Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Тамразова О.Б.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов» Минобрнауки России

Глухова Е.А.

ГБУЗ «Детская городская клиническая больница им. З.А. Башляевой» Департамента здравоохранения Москвы;
Клиника ФГБУН «Федеральный исследовательский центр питания и биотехнологии»;
Университетская детская клиническая больница ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова»

Уникальная молекула филаггрин в структуре эпидермиса и ее роль в развитии ксероза и патогенеза атопического дерматита

Авторы:

Тамразова О.Б., Глухова Е.А.

Подробнее об авторах

Прочитано: 19132 раза


Как цитировать:

Тамразова О.Б., Глухова Е.А. Уникальная молекула филаггрин в структуре эпидермиса и ее роль в развитии ксероза и патогенеза атопического дерматита. Клиническая дерматология и венерология. 2021;20(6):102‑110.
Tamrazova OB, Glukhova EA. Unique molecule filaggrin in epidermal structure and its role in the xerosis development and atopic dermatitis pathogenesis. Russian Journal of Clinical Dermatology and Venereology. 2021;20(6):102‑110. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/klinderma202120061102

Рекомендуем статьи по данной теме:
Ге­не­зис эмо­лен­тов. Прош­лое, нас­то­ящее, бу­ду­щее. Кли­ни­чес­кая дер­ма­то­ло­гия и ве­не­ро­ло­гия. 2025;(4):412-420
От ато­пии к ин­фек­ции — кли­ни­чес­кий слу­чай со­че­тан­ной па­то­ло­гии ко­жи. Кли­ни­чес­кая дер­ма­то­ло­гия и ве­не­ро­ло­гия. 2025;(4):430-436
Ато­пи­чес­кий дер­ма­тит: проб­ле­ма при­вер­жен­нос­ти к эмо­лен­там. Кли­ни­чес­кая дер­ма­то­ло­гия и ве­не­ро­ло­гия. 2025;(5):698-707

Введение

Кожа является покровным органом, который защищает организм от внешней среды. Важнейшую роль в осуществлении защитной функции кожного покрова играет эпидермис. За последнее десятилетие многочисленные исследования показали, что дисфункция кожного барьера является важнейшим фактором в развитии атопического дерматита (АД) [1–3]. На фоне приобретенных или врожденных дефектов, ассоциированных с повреждением белков эпидермального барьера, значительно усиливается взаимодействие внешних антигенов (аллергенов и инфекционных агентов) с иммунными клетками, находящимися в коже, развивается местное воспаление, которое впоследствии приводит к иммунной перестройке. Отмечено, что мутации в гене филаггрина человека (FLG), кодирующем основной белок кожного барьера, филаггрин, является генетически обусловленным фактором риска для АД [3]. Данный механизм развития АД отражается в теориях патогенеза «внешнего» и «внутреннего» АД [4, 5].

Строение рогового слоя

Барьерная функция кожи в значительной степени зависит от рогового слоя, самого поверхностного слоя эпидермиса. Роговой слой эпидермиса состоит из 10–20 слоев уплощенных безъядерных клеток, окруженных высокоорганизованной и непрерывной липидной матрицей, которые называются корнеоцитами. Нормальное функционирование рогового слоя поддерживается за счет баланса между митозами кератиноцитов базального слоя и отторжением старых клеток в поверхностных слоях [6, 7].

Непосредственно в роговом слое кератиноциты становятся уплощенными и денуклеаризированными пластинами, в то время как их мембраны заменяются специфической барьерной структурой, известной как роговой конверт. Внутренняя часть корнеоцитов состоит в основном из кератиновых волокон, агрегированных белком филаггрином.

При помощи филаггрина и некоторых других белков происходит поперечное сшивание ороговевшей клеточной оболочки, обеспечивающее механически прочный каркас для внеклеточного липидного матрикса [7].

Структурные белки (кератин, филаггрин и др.), эпидермальные липиды, плотные соединения, десмосомы и многочисленные ферменты контролируют проницаемость кожного барьера и обеспечивают адгезию клеток.

