная стимуляция простагландинов и матриксных металлопротеиназ ослабляет цервикальный и амниотический барьеры, способствуя микробной инвазии в амниотическую полость, активации миометрия, разрыву плодных оболочек и прерыванию беременности [36, 56, 60, 61]. Показано, что TNF-α и IL-1β в культуре клеток трофобласта и ворсин хориона снижают синтез и активность фермента 15-гидроксипростагландиндегидрогеназы, который участвует в превращении простагландинов в неактивные 15-кетаметаболиты. Эти эффекты TNF-α и IL-1β сопровождались увеличением экспрессии простагландина E2, вызывающего маточные сокращения, и ослаблялись IL-10 [62].

Провоспалительные цитокины IL-1β и TNF-α способны в децидуальных клетках пациенток с хориоамнионитом увеличивать экспрессию циклооксигеназы и гранулоцитарно-макрофагального колониестимулирующего фактора (granulocyte-macrophage colony stimulating factor, GM-CSF), который является мощным хемоаттрактантом и активатором нейтрофилов и моноцитов/макрофагов [50]. Результатом этих эффектов, вызываемых IL-1β и TNF-α, является нарастание выраженности воспаления и повышение связанного с этим риска преждевременных родов. Кроме того, IL-1β усиливает продукцию простагландина F [7, 30, 31], который, в свою очередь, подавляет экспрессию прогестероновых рецепторов децидуальных клеток [50].

Механизмы реализации патологических влияний цитокинов при беременности включают и дезорганизацию соединительнотканных структур. Зависимая от цитокинов продукция матриксных металлопротеиназ определяет деструкцию волокон коллагена и эластина в межклеточном матриксе шейки матки, вызывая укорочение ее длины в поздние сроки беременности [35, 48, 50]. Показано, что IL-1 стимулирует пролиферацию фибробластов, а также синтез коллагена и коллагеназы клетками соединительной ткани [48, 63]. Описано опосредованное снижение IL-1β экспрессии тканевого ингибитора металлопротеиназ и индукции биосинтеза коллагеназы TNF-α [48, 63].

Цитокины как прогностические маркеры невынашивания беременности

Несмотря на интерес многих исследователей к прогностической роли цитокинов при невынашивании беременности, данные относительно референтных значений уровней цитокинов при нормальной беременности и направленности их изменений при угрозе прерывания беременности остаются неоднозначными [9]. Нет единого мнения относительно того, какие цитокины и в какие сроки беременности обладают наибольшей прогностической ценностью в отношении невынашивания беременности [13, 41].

Начиная с прошлого века, наиболее активно обсуждается прогностическая роль IL-6 [41, 60, 64]. С одной стороны, B.D. Taylor и соавт. (2013) показали довольно высокую чувствительность и умеренную специфичность IL-6 как предиктора преждевременных родов [41]. По данным F. Schatz и соавт. (2016), уровни IL-6 в ВЖ, превышающие 250 пг/мл между 24-й и 36-й неделями, предсказывают последующие преждевременные роды с чувствительностью 50% и специфичностью 85% [50]. Значительное увеличение IL-6 в ВЖ у женщин с угрозой преждевременных родов описано E. Amabebe и соавт. (2019) [59]. В то же время в ряде публикаций последних лет сообщается об отсутствии клинически значимой динамики IL-6 при беременности [32, 36].

Высказано обоснованное мнение о существенном приросте IL-6 только в третьем триместре беременности, что ограничивает диагностическую ценность измерения уровня этого цитокина во втором триместре [41]. В дополнение к этому показано, что уровни IL-6 в ВЖ очень низки или вовсе не определяются, а увеличиваются только при симптомах вагинита [65, 66]. Отмечается более высокая прогностическая информативность этого цитокина в отношении преждевременных родов при исследовании амниотической жидкости [65, 67, 68]. Полагают, что диагностическое значение IL-6 повышается при наличии инфекционного процесса [41, 47—49, 60, 64]. Высказывается версия о связи риска преждевременных родов с полиморфизмом гена IL-6 [67]. В целом неоднозначность опубликованных данных заставляет сомневаться в целесообразности прогнозирования поздних выкидышей и преждевременных родов только по уровню IL-6.

Предпринимались попытки прогнозирования преждевременных родов на основе закономерностей связи IL-6 и IL-8 в ВЖ при микробной инвазии в амниотическую полость [65, 69, 70]. У женщин с внутриамниотической инфекцией, воспалением и преждевременными родами выявлено значительное повышение уровней IL-6 и IL-8 в ВЖ [65, 67, 68]. При этом ряд исследователей считает, что при определении интерлейкинов в ВЖ прогностическая значимость IL-6 снижается, а IL-8 возрастает [65, 66].

R. Manning и соавт. (2019) в проспективном исследовании продемонстрировали прогностическое значение IL-8 и IL-1β в отношении развития истмико-цервикальной недостаточности [32]. У женщин с преждевременными родами в анамнезе (в сроки гестации 22—24 недели) вследствие истмико-цервикальной недостаточности уровень этих интерлейкинов в ВЖ при преждевременных родах был ниже, чем при срочных родах на фоне стабильного содержания IL-6. Пониженные уровни IL-1β и/или IL-8 у женщин, родивших раньше срока, ассоциировались с большим количеством видов условно патогенных бактерий в ВЖ по сравнению с женщинами с доношенной беременностью. По мнению исследователей, это свидетельствует об ослаблении антимикробной защиты шейки матки и, как следствие, восходящей инфекции с последующей плацентарной патологией [32].

E. Amabebe и соавт. оценили прогностическое значение ряда цитокинов в ВЖ в отношении риска поздних выкидышей и преждевременных родов [36]. В этих случаях предикторами репродуктивных потерь были изменения концентраций хемокина из семейства IL-8, экспрессируемого и секретируемого T-клетками при активации (Regulated on Activation, Normal T-cell Expressed and Secreted, RANTES), и концентраций IL-1β в сроки 20,0—22,6 и 26,0—28,6 недель. Авторы полагают, что изменения этих цитокинов являются следствием хориодецидуального воспаления и могут использоваться при скрининге по невынашиванию беременности и поздним самопроизвольным выкидышам [36]. Ранее сопоставимые результаты получены в другом проспективном когортном исследовании [71]. Полагают, что возрастание уровня RANTES и IL-10 в сыворотке крови беременных женщин вместе с укорочением шейки матки прогнозирует угрозу поздних самопроизвольных выкидышей в течение 7 дней после выявления [36, 71].

