Земцов Д.С.

ФГБОУ ВО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Минздрава России

Есимбекова А.Р.

ФГБОУ ВО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Минздрава России

Зинченко И.С.

ФГБОУ ВО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Минздрава России

Рукша Т.Г.

ФГБОУ ВО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Минздрава России

Антисмысловые олигонуклеотиды в онкологии: перспективы и ограничения использования в клинической практике

Авторы:

Земцов Д.С., Есимбекова А.Р., Зинченко И.С., Рукша Т.Г.

Подробнее об авторах

Прочитано: 3138 раз


Как цитировать:

Земцов Д.С., Есимбекова А.Р., Зинченко И.С., Рукша Т.Г. Антисмысловые олигонуклеотиды в онкологии: перспективы и ограничения использования в клинической практике. Онкология. Журнал им. П.А. Герцена. 2021;10(4):59‑65.
Zemtsov DS, Esimbekova AR, Zinchenko IS, Ruksha TG. Antisense oligonucleotides in oncology: prospects and limitations of use in clinical practice. P.A. Herzen Journal of Oncology. 2021;10(4):59‑65. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/onkolog20211004159

Рекомендуем статьи по данной теме:

Стратегии генной терапии можно разделить на два основных подхода, таких как прямая доставка нормально функционирующего гена в клетку или исправление генного дефекта на уровне соматических или половых клеток. В настоящее время существует три типа систем доставки генов (кДНК/РНК): вирусные, невирусные и комбинированные гибридные [1]. Благодаря Марио Капекки, Оливер Смитис и Мартин Эванс в 80-х годах ХХ века были разработаны методы избирательного нокаута на основе введения специфических генных модификаций посредством эмбриональных стволовых клеток, за которые вышеуказанные исследователи впоследствии получили Нобелевскую премию по физиологии и медицине в 2007 г. [2].

Применение подобных технологий, безусловно, продолжает оказывать важное влияние на понимание механизмов патологических процессов, затрагивающих структуру и функционирование всего генома человека в равной степени, как и отдельных генов. Развитие методов секвенирования создало предпосылки для разработки методов целевого воздействия на единичные гены для изменения экспрессии последних. В настоящее время применяется несколько способов нокаутов генов. Одним из стандартных методов является использование антисмысловых олигонуклеотидов (ACO) [1]. Казалось, что применение АСО стало идеальной стратегией для внедрения совершенствующихся знаний о человеческом геноме для разработки новых лекарственных средств [3]. В 1967 г. Д.Г. Кнорре и Н.И. Гринева впервые выдвинули идею о ген-направленном воздействии олигонуклеотидов, которые могут специфически связываться и образовывать комплексы с комплементарными им нуклеотидными последовательностями [4]. В 1978 г. американские молекулярные биологи P. Zamecnik, M. Stephenson [5] показали эффект воздействия АСО на биологические мишени. В исследовании они продемонстрировали подавление развития вируса саркомы Рауса с помощью специфической последовательности олигонуклеотидов. В данной работе впервые было показано, как синтетический олигонуклеотид, состоящий из 13 нуклеотидов, комплементарный РНК вируса саркомы Рауса, при добавлении к тканевым культурам фибробластов куриного эмбриона, инфицированным вирусом саркомы Рауса, вызывает подавление репликации вируса, тем самым не допуская дальнейшего развития опухоли. Так, впервые было доказано, что АСО могут специфично ингибировать экспрессию генов [5].

Необходимо отметить, что на данный момент известно три вида антисмысловых технологий: применение АСО, рибозимов (ферментативных рибонуклеиновых кислот) и РНК-интерференция. Использование вышеуказанных средств позволяет выполнять подавление экспрессии гена на стадиях транскрипции, трансляции, деаденилирования или деградации мРНК [6]. Вышеперечисленные молекулы имеют разные механизмы действия, но всех их объединяет общий принцип: антисмысловой эффект развивается после связывания с РНК-мишенью.

Исследования по применению рибозимов стали выполняться одновременно с таковыми по использованию АСО, но рибозимы, к сожалению, не нашли широкого применения из-за их нестабильности при попадании в плазму крови [7].

Еще один вид антисмысловых технологий основан на использовании малых интерферирующих РНК (siRNA), действующих на основе принципа РНК-интерференции. В сравнении с рибозимами и АСО малые интерферирующие РНК имеют ряд преимуществ, заключающихся в высокой специфичности действия и эффективности подавления экспрессии генов [8]. Вместе с тем проблема применения малых интерферирующих РНК — быстрое разрушение под действием РНКаз и затруднительная доставка в клетки [9, 10].