Иммунологическая модуляция кожного барьера

Недавние исследования свидетельствуют о том, что иммунологические реакции могут значительно влиять на целостность кожного покрова даже при отсутствии врожденных дефектов эпидермального барьера [8]. Несмотря на то что сложный воспалительный каскад, приводящий к поражениям кожи при АД, не до конца изучен, многочисленные данные убедительно показывают, что IL-4 и IL-13 — два основных цитокина воспаления 2-го типа, значительно влияют на функциональную активность кожного покрова, так как снижают выработку структурных белков — филаггрина, кератина, лорикрина и инволюкрина и молекул клеточной адгезии — десмоглеинов и окклюдина, а также подавляют синтез церамидодоминантных липидов [9]. IL-31, еще один цитокин TH2-клеток, также снижает экспрессию FLG [10]. Интересно, что недавнее исследование показало, что IL-33, алармин, который в изобилии вырабатывается в эпидермисе пациентов с АД, также обладает способностью снижать экспрессию FLG [11]. Иммунный ответ 2-го типа создает «порочный круг» между наследственно обусловленным дефектом кожного барьера и иммунной дисрегуляцией, что приводит к хроническому, стойкому воспалению кожи, который может быть разорван только с помощью противовоспалительной терапии [5].

Филаггрин

Одним из важнейших белков для барьерной структуры кожи является филаггрин (кодируется геном филаггрина FLG). Это крупный белок (37 кДа), присутствующий в роговом слое эпидермиса. В названии отражена способность белка агрегировать промежуточные нити кератина (filaments aggregating protein). Филаггрин имеет решающее значение для структуры и функции рогового слоя.

Метаболизм филаггрина

Предшественник филаггрина, профилаггрин, экспрессируется на поздних стадиях дифференцировки эпидермиса и хранится в гранулах кератогиалина, которые формируются в клетках зернистого слоя [11].

На границе рогового и зернистого слоев молекулы филаггрина усиливают механическую прочность цитоскелета, агрегируя и выравнивая пучки кератина в оболочке ороговевших клеток и, таким образом, способствуя уплотнению роговых клеток. В поверхностных рядах рогового слоя филаггрин отделяется от кератиновых нитей. В дальнейшем мономеры филаггрина дезаминируются и деградируются протеазами [12].

Продуктами распада филаггрина являются свободные аминокислоты, включая глутамин, аргинин и гистидин, которые затем преобразуются в урокановую (UCA) и пирролидинкарбоновую (PCA) кислоты. Эти метаболиты вместе с ионами натрия и хлорида, мочевиной и лактатом представляют собой компоненты натурального увлажняющего фактора (NMF) — важнейшего хумектанта, контролирующего увлажненность кожного покрова и поддерживающего целостность эпидермального барьера [13, 14].

Функции филаггрина

1. Слабокислая реакция pH кожного покрова, обусловленная продуктами распада филаггрина, является ключевой для множества функций рогового слоя: антимикробного действия; функциональной активности ферментов, участвующих в метаболизме церамидов; модуляции активности каскада сериновых протеаз, необходимых для скоординированной дифференцировки эпидермиса и формирования оболочки ороговевших клеток [15, 16].

2. Филаггрин — основной структурный компонент, отвечающий за насыщение и удержание влаги в кожных покровах.

3. Структурирование цитоскелета роговых клеток и стимулирование выработки эпидермальных липидов [13, 16].

4. При дефиците в эпидермисе филаггрина наблюдается снижение плотности корнеодесмосом и экспрессии плотных соединений [3].

5. Транс-урокановая кислота (UCA) оказывает выраженное фотопротективное действие на кожные покровы.

6. Мочевина оказывает стимулирующее действие на выработку антимикробных пептидов кератиноцитами [14].

Различия в экспрессии филаггрина в различных анатомических областях

Хорошо известно, что, несмотря на распространенный характер высыпаний при АД, у младенцев преимущественно поражена область лица, при этом кончик носа у детей почти никогда не вовлекается в воспалительный процесс. Данный факт исследователи объяснили структурными и функциональными различиями кожного покрова в разных возрастах и на разных анатомических областях.

