Савина В.А.

АО «Международный центр репродуктивной медицины»

Исакова Э.В.

АО «Международный центр репродуктивной медицины»

Корсак В.С.

АО «Международный центр репродуктивной медицины»

Роль факторов роста в терапевтическом эффекте, вызываемом в эндометрии действием плазмы, обогащенной тромбоцитами (обзор литературы)

Авторы:

Савина В.А., Исакова Э.В., Корсак В.С.

Подробнее об авторах

Журнал: Проблемы репродукции. 2020;26(5): 91‑98

Прочитано: 4500 раз


Как цитировать:

Савина В.А., Исакова Э.В., Корсак В.С. Роль факторов роста в терапевтическом эффекте, вызываемом в эндометрии действием плазмы, обогащенной тромбоцитами (обзор литературы). Проблемы репродукции. 2020;26(5):91‑98.
Savina VA, Isakova EV, Korsak VS. The role of growth factors in the therapeutic effect of platelet-rich plasma on the endometrium (review). Russian Journal of Human Reproduction. 2020;26(5):91‑98. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/repro20202605191

Рекомендуем статьи по данной теме:

PRP-терапия (англ. Platelet-rich plasma — плазма, обогащенная тромбоцитами) — метод лечения, который основан на применении обогащенной тромбоцитами аутологичной плазмы крови, полученной путем центрифугирования венозной крови пациента. В 70-х годах прошлого века термином PRP гематологи начали определять плазму с количеством тромбоцитов большим, чем в периферической крови [1]. В 1987 г. M. Ferrari и соавт. впервые использовали PRP с целью уменьшения кровопотери во время кардиохирургических операций [2]. Впоследствии положительные эффекты PRP-терапии отмечены специалистами различных областей медицины. На данный момент PRP-терапия зарекомендовала себя как высокоэффективный и перспективный метод решения целого спектра медицинских проблем и широко используется в косметологии и дерматологии, реконструктивной хирургии, ортопедии, урологии, пластической хирургии, офтальмологии, стоматологии и спортивной медицине [1, 3—8]. В гинекологии PRP также нашла свое применение при лечении эктопии шейки матки, дистрофии вульвы, при урогенитальных и сексуальных расстройствах [9]. В течение последних нескольких лет PRP применяется в программах вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ) при недостаточной толщине эндометрия, а также при повторных неудачах имплантации эмбрионов. В программах ВРТ при подготовке эндометрия к переносу эмбриона проводится внутриматочная инфузия PRP при помощи катетера для искусственной инсеминации. В результате отмечается увеличение толщины эндометрия и улучшение исходов программ ВРТ [10—13].

При этом механизм действия PRP до конца не изучен. Известно, что PRP оказывает противовоспалительное и антибактериальное действие [14, 15]. Особенно отмечаются регенеративные свойства PRP, что, как полагают, достигается присутствием в ней высокой концентрации тромбоцитов. Считается, что в PRP концентрация тромбоцитов должна быть как минимум в 5 раз больше, чем в цельной крови [16]. Тромбоциты — это небольшие безъядерные клетки, присутствующие в кровотоке в концентрации 200—400 тыс. на микролитр и играющие главную роль в процессе свертывания крови. Данную функцию тромбоциты реализуют посредством активации, в результате которой ими секретируется около 300 низко- и высокомолекулярных соединений, в том числе факторов роста [17—19]. Факторы роста стимулируют рост и синтетическую активность различных клеточных популяций, что приводит к физиологической регенерации. С целью уточнения эффектов, вызываемых факторами роста при действии на эндометрий, проведен обзор литературы по данной теме.

Факторы роста

Факторы роста — это многочисленная группа естественных соединений, способных стимулировать рост, пролиферацию и/или дифференцировку клеток. Факторы роста вырабатываются неспецифическими клетками во всех органах человека, включая органы репродуктивной системы и ткани эмбриона [20]. Взаимодействуя с определенными рецепторами, расположенными на клеточной мембране, факторы роста активируют передачу сигнала внутри клетки, что приводит к получению эффекта. Факторы роста способны действовать паракринным, аутокринным и эндокринным образом. Некоторые факторы роста универсальны и могут действовать на различные клетки, другие являются строго специфичными и действуют только на один тип клеток. Обычно клетки-мишени находятся рядом с клетками, которые продуцируют факторы роста [21—23]. Под влиянием факторов роста начинается физиологическая пролиферация клеток путем запуска митотического цикла стабильных, находящихся в G0-периоде клеток [21, 24]. Влияние факторов роста может наблюдаться в течение нескольких дней [24]. Чаще всего названия факторов роста связаны с их функцией или местом секреции [25].

Наиболее изученными факторами роста, которые секретируют тромбоциты, являются:

— трансформирующий фактор роста β (TGF-β);

— фактор роста эндотелия сосудов (VEGF);

— фактор роста фибробластов (FGF);

— тромбоцитарный фактор роста (PDGF);

— эпидермальный фактор роста (EGF);

— инсулиноподобный фактор роста 1-го типа (IGF-I).

Влияние факторов роста на эндометрий в течение физиологического менструального цикла

Эндометрий является внутренней слизистой оболочкой полости матки, которая в течение репродуктивного периода жизни женщины около 400 раз претерпевает циклическую перестройку [26]. Обычно цикл завершается менструальным кровотечением. Эндометрий состоит из двух слоев: базального и функционального.