Для эффективного связывания АСО должны состоять не менее чем из 11 оснований, большинство применяемых в экспериментальной медицине АСО содержит 15—25 нуклеотидов. Безусловным преимуществом применения данной технологии является возможность ингибировать уникальные мишени с высокой специфичностью, что используется в конечном итоге для блокирования синтеза широкого спектра белков [11].

Условие эффективного функционирования АСО — успешное проникновение в клетки-мишени [12]. Интересно, что даже на сегодняшний день точные механизмы проникновения олигонуклеотидов остаются недостаточно ясными. Установлено, что проникновение происходит посредством активного транспорта, который в свою очередь зависит от температуры, структуры и концентрации олигонуклеотида и типа клеток. В настоящее время считается, что адсорбционный эндоцитоз и пиноцитоз в жидкой фазе — ключевые механизмы интернализации олигонуклеотидов, зависящие от их концентрации. При относительно низкой концентрации АСО интернализация, вероятно, происходит путем взаимодействия с рецептором, находящимся на мембране клетки. При относительно высокой концентрации олигонуклеотида после связывания со всеми доступными рецепторами включается процесс пиноцитоза [13].

Во многих исследованиях показано, что немодифицированные олигонуклеотиды плохо проникают в клетки независимо от того, заряжены они или нет. Такие АСО, как правило, локализуются в эндосомах/лизосомах, где они не могут выполнять свои основные задачи и разрушаются нуклеазами в дальнейшем. Нуклеиновые кислоты без различных модификаций слабо связываются с белками плазмы, очень быстро фильтруются почками и выводятся с мочой, в то время как для реализации своих эффектов непременным условием является проникновение АСО в ядро клетки [12].

Первым из разработанных средств доставки были липосомы, которые представляют коллоидные везикулы, т.е. мелкодисперсные взвеси, состоящие из фосфолипидов и холестерина. Липосомы могут быть нейтрально или положительно заряженными в зависимости от природы фосфолипидов. Нуклеиновые кислоты можно легко инкапсулировать во внутреннюю водорастворимую часть липосомы или связать с поверхностью липосомы посредством электростатических взаимодействий. Липосомы из-за своего положительного заряда имеют высокое сродство к клеточным мембранам, которые в физиологических состояниях отрицательно заряжены [14].

Другим способом доставки является применение катионных полимеров, таких как поли-L-лизин, полиалкилцианакрилатные наночастицы и полиэтиленимин [15, 16]. Нуклеиновые кислоты взаимодействуют с этими средствами доставки через электростатические взаимодействия. Катионные полимеры обеспечивают проникновение АСО в клетки посредством эндоцитоза [12]. Поскольку эти пептиды положительно заряжены, они обладают высоким сродством к клеточным мембранам, которые в физиологических условиях заряжены отрицательно. Их ковалентное связывание с АСО способствует проникновению последнего в цитоплазму клетки и, следовательно, в конечном счете в ядро. Эффективность была продемонстрирована в различных клеточных линиях и моделях лабораторных животных, но, к сожалению, эти полиамины токсичны и используются реже катионных липосом.

Еще один подход к интернализации олигонуклеотидов состоит в том, чтобы создать пермеабилизацию плазматической мембраны и позволить свободным олигонуклеотидам проникать в клетки путем диффузии [17]. Такой подход включает образование так называемых пор в мембране, индуцированных путем изменения проницаемости мембраны клетки под воздействием стрептолизина-O, механическим путем с помощью микроинъекций или под действием электоромагнитного поля. Все эти способы в определенных обстоятельствах могут позволить заряженным или незаряженным олигонуклеотидам быстро проникать в клетки и достигать ядра, где они осуществляют ингибирование функции целевого гена. Вместе с тем они опасны для применения in vivo в виду кумуляции таких АСО в печени и почках, реализуя таким образом выраженную нефро- и гепатотоксичность. В связи с этим их использование для поставленной цели ограничено [17].

Следовательно, несмотря на то что АСО обладают возможностью связываться с определенными генами-мишенями, достижение целевой молекулы представляется не всегда успешным и требует оптимизации подходов для эффективной доставки АСО.

Одним из первых клинически разрешенных препаратов, основанных на применении технологии АСО, является патисиран, специфически связывающийся с мРНК белка транстиретина (TTR) [18].

На 2020 г. зарегистрировано всего 10 препаратов на основе олигонуклеотидов, которые одобрены к применению регуляторами в области безопасного использования лекарственных средств в различных странах [19] (см. таблицу).