В течение 1-го года жизни отмечается значительное повышение выработки NMF, но на различных участках тела повышение синтеза хумектантных компонентов происходит с разной скоростью. Так, активность протеаз рогового слоя, необходимых для деградации филаггрина, и уровень выработки NMF на коже щек увеличивался намного медленнее по сравнению с другими участками (например, кончиком носа или локтем) [16, 17].

Геномика филаггрина

Профилаггрин кодируется геном FLG — длинным, сильно повторяющимся геном, расположенным в комплексе эпидермальной дифференцировки на хромосоме около 1q23.3.3. Диагностическое секвенирование этого экзона особенно сложно из-за его сильно повторяющейся последовательности ДНК.

Основным фактором, определяющим экспрессию филаггрина (Flg), является генотип FLG, который проявляется 3 различными вариантами: нулевой мутацией, гетерозиготным вариантом и отсутствием мутаций в FLG в обеих аллелях. Также на экспрессию белка филаггрина у индивидуумов могут влиять дополнительные генетические и экологические модификаторы экспрессии данного белка.

Мутации в гене FLG вызывают полную потерю экспрессируемого белка по этому аллелю (FLG LoF) [18]. Многочисленные исследования подтверждают широкий спектр мутаций FLG LoF в различных этнических группах: выделено >40 различных популяционно-специфичных мутаций FLG [19].

У пациентов, гомозиготных по нулевым аллелям FLG, наблюдается выраженный дефицит белка филаггрина, что клинически проявляется вульгарным ихтиозом. У гетерозиготных людей наблюдаются различные степени снижения выработки филаггрина в коже, что клинически проявляется ксерозом, АД, аллергическими и простыми дерматитами [20].

До 50% всех случаев среднетяжелого и тяжелого АД в Северной Европе наблюдается у пациентов с нулевыми мутациями FLG и представляет собой наиболее значимые генетические факторы риска, выявленные для АД (общее увеличение рисков в 3,12–4,78 раза) [4].

Особое значение для функционирования кожного барьера имеет не только наличие или отсутствие мутации в FLG, но и оценка внутригенных вариаций количества копий (CNV) с аллелями, кодирующими 10, 11 или 12 мономеров филаггрина. Эти вариантные аллели приводят к различным уровням белка филаггрина в эпидермисе. Низкий показатель CNV независимо от классических мутаций с потерей функции в FLG является фактором риска АД [21]. Каждый дополнительный повтор FLG снижает риск развития АД в 0,88 раза, что позволяет предположить, что даже небольшое увеличение экспрессии FLG может быть терапевтически значимым [22]. В исследованиях также отмечается, что низкий показатель CNV может способствовать более высокой абсорбции кожей химических агентов, что может быть причиной развития системных токсических реакций [21].

Следует отметить, что комплекс эпидермальной дифференцировки включает, помимо FLG, еще около 60 различных генов, кодирующих структурные белки эпидермиса. Наиболее значимыми из них являются FLG2 (отвечает за структуру и функции рогового слоя), GATA3 (фактор транскрипции для FLG и FLG2) и SPRR3 [23, 24]. Подобно FLG, генетические вариации в этих генах также могут негативно влиять на строение и функции кожного барьера. Однако по сравнению с FLG другие гены гораздо менее изучены в связи с кожными заболеваниями.

Эпидемиология

Мутации FLG LoF с потерей функции (нулевые) относительно распространены: примерно у 2–10% европейцев выявлен, по крайней мере, один нулевой аллель FLG [25, 26]. Распространенность мутаций в генах, кодирующих разнообразные белки, принимающие участие в метаболизме филаггрина, и тем самым способствующих развитию повреждений кожного барьера, наиболее значима в популяциях Северной Европы и Азии и колеблется от 25 до 50% [4]. Мутации, ассоциированные с белком филаггрином, реже встречаются в Южной Европе и практически не регистрируются в некоторых африканских странах [27, 28]. В исследованиях отмечено, что мутация в гене FLG2 чаще связана с рецидивирующим АД у пациентов африканского происхождения [29]. Биологическую функцию FLG2 еще предстоит выяснить, но ее структура, экспрессия и биологические свойства очень похожи на FLG.