Базальный слой малочувствителен к гормонам; служит источником восстановления функционального слоя в менструальном цикле, а также при нарушении его целостности после прерывания беременности, родов [27]. Полагают, что регенерация обеспечивается присутствием в базальном слое эндометриальных эпителиальных и стромальных стволовых клеток, способных асимметрично делиться, что обеспечивает самообновление и продукцию дочерних клеток, которые дифференцируются в тканеспецифичные типы клеток [28, 29]. Интересно, что клоногенность данных клеток не отличается у женщин в различные фазы цикла и не зависит от того, активна менструальная функция или нет [30], вероятно потому, что стероидные гормоны не участвуют в регуляции их функции. Считается, что их активность определяется факторами роста, такими как EGF и PDGF [31]. Так, в исследовании X. Wang и соавт. [32] показано, что применение PRP увеличивает миграцию и пролиферацию стволовых клеток эндометрия.

Функциональный слой высокочувствителен к гормонам, под влиянием которых изменяются его строение и функция, снабжается кровью за счет спиральных артерий, которые разделяются на ряд артериол, связанных капиллярными сетями [27].

Менструальный цикл продолжается около 21—35 (в среднем 28) дней и состоит из трех фаз: менструальной, пролиферативной, секреторной.

1. Менструальная фаза — первая фаза цикла, характеризуется отторжением функционального слоя эндометрия. Менструация инициируется падением концентрации эстрогенов и прогестерона в результате окончания функционирования желтого тела в конце предыдущего менструального цикла. Основным доказательством того, что менструация вызвана потерей поддержки со стороны стероидов, является следующее: 1) если концентрация прогестерона поддерживается искусственно, менструация не происходит; 2) введение антагониста рецептора прогестерона мифепристона во время пролиферативной и секреторной фаз цикла приводит к маточному кровотечению; 3) снижение уровней эстрогенов и прогестерона, например в случае циклического использования комбинированных гормональных контрацептивов, приводит к менструальноподобной реакции [33].

Одновременно с менструальным кровотечением начинается восстановление функционального слоя эндометрия. Поверхность эндометрия, не покрытая эпителием («физиологическая рана»), в последующие два дня (период регенерации) подвергается эпителизации вследствие миграции эпителия из донышек желез на поверхность стромы в виде пластов уплощенных клеток [34]. К 4-му дню две трети слизистой оболочки эндометрия покрываются эпителием, при этом полная реэпителизация завершается к 5—6-му дню менструального цикла [35], протекая, очевидно, независимо от гормонов.

Механизм пролиферации эпителиальных клеток при низкой концентрации эстрогенов до конца не изучен, при этом существует гипотеза о роли факторов роста в данном процессе. Например, PDGF оказывает мощное митогенное действие на эпителиальные клетки [36], EGF обеспечивает пролиферативный стимул и опосредует миграцию клеток из базального слоя эндометрия в функциональный [37]. TGF-β способствует реэпителизации и заживлению эндометрия, осуществляя свою функцию благодаря разнонаправленным действиям: ингибированию пролиферации и активации миграции стромальных клеток эндометрия [38—40].

Обычно заживление раны в организме взрослого человека включает в себя три фазы: I — фаза воспаления; II — фаза регенерации; III — фаза реорганизации рубца [41]. При этом особенностью эндометрия является то, что его восстановление завершается без формирования рубцов [33], чему способствует TGF-β [42].

2. Фаза пролиферации — соответствует 5—14-му дням цикла. К 3-му дню менструального цикла рецепторы эстрогенов (ER) и прогестерона (PR) обнаруживаются в железистом эпителии, к 5-му дню, когда завершается реэпителизация, ER и PR присутствуют во всем эндометрии [43]. В яичниках женщины вступают в рост фолликулы, вырабатывающие эстрогены, под влиянием которых отмечается активный рост функционального слоя эндометрия. В нем сначала появляются неактивные железы в виде тонких трубочек, далее в конце фазы они изменяются, становясь штопорообразными и широкими. Наблюдается увеличение размеров клеток желез и рост числа их митозов. Подобные изменения характерны и для клеток стромы эндометрия [27].

Тем не менее следует отметить, что даже в отсутствие гормональной поддержки (например, после овариоэктомии) маточное кровотечение способно останавливаться и эндометрий реэпителизируется, что указывает на существование других механизмов влияния на эндометрий помимо эстрогенов [33]. Так, еще в 1991 г. K. Nelson и соавт. в эксперименте доказали, что при удалении у мышей гипофиза, яичников и надпочечников восстановление эндометрия происходит на фоне лечения препаратами EGF и при этом не требуется дополнительного применения стероидов [44]. Эффект EGF усиливается влиянием PDGF, выработка которого в эндометрии максимальна в пролиферативной фазе цикла [45]. PDGF также самостоятельно влияет на процесс реэпителизации путем стимуляции пролиферации и миграции стромальных клеток эндометрия [46].