Одобренные к применению на 2020 г. антисмысловые олигонуклеотидные препараты

Название

Заболевание (номер OMIM*)

Механизм действия

Год регистрации

Способ введения

Ссылка

Фомивирсен

ЦМВ-индуцированный ретинит (НА)

Формивирсен связывается с транскриптами UL123 и предотвращает трансляцию в белке IE2

FDA* (1998)

EMA* (1999)

Внутриглазное

[20]

Мипомирсен

Семейная гиперхолестеринемия (607748)

Мипомирсен связывается с транскриптами ApoB-100 и индуцирует опосредованное РНКазой H расщепление транскриптов-мишеней

FDA (2013)

Подкожный

[21]

Этеплирсен

Мышечная дистрофия Дюшена (310200)

Этеплирсен связывается с пре-мРНК DMD, восстанавливает рамку считывания, позволяя производить частично функциональный белок дистрофин

FDA (2016)

Внутривенный

[22]

Нусинерсен

Спинальная мышечная атрофия I, II и III типов (25330, 253550, 253400)

Нусинерсен связывается с интронным сайленсером сплайсинга в пре-мРНК SMN2, тем самым усиливая продукцию белка SMN

FDA (2016)

EMA (2017)

Интратекальный

[23]

Инотерсен

Наследственный транстиретин-опосредованный амилоидоз (105210)

Инотерсен связывается с транскриптами hATTR и индуцирует опосредованное РНКазой H расщепление, тем самым снижая продукцию белка транстиретина

FDA (2018)

EMA (2018)

Подкожный

[24]

Патисиран

Наследственный транстиретин-опосредованный амилоидоз (105210)

Патисиран включен в комплекс RISC и индуцирует опосредованное si-RNA снижение транскриптов hATTR и продукцию белка транстиретина

FDA (2018)

Внутривенный

EMA (2018)

[25]

Воланесорсен

Гипертриглицидемия (145750), синдром семейной хиломикронемии (118830) и семейная частичная липодистрофия (151660)

Воланесорсен связывается с транскриптами аполипопротеина C-III и индуцирует индуцированное РНКазой H расщепление, снижает образование белка; используется в сочетании с диетой с низким содержанием жиров

EMA (2019)

Подкожный

[26]

Гивосиран

Острые порфирии печени (612740 и 176000)

Гивосиран включается в комплекс RISC и индуцирует опосредованное si-RNA уменьшение транскриптов ALAS1 и снижение образования токсичных промежуточных продуктов гема

FDA (2019)

Подкожный

[27]

Голодирсен

Мышечная дистрофия Дюшена

Голодирсен восстанавливает рамку считывания, позволяя производить частично функциональный белок дистрофин

FDA (2019)

Внутривенный

[28]

Вилтоларсен

Мышечная дистрофия Дюшена

Вилтоларсен связывается с экзоном 53 в транскриптах пре-мРНК DMD, позволяя производить частично функциональный дистрофин

Министерство здравоохранения, труда и социального обеспечения Японии (2020 г.)

Внутривенный

[29]

Примечание. FDA — управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов США. EMA — Европейское агентство по лекарственным средствам. OMIM — медицинская база данных, в которой собирается информация об известных заболеваниях с генетическим компонентом и генах, ответственных за их развитие.

Стоит отметить, что список олигонуклеотидов, отклоненных для дальнейшего использования в качестве биомедицинских препаратов, все же продолжает расти. На это есть множество причин, например, трудности в проникновении АСО в клетку, нефротоксичность, неправильно подобранная нуклеотидная последовательность ACO (когда подобранный АСО некомплементарен участку гена при патологии), недостаточный для терапии достигнутый уровень нокдауна, офф-таргетная активность ACO и, что наиболее важно, терапевтический индекс, ограничивающий лечение. На практике получается, что информации о функционировании отдельных клеток или органов недостаточно, чтобы сконструировать некое универсальное средство для лечения даже отдельной болезни. Данный факт является причиной того, что широкий ряд ДНК-фрагментов, содержащий иногда набор различных модификаций, не доходит даже до самой ранней стадии клинических испытаний, оставаясь в химической лаборатории в качестве новых соединений, но не биомедицинских препаратов. Химический синтез терапевтических олигонуклеотидов нетривиален, и комбинированные эффекты нескольких модификаций часто непредсказуемы. При выборе модификаций и их положений во фрагменте нуклеиновой кислоты необходимо руководствоваться эмпирическим тестированием [30]. Кроме того, из-за их нефротоксичности у пациентов, получающих длительное лечение АСО, требуется регулярно контролировать функцию почек [31].