В последние годы исследователи сходятся во мнении, что наибольшей прогностической ценности в отношении поздних выкидышей и преждевременных родов можно добиться при комплексной оценке цитокинов [8, 36, 41]. В связи с этим ведется поиск наиболее информативных сочетаний маркеров по результатам одновременного исследования множества цитокинов. E. Amabebe и соавт. описали значительное увеличение TNF-α, RANTES и IL-6 в ВЖ у женщин с угрозой преждевременных родов по сравнению с женщинами с нормальной беременностью. При этом уровни IL-1α, IL-1β и IL-8 не изменялись, а концентрации IL-2, IL-4, IL-10, IL-12 и IFN-γ были ниже предела обнаружения во всех образцах [59].

В недавнем проспективном исследовании изучена прогностическая роль 13 цитокинов у женщин с повышенным риском невынашивания беременности/поздних самопроизвольных выкидышей в период между 22-й и 36-й неделями гестации [14]. При определении методом иммуноферментного анализа чувствительность макрофагального белка воспаления 1α (macrophage inflammatory protein, MIP-1α), IL-6, IL-17α и фетального фибронектина составили 70, 80, 75 и 33%, а специфичность — 57, 65, 69 и 95% соответственно. Исследователи пришли к выводу, что лучшим прогностическим маркером является определение в ВЖ сочетания IL-6 и IL-17α [14].

Обсуждается вопрос о том, в каких биологических средах определение цитокинов является оптимальным. В литературе приводятся данные об измерениях концентраций цитокинов в ВЖ, амниотической жидкости и плазме (сыворотке) крови беременных женщин. Еще 10 лет назад B.D. Taylor и соавт. предложили оценивать цитокины в ВЖ, поскольку отбор этого биологического материала является относительно простым и малоинвазивным [41]. Кроме того, по мнению этих авторов, в случае локального воспаления исследование вагинального секрета может быть более информативным, чем исследование крови [41]. Принципиально за последние годы мнение большинства специалистов не изменилось: по-прежнему ВЖ рассматривается в качестве оптимального биологического материала для оценки уровня цитокинов как предикторов невынашивания беременности [8, 14].

Следует отметить, что имеются различия в представленных в литературе уровнях цитокинов в одних и тех же биологических жидкостях. Полагают, что эти различия могут быть следствием неоднородности методологий, гестационных сроков, определенных для отбора проб, критериев включения в исследование, а также вариабельности методов измерений [32, 36, 41]. С момента постановки обсуждаемой проблемы методы определения цитокинов эволюционировали от иммуноблотинга [64], различных вариантов иммуноферментного анализа [12, 20, 32, 60, 65] до мультиплексной электрохемилюминесценции и проточной цитометрии [8, 14, 41, 59]. В настоящее время методы измерения концентрации цитокинов в биологических материалах беременных женщин остаются не стандартизованными.

Заключение

Цитокины участвуют в регуляции многих адаптивных преобразований в гестационном периоде: в эмбриогенезе, формировании плаценты, развитии плода, созревании шейки матки и родах. На всем протяжении беременности усилен цитокиногенез с динамическим балансом провоспалительных и противовоспалительных цитокинов. Провоспалительные цитокины преобладают на этапе имплантации бластоцисты. Дальнейшее течение беременности характеризуется системным и локальным сдвигом баланса в сторону противовоспалительных цитокинов, тогда как для родов характерно преобладание провоспалительных цитокинов.

Невынашивание беременности, как самопроизвольный выкидыш, так и преждевременные роды, сопровождаются неадекватным повышением продукции провоспалительных цитокинов, сопряженным с инфекционно-воспалительными процессами родовых путей, нарушениями гемостаза, дезорганизацией соединительнотканных структур шейки матки и другими патологическими отклонениями.

Наиболее информативной для выявления риска невынашивания беременности является комплексная оценка цитокинового статуса женщин. Определенные перспективы имеет изучение комбинации IL-1β, IL-6, IL-8, IL-17α, TNF-α и IL-10. Оптимальной средой для анализа, по-видимому, следует считать влагалищную жидкость, поскольку этот биологический материал может быть получен рутинным малоинвазивным способом. Измерение уровня цитокинов может быть выполнено с применением современных иммунохимических методов, доступных для практического здравоохранения.

Таким образом, углубленная оценка динамики цитокиногенеза является актуальной в плане перспектив своевременной диагностики и профилактики невынашивания беременности. Представленный обзор отражает интерес исследователей к этому вопросу и подтверждает необходимость дальнейших исследований.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования — Дударева Ю.А.

Сбор и обработка материала — Раченкова Т.В.

Написание текста — Замятина С.В., Волобой Н.Л.