К 5-му дню менструального цикла поврежденные сосуды эндометрия восстанавливаются. Происходят формирование и рост спиральных артерий [35]. Ангиогенез — процесс, имеющий сложные регуляторные механизмы. В эндометрии данный процесс во многом зависит от влияния эстрогенов, но при этом большая роль отводится факторам роста. Предполагается, что VEGF является ключевым фактором ангиогенеза [47]. Кроме того, VEGF индуцирует экспрессию важнейших компонентов протеолитического каскада активации плазминогена, играющего важную роль в процессах неоангиогенеза [48], протеолитическое воздействие которого на компоненты внеклеточного матрикса способствует распространению образующихся новых сосудов. При иммуногистохимическом исследовании эндометрия женщин показано, что повышение экспрессии VEGF отмечается в пролиферативной фазе, достигая максимума в средней секреторной фазе цикла. Повышенная экспрессия VEGF и его рецепторов на узких капиллярных нитях во время пролиферативной фазы может объяснять быстрый рост капилляров, при этом высокая активность в секреторной фазе обеспечивает проницаемость сосудов, что необходимо для успешной имплантации эмбриона [48, 49]. Отмечено, что в ангиогенезе также участвует FGF путем влияния на пролиферацию, миграцию и созревание эндотелиальных клеток [50, 51]. Кроме того, FGF усиливает действие VEGF [52]. Помимо участия в ангиогенезе FGF, а именно FGF-9, влияет на митогенную активность стромальных клеток эндометрия [53]. В работе S. Tandulwadkar и соавт. показано, что PRP при внутриматочной инфузии пациенткам с «тонким» эндометрием приводит не только к увеличению его толщины, но также к значительному повышению степени его васкуляризации [54].

Помимо прямого влияния на эндометрий факторы роста выступают в роли «эстромединов», т.е. опосредуют эффекты стероидных гормонов [44, 55].

3. Секреторная фаза — соответствует 15—28-му дням цикла и характеризуется активной деятельностью маточных желез и изменениями стромальных элементов и сосудов. Секреторные изменения в эндометрии начинаются после овуляции и формирования активного желтого тела в яичнике женщины, что указывает на безусловную роль прогестерона в данном процессе. Под влиянием возрастающей выработки прогестерона начинается прегравидарная перестройка эндометрия, так называемая децидуальноподобная реакция. Клетки стромы становятся большими и полигональными, богатыми цитоплазматическим гликогеном и липидами. Состояние эндометрия в этот период оптимально для наступления беременности. Если эмбрион имплантируется, происходит децидуализация — сложный процесс, включающий морфогенетические, биохимические и сосудистые изменения в эндометрии. В случае отсутствия имплантации после падения уровня стероидов функциональный слой эндометрия отторгается (начинается менструация) [27, 33, 56].

Влияние факторов роста на эндометрий продолжается и в секреторной фазе. Описана положительная роль IGF, FGF-7, рецептора EGF в процессе децидуализации клеток стромы эндометрия [57—60]. Роль TGF-β в этом процессе точно не установлена. Одни работы указывают на то, что TGF-β ингибирует данный процесс, другие, что, наоборот, ему способствует [61, 62].

Более тщательно изучен VEGF. Так, в средней секреторной фазе цикла отмечена максимальная экспрессия VEGF эпителиальными и стромальными клетками эндометрия [63]. При исследовании содержания VEGF в сыворотке крови в секреторной фазе цикла выявлена положительная корреляция данного фактора с толщиной эндометрия и гемодинамикой матки [64]. При этом у женщин с идиопатическим бесплодием в данный период наблюдается снижение выработки VEGF в эндометрии [65]. На основании многофакторной оценки генотипа пациенток с неудачными попытками ВРТ и фертильных женщин выявлена прямая взаимосвязь между носительством мутантных аллелей в гене ангиогенеза (VEGF) и нарушением внутриматочной перфузии [66].

Подробных исследований, посвященных действиям факторов на эндометрий в поздней секреторной фазе, мы не обнаружили.

Факторы роста и имплантация эмбриона

Известно, что успешная имплантация зависит от скоординированного взаимодействия внутриутробных факторов и самого эмбриона [67]. Основная регуляторная роль, которую играют эстрогены и прогестерон при имплантации, хорошо известна. Благодаря влиянию данных гормонов происходит активация множества биологически активных веществ, в том числе и факторов роста, что способствует имплантации эмбриона [68].

В ряде работ указывается, что факторы роста привлекают децидуализированные стромальные клетки эндометрия к месту имплантации эмбриона, то есть оказывают хемоаттрактантный эффект [69, 70].

Развитию плаценты в первом триместре беременности способствуют EGF, VEGF и TGF-β [71]. При этом TGF-β действует посредством усиления или подавления различных сигнальных путей, тем самым поддерживая имплантацию эмбриона [72], кроме того, TGF-β может усиливать адгезию трофобласта [73]. У фертильных женщин в эндометрии продукция TGF-β выше, чем у женщин с повторными неудачами имплантации в программах ВРТ [74]. Обсуждается роль TGF-β1 в патогенезе невынашивания беременности. У женщин с неразвивающимися беременностями раннего срока отмечена пониженная экспрессия TGF-β1 и его рецептора в ворсинах хориона и децидуальной ткани [75]. Кроме того, TGF-β является одним из ключевых регуляторов иммунного ответа [76]. В частности, TGF-β ингибирует натуральные киллеры, индуцирует периферические Т-регуляторные клетки и контролирует развитие нескольких линий Т-хелперов [77, 78], что играет роль в обеспечении толерантности иммунной системы матери по отношению к полуаллогенному (в донорских программах ВРТ — аллогенному) эмбриону [79, 80].