Однако ряд исследований показывает эффективность и сохраняющуюся перспективность использования АСО. Известно, что развитие лекарственной устойчивости, характерной для меланомы, частично объясняется сверхэкспрессией антиапоптотического белка BCL-2. В исследовании, выполненном канадскими исследователями C. Cresce, J. Koropatnick [32], показано действие двух АСО к bcl-2. Их применение вызывало снижение экспрессии молекулы-мишени в исследуемых тканях при диссеминированных формах меланомы и рака предстательной железы. В другой работе было определено, что ингибирование bcl-2 и bcl-xL в первичных клетках меланомы на основе АСО сопровождается активацией апоптоза и снижением экспрессии этих генов-мишеней [33]. Другим веществом для ингибирования bcl-2 на основе АСО является облимерсен натрия, состоящий из 18 нуклеотидов. Облимерсен подавляет экспрессию белка bcl-2 и увеличивает индуцированный химиотерапией апоптоз в ксенотрансплантатах рака кожи человека.

Другой молекулой-мишенью АСО является белок сурвивин, который обладает способностью ингибировать апоптоз и стимулирует пролиферацию опухолевых клеток [31]. Сурвивин — один из наиболее специфичных онкобелков и сверхэкспрессируется почти при всех злокачественных новообразованиях, в том числе при раке кожи [34]. В 2008 г. была выявлена эффективность АСО LY2181308 к ингибированию сурвивина. В соответствующем исследовании осуществлялось взятие ксенотрансплантатов у 20 пациентов с раком прямой кишки, у которых наблюдалась повышенная экспрессия сурвинина в опухолевой ткани. Применение АСО к сурвивину по результатам выполненного исследования приводило к значительной задержке роста опухоли [35]. Другое проведенное рандомизированное открытое исследование II фазы было выполнено с участием 16 пациентов с острым миелоидным лейкозом, в котором оценивались эффективность, безопасность, фармакокинетика и фармакодинамика этого же вещества. Исследование определило эффективность LY2181308 подавлять экспрессию сурвивина, вызывать остановку клеточного цикла и индуцировать апоптоз опухолевых клеток. LY2181308 хорошо переносился, а уровни сурвивина снижались только у пациентов с его высокой экспрессией. В целом применение LY2181308 в сочетании с химиотерапией приводило к полному ответу у 4 из 16 пациентов, у 1 из 16 пациентов был неполный ответ. 9 пациентов умерли во время исследования: 6 из них получали АСО в качестве монотерапии, 3 — в комбинации с другими противоопухолевыми средствами. В результате проведенного исследования были сделаны выводы, что LY2181308 достаточно хорошо переносится, а токсические эффекты обусловлены либо средствами стандартной химиотерапии, либо прогрессированием заболевания. LY2181308 в комбинации с цитостатическими препаратами цитарабином и идарубицином не вызывает дополнительных токсических изменений и демонстрирует некоторый клинический эффект, требующий дополнительного подтверждения клиническими исследованиями [36].

Другое клиническое исследование с применением противоопухолевой терапии на основе АСО осуществлено у пациентов с метастатическим уретральным раком. В рандомизированном открытом клиническом исследовании II фазы применялся АСО OGX-427 в комбинации с доцетакселом. В данном исследовании приняли участие 200 пациентов, у которых наблюдалось неблагоприятное течение заболевания на фоне стандартной терапии доцетакселом. Пациенты были разделены на две группы, первая группа получала терапию доцетакселом, вторая — доцетаксел в комбинации OGX-427 (Apatorsen). Целевой мишенью данного АСО является белок теплового шока Hsp27, который участвует в ингибировании апоптоза и регуляции роста и дифференцировки клеток. Результаты данного исследования показали, что снижение экспрессии Hsp27 посредством воздействия на него АСО повышает выживаемость пациентов по сравнению со стандартной терапией доцетакселом. Смертность больных на фоне терапии АСО составила 78,77%, тогда как в контрольной группе — 85,15%. Однако в этом же исследовании выявлено, что у 56,7% больных, получавших комбинированную терапию, регистрировались серьезные побочные эффекты, такие как тяжелая анемия, печеночная и почечная недостаточность, в то время как у больных при монотерапии частота развития осложнений составила 44,55% [37].

Другим АСО, находящимся на этапе клинических испытаний, является венетоклакс (ABT-199/GDC-0199). Это специфический ингибитор, мишенью которого также является bcl-2. В этом исследовании приняли участие 32 человека. Было показано, что блокирование bcl-2 у пациентов с острым миелобластным лейкозом позволяет в значительной степени снизить устойчивость к химиотерапии из-за влияния на опухолевые стволовые клетки [38]. На данный момент исследование эффективности ингибирования bcl-2 на основе АСО также проводится при хроническом лимфолейкозе, где предполагается установить их терапевтический эффект в качестве монотерапии и при комбинированной терапии с ритуксимабом [39].