Редактирование — Ельчанинова С.А., Дударева Ю.А.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. PrabhuDas M, Bonney E, Caron K, Dey S, Erlebacher A, Fazleabas A, Fisher S, Golos T, Matzuk M, McCune JM, Mor G, Schulz L, Soares M, Spencer T, Strominger J, Way SS, Yoshinaga K.. Immune mechanisms at the maternal-fetal interface: perspectives and challenges. Nature Immunology. 2015;16(4):328-334.  https://doi.org/10.1038/ni.3131
  2. Wei Y, Ding J, Li J, Cai S, Liu S, Hong L, Yin T, Zhang Y, Diao L. Metabolic Reprogramming of Immune Cells at the Maternal-Fetal Interface and the Development of Techniques for Immunometabolism. Frontiers in Immunology. 2021;12:717014. https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.717014
  3. Aghaeepour N, Ganio EA, Mcilwain D, Tsai AS, Tingle M, Van Gassen S, Gaudilliere DK, Baca Q, McNeil L, Okada R, Ghaemi MS, Furman D, Wong RJ, Winn VD, Druzin ML, El-Sayed YY, Quaintance C, Gibbs R, Darmstadt GL, Shaw GM, Stevenson DK, Tibshirani R, Nolan GP, Lewis DB, Angst MS, Gaudilliere B. An immune clock of human pregnancy. Science Immunology. 2017;2(15): eaan2946. https://doi.org/10.1126/sciimmunol.aan2946
  4. Abu-Raya B., Michalski C., Sadarangani M., Lavoie PM. Maternal Immunological Adaptation during Normal Pregnancy. Frontiers in Immunology. 2020;11:575197. https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.575197
  5. Доброхотова Ю.Э., Ганковская Л.В., Бахарева И.В., Свитич О.А., Малушенко С.В., Магомедова А.М. Роль иммунных механизмов в патогенезе невынашивания беременности. Акушерство и гинекология. 2016;7:5-10.  https://doi.org/10.18565/aig.2016.7.5-10
  6. Савельева Г.М., Сухих Г.Т., Серов В.Н., Радзинский В.Е. Акушерство: национальное руководство. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2021.
  7. Yockey LJ, Iwasaki A. Interferons and Proinflammatory Cytokines in Pregnancy and Fetal Development. Immunity. 2018;49(3):397-412.  https://doi.org/10.1016/j.immuni.2018.07.017
  8. Ashford KB, Chavan N, Ebersole JL, Wiggins AT, Sharma S, McCubbin A, Barnett J, O’Brien J. Patterns of Systemic and Cervicovaginal Fluid Inflammatory Cytokines throughout Pregnancy. American Journal of Perinatology. 2018;35(5):455-462.  https://doi.org/10.1055/s-0037-1608677
  9. Buxton MA, Meraz-Cruz N, Sánchez BN, Foxman B, Gronlund CJ, Beltran-Montoya J, Castillo-Castrejon M, O’Neill MS, Vadillo-Ortega F. Repeated Measures of Cervicovaginal Cytokines during Healthy Pregnancy: Understanding «Normal» Inflammation to Inform Future Screening. American Journal of Perinatology. 2020; 37(6):613-620.  https://doi.org/10.1055/s-0039-1685491
  10. Петров Ю.А., Арндт И.Г., Бахтина А.С. Иммунологические аспекты невынашивания беременности. Главный врач Юга России. 2021;1(76):38-41. 
  11. Fu B, Li X, Sun R, Tong X, Ling B, Tian Z, Wei H. Natural killer cells promote immune tolerance by regulating inflammatory TH17 cells at the human maternal-fetal interface. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA 2013;110(3):E231-E240. https://doi.org/10.1073/pnas.1206322110
  12. Pitman H, Innes BA, Robson SC, Bulmer JN, Lash GE. Altered expression of interleukin-6, interleukin-8 and their receptors in decidua of women with sporadic miscarriage. Human Reproduction. 2013;28(8):2075-2086. https://doi.org/10.1093/humrep/det233
  13. Lash GE, Ernerudh J. Decidual cytokines and pregnancy complications: focus on spontaneous miscarriage. Journal of Reproductive Immunology. 2015;108:83-89.  https://doi.org/10.1016/j.jri.2015.02.003
  14. Park S, You YA, Yun H, Choi SJ, Hwang HS, Choi SK, Lee SM, Kim YJ. Cervicovaginal fluid cytokines as predictive markers of preterm birth in symptomatic women. Obstetrics and Gynecology Science. 2020;63(4):455-463.  https://doi.org/10.5468/ogs.19131
  15. Rozner AE, Durning M, Kropp J, Wiepz GJ, Golos TG. Macrophages modulate the growth and differentiation of rhesus monkey embryonic trophoblasts. American Journal of Reproductive Immunology. 2016;76(5):364-375.  https://doi.org/10.1111/aji.12564
  16. Енькова Е.В., Грибанова В.А., Воронина Е.В. и др. Анализ цитокинового статуса при осложненной беременности. Системный анализ и управление в биомедицинских системах. 2011;10(4): 930-932. 
  17. Левкович М.А., Нефедова Д. Д., Цатурян Л. Д., Бердичевская Е. М. Иммунологические аспекты проблемы невынашивания беременности. Современные проблемы науки и образования. 2016;3:186. (In Russ.).
  18. Лебедева Е.И., Яворская С.Д., Момот А.П., Фадеева Н.И., Кузнецова Т.А. Улучшение перинатальных исходов у пациенток с невынашиванием беременности за счет коррекции фибринолитических реакций. Бюллетень медицинской науки. 2021; 3(23):4-10.  https://doi.org/10.31684/25418475_2021_3_4
  19. Начаров Ю.В., Соколова Т.М., Усова А.В. Содержание про- и противовоспалительных цитокинов у женщин с невынашиванием беременности после проведения сохраняющей терапии. Вестник новых медицинских технологий. 2008;15(2):50-52. 
  20. Мурзабекова Г.С., Тлеубердиева Ф.Н., Дзоз Л.С. Изменение уровней цитокинов ФНО-α и ИЛ-6 у беременных с невынашиванием беременности, инфицированных генитальным герпесом. Вестник Новосибирского государственного университета. Серия: Биология, клиническая медицина. 2007;5(3):57-59. 
  21. Robinson DP, Klein SL. Pregnancy and pregnancy-associated hormones alter immune responses and disease pathogenesis. Hormones and Behavior. 2012;62(3):263-271.  https://doi.org/10.1016/j.yhbeh.2012.02.023
  22. Kumar P, Magon N. Hormones in pregnancy. Nigerian Medical Journal. 2012;53(4):179-183.  https://doi.org/10.4103/0300-1652.107549
  23. De Oliveira LG, Lash GE, Murray-Dunning C, Bulmer JN, Innes BA, Searle RF, Sass N, Robson SC. Role of interleukin 8 in uterine natural killer cell regulation of extravillous trophoblast cell invasion. Placenta. 2010;31(7):595-601.  https://doi.org/10.1016/j.placenta.2010.04.012
  24. Heinrich PC, Behrmann I, Haan S, Hermanns HM, Müller-Newen G, Schaper F. Principles of interleukin (IL)-6-type cytokine signalling and its regulation. Biochemical Journal 2003;374(1):1-20.  https://doi.org/10.1042/BJ20030407