Дефицит филаггрина и микробиом

Более 90% пациентов с АД колонизированы S. aureus, тогда как среди здоровых людей этот показатель составляет 5% [30]. У пациентов с АД колонизации S. aureus способствуют, с одной стороны, дисфункциональный кожный барьер, с другой — высокие уровни цитокинов TH2-ответа, которые ингибируют антимикробные пептиды кератиноцитов (дефензин LL-37 (кателицидин), β-дефензины и дермицидин) [31, 32].

В исследованиях отмечено, что продукты распада филаггрина — UCA и PCA в физиологических концентрациях оказывают ингибирующее действие на рост S. aureus, так как:

— снижают pH рогового слоя;

— подавляют выработку вирулентных белков S. aureus, участвующих в колонизации (фактор слипания B и фибронектинсвязывающий белок A) и иммунном уклонении (белок A);

— оказывают специфическое антистафилококковое действие, непосредственно ингибируя поверхностный белок стафилококка (IsdA), который способствует бактериальной адгезии к клеткам и выживанию патогенной флоры [33–35].

Данные исследования позволили прийти к выводу, что различия в качественном и количественном составе микробиома людей во многом зависят от индивидуальных особенностей выработки филаггрина [36].

Ассоциации заболеваний с дефицитом филаггрина

Вульгарный ихтиоз — часто встречаемое заболевание с нарушением кератинизации и наиболее распространенным моногенным дерматозом (1:100 до 1:250 среди населения) [37]. Развивается при мутациях LoF в FLG. Клинически проявляется в течение 1-го года жизни и сопровождается гиперлинейностью ладоней и подошв, сухостью кожи и фолликулярным кератозом. Для вульгарного ихтиоза характерно аутосомно-полудоминантное наследование; у пациентов с одной мутацией очень легкое течение заболевания или нет его клинических проявлений, в то время как у пациентов с двумя мутациями более «тяжелый» фенотип [38].

Атопический дерматит — один из самых распространенных дерматозов. Наиболее значимым генетическим фактором риска АД являются мутации LoF в FLG. Мутации FLG, переданные детям их матерями, повышают риск развития заболевания независимо от типа наследования [39]. В настоящее время АД рассматривается как неоднородное заболевание, состоящее из множества различных фенотипов. В 2009 г. проведено первое исследование по АД полигеномного поиска ассоциаций (Genom-Wide Association Study — GWAS) среди населения Европы. В результате выявлен 31 локус «риска» АД [40, 41]. Несмотря на достижения, локусы, идентифицированные GWAS, объясняют только около 15% различий в АД. Оставшиеся «необъяснимые» 85% локусов для реализации заболевания исследователи назвали «отсутствующей наследуемостью» сложных заболеваний, и их наличие может быть объяснено выраженной гетерогенностью АД, кумулятивными эффектами этих структурных вариаций и вариантов количества копий генома, а также эпигенетическими воздействиями.

Различные эндотипы АД определяются сложением многочисленных факторов: возрастом, длительностью заболевания, этнической принадлежностью, уровнем иммуноглобулина E (IgE), статусом мутации FLG и другими менее изученными факторами. АД, ассоциированный с мутациями FLG, имеет характерный фенотип (AD FLG). Клинические особенности этого эндотипа включают гиперлинейность ладоней и подошв, «семейную» историю атопических заболеваний, высокий риск развития астмы, вторичное инфицирование золотистым стафилококком и вирусом простого герпеса с развитием герпетической экземы, наличие хронических дерматитов кистей и пищевой аллергии [42]. Данный эндотип также связан с более стойким клиническим течением. L. Paternoster и соавт. продемонстрировали прямую корреляцию между наличием нулевой мутации FLG у ребенка с АД и риском развития персистирующих заболеваний с ранним началом [43].