Стоит отметить, что АСО активно исследуются не только для лечения злокачественных заболеваний. Так, в данное время выполняется активное исследование II фазы подкожного введения АСО инклисирана в дозе 300 мг, мишенью которого является гидролитический фермент семейства пропротеиновых конвертаз PSK9. Предполагается, что ингибирование PSK9 может приводить к снижению уровня холестерина более чем на 50% в течение 6 мес с незначительными побочными эффектами. Если эффективность и безопасность будут подтверждены в продолжающемся в настоящее время исследовании и затем в III фазе исследования с участием 15 000 человек, терапия инклисираном может стать альтернативой статинам при лечении сердечно-сосудистых заболеваний. Этот препарат основан на использовании малых интерферирующих РНК [40].

С января 2020 г. выполняется рандомизированное контролируемое клиническое испытание II фазы с внутрикожным введением тилсотолимода (MO-2125) при меланоме I—II стадии для оценки общей выживаемости, частоты положительных ответов в сторожевых лимфатических узлах и безрецидивной выживаемости. В этом исследовании определяли эффект анализируемого вещества у 214 пациентов с вышеуказанным диагнозом. Тилсотолимод является синтетическим агонистом толл-подобного рецептора 9 (TLR9), другое название CD289 [41].

С 2019 г. проводится клиническое исследование I фазы в отношении побочных эффектов АСО SD-101 в сочетании с применением иммунологического препарата ниволумаба и лучевой терапии у пациентов с распространенной формой рака поджелудочной железы IV стадии, характеризующегося рефрактерностью к химиотерапии. Мишенью SD-101 является толл-подобный рецептор 9 (TLR9), который экспрессируется в клетках иммунной системы, включая дендритные клетки, макрофаги, клетки-киллеры. TLR9 преимущественно связывает ДНК, присутствующую в бактериях и вирусах, и запускает сигнальные каскады, которые приводят к развитию провоспалительного цитокинового ответа. Применение АСО к TLR9 в сочетании с антителами к PD-L1 и PD-L2 и лучевой терапией может обеспечить повышение показателей общей и безрецидивной выживаемости при аденокарциноме поджелудочной железы [42].

Резюмируя, стоит отметить, что нацеленное на единичные молекулы воздействие с применением АСО имеет перспективы для использования в клинической медицине. Вместе с тем применение олигонуклеотидов в фундаментальных и клинических исследованиях, а затем в терапевтических целях требует их оптимизации посредством химических модификаций в структуре для улучшения физико-химических и биологических свойств [7].

На сегодняшний день терапия АСО является эффективным подходом для избирательного моделирования экспрессии гена. Количество исследований в этой области непрерывно растет, что обусловлено в том числе необходимостью постоянного поиска новых средств противоопухолевой терапии [43]. Однако оптимальное использование АСО в качестве лекарственных средств в настоящее время затруднено из-за ряда проблем, таких как их нестабильность в физиологических жидкостях, разрушение под действием РНКаз, недостаточная биодоступность в тканях, способность накапливаться в печени, почках и кишечнике, что требует введения высоких доз для достижения соответствующей фармакологической концентрации. Все вышеперечисленное необходимо учитывать наравне с возможностью производства и экономической эффективностью. Также при введении АСО непосредственно пациенту следует учитывать многие факторы: период полувыведения вещества, скорость клиренса. Различные носители — липосомы, полимеры и проникающие в клетки пептиды — были предложены в качестве основных методов доставки АСО к мишеням, но отсутствие у них клеточной специфичности остается основным недостатком их клинического использования. Помимо того, использование пептидов как средств доставки АСО к цели дает выраженные токсические эффекты у пациентов, что зачастую требует отмены препаратов [44—46]. Таким образом, можно сделать вывод, что наряду с необходимой защитой АСО от действия гидролитических ферментов их доставка к конкретным типам клеток и контроль высвобождения являются ключевой задачей для трансформации данного экспериментального метода в терапевтические средства. С решением этих недостатков АСО могут оказаться прорывной технологией для лечения угрожающих жизни людей заболеваний в ближайшем будущем.

Заключение

Применение АСО обладает потенциальной терапевтической значимостью для лечения онкологических заболеваний. Особое внимание к данным веществам связано с их способностью модулировать экспрессионную активность тех молекул, которые отвечают за реализацию процессов пролиферации, инвазии, ангиогенеза и ассоциированы с опухолевой прогрессией. На данный момент имеется 10 одобренных препаратов на основе АСО, 3 из которых были разрешены для применения за последние 12 месяцев, ряд препаратов на основе АСО проходит исследование во II и III фазе клинических испытаний. Терапия на основе АСО может расширяться для лечения социально значимых заболеваний [19, 45].