  25. Lin MT, Lin BR, Chang CC, Chu CY, Su HJ, Chen ST, Jeng YM, Kuo ML. IL-6 induces AGS gastric cancer cell invasion via activation of the c-Src/RhoA/ROCK signaling pathway. International Journal of Cancer. 2007;120(12):2600-2608. https://doi.org/10.1002/ijc.22599
  26. Hadley EE, Richardson LS, Torloni MR, Menon R. Gestational tissue inflammatory biomarkers at term labor: A systematic review of literature. American Journal of Reproductive Immunology. 2018; 79(2):10.1111/aji.12776. https://doi.org/10.1111/aji.12776
  27. Menon R, Bonney EA, Condon J, Mesiano S, Taylor RN. Novel concepts on pregnancy clocks and alarms: redundancy and synergy in human parturition. Human Reproduction Update. 2016;22(5):535-560.  https://doi.org/10.1093/humupd/dmw022
  28. Christiaens I, Zaragoza DB, Guilbert L, Robertson SA, Mitchell BF, Olson DM. Inflammatory processes in preterm and term parturition. Journal of Reproductive Immunology. 2008;79(1):50-57.  https://doi.org/10.1016/j.jri.2008.04.002
  29. Rinaldi SF, Makieva S, Saunders PT, Rossi AG, Norman JE. Immune cell and transcriptomic analysis of the human decidua in term and preterm parturition. Molecular Human Reproduction. 2017; 23(10):708-724.  https://doi.org/10.1093/molehr/gax038
  30. Oger S, Méhats C, Dallot E, Ferré F, Leroy MJ. Interleukin-1beta induces phosphodiesterase 4B2 expression in human myometrial cells through a prostaglandin E2- and cyclic adenosine 3’,5’-monophosphate-dependent pathway. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 2002;87(12):5524-5531. https://doi.org/10.1210/jc.2002-020575
  31. Tribe RM, Moriarty P, Dalrymple A, Hassoni AA, Poston L. Interleukin-1beta induces calcium transients and enhances basal and store operated calcium entry in human myometrial smooth muscle. Biology of Reproduction. 2003;68(5):1842-1849. https://doi.org/10.1095/biolreprod.102.011403
  32. Manning R, James CP, Smith MC, Innes BA, Stamp E, Peebles D, Bajaj-Elliott M, Klein N, Bulmer JN, Robson SC, Lash GE. Predictive value of cervical cytokine, antimicrobial and microflora levels for pre-term birth in high-risk women. Scientific Reports. 2019; 9(1):11246. https://doi.org/10.1038/s41598-019-47756-7
  33. DiGiulio DB, Callahan BJ, McMurdie PJ, Costello EK, Lyell DJ, Robaczewska A, Sun CL, Goltsman DS, Wong RJ, Shaw G, Stevenson DK, Holmes SP, Relman DA. Temporal and spatial variation of the human microbiota during pregnancy. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. 2015;112(35):11060-11065. https://doi.org/10.1073/pnas.1502875112
  34. Kindinger LM, MacIntyre DA, Lee YS, Marchesi JR, Smith A, McDonald JA, Terzidou V, Cook JR, Lees C, Israfil-Bayli F, Faiza Y, Toozs-Hobson P, Slack M, Cacciatore S, Holmes E, Nicholson JK, Teoh TG, Bennett PR. Relationship between vaginal microbial dysbiosis, inflammation, and pregnancy outcomes in cervical cerclage. Science Translational Medicine. 2016;8(350):350ra102. https://doi.org/10.1126/scitranslmed.aag1026
  35. Колесник Н.Н. Локальные и системные цитокины при истмико-цервикальной недостаточности в разные гестационные сроки. Здоровье женщины. 2015;10(106):108. 
  36. Amabebe E, Chapman DR, Stern VL, Stafford G, Anumba DOC. Mid-gestational changes in cervicovaginal fluid cytokine levels in asymptomatic pregnant women are predictive markers of inflammation-associated spontaneous preterm birth. Journal of Reproductive Immunology. 2018;126:1-10.  https://doi.org/10.1016/j.jri.2018.01.001
  37. Zenclussen AC, Hämmerling GJ. Cellular Regulation of the Uterine Microenvironment That Enables Embryo Implantation. Frontiers in Immunology. 2015;6:321.  https://doi.org/10.3389/fimmu.2015.00321
  38. Sadowsky DW, Adams KM, Gravett MG, Witkin SS, Novy MJ. Preterm labor is induced by intraamniotic infusions of interleukin-1beta and tumor necrosis factor-alpha but not by interleukin-6 or interleukin-8 in a nonhuman primate model. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 2006;195(6):1578-1589. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2006.06.072
  39. Agrawal V, Hirsch E. Intrauterine infection and preterm labor. Seminars in Fetal and Neonatal Medicine. 2012;17(1):12-19.  https://doi.org/10.1016/j.siny.2011.09.001
  40. Romero R, Hassan SS, Gajer P, Tarca AL, Fadrosh DW, Bieda J, Chaemsaithong P, Miranda J, Chaiworapongsa T, Ravel J. The vaginal microbiota of pregnant women who subsequently have spontaneous preterm labor and delivery and those with a normal delivery at term. Microbiome. 2014;2:18.  https://doi.org/10.1186/2049-2618-2-18
  41. Taylor BD, Holzman CB, Fichorova RN, Tian Y, Jones NM, Fu W, Senagore PK. Inflammation biomarkers in vaginal fluid and preterm delivery. Human Reproduction. 2013;28(4):942-952.  https://doi.org/10.1093/humrep/det019
  42. Gargano JW, Holzman C, Senagore P, Thorsen P, Skogstrand K, Hougaard DM, Rahbar MH, Chung H. Mid-pregnancy circulating cytokine levels, histologic chorioamnionitis and spontaneous preterm birth. Journal of Reproductive Immunology. 2008;79(1):100-110.  https://doi.org/10.1016/j.jri.2008.08.006
  43. Puchner K, Iavazzo C, Gourgiotis D, Boutsikou M, Baka S, Hassiakos D, Kouskouni E, Economou E, Malamitsi-Puchner A, Creatsas G. Mid-trimester amniotic fluid interleukins (IL-1β, IL-10 and IL-18) as possible predictors of preterm delivery. In Vivo. 2011; 25(1):141-148. 
  44. Савченко Т.Н., Точиева М.Х., Агаева М.И., Дергачева И., Шмарина Г.В., Кофиади И.А. Цитокиновый статус у женщин с невынашиванием беременности и сопутствующей кандидозной инфекцией. Лечение и профилактика. 2015;2(14):24-27. 
  45. Kemp MW, Saito M, Newnham JP, Nitsos I, Okamura K, Kallapur SG. Preterm birth, infection, and inflammation advances from the study of animal models. Reproductive Sciences. 2010;17(7):619-628.  https://doi.org/10.1177/1933719110373148