В популяционных исследованиях сообщалось о связи с дефицитом филаггрина и аллергическим ринитом [44]. Доказано, что гаплоинсуффицит филаггрина, т.е. сниженная его выработка при гетерозиготных мутациях, повышает общий риск развития астмы у пациентов с АД в 1,48–1,79 раза [45]. Отмечено также, что у таких пациентов более тяжелое течение астмы и более частые обострения. С учетом того, что белок филаггрин обнаруживается в эпителии кожи, слизистой оболочки полости рта и преддверия носа, а в эпителии бронхов отсутствует, исследователи пришли к мнению, что мутации FLG вряд ли напрямую влияют на барьерную функцию и сенсибилизацию к аллергенам в органах-мишенях. Возможно, мутации FLG способствуют развитию аллергического воспаления в отдаленных участках слизистой оболочки в качестве системного ответа на усиленное проникновение антигенов через дефектный кожный барьер [46].

Когортное исследование в США показало, что у детей с дефицитом филаггрина может наблюдаться специфическая для мутаций вариабельность ответа на лечение [47]. В совокупности все эти исследования показывают, что пациенты с мутациями FLG могут иметь отличный эндофенотип АД и профиль ассоциированного заболевания по сравнению с пациентами без мутаций по данному гену (см. рисунок).

Особенности течения атопического дерматита у лиц с различным статусом FLG [4].

Таким образом, увеличение экспрессии филаггрина в раннем детстве при регулярном применении топических средств может быть профилактическим воздействием, препятствующим развитию АД, а повышение синтеза филаггрина у лиц, имеющих проявления АД, — потенциальным терапевтическим подходом.

Роль экспозом-факторов на синтез филаггрина

Под экспозом-факторами (exposome) понимают сумму всех внешних воздействий, которым подвергается индивидуум на протяжении всей жизни. В патогенезе АД большую роль играют факторы окружающей среды, что наиболее наглядно отражается географическими различиями в распространенности заболевания. Большое значение в развитии АД играют физические (климатические) факторы: экспрессия филаггрина в кожном покрове значительно снижается при низкой влажности, в то время как протеолиз филаггрина одновременно увеличивается, отмечено, что дефицит Flg может быть компенсирован в тропическом климате; под воздействием УФО транс-урокановая кислота (продукт распада филаггрина) превращается в цис-урокановую кислоту, обладающую иммуносупрессивным свойством, и, как следствие, оказывает противовоспалительное воздействие при обострениях АД [48–50].

Хорошо известно, что уровень заболеваемости АД среди жителей, проживающих в городских районах, значительно выше, чем в сельской местности. Одним из объяснений данного факта является повреждение кожного барьера поллютантами (твердыми мелкодисперсными частицами, ароматическими углеводородами, альдегидами, диоксидом серы (SO2), азота (NO2), озоном и т.д.), накапливающихся в воздухе мегаполисов при загрязнении окружающей среды. Химические вещества, находящиеся в воздухе прямо повреждают роговой слой активными формами кислорода и косвенно — за счет снижения экспрессии филаггрина после индукции циклооксигеназы 2 и простагландина E2 [51].

Еще одним важнейшим фактором, влияющим на состояние кожного барьера, является воздействие воды с повышенным содержанием кальцинатов и хлоридов (жесткая вода) и использование моющих средств. Минеральные взвеси воды и лаурилсульфат (поверхностно-активный компонент моющих средств) повышают pH кожи, что уменьшает выработку NMF (особенно у лиц с мутациями FLG) и увеличивает активность протеаз, разрушающих корнеодесмосомы [52].

Терапевтические подходы при атопическом дерматите

Терапевтическое вмешательство у пациентов с АД обычно в первую очередь направлено на купирование воспаления, однако поддержание барьерной функции кожи является ключом к эффективному лечению АД. Раннее применение эмолентов может быть простой и экономически эффективной стратегией для предотвращения развития каскада атопических заболеваний [5].