Применение внутриматочной инфузии PRP в программах ВРТ

В 2015 г. группа китайских ученых впервые сообщила об опыте применения PRP у 5 женщин, получающих лечение с применением ВРТ и имеющих в анамнезе отмену переноса эмбрионов ввиду «тонкого» эндометрия. Пациенткам при подготовке к переносу размороженного эмбриона на 10-й день заместительной гормональной терапии (ЗГТ) выполнялось внутриматочное введение PRP в объеме 0,5—1,0 мл, через 72 ч процедуру повторяли. В результате ученые отметили увеличение толщины эндометрия более 7 мм и зарегистрировали наступление клинической беременности у всех женщин [81].

К настоящему моменту исследователи разных стран представили множество работ с описанием положительного опыта использования PRP-терапии в программах ВРТ при недостаточной толщине эндометрия, а также при повторных неудачах имплантации эмбрионов [10—13, 82]. Так, в метаанализ 2019 г., посвященный оценке влияния PRP на эндометрий женщин, получающих лечение с применением ВРТ, включено 7 исследований с участием 625 пациенток. Показано, что у женщин, получивших внутриматочную инфузию PRP, статистически значимо увеличивается толщина эндометрия, повышается частота биохимической беременности, имплантации и клинической беременности. На основе этих данных авторы делают вывод о том, что применение PRP рекомендуется женщинам с недостаточной толщиной эндометрия и/или при повторных неудачах имплантации эмбрионов [82].

Строго отработанной методики получения PRP не описано [1, 10—13, 82]. Авторы используют различные протоколы центрифугирования венозной крови с использованием специальных пробирок, сертифицированных в стране исследования. Нет также единой схемы применения внутриматочных инфузий PRP. В основном PRP-терапия проводится при подготовке эндометрия к переносу размороженного эмбриона на фоне ЗГТ при помощи катетера для инсеминации и технически схожа с последней. Некоторые авторы осуществляют данную манипуляцию за 48 ч до переноса эмбрионов, другие — с 8-го по 13-й день ЗГТ, повторяя процедуру через 48 ч при недостаточной толщине эндометрия. Объем вводимой плазмы также четко не установлен: используется от 0,5 до 2,0 мл. При этом существует мнение, что более результативно использовать объем 0,5—1,0 мл [82]. Отсутствие единой методики получения и применения PRP указывает на необходимость дальнейших исследований в данной области.

Заключение

Можно предположить, что факторы роста, выделяемые в процессе активации тромбоцитов при применении плазмы крови, обогащенной тромбоцитами, способны усиливать пролиферацию клеток эндометрия, повышать его васкуляризацию, опосредовать действие стероидных гормонов, а также оказывать местное положительное влияние на толерантность иммунной системы. Дополнительный положительный эффект вызывают противовоспалительные и антимикробные свойства плазмы крови, обогащенной тромбоцитами. Представляется обоснованным, что все перечисленные свойства плазмы крови, обогащенной тромбоцитами, способствуют комплексному влиянию на эндометрий, увеличению его толщины и улучшению его рецептивности, а следовательно, повышению количества благоприятных исходов в программах вспомогательных репродуктивных технологий.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

The authors declare no conflicts of interest.

Литература / References:

  1. Alves R, Grimalt R. A Review of Platelet Rich Plasma: History, Biology, Mechanism of Action, and Classification. Skin Appendage Disorders. 2018;4(1):18-24.  https://doi.org/10.1159/000477353
  2. Ferrari M, Zia S, Valbonesi M, Venere G, Spagnolo S, Grasso MA, Panzani I. A new technique for hemodilution, preparation of autologous platelet-rich plasma and intraoperative blood salvage in cardiac surgery. The International Journal of Artificial Organs. 1987; 10(1):47-50. 
  3. Andia I, Abate M. Platelet rich plasma: underlying biology and clinical correlates. Regenerative Medicine. 2013;8(5):645-658.  https://doi.org/10.2217/rme.13.59
  4. Li ZJ, Choi HI, Choi DK, Sohn KC, Im M, Seo YJ, Lee YH, Lee JH, Lee Y. Autologous platelet-rich plasma: a potential therapeutic tool for promoting hair growth. Dermatologic Surgery. 2012; 38(7Pt1):1040-1046. https://doi.org/10.1111/j.1524-4725.2012.02394.x
  5. Sommeling CE, Heyneman A, Hoeksema H, Verbelen J, Stillaert FB, Monstrey S. The use of platelet-rich plasma in plastic surgery: a systematic review. Journal of Plastic, Reconstructive and Aesthetic Surgery. 2013;66(3):301-311.  https://doi.org/10.1016/j.bjps.2012.11.009
  6. Salazar-Álvarez AE, Riera-del-Moral LF, García-Arranz M, Alvarez-García J, Concepción-Rodriguez NA, Riera-de-Cubas L. Use of platelet-rich plasma in the healing of chronic ulcers of the lower extremity. Actas Dermo-Sifiliográficas. 2014;105(6):597-604.  https://doi.org/10.1016/j.ad.2013.12.011
  7. Picard F, Hersant B, Bosc R, Meningaud JP. Should we use platelet-rich plasma as an adjunct therapy to treat «acute wounds», «burns», and «laser therapies»: a review and a proposal of a quality criteria checklist for further studies. Wound Repair and Regeneration. 2015;23(2):163-170.  https://doi.org/10.1111/wrr.12266
  8. Kim DH, Je YJ, Kim CD, Lee YH, Seo YJ, Lee JH, Lee Y. Can platelet-rich plasma be used for skin rejuvenation? Evaluation of effects of platelet-rich plasma on human dermal fibroblast. Annals of Dermatoogy. 2011;23(4):424-431.  https://doi.org/10.5021/ad.2011.23.4.424
  9. Dawood AS, Salem HA. Current clinical applications of platelet-rich plasma in various gynecological disorders: An appraisal of theory and practice. Clinical and Experimental Reproductive Medicine. 2018;45(2):67-74.  https://doi.org/10.5653/cerm.2018.45.2.67
  10. Zadehmodarres S, Salehpour S, Saharkhiz N, Nazari L. Treatment of thin endometrium with autologous platelet-rich plasma: a pilot study. JBRA Assisted Reproduction. 2017;21(1):54-56.  https://doi.org/10.5935/1518-0557.20170013
  11. Eftekhar M, Neghab N, Naghshineh E, Khani P. Can autologous platelet rich plasma expand endometrial thickness and improve pregnancy rate during frozen-thawed embryo transfer cycle? A randomized clinical trial. Taiwan Journal Obstetrics and Gynecology. 2018; 57(6):810-813.  https://doi.org/10.1016/j.tjog.2018.10.00
  12. Nazari L, Salehpour S, Hoseini S, Zadehmodarres S, Ajori L. Effects of autologous platelet-rich plasma on implantation and pregnancy in repeated implantation failure: A pilot study. Internationale Journal of Reproductive Biomedicine. 2016;14(10):625-628.  https://doi.org/10.1016/j.tjog.2018.10.007
  13. Aghajanzadeh F, Esmaeilzadeh S, Basirat Z, Mahouti T, Heidari FN, Golsorkhtabaramiri M. Using autologous intrauterine platelet-rich plasma to improve the reproductive outcomes of women with recurrent implantation failure. JBRA Assisted Reproduction. 2020;24(1):30-33.  https://doi.org/10.5935/1518-0557.20190055
  14. Drago L, Bortolin M, Vassena C, Taschieri S, Del Fabbro M. Antimicrobial activity of pure platelet-rich plasma against microorganisms isolated from oral cavity. BMC Microbiology. 2013;25(13):47.  https://doi.org/10.1186/1471-2180-13-47
  15. Mazzocca AD, McCarthy BR, Intravia J, Beitzel K, Apostolakos J, Cote MP, Bradley J, Arciero RA. An in vitro evaluation of the anti-inflammatory effects of platelet-rich plasma, ketorolac, and methylprednisolone. Arthroscopy. 2013;29(4):675-683.  https://doi.org/10.1016/j.arthro.2012.12.005
  16. Brass L. Understanding and evaluating platelet function. Hematology-American Society of Hematology Education Program. 2010;387-396.  https://doi.org/10.1182/asheducation-2010.1.387
  17. Пантелеев М.А., Свешникова А.Н. Тромбоциты и гемостаз. Онкогематология. 2014;9(2):65-73.  https://doi.org/10.17650/1818-8346-2014-9-2-65-73
  18. Coppinger JA, Cagney G, Toomey S, Kislinger T, Belton O, McRedmond JP, Cahill DJ, Emili A, Fitzgerald DJ, Maguire PB. Characterization of the proteins released from activated platelets leads to localization of novel platelet proteins in human atherosclerotic lesions. Blood. 2004;103(6):2096-2104. https://doi.org/10.1182/blood-2003-08-2804
  19. Galindo MP, Avila OG, Torrecillas ML, Fernández Barbero JE, O’Valle Ravassa F, Wang HL. Composition of platelet-rich plasma gel: A Western blot analysis. Journal of Oral Science and Reabilitation. 2016;2(2):42-48. 