  46. Grigsby PL, Novy MJ, Adams Waldorf KM, Sadowsky DW, Gravett MG. Choriodecidual inflammation: a harbinger of the preterm labor syndrome. Reproductive Sciences. 2010;17(1):85-94.  https://doi.org/10.1177/1933719109348025
  47. Терешкина И. В., Клементе Апумайта Х. М., Гречканев Г.О. Привычное невынашивание аутоиммунного и инфекционно-аутоиммунного генеза — эффективность озонотерапии. Медицинский альманах. 2009;4(9):74-77. 
  48. Новикова С.В., Дальниковская Л.А., Будыкина Т.С., Бирюкова Н.В., Климова И.В. Диагностическое и прогностическое значение исследования биохимических маркеров угрозы прерывания беременности у женщин с укороченной шейкой матки. Российский вестник акушера-гинеколога. 2020;20(4):18-26.  https://doi.org/
  49. Deng W, Yuan J, Cha J, Sun X, Bartos A, Yagita H, Hirota Y, Dey SK. Endothelial Cells in the Decidual Bed Are Potential Therapeutic Targets for Preterm Birth Prevention. Cell Reports. 2019; 27(6): 1755-1768.e4.  https://doi.org/10.1016/j.celrep.2019.04.049
  50. Schatz F, Guzeloglu-Kayisli O, Arlier S, Kayisli UA, Lockwood CJ. The role of decidual cells in uterine hemostasis, menstruation, inflammation, adverse pregnancy outcomes and abnormal uterine bleeding. Human Reproduction Update. 2016;22(4):497-515.  https://doi.org/10.1093/humupd/dmw004
  51. Altmäe S, Segura MT, Esteban FJ, Bartel S, Brandi P, Irmler M, Beckers J, Demmelmair H, López-Sabater C, Koletzko B, Krauss-Etschmann S, Campoy C. Maternal Pre-Pregnancy Obesity Is Associated with Altered Placental Transcriptome. PLoS One. 2017; 12(1):e0169223. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0169223
  52. Dosch NC, Guslits EF, Weber MB, Murray SE, Ha B, Coe CL, Auger AP, Kling PJ. Maternal Obesity Affects Inflammatory and Iron Indices in Umbilical Cord Blood. The Journal of Pediatrics. 2016;172:20-28.  https://doi.org/10.1016/j.jpeds.2016.02.023
  53. Wang Y, Shi D, Chen L. Lipid profile and cytokines in hypertension of pregnancy: A comparison of preeclampsia therapies. The Journal of Clinical Hypertension (Greenwich). 2018;20(2):394-399.  https://doi.org/10.1111/jch.13161
  54. Aggarwal R, Jain AK, Mittal P, Kohli M, Jawanjal P, Rath G. Association of pro- and anti-inflammatory cytokines in preeclampsia. Journal of Clinical Laboratory Analysis. 2019;33(4):e22834. https://doi.org/10.1002/jcla.22834
  55. Romero R, Gotsch F, Pineles B, Kusanovic JP. Inflammation in pregnancy: its roles in reproductive physiology, obstetrical complications, and fetal injury. Nutrition Reviews. 2007;65(12 Pt 2):S194-S202. https://doi.org/10.1111/j.1753-4887.2007.tb00362.x
  56. Vrachnis N, Karavolos S, Iliodromiti Z, Sifakis S, Siristatidis C, Mastorakos G, Creatsas G. Review: Impact of mediators present in amniotic fluid on preterm labour. In Vivo. 2012;26(5):799-812. 
  57. Nenadić DB, Pavlović MD. Cervical fluid cytokines in pregnant women: Relation to vaginal wet mount findings and polymorphonuclear leukocyte counts. European Journal of Obstetrics and Gynecology and Reproductive Biology. 2008;140(2):165-170.  https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2008.02.020
  58. Zhang J, Dunk CE, Lye SJ. Sphingosine signalling regulates decidual NK cell angiogenic phenotype and trophoblast migration. Human Reproduction. 2013;28(11):3026-3037. https://doi.org/10.1093/humrep/det339
  59. Amabebe E, Reynolds S, He X, Wood R, Stern V, Anumba DOC. Infection/inflammation-associated preterm delivery within 14 days of presentation with symptoms of preterm labour: A multivariate predictive model. PLoS One. 2019;14(9):e0222455. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0222455
  60. Kalinka J, Sobala W, Wasiela M, Brzezińska-Błaszczyk E. Decreased proinflammatory cytokines in cervicovaginal fluid, as measured in midgestation, are associated with preterm delivery. American Journal of Reproductive Immunology. 2005;54(2):70-76.  https://doi.org/10.1111/j.1600-0897.2005.00289.x
  61. Witkin SS, Mendes-Soares H, Linhares IM, Jayaram A, Ledger WJ, Forney LJ. Influence of vaginal bacteria and D- and L-lactic acid isomers on vaginal extracellular matrix metalloproteinase inducer: implications for protection against upper genital tract infections. mBio. 2013;4(4):e00460-13.  https://doi.org/10.1128/mBio.00460-13
  62. Pomini F, Caruso A, Challis JR. Interleukin-10 modifies the effects of interleukin-1beta and tumor necrosis factor-alpha on the activity and expression of prostaglandin H synthase-2 and the NAD+-dependent 15-hydroxyprostaglandin dehydrogenase in cultured term human villous trophoblast and chorion trophoblast cells. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 1999;84(12):4645-4651. https://doi.org/10.1210/jcem.84.12.6188
  63. Diago Almela VJ, Martinez-Varea A, Perales-Puchalt A, Alonso-Diaz R, Perales A. Good prognosis of cerclage in cases of cervical insufficiency when intra-amniotic inflammation/infection is ruled out. Journal of Maternal-Fetal and Neonatal Medicine. 2015;28(13): 1563-1568. https://doi.org/10.3109/14767058.2014.960836
  64. Romero R, Avila C, Santhanam U, Sehgal PB. Amniotic fluid interleukin 6 in preterm labor. Association with infection. Journal of Clinical Investigation. 1990;85(5):1392-1400. https://doi.org/10.1172/JCI114583
  65. Holst RM, Mattsby-Baltzer I, Wennerholm UB, Hagberg H, Jacobsson B. Interleukin-6 and interleukin-8 in cervical fluid in a population of Swedish women in preterm labor: relationship to microbial invasion of the amniotic fluid, intra-amniotic inflammation, and preterm delivery. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 2005;84(6):551-557.  https://doi.org/10.1111/j.0001-6349.2005.00708.x
  66. Donders GG, Vereecken A, Bosmans E, Dekeersmaecker A, Salembier G, Spitz B. Definition of a type of abnormal vaginal flora that is distinct from bacterial vaginosis: aerobic vaginitis. BJOG: An International Journal of Obstetrics and Gynaecology. 2002;109(1):34-43.  https://doi.org/10.1111/j.1471-0528.2002.00432.x