В настоящее время наиболее перспективными методами восстановления кожного барьера у лиц группы риска является терапия, замещающая дефицит филаггрина. К ним относятся:

1) применение «считывающих» препаратов, которые могут позволить кератиноцитам пропустить мутацию гена FLG [53];

2) местное применение метаболитов FLG, таких как UCA и PCA [33];

3) местное применение функционального мономера филаггрина, ковалентно связанного с проникающим в клетки пептидом (исследования проводились на мышиной модели) [54];

4) использование препаратов, усиливающих выработку Flg [55–58]. Ожидается высокая эффективность данных методов терапии у лиц со сниженным CNV и гетерозиготных (но не гомозиготных!) по мутациям.

Адмера — инновационный эмолент с модулятором синтеза филаггрина специально разработан для ухода за кожей при АД. Активным компонентом Адмеры является запатентованный комплекс филагринол 5%, стимулирующий выработку филаггрина в сухой и чувствительной коже. Активный комплекс филагринол включает в себя неомыляемые фракции растительных масел (сои, оливы, зародышей пшеницы и экстракта пыльцы.)

Механизм действия филагринола, обусловливающий увеличение синтеза филаггрина кератиноцитами, многогранен и включает в себя:

— активацию синтеза АТФ — фермента, который участвует в процессе распада профилаггрина до филаггрина в эпидермисе;

— связывание со специфическими рецепторами, в том числе с ядерным рецептором PPAR, тем самым стимулируя синтез профилаггрина и филаггрина — вещества липидной природы, входящие в состав филагринола, действуют как первичные сигнальные молекулы и взаимодействуют со специфическими рецепторами, которые стимулируют синтез белков, связанных с дифференцировкой, включая профилаггрин;

— антиоксидантное действие — снижение уровня перекисного окисления липидов под действием ультрафиолетового излучения. Доказательством данного явления служит значительное снижение выработки малондиальдегида, продукта распада липидов, на 35,4% при однократном нанесении эмолента с филаггринолом и на 49,8% при 10-дневном применении по сравнению с исходными данными [59, 60].

Активируя синтез собственного филаггрина, филагринол способствует восстановлению гомеостаза в роговом слое, поддержанию его защитных функций, а также высокому уровню гидратации и оптимальному слабокислому pH. Оценка эффективности филагринола проведена серией гистохимических, иммуногистохимических и клинических исследований [59, 60].

Кроме того, в состав эмолента Адмера входят церамиды, натуральные липиды и ниацинамид, способствующие восстановлению липидного баланса, глицерол, составляющая NMF, усиливающая гидратацию эпидермиса, и18-β-глицирретиновая кислота, обладающая противовоспалительным и противозудным свойством.

Крем Адмера рекомендован для интенсивного увлажнения, восстановления липидного баланса, смягчения и поддержания многоуровневой защиты чувствительной кожи.

Заключение

Барьерная функция кожи во многом зависит от состояния рогового слоя, самого поверхностного слоя эпидермиса. Структурные белки (кератин, филаггрин и др.), эпидермальные липиды, плотные соединения, десмосомы и многочисленные ферменты контролируют проницаемость кожного барьера, обусловливают микробный пейзаж и обеспечивают адгезию клеток. Наиболее значимым структурным белком эпидермиса является филаггрин. Нормальный синтез филаггрина необходим для поддержания оптимального уровня увлажнения эпидермиса, а также для обеспечения физиологической защиты и барьерной функции кожи в целом. Генетические и экологические влияния на экспрессию филаггрина, а также динамическое, двунаправленное взаимодействие между кожным барьером и иммунной системой очень сложны. Наличие или отсутствие мутаций в FLG, а также количество воспроизведенных копий филаггрина оказывают важнейшее влияние на целостность эпителиального барьера и в настоящее время признаны критическим фактором в развитии АД и последующей аллергической сенсибилизации. АД у пациентов с генетическими дефектами синтеза филаггрина отличается более тяжелым и длительным течением заболевания.

Восстановление кожного барьера при АД и других заболеваниях, сопровождаемых сухостью кожи, является важнейшим направлением терапии. Доказано также, что проактивный подход к лечению АД может предотвратить системную сенсибилизацию и развитие атопического марша.