  20. Ogita H, Ikeda W, Takai Y. Roles of cell adhesion molecules nectin and nectin-like molecule-5 in the regulation of cell movement and proliferation. Journal of Microscopic. 2008;231(3):455-465.  https://doi.org/10.1111/j.1365-2818.2008.02058.x
  21. Кишкун А.А. Биологический возраст и старение: возможности определения и пути коррекции: руководство для врачей. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2008.
  22. Barnes GL, Kostenuick PJ, Gerstenfeld LC, Einhorn TA. Growth factor regulation of fracture repair. Journal Bone and Mineral Research. 1999;14(11):1805-1815. https://doi.org/10.1359/jbmr.1999.14.11.1805
  23. Arai K-I, Lee F, Miyajiima A, Miatake S, Arai N, Yokota T. Cytokines: coordination of immune and inflammatory responses. Annual Review of Biochemestry. 1990;59:783-793.  https://doi.org/10.1146/annurev.bi.59.070190.004031
  24. Gomperts B, Kramer L, Tatham P. Signal Transduction. 2nd edition. Academic Press; 2009.
  25. Giudice LC. Growth factors and growth modulators in human uterine endometrium: their potential relevance to reproductive medicine. Fertility and Sterility. 1994;61(1):1-17.  https://doi.org/10.1016/s0015-0282(16)56447-4
  26. Coutinho EM. To bleed or not to bleed, that is the question. Contraception. 2007;76(4):263-266.  https://doi.org/10.1016/j.contraception.2007.06.004
  27. Быков В.Л. Частная гистология. СПб: Сотис; 1999.
  28. Chan RW, Schwab KE, Gargett CE. Clonogenicity of human endometrial epithelial and stromal cells. Biology of Reproduction. 2004; 70(6):1738-1750. https://doi.org/10.1095/biolreprod.103.024109
  29. Gargett CE. Uterine stem cells: what is the evidence? Human Reproduction Update. 2007;13(1):87-101.  https://doi.org/10.1093/humupd/dml045
  30. Schwab KE, Chan RW, Gargett CE. Putative stem cell activity of human endometrial epithelial and stromal cells during the menstrual cycle. Fertility and Sterility. 2005;84(2):1124-1130. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2005.02.056
  31. Gargett CE, Chan RW, Schwab KE. Hormone and growth factor signaling in endometrial renewal: role of stem/progenitor cells. Molecular and Cellular Endocrinology. 2008;25;288(1-2):22-29.  https://doi.org/10.1016/j.mce.2008.02.026
  32. Wang X, Liu L, Mou S, Zhao H, Fang J, Xiang Y, Zhao T, Sha T, Ding J, Hao C. Investigation of platelet-rich plasma in increasing proliferation and migration of endometrial mesenchymal stem cells and improving pregnancy outcome of patients with thin endometrium. Journal of Cellular Biochemistry. 2018;10.1002/jcb.28014. Advance online publication. https://doi.org/10.1002/jcb.28014
  33. Salamonsen LA. Tissue injury and repair in the female human reproductive tract. Rewiew. Reproduction. 2003;125(3):301-311.  https://doi.org/10.1530/rep.0.1250301
  34. Cousins FL, O DF, Gargett CE. Endometrial stem/progenitor cells and their role in the pathogenesis of endometriosis. Best Practice and Research Clinical Obstetrics and Gynaecology. 2018;50:27-38.  https://doi.org/10.1016/j.bpobgyn.2018.01.011
  35. Ludwig H, Spornitz U.M. Microarchitecture of the human endometrium by scanning electron microscopy: Menstrual desquamation and remodeling. Annals of the New York Academy of Sciences. 1991;622:28-46.  https://doi.org/10.1111/j.1749-6632.1991.tb37848.x
  36. Munson L, Upadhyaya NB, Van Meter S. Platelet-derived growth factor promotes endometrial epithelial cell proliferation. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 1995;173(6):1820-1825. https://doi.org/10.1016/0002-9378(95)90434-4
  37. Ejskjaer K, Sørensen BS, Poulsen SS, Mogensen O, Forman A, Nexø E. Expression of the epidermal growth factor system in human endometrium during the menstrual cycle. Molecular Human Reproduction. 2005;11(8):543-51.  https://doi.org/10.1093/molehr/gah207
  38. Makieva S, Giacomini E, Ottolina J, Sanchez AM, Papaleo E, Viganò P. Inside the Endometrial Cell Signaling Subway: Mind the Gap(s). International Journal of Molecular Sciences. 2018;21; 19(9):2477. https://doi.org/10.3390/ijms19092477
  39. Maybin JA, Boswell L, Young VJ, Duncan WC, Critchley HOD. Reduced Transforming Growth Factor-β Activity in the Endometrium of Women with Heavy Menstrual Bleeding. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 2017;102(4):1299-1308. https://doi.org/10.1210/jc.2016-3437
  40. Nasu K, Nishida M, Matsumoto H, Bing S, Inoue C, Kawano Y, Miyakawa I. Regulation of Proliferation, Motility, and Contractivity of Cultured Human Endometrial Stromal Cells by Transforming Growth Factor-Beta Isoforms. Fertility and Sterility. 2005;84 (Suppl 2):1114-1123. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2005.02.055.
  41. Кузин М.И., Костюченок Б.М.  Раны и раневая инфекция. М.: Медицина; 1981.
  42. Omwandho CO, Konrad L, Halis G, Oehmke F, Tinneberg HR. Role of TGF-βs in normal human endometrium and endometriosis. Human Reproduction. 2010;25(1):101-109.  https://doi.org/10.1093/humrep/dep382