  67. Vogel I, Thorsen P, Curry A, Sandager P, Uldbjerg N. Biomarkers for the prediction of preterm delivery. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 2005;84(6):516-525.  https://doi.org/10.1111/j.0001-6349.2005.00771.x
  68. Jacobsson B, Mattsby-Baltzer I, Andersch B, Bokström H, Holst RM, Nikolaitchouk N, Wennerholm UB, Hagberg H. Microbial invasion and cytokine response in amniotic fluid in a Swedish population of women with preterm prelabor rupture of membranes. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 2003;82(5):423-431.  https://doi.org/10.1034/j.1600-0412.2003.00157.x
  69. Rizzo G, Capponi A, Vlachopoulou A, Angelini E, Grassi C, Romanini C. Ultrasonographic assessment of the uterine cervix and interleukin-8 concentrations in cervical secretions predict intrauterine infection in patients with preterm labor and intact membranes. Ultrasound in Obstetrics and Gynecology 1998;12(2):86-92.  https://doi.org/10.1046/j.1469-0705.1998.12020086.x
  70. Rizzo G, Capponi A, Rinaldo D, Tedeschi D, Arduini D, Romanini C. Interleukin-6 concentrations in cervical secretions identify microbial invasion of the amniotic cavity in patients with preterm labor and intact membranes. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 1996;175(4 Pt 1):812-817.  https://doi.org/10.1016/s0002-9378(96)80004-4
  71. Tsiartas P, Holst RM, Wennerholm UB, Hagberg H, Hougaard DM, Skogstrand K, Pearce BD, Thorsen P, Kacerovsky M, Jacobsson B. Prediction of spontaneous preterm delivery in women with threatened preterm labour: a prospective cohort study of multiple proteins in maternal serum. BJOG. 2012;119(7):866-873.  https://doi.org/10.1111/j.1471-0528.2012.03328.x
  • Hartman EK, Eslick GD. The prognosis of women diagnosed with breast cancer before, during and after pregnancy: a meta-analysis. Breast Cancer Research and Treatment. 2016;160(2):347-360.  https://doi.org/10.1007/s10549-016-3989-3
  • Khazzaka A, Rassy E, Sleiman Z, Boussios S, Pavlidis N. Systematic review of fetal and placental metastases among pregnant patients with cancer. Cancer Treatment Reviews. 2022;104:102356. https://doi.org/10.1016/j.ctrv.2022.102356
  • National Cancer Insitute. Accessed January 17, 2024. https://www.cancer.gov/about-cancer/causes-prevention/genetics/
  • Michaan N, Leshno M, Cohen Y, Safra T, Peleg-Hasson S, Laskov I, Grisaru D. Preimplantation genetic testing for BRCA gene mutation carriers: a cost effectiveness analysis. Reproductive Biology and Endocrinology. 2021;19(1):153.  https://doi.org/10.1186/s12958-021-00827-9
  • Hartnett KP, Mertens AC, Kramer MR, Lash TL, Spencer JB, Ward KC, Howards PP. Pregnancy after cancer: Does timing of conception affect infant health? Cancer. 2018;124(22):4401-4407. https://doi.org/10.1002/cncr.31732
  • Buonomo B, Brunello A, Noli S, Miglietta L, Del Mastro L, Lambertini M, Peccatori FA. Tamoxifen Exposure during Pregnancy: A Systematic Review and Three More Cases. Breast Care. 2020;15(2): 148-156.  https://doi.org/10.1159/000501473
  • Braems G, Denys H, De Wever O, Cocquyt V, Van den Broecke R. Use of tamoxifen before and during pregnancy. The Oncologist. 2011;16(11):1547-51.  https://doi.org/10.1634/theoncologist.2011-0121
  • Egashira K, Hiasa K, Yokota N, Kawamura T, Matsushita T, Okugawa K, Yahata H, Sonoda K, Kato K. Infertility after abdominal trachelectomy. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 2018; 97(11):1358-1364. https://doi.org/10.1111/aogs.13429
  • Schimberni M, Morgia F, Colabianchi J, Giallonardo A, Piscitelli C, Giannini P, Montigiani M, Sbracia M. Natural-cycle in vitro fertilization in poor responder patients: a survey of 500 consecutive cycles. Fertility and Sterility. 2009;92(4):1297-1301. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2008.07.1765
  • De Marco MP, Montanari G, Ruscito I, Giallonardo A, Ubaldi FM, Rienzi L, Costanzi F, Caserta D, Schimberni M, Schimberni M. Natural Cycle Results in Lower Implantation Failure than Ovarian Stimulation in Advanced-Age Poor Responders Undergoing IVF: Fertility Outcomes from 585 Patients. Reproductive Sciences. 2021; 28(7):1967-1973. https://doi.org/10.1007/s43032-020-00455-5
  • Chan JL, Johnson LN, Efymow BL, Sammel MD, Gracia CR. Outcomes of ovarian stimulation after treatment with chemotherapy. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2015;32(10):1537-1545. https://doi.org/10.1007/s10815-015-0575-2
  • Checa Vizcaíno MA, Corchado AR, Cuadri ME, Comadran MG, Brassesco M, Carreras R. The effects of letrozole on ovarian stimulation for fertility preservation in cancer-affected women. Reproductive Biomedicine Online. 2012;24(6):606-610.  https://doi.org/10.1016/j.rbmo.2012.02.020
  • Oktay K, Türkçüoğlu I, Rodriguez-Wallberg KA. GnRH agonist trigger for women with breast cancer undergoing fertility preservation by aromatase inhibitor/FSH stimulation. Reproductive Biomedicine Online. 2010;20(6):783-788.  https://doi.org/10.1016/j.rbmo.2010.03.004
  • Azim AA, Costantini-Ferrando M, Oktay K. Safety of fertility preservation by ovarian stimulation with letrozole and gonadotropins in patients with breast cancer: a prospective controlled study. Journal of Clinical Oncology. 2008;26(16):2630-2635. https://doi.org/10.1200/JCO.2007.14.8700
  • Turan V, Bedoschi G, Moy F, Oktay K. Safety and feasibility of performing two consecutive ovarian stimulation cycles with the use of letrozole-gonadotropin protocol for fertility preservation in breast cancer patients. Fertility and Sterility. 2013;100(6):1681-5.e1.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2013.08.030
  • Rosenberg E, Fredriksson A, Einbeigi Z, Bergh C, Strandell A. No increased risk of relapse of breast cancer for women who give birth after assisted conception. Human Reproduction Open. 2019;(4): hoz039. https://doi.org/10.1093/hropen/hoz039
  • Sonigo C, Sermondade N, Calvo J, Benard J, Sifer C, Grynberg M. Impact of letrozole supplementation during ovarian stimulation for fertility preservation in breast cancer patients. European Journal of Obstetrics and Gynecology and Reproductive Biology. 2019;4:100049. https://doi.org/10.1016/j.eurox.2019.100049