Наиболее перспективными методами восстановления кожного барьера у лиц группы риска является терапия, усиливающая выработку филаггрина. Адмера — инновационный эмолент с модулятором синтеза филаггрина (запатентованный комплекс филагринол 5%) специально разработан для ухода за кожей при АД. Современное понимание сложной патофизиологии АД может позволить проводить более целенаправленное лечение и применять индивидуальный подход к лечению, а также рекомендовать профилактические мероприятия у лиц группы риска.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

The authors declare no conflict of interest.

Литература / References:

  1. Soares P, Fidler K, Felton J, Tavendale R, Hövels A, Bremner SA, Palmer CNA, Mukhopadhyay S. Individuals with filaggrin-related eczema and asthma have increased long-term medication and hospital admission costs. Br J Dermatol. 2018;179(3):717-723.  https://doi.org/10.1111/bjd.16720
  2. Heede NG, Thyssen JP, Thuesen BH, Linneberg A, Szecsi PB, Stender S, Johansen JD. Health-related quality of life in adult dermatitis patients stratified by filaggrin genotype. Contact Dermatitis. 2017;76(3):167-177.  https://doi.org/10.1111/cod.12731
  3. Drislane C, Irvine AD. The role of filaggrin in atopic dermatitis and allergic disease. Ann Allergy Asthma Immunol. 2020;124(1):36-43.  https://doi.org/10.1016/j.anai.2019.10.008
  4. McAleer MA, Irvine AD. The multifunctional role of filaggrin in allergic skin disease. J Allergy Clin Immunol. 2013;131(2):280-291.  https://doi.org/10.1016/j.jaci.2012.12.668
  5. Bawany F, Beck LA, Järvinen KM. Halting the March: Primary Prevention of Atopic Dermatitis and Food Allergies. J Allergy Clin Immunol Pract. 2020; 8(3):860-875.  https://doi.org/10.1016/j.jaip.2019.12.005
  6. Eckhart L, Zeeuwen PLJM. The skin barrier: Epidermis vs environment. Exp Dermatol. 2018;27(8):805-806.  https://doi.org/10.1111/exd.13731
  7. Elias MS, Long HA, Newman CF, Wilson PA, West A, McGill PJ, Wu KC, Donaldson MJ, Reynolds NJ. Proteomic analysis of filaggrin deficiency identifies molecular signatures characteristic of atopic eczema. J Allergy Clin Immunol. 2017;140(5):1299-1309. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2017.01.039
  8. Levin J, Fallon Friedlander S, Del Rosso JQ. Atopic dermatitis and the stratum corneum: part 3: the immune system in atopic dermatitis. J Clin Aesthet Dermatol. 2013;6(12):37-44. 
  9. Thaçi D, Simpson EL, Beck LA, Bieber T, Blauvelt A, Papp K, Soong W, Worm M, Szepietowski JC, Sofen H, Kawashima M, Wu R, Weinstein SP, Graham NM, Pirozzi G, Teper A, Sutherland ER, Mastey V, Stahl N, Yancopoulos GD, Ardeleanu M. Efficacy and safety of dupilumab in adults with moderate-to-severe atopic dermatitis inadequately controlled by topical treatments: a randomised, placebo-controlled, dose-ranging phase 2b trial. Lancet. 2016;387(10013):40-52.  https://doi.org/10.1016/S0140-6736(15)00388-8
  10. Cornelissen C, Marquardt Y, Czaja K, Wenzel J, Frank J, Lüscher-Firzlaff J, Lüscher B, Baron JM. IL-31 regulates differentiation and filaggrin expression in human organotypic skin models. J Allergy Clin Immunol. 2012;129(2): 426-33, 433.e1-8.  https://doi.org/10.1016/j.jaci.2011.10.042
  11. Sandilands A, Sutherland C, Irvine AD, McLean WH. Filaggrin in the frontline: role in skin barrier function and disease. J Cell Sci. 2009;122(9):1285-1294. https://doi.org/10.1242/jcs.033969