  43. Okuliczand S, Okulicz WC, Scarrell R. Estrogen receptor alpha and progesterone receptor in the rhesus endometrium during the late secretory phase and menses. Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine. 1998;218(4):316-321.  https://doi.org/10.3181/00379727-218-44298
  44. Nelson KG, Takahashi T, Bossert NL, Walmer DK, McLachlan JA. Epidermal growth factor eplaces estrogen in the stimulation of female genital-tract growth and differentiation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 1991; 88(1):21-25.  https://doi.org/10.1073/pnas.88.1.21
  45. Chegini N, Rossi MJ, Masterson BJ. Platelet-derived growth factor (PDGF), epidermal growth factor (EGF), and EGF and PDGF receptors in human endometrial tissue: localization and in vitro action. Endocrinology. 1992;130(4):2373-2385. https://doi.org/10.1210/endo.130.4.1312455
  46. Matsumoto H, Nasu K, Nishida M, Ito H, Bing S, Miyakawa I. Regulation of proliferation, motility, and contractility of human endometrial stromal cells by platelet-derived growth factor. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 2005;90(6):3560-3567. https://doi.org/10.1210/jc.2004-1918
  47. Perrot-Applanat M, Ancelin M, Buteau-Lozano H, Meduri G. Ovarian steroids in endometrial angiogenesis. Steroids. 2000;65 (10-11):599-603.  https://doi.org/10.1016/s0039-128x(00)00117-3
  48. Breuss JM, Uhrin P. VEGF-initiated angiogenesis and the uPA/uPAR system. Cell Adhesion and Migration. 2012;1:6(6):535-540.  https://doi.org/10.4161/cam.22243
  49. von Wolff M, Thaler CJ, Strowitzki T, Broome J, Stolz W, Tabibzadeh S. Regulated expression of cytokines in human endometrium throughout the menstrual cycle: dysregulation in habitual abortion. Molecular Human Reproduction. 2000;6(7):627-634.  https://doi.org/10.1093/molehr/6.7.627
  50. Dieci MV, Arnedos M, Andre F, Soria JC. Fibroblast growth factor receptor inhibitors as a cancer treatment: from a biologic rationale to medical perspectives. Cancer Discovery. 2013;3(3):264-279.  https://doi.org/10.1158/2159-8290.CD-12-0362
  51. Lieu J, Heymach M, Overman H, Tran H, Kopetz S. Beyond VEGF: inhibition of the fibroblast growth factor pathway and antiangiogenesis. Clinical Cancer Research. 2011;17(19):6130-6139. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-11-0659
  52. Pepper MS, Ferrara N, Orci L, Montesano R. Potent synergism between vascular endothelial growth factor and basic fibroblast growth factor in the induction of angiogenesis in vitro. Biochemical and Biophysical Research Communications. 1992;15:189(2):824-831.  https://doi.org/10.1016/0006-291x(92)92277-5
  53. Tsai S-J, Wu M-H, Chen H-M, Chuang PC, Wing LY. Fibroblast Growth factor-9 is an Endometrial Stromal Growth Factor. Endocrinology. 2002;143(7):2715-2721. https://doi.org/10.1210/endo.143.7.8900
  54. Tandulwadkar SR, Naralkar MV, Surana AD, Selvakarthick M, Kharat AH. Autologous Intrauterine Platelet-Rich Plasma Instillation for Suboptimal Endometrium in Frozen Embryo Transfer Cycles: A Pilot Study. Journal of Human Reproductive Sciences. 2017; 10(3):208-212.  https://doi.org/10.4103/jhrs.JHRS_28_17
  55. Leone M, Costantini C, Gallo G, Voci A, Massajoli M, Messeni Leone M, de Cecco L. Role of growth factors in the human endometrium during aging. Maturitas. 1993;16(1):31-38.  https://doi.org/10.1016/0378-5122(93)90131-z
  56. Никитин А.И. Decidua — знакомая и неизвестная. Проблемы репродукции. 2017;23(4):13-17.  https://doi.org/10.17116/repro201723413-17
  57. Giudice LC, Irwin JC. Roles of the Insulinlike Growth Factor Family in Nonpregnant Human Endometrium and at the Decidual: Trophoblast Interface. Seminars in Reproductive Endocrinology. 1999; 17(1):13-21.  https://doi.org/10.1055/s-2007-1016207
  58. Irwin JC, de las Fuentes L, Giudice LC. Growth Factors and Decidualization in Vitro. Annals of the New York Academy of Sciences. 1994;30:734:7-18.  https://doi.org/10.1111/j.1749-6632.1994.tb21730.x
  59. Zhou WJ, Hou XX, Wang XQ, Li DJ. Fibroblast Growth Factor 7 Regulates Proliferation and Decidualization of Human Endometrial Stromal Cells via ERK and JNK Pathway in an Autocrine Manner. Reproductive Sciences. 2017;24(12):1607-1619. https://doi.org/10.1177/1933719117697122
  60. Goto K, Kawano Y, Kai Y, Furukawa Y, Itoh H, Narahara H, Utsunomiya T. The changing of cell modulation via epidermal growth factor receptor in human decidual stromal cells. Fertility and Sterility. 2019;112(3):e254. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2019.07.1410
  61. Kane NM, Jones M, Brosens JJ, Kelly RW, Saunders PT, Critchley HO. TGFbeta1 attenuates expression of prolactin and IGFBP-1 in decidualized endometrial stromal cells by both SMAD-dependent and SMAD-independent pathways. Public Library of Science One. 2010;5:e12970. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0012970
  62. Kim MR, Park DW, Lee JH, Choi DS, Hwang KJ, Ryu HS, Min CK. Progesterone-dependent release of transforming growth factor-beta1 from epithelial cells enhances the endometrial decidualization by turning on the Smad signalling in stromal cells. Molecular Human Reproduction. 2005;11(11):801-808.  https://doi.org/10.1093/molehr/gah240