  • Bonardi B, Massarotti C, Bruzzone M, Goldrat O, Mangili G, Anserini P, Spinaci S, Arecco L, Del Mastro L, Ceppi M, Demeestere I, Lambertini M. Efficacy and Safety of Controlled Ovarian Stimulation With or Without Letrozole Co-administration for Fertility Preservation: A Systematic Review and Meta-Analysis. Frontiers in Oncology. 2020;10:574669. https://doi.org/10.3389/fonc.2020.574669
  • Chian RC, Buckett WM, Tulandi T, Tan SL. Prospective randomized study of human chorionic gonadotrophin priming before immature oocyte retrieval from unstimulated women with polycystic ovarian syndrome. Human Reproduction. 2000;15(1):165-170.  https://doi.org/10.1093/humrep/15.1.165
  • Holzer H, Scharf E, Chian RC, Demirtas E, Buckett W, Tan SL. In vitro maturation of oocytes collected from unstimulated ovaries for oocyte donation. Fertility and Sterility. 2007;88(1):62-67.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2006.11.087
  • Kedem A, Yerushalmi GM, Brengauz M, Raanani H, Orvieto R, Hourvitz A, Meirow D. Outcome of immature oocytes collection of 119 cancer patients during ovarian tissue harvesting for fertility preservation. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2018;35(5): 851-856.  https://doi.org/10.1007/s10815-018-1153-1
  • Park CW, Lee SH, Yang KM, Lee IH, Lim KT, Lee KH, Kim TJ. Cryopreservation of in vitro matured oocytes after ex vivo oocyte retrieval from gynecologic cancer patients undergoing radical surgery. Clinical and Experimental Reproductive Medicine. 2016;43(2):119-125.  https://doi.org/10.5653/cerm.2016.43.2.119
  • Kawamura K, Cheng Y, Kawamura N, Takae S, Okada A, Kawagoe Y, Mulders S, Terada Y, Hsueh AJ. Pre-ovulatory LH/hCG surge decreases C-type natriuretic peptide secretion by ovarian granulosa cells to promote meiotic resumption of pre-ovulatory oocytes. Human Reproduction. 2011;26(11):3094-3101. https://doi.org/10.1093/humrep/der282
  • Mohsenzadeh M, Khalili MA, Tabibnejad N, Yari N, Agha-Rahimi A, Karimi-Zarchi M. Embryo Cryopreservation Following In-Vitro Maturation for Fertility Preservation in a Woman with Mullerian Adenosarcoma: A Case Report. Journal of Human Reproductive Sciences. 2017;10(2):138-141.  https://doi.org/10.4103/jhrs.JHRS_93_16
  • Kirillova A, Bunyaeva E, Van Ranst H, Khabas G, Farmakovskaya M, Kamaletdinov N, Nazarenko T, Abubakirov A, Sukhikh G, Smitz JEJ. Improved maturation competence of ovarian tissue oocytes using a biphasic in vitro maturation system for patients with gynecological malignancy: a study on sibling oocytes. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2021;38(6):1331-1340. https://doi.org/10.1007/s10815-021-02118-z
  • Sanchez F, Le AH, Ho VNA, Romero S, Van Ranst H, De Vos M, Gilchrist RB, Ho TM, Vuong LN, Smitz J. Biphasic in vitro maturation (CAPA-IVM) specifically improves the developmental capacity of oocytes from small antral follicles. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2019;36(10):2135-2144. https://doi.org/10.1007/s10815-019-01551-5
  • De Roo C, Tilleman K. In Vitro Maturation of Oocytes Retrieved from Ovarian Tissue: Outcomes from Current Approaches and Future Perspectives. Journal of Clinical Medicine. 2021;10(20):4680. https://doi.org/10.3390/jcm10204680
  • Диникина Ю.В., Белогурова М.Б., Говоров И.Е., Гамзатова З.Х., Первунина Т.М., Комличенко Э.В. Криоконсервация ткани яичника у девочек с онкологической патологией: мультидисциплинарная программа. Российский журнал детской гематологии и онкологии. 2019;6(3):59-67.  https://doi.org/10.21682/2311-1267-2019-6-3-59-67
  • Абакушина Е.В., Отой Т., Каприн А.Д. Возможности восстановления репродуктивной функции онкологических больных за счет трансплантации криоконсервированной ткани яичника. Гены и клетки. 2015;10(1):18-27. 
  • Gougeon A, Chainy GB. Morphometric studies of small follicles in ovaries of women at different ages. Journal of Reproduction and Fertility. 1987;81(2):433-442.  https://doi.org/10.1530/jrf.0.0810433
  • Dolmans MM, von Wolff M, Poirot C, Diaz-Garcia C, Cacciottola L, Boissel N, Liebenthron J, Pellicer A, Donnez J, Andersen CY. Transplantation of cryopreserved ovarian tissue in a series of 285 women: a review of five leading European centers. Fertility and Sterility. 2021;115(5):1102-1115. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2021.03.008
  • Donnez J, Dolmans MM. Ovarian cortex transplantation: 60 reported live births brings the success and worldwide expansion of the technique towards routine clinical practice. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2015;32(8):1167-1170. https://doi.org/10.1007/s10815-015-0544-9
  • Roness H, Meirow D. Fertility preservation: Follicle reserve loss in ovarian tissue transplantation. Reproduction. 2019;158(5):F35-F44.  https://doi.org/10.1530/REP-19-0097
  • Nisolle M, Casanas-Roux F, Qu J, Motta P, Donnez J. Histologic and ultrastructural evaluation of fresh and frozen-thawed human ovarian xenografts in nude mice. Fertility and Sterility. 2000;74(1): 122-129.  https://doi.org/10.1016/s0015-0282(00)00548-3
  • Tanaka A, Nakamura H, Tabata Y, Fujimori Y, Kumasawa K, Kimura T. Effect of sustained release of basic fibroblast growth factor using biodegradable gelatin hydrogels on frozen-thawed human ovarian tissue in a xenograft model. The Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 2018;44(10):1947-1955. https://doi.org/10.1111/jog.13726
  • Wallace WH, Kelsey TW. Human ovarian reserve from conception to the menopause. PLoS One. 2010;5(1):e8772. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0008772
  • Dolmans MM, Marinescu C, Saussoy P, Van Langendonckt A, Amorim C, Donnez J. Reimplantation of cryopreserved ovarian tissue from patients with acute lymphoblastic leukemia is potentially unsafe. Blood. 2010;116(16):2908-2914. https://doi.org/10.1182/blood-2010-01-265751