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

The authors declare no conflicts of interest.

Литература / References:

  1. Alnasser SM. Review on mechanistic strategy of gene therapy in the treatment of disease. Gene. 2021;769:145246. https://doi.org/10.1016/j.gene.2020.145246
  2. Белоконева О. Нобелевские премии 2007 г. Гены под прицелом. Наука и жизнь. 2007;12. Ссылка активна на 30.04.21.  https://www.nkj.ru/archive/483/11798/
  3. Wang X, Xian J, Chen G, Peng H. Therapeutic oligonucleotides: a review. Sheng Wu Gong Cheng Xue Bao. 2018;34(5):664-675.  https://doi.org/10.13345/j.cjb.170401
  4. Belikova AM, Zarytova VF, Grineva NI. Synthesis of ribonucleosides and diribonucleoside phosphates containing 2-chloroethylamine and nitrogen mustard residues. Tetrahedron Lett. 1967;37:3557-3562. https://doi.org/10.1016/s0040-4039(01)89794-x
  5. Zamecnik PC, Stephenson ML. Inhibition of Rous sarcoma virus replication and cell transformation by a specific oligodeoxynucleotide. Proc Natl Acad Sci USA. 1978;75(1):280-284.  https://doi.org/10.1073/pnas.75.1.280
  6. Zhou LY, Qin Z, Zhu HI, He ZY, Xu T. Current RNA-based therapeutics in clinical trials. Curr Gene Ther. 2019;19(3):172-196.  https://doi.org/10.2174/1566523219666190719100526
  7. Singh J, Kaur H, Kaushik A, Peer S. A review of antisense therapeutic interventions for molecular biological targets in various diseases. Int J Pharmacol. 2011;7(3):294-315.  https://doi.org/10.3923/ijp.2011.294.315
  8. Qiu S, Adema C, Lane T. A computational study of off-target effects of RNA interference. Nucleic Acids Res. 2005;33(6):1834-1847. https://doi.org/10.1093/nar/gki324
  9. Wang JH, Hendry BM, Sharpe CC. Silencing genes in the kidney: antisense or RNA interference? Nephrol Dial Transplant. 2008;23(7):2115-2118. https://doi.org/10.1093/ndt/gfn095
  10. Kurreck J. Antisense technologies: Improvement through novel chemical modifications. Eur J Biochem. 2003;270(8):1628-1644. https://doi.org/10.1046/j.1432-1033.2003.03555.x
  11. Bhagyashree G, Srinivasan G. Antisense oligonucleotides as therapeutics and their delivery. Curr Sci. 2017;112(3):490-498.  https://doi.org/10.18520/cs/v112/i03/490-498
  12. Dias N, Stein CA. Antisense oligonucleotides: basic concepts and mechanisms. Mol Cancer Ther. 2002;1(5):347-355. 
  13. Туркина О.Р., Терах Е.И. Антисмысловые олигонуклеотиды. APRIORI. Серия: Естественные и технические науки. 2017;3:18. 
  14. Bennett CF, Chiang MY, Chan H, Shoemaker JE, Mirabelli CK. Cationic lipids enhance cellular uptake and activity of phosphorothioate antisense oligonucleotides. Mol Pharmacol. 1992;41(6):1023-1033.
  15. Stewart AJ, Pichon C, Meunier L, Midoux P, Monsigny M, Roche AC. Enhanced biological activity of antisense oligonucleotides complexed with glycosylated poly-L-lysine. Mol Pharmacol. 1996;50(6):1487-1494.
  16. Zobel HP, Kreuter J, Werner D, Noe CR, Kümel G, Zimmer A. Cationic polyhexylcyanoacrylate nanoparticles as carriers for antisense oligonucleotides. Antisense Nucleic Acid Drug Dev. 1997;7(5):483-493.  https://doi.org/10.1089/oli.1.1997.7.483
  17. Juliano RL, Alahari S, Kole R, Yoo H, Kole R, Cho M. Antisense pharmacodynamics: critical issues in the transport and delivery of antisense oligonucleotides. Pharm Res. 1999;16(4):494-502. 
  18. Lee RG, Crosby J, Baker BF, Graham MJ, Crooke RM. Antisense technology: an emerging disease therapeutics. J Cardiovasc Transl Res. 2013;6(6):969-980.  https://doi.org/10.1007/s12265-013-9495-7
  19. Kuijper EC, Bergsma AJ, Pijnappel WWMP, Aartsma-Rus A. Opportunities and challenges for antisense oligonucleotide therapies. J Inherit Metab Dis. 2021;44(1):72-87.  https://doi.org/10.1002/jimd.12251