  63. Torry DS, Holt VJ, Keenan JA, Harris G, Caudle MR, Torry RJ. Vascular endothelial growth factor expression in cycling human endometrium. Fertility and Sterility. 1996;66(1):72-80. 
  64. Ходжаева З.С., Мусиенко Е.В. Клинико-патогенетическое обоснование исследования секреции ангиогенных факторов в лютеиновую фазу менструального цикла у женщин с повторными потерями беременности в анамнезе. Акушерство и гинекология. 2011;8:61-65. 
  65. Hannan NJ, Paiva P, Meehan KL, Rombauts LJ, Gardner DK, Salamonsen LA. Analysis of fertility-related soluble mediators in human uterine fluid identifies VEGF as a key regulator of embryo implantation. Endocrinology. 2011;152(12):4948-4956. https://doi.org/10.1210/en.2011-1248
  66. Белокурова М.В. Аллельный полиморфизм генов в генезе нарушения имплантации у пациенток с неудачными попытками ЭКО: дисс. ... канд. мед. наук. М. 2013.
  67. Harper MJ. The implantation window. Baillière’s Clinical Obstetrics and Gynaecology. 1992;6(2):351-371.  https://doi.org/10.1016/s0950-3552(05)80092-6
  68. Carson DD, Bagchi I, Dey SK, Enders AC, Fazleabas AT, Lessey BA, Yoshinaga K. Embryo implantation. Developmental Biology. 2000;223(2):217-237.  https://doi.org/10.1006/dbio.2000.9767
  69. Schwenke M, Knöfler M, Velicky P, Weimar CH, Kruse M, Samalecos A, Wolf A, Macklon NS, Bamberger AM, Gellersen B. Control of Human Endometrial Stromal Cell Motility by PDGF-BB, HB-EGF and Trophoblast-Secreted Factor. Public Library of Science One. 2013;8(1):e54336. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0054336
  70. Lash GE, Warren AY, Underwood S, Baker PN. Vascular endothelial growth factor is a chemoattractant for trophoblast cells. Placenta. 2003;24(5):549-56.  https://doi.org/10.1053/plac.2002.0923
  71. Hempstock J, Cindrova-Davies T, Jauniaux E, Burton GJ. Endometrial glands as a source of nutrients, growth factors and cytokines during the first trimester of human pregnancy: A morphological and immunohistochemical study. Journal of Reproductive Biology and Endocrinology. 2004;2:58.  https://doi.org/10.1186/1477-7827-2-58
  72. Lafontaine L, Chaudhry P, Lafleur MJ, Van Themsche C, Soares MJ, Asselin E. Transforming growth factor Beta regulates proliferation and invasion of rat placental cell lines. Biology of Reproduction. 2011;84(3):553-559.  https://doi.org/10.1095/biolreprod.110.086348
  73. Feinberg RF, Kliman HJ, Wang CL. Transforming growth factor — beta stimulates trophoblast oncofetal fibronectin synthesis in vitro: implications for trophoblast implantation in vivo. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 1994;78(5):1241-1248. https://doi.org/10.1210/jcem.78.5.8175984
  74. Rajaei S, Zarnani AH, Jeddi-Tehrani M, Tavakoli M, Mohammadzadeh A, Dabbagh A, Mirahmadian M. Cytokine profile in the endometrium of normal fertile and women with repeated implantation failure. The Journal Immunology. 2011;8(4):201-208.  https://doi.org/IJIv8i4A2
  75. Cheng LH, Cao YX. Study on the correlation of transforming growth factor beta1 and its receptors with spontaneous abortion after in vitro fertilization and embryo transfer. Zhonghua Fu Chan Ke Za Zhi. 2005;40(5):299-301. 
  76. Kehrl JH, Wakefield LM, Roberts AB, Jakowlew S, Alvarez-Mon M, Derynck R, Sporn MB, Fauci AS. Production of transforming growth factor β by human T lymphocytes and its potential role in the regulation of T cell growth. Journal of Experimental Medicine. 1986;163(5):1037-1050. https://doi.org/10.1084/jem.163.5.1037
  77. Li MO, Flavell RA. TGF-β: A Master of All T Cell Trades. Cell. 2008;134(3):392-404.  https://doi.org/10.1016/j.cell.2008.07.025
  78. Sanjabi S, Oh SA, Li MO. Regulation of the Immune Response by TGF-β: From Conception to Autoimmunity and Infection. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 2017;9(6):a022236. https://doi.org/10.1101/cshperspect.a022236
  79. Wegmann TG, Lin H, Guilbert L, Mosmann TR. Bidirectional cytokine interactions in the maternal-fetal relationship: is successful pregnancy a TH2 phenomenon? Immunology Today. 1993;14: 353-356.  https://doi.org/10.1016/0167-5699(93)90235-D
  80. Munoz-Suano A, Hamilton AB, Betz AG. Gimme shelter: the immune system during pregnancy. Immunological Reviews. 2011;241(1): 20-38.  https://doi.org/10.1111/j.1600-065X.2011.01002.x
  81. Chang Y, Li J, Chen Y, Wei L, Yang X, Shi Y, Liang X. Autologous platelet-rich plasma promotes endometrial growth and improves pregnancy outcome during in vitro fertilization. International Journal of Clinical and Experimental Medicine. 2015;8(1):1286-1290.
  82. Maleki-Hajiagha A, Razavi M, Rouholamin S, Rezaeinejad M, Maroufizadeh S, Sepidarkish M. Intrauterine infusion of autologous platelet-rich plasma in women undergoing assisted reproduction: A systematic review and meta-analysis. Journal of Reproductive Immunology. 2020;137:103078. https://doi.org/10.1016/j.jri.2019.103078

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.