  • Diaz-Garcia C, Domingo J, Garcia-Velasco JA, Herraiz S, Mirabet V, Iniesta I, Cobo A, Remohí J, Pellicer A. Oocyte vitrification versus ovarian cortex transplantation in fertility preservation for adult women undergoing gonadotoxic treatments: a prospective cohort study. Fertility and Sterility. 2018;109(3):478-485.e2.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2017.11.018
  • Arvold ND, Taghian AG, Niemierko A, Abi Raad RF, Sreedhara M, Nguyen PL, Bellon JR, Wong JS, Smith BL, Harris JR. Age, breast cancer subtype approximation, and local recurrence after breast-conserving therapy. Journal of Clinical Oncology. 2011;29(29): 3885-3891. https://doi.org/10.1200/JCO.2011.36.1105
  • Gellert SE, Pors SE, Kristensen SG, Bay-Bjørn AM, Ernst E, Yding Andersen C. Transplantation of frozen-thawed ovarian tissue: an update on worldwide activity published in peer-reviewed papers and on the Danish cohort. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2018;35(4):561-570.  https://doi.org/10.1007/s10815-018-1144-2
  • Salim N, Tumanova K, Stolbovoy A, Zvereva D, Popodko A Nosov V. Adaptive VMAT Radiotherapy to Avoid Brachytherapy in Cervical Cancer Treatment. International Journal of Radiation Oncology and Biology and Physics. 2022;114(supp 3):e262.
  • Bystrova O, Lapina E, Kalugina A, Lisyanskaya A, Tapilskaya N, Manikhas G. Heterotopic transplantation of cryopreserved ovarian tissue in cancer patients: a case series. Gynecological Endocrinology. 2019;35(12):1043-1049. https://doi.org/10.1080/09513590.2019.1648413
  • Donnez J. Chemotherapy and decline of the ovarian reserve: How can we explain it and how to prevent it? Fertility and Sterility. 2020; 114(4):722-724.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2020.08.010
  • ESHRE Guideline Group on Female Fertility Preservation; Anderson RA, Amant F, Braat D, D’Angelo A, Chuva de Sousa Lopes SM, Demeestere I, Dwek S, Frith L, Lambertini M, Maslin C, Moura-Ramos M, Nogueira D, Rodriguez-Wallberg K, Vermeulen N. ESHRE guideline: female fertility preservation. Human Reproduction Open. 2020;2020(4):hoaa052. https://doi.org/10.1093/hropen/hoaa052
  • Kindinger LM, Kyrgiou M, MacIntyre DA, Cacciatore S, Yulia A, Cook J, Terzidou V, Teoh TG, Bennett PR. Preterm Birth Prevention Post-Conization: A Model of Cervical Length Screening with Targeted Cerclage. PLoS One. 2016;11(11):e0163793. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0163793
  • Kyrgiou M, Athanasiou A, Paraskevaidi M, Mitra A, Kalliala I, Martin-Hirsch P, Arbyn M, Bennett P, Paraskevaidis E. Adverse obstetric outcomes after local treatment for cervical preinvasive and early invasive disease according to cone depth: systematic review and meta-analysis. BMJ. 2016;354:i3633. https://doi.org/10.1136/bmj.i3633
  • Li X, Li J, Wu X. Incidence, risk factors and treatment of cervical stenosis after radical trachelectomy: A systematic review. European Journal of Cancer. 2015;51(13):1751-1759. https://doi.org/10.1016/j.ejca.2015.05.012
  • Kasuga Y, Ikenoue S, Tanaka M, Ochiai D. Management of pregnancy after radical trachelectomy. Gynecological Oncology. 2021; 162(1):220-225.  https://doi.org/10.1016/j.ygyno.2021.04.023
  • Šimják P, Cibula D, Pařízek A, Sláma J. Management of pregnancy after fertility-sparing surgery for cervical cancer. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavia. 2020;99(7):830-838.  https://doi.org/10.1111/aogs.13917
  • Sato Y, Hidaka N, Sakai A, Kido S, Fujita Y, Okugawa K, Yahata H, Kato K. Evaluation of the efficacy of vaginal progesterone in preventing preterm birth after abdominal trachelectomy. European Journal of Obstetrics Gynecology and Reproducive Biology. 2021;259: 119-124.  https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2021.02.009
  • Signorello LB, Cohen SS, Bosetti C, Stovall M, Kasper CE, Weathers RE, Whitton JA, Green DM, Donaldson SS, Mertens AC, Robison LL, Boice JD Jr. Female survivors of childhood cancer: preterm birth and low birth weight among their children. Journal of National Cancer Institute. 2006;98(20):1453-1461. https://doi.org/10.1093/jnci/djj394
  • Schumer ST, Cannistra SA. Granulosa cell tumor of the ovary. Journal of Clinical Oncology. 2003;21(6):1180-1189. https://doi.org/10.1200/JCO.2003.10.019
  • Spanos CP, Mamopoulos A, Tsapas A, Syrakos T, Kiskinis D. Female fertility and colorectal cancer. International Journal of Colorectal Diseases. 2008;23(8):735-743.  https://doi.org/10.1007/s00384-008-0483-3
  • Lopategui DM, Yechieli R, Ramasamy R. Oncofertility in sarcoma patients. Translational Andrology and Urology. 2017;6(5):951-958.  https://doi.org/10.21037/tau.2017.07.03
  • Practice Committees of the American Society for Reproductive Medicine and the Society for Assisted Reproductive Technology. Mature oocyte cryopreservation: a guideline. Fertility and Sterility. 2013;99(1):37-43.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2012.09.028
  • Ахмедова З.Б., Умарова С.Г., Ашурова М.Дж. Фертильность и лимфома Ходжкина. Вестник Авиценны. 2013;(2):167-172. 
  • Hodgson DC, Pintilie M, Gitterman L, Dewitt B, Buckley CA, Ahmed S, Smith K, Schwartz A, Tsang RW, Crump M, Wells W, Sun A, Gospodarowicz MK. Fertility among female hodgkin lymphoma survivors attempting pregnancy following ABVD chemotherapy. Hematological Oncology. 2007;25(1):11-15.  https://doi.org/10.1002/hon.802
  • Watson M, Wheatley K, Harrison GA, Zittoun R, Gray RG, Goldstone AH, Burnett AK. Severe adverse impact on sexual functioning and fertility of bone marrow transplantation, either allogeneic or autologous, compared with consolidation chemotherapy alone: analysis of the MRC AML 10 trial. Cancer. 1999;86(7):1231-1239. https://doi.org/10.1002/(sici)1097-0142(19991001)86:7<1231::aid-cncr18>3.0.co;2-y
  • Подтверждение e-mail

    На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

    Подтверждение e-mail

    Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.