  20. Stix G. Shutting down a gene. Antisense drug wins approval. Sci Am. 1998;279(5):46-50.  https://doi.org/10.1038/scientificamerican1198-46b
  21. Hair P, Cameron F, McKeage K. Mipomersen sodium: first global approval. Drugs. 2013;73(5):487-493.  https://doi.org/10.1007/s40265-013-0042-2
  22. Aartsma-Rus A, Krieg AM. FDA approves Eteplirsen for Duchenne muscular dystrophy: the next chapter in the Eteplirsen saga. Nucleic Acid Ther. 2017;27(1):1-3.  https://doi.org/10.1089/nat.2016.0657
  23. Benson MD, Waddington-Cruz M, Berk JL, Polydefkis M, Dyck PJ, Wang AK, Planté-Bordeneuve V, Barroso FA, Merlini G, Obici L, Scheinberg M, Brannagan TH 3rd, Litchy WJ, Whelan C, Drachman BM, et al. Inotersen treatment for patients with hereditary transthyretin amyloidosis. N Engl J Med. 2018;379(1):22-31.  https://doi.org/10.1056/NEJMoa1716793
  24. Aartsma-Rus A. FDA approval of Nusinersen for spinal muscular atrophy makes 2016 the year of splice modulating oligonucleotides. Nucleic Acid Ther. 2017;27(2):67-69.  https://doi.org/10.1089/nat.2017.0665
  25. Adams D, Gonzalez-Duarte A, O’Riordan WD, Yang CC, Ueda M, Kristen AV, Tournev I, Schmidt HH, Coelho T, Berk JL, Lin KP, Vita G, Attarian S, Planté-Bordeneuve V, Mezei MM, et al. Patisiran, an RNAi therapeutic, for hereditary transthyretin amyloidosis. N Engl J Med. 2018;379(1):11-21.  https://doi.org/10.1056/NEJMoa1716153
  26. Yang X, Lee SR, Choi YS, Alexander MO, Digenio A, Yang Q, Miller YI, Witztum JL, Tsimikas S. Reduction in lipoprotein-associated apoC-III levels following volanesorsen therapy: phase 2 randomized trial results. J Lipid Res. 2016;57(4):706-713.  https://doi.org/10.1194/jlr.M066399
  27. Sardh E, Harper P, Balwani M, Stein P, Rees D, Bissell DM, Desnick R, Parker C, Phillips J, Bonkovsky HL, Vassiliou D, Penz C, Chan-Daniels A, He Q, Querbes W, Fitzgerald K, Kim JB, Garg P, Vaishnaw A, Simon AR, Anderson K. Phase 1 trial of an RNA interference therapy for acute intermittent porphyria. N Engl J Med. 2019;380(6):549-558.  https://doi.org/10.1056/NEJMoa1807838
  28. Young-A Heo. Golodirsen: First approval. Drugs. 2020;80(3):329-333.  https://doi.org/10.1007/s40265-020-01267-2
  29. Roshmi RR, Yokota T. Viltolarsen for the treatment of Duchenne muscular dystrophy. Drugs Today (Barc). 2019;55(10):627-639.  https://doi.org/10.1358/dot.2019.55.10.3045038
  30. Метелев В.Г, Орецкая Т.С. Модифицированные олигонуклеотиды: Новые структуры, новые свойства, новые области применения. Биоорганическая химия. 2021;47(2):179-183.  https://doi.org/10.31857/S0132342321020172
  31. Laikova KV, Oberemok VV, Krasnodubets AM, Gal’chinsky NV, Useinov RZ, Novikov IA, Temirova ZZ, Gorlov MV, Shved NA, Kumeiko VV, Makalish TP, Bessalova EY, Fomochkina II, Esin AS, Volkov ME, Kubyshkin AV. Advances in the understanding of skin cancer: ultraviolet radiation, mutations, and antisense oligonucleotides as anticancer drugs. Molecules. 2019;24(8):1516. https://doi.org/10.3390/molecules24081516
  32. Cresce CD, Koropatnick J. Antisense treatment in human prostate cancer and melanoma. Curr Cancer Drug Targets. 2010;10(6):555-565.  https://doi.org/10.2174/156800910791859452
  33. Olie RA, Hafner C, Küttel R, Sigrist B, Willers J, Dummer R, Hall J, Stahel RA, Zangemeister-Wittke U. Bcl-2 and bcl-xL antisense oligonucleotides induce apoptosis in melanoma cells of different clinical stages. J Invest Dermatol. 2002;118(3):505-512.  https://doi.org/10.1046/j.0022-202x.2001.01677.x
  34. Shojaei F, Yazdani-Nafchi F, Banitalebi-Dehkordi M, Chehelgerdi M, Khorramian-Ghahfarokhi M. Trace of survivin in cancer. Eur J Cancer Prev. 2019;28(4):365-372.  https://doi.org/10.1097/CEJ.0000000000000453
  35. Rödel F, Frey B, Leitmann W, Capalbo G, Weiss C, Rödel C. Survivin antisense oligonucleotides effectively radiosensitize colorectal cancer cells in both tissue culture and murine xenograft models. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 2008;71(1):247-255.  https://doi.org/10.1016/j.ijrobp.2008.02.011
  36. Erba HP, Sayar H, Juckett M, Lahn M, Andre V, Callies S, Schmidt S, Kadam S, Brandt JT, Van Bockstaele D, Andreeff M. Safety and pharmacokinetics of the antisense oligonucleotide (ASO) LY2181308 as a single-agent or in combination with idarubicin and cytarabine in patients with refractory or relapsed acute myeloid leukemia (AML). Invest New Drugs. 2013;31(4):1023-1034. https://doi.org/10.1007/s10637-013-9935-x
  37. Choueiri TK, Hahn NM, Alva AS, Lauer RC, Dreicer R, Picus J, Pili R, Balar AV, Sonpavde G, Hoffman-Censits JH, Guancial EA, Alter R, Regan MM, Jacobs C, Stewart PS, Pal SK, Rosenberg JE. The Borealis-2 clinical trial: A randomized phase 2 study of OGX-427 (Apatorsen) plus docetaxel versus docetaxel alone in relapsed/refractory metastatic urothelial cancer. J Clin Oncol. 2014;32(15 suppl):tps4593. https://doi.org/10.1200/jco.2014.32.15_suppl.tps4593
  38. Konopleva M, Pollyea DA, Potluri J, Chyla B, Hogdal L, Busman T, McKeegan E, Salem AH, Zhu M, Ricker JL, Blum W, DiNardo CD, Kadia T, Dunbar M, Kirby R. et al. Efficacy and biological correlates of response in a phase II study of venetoclax monotherapy in patients with acute myelogenous leukemia. Cancer Discov. 2016;6(10):1106-1117. https://doi.org/10.1158/2159-8290.CD-16-0313
  39. Activity and safety of front-line venetoclax and rituximab in roung and fit patients with chronic lymphocytic leukemia (VeRitAs). Accessed May 5, 2021. https://clinicaltrials.gov/ct2/show/NCT03455517?term=AON&recrs=ad&cond=Cancer&draw=2&rank=1
  40. Watts JK, Ockene IS. RNA interference for the masses? siRNA targeting PCSK9 promises prevention of cardiovascular disease. Nucleic Acid Ther. 2020;30:1-3.  https://doi.org/10.1089/nat.2019.0835
  41. A randomized controlled phase II trial with intradermal IMO-2125 in pathological tumor stage (p) T3-4 cN0M0 melanoma (INTRIM). Accessed May 5, 2021. https://clinicaltrials.gov/ct2/show/NCT04126876?term=ODN&draw=3&rank=14
  42. SD-101, Nnvolumab, and radiation therapy in treating patients with chemotherapy-refractory metastatic pancreatic cancer. Accessed May 5, 2021. https://clinicaltrials.gov/ct2/show/NCT04050085?term=ODN&draw=3&rank=20
  43. Рукша Т.Г., Аксененко М.Б., Гырылова С.Н. Злокачественные новообразования кожи: анализ заболеваемости в Красноярском крае, проблемы профилактики и совершенствования ранней диагностики. Вестник дерматологии и венерологии. 2010;4:4-9. 
  44. Bedi D, Gillespie JW, Petrenko VA Jr, Ebner A, Leitner M, Hinterdorfer P, Petrenko. Targeted delivery of siRNA into breast cancer cells via phage fusion proteins. Mol Pharm. 2013;10(2):551-559.  https://doi.org/10.1021/mp3006006
  45. Sardone V, Zhou H, Muntoni F, Ferlini A, Falzarano MS. Antisense oligonucleotide-based therapy for neuromuscular disease. Molecules. 2017;22(4):563.  https://doi.org/10.3390/molecules22040563
  46. Le BT, Raguraman P, Kosbar TR, Fletcher S, Wilton SD, Veedu RN. Antisense oligonucleotides targeting angiogenic factors as potential cancer therapeutics. Mol Ther Nucleic Acids. 2019;14:142-157.  https://doi.org/10.1016/j.omtn.2018.11.007

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.