  12. Hsu CY, Henry J, Raymond AA, Méchin MC, Pendaries V, Nassar D, Hansmann B, Balica S, Burlet-Schiltz O, Schmitt AM, Takahara H, Paul C, Serre G, Simon M. Deimination of human filaggrin-2 promotes its proteolysis by calpain 1. J Biol Chem. 2011;286(26):23222-23233. https://doi.org/10.1074/jbc.M110.197400
  13. Kim Y, Lim KM. Skin barrier dysfunction and filaggrin. Arch Pharm Res. 2021;44(1):36-48.  https://doi.org/10.1007/s12272-021-01305-x
  14. Brown SJ, McLean WH. One remarkable molecule: filaggrin. J Invest Dermatol. 2012;132(3 Pt 2):751-762.  https://doi.org/10.1038/jid.2011.393
  15. Vávrová K, Henkes D, Strüver K, Sochorová M, Školová B, Witting MY, Friess W, Schreml S, Meier RJ, Schäfer-Korting M, Fluhr JW, Küchler S. Filaggrin deficiency leads to impaired lipid profile and altered acidification pathways in a 3D skin construct. J Invest Dermatol. 2014;134(3):746-753.  https://doi.org/10.1038/jid.2013.402
  16. McAleer MA, Jakasa I, Raj N, O’Donnell CPF, Lane ME, Rawlings AV, Voegeli R, McLean WHI, Kezic S, Irvine AD. Early-life regional and temporal variation in filaggrin-derived natural moisturizing factor, filaggrin-processing enzyme activity, corneocyte phenotypes and plasmin activity: implications for atopic dermatitis. Br J Dermatol. 2018;179(2):431-441.  https://doi.org/10.1111/bjd.16691
  17. Ludriksone L, Garcia Bartels N, Kanti V, Blume-Peytavi U, Kottner J. Skin barrier function in infancy: a systematic review. Arch Dermatol Res. 2014; 306(7):591-599.  https://doi.org/10.1007/s00403-014-1458-6
  18. Sandilands A, O’Regan GM, Liao H, Zhao Y, Terron-Kwiatkowski A, Watson RM, Cassidy AJ, Goudie DR, Smith FJ, McLean WH, Irvine AD. Prevalent and rare mutations in the gene encoding filaggrin cause ichthyosis vulgaris and predispose individuals to atopic dermatitis. J Invest Dermatol. 2006;126(8):1770-1775. https://doi.org/10.1038/sj.jid.5700459
  19. Clark AG, Hubisz MJ, Bustamante CD, Williamson SH, Nielsen R. Ascertainment bias in studies of human genome-wide polymorphism. Genome Res. 2005;15(11):1496-1502. https://doi.org/10.1101/gr.4107905
  20. Visser MJ, Landeck L, Campbell LE, McLean WHI, Weidinger S, Calkoen F, John SM, Kezic S. Impact of atopic dermatitis and loss-of-function mutations in the filaggrin gene on the development of occupational irritant contact dermatitis. Br J Dermatol. 2013;168(2):326-332.  https://doi.org/10.1111/bjd.12083
  21. Rietz Liljedahl E, Johanson G, Korres de Paula H, Faniband M, Assarsson E, Littorin M, Engfeldt M, Lidén C, Julander A, Wahlberg K, Lindh C, Broberg K. Filaggrin Polymorphisms and the Uptake of Chemicals through the Skin-A Human Experimental Study. Environ Health Perspect. 2021; 129(1):17002. https://doi.org/10.1289/EHP7310
  22. Brown SJ, Kroboth K, Sandilands A, Campbell LE, Pohler E, Kezic S, Cordell HJ, McLean WH, Irvine AD. Intragenic copy number variation within filaggrin contributes to the risk of atopic dermatitis with a dose-dependent effect. J Invest Dermatol. 2012;132(1):98-104.  https://doi.org/10.1038/jid.2011.342
  23. Pendaries V, Le Lamer M, Cau L, Hansmann B, Malaisse J, Kezic S, Serre G, Simon M. In a three-dimensional reconstructed human epidermis filaggrin-2 is essential for proper cornification. Cell Death Dis. 2015;6(2):e1656. https://doi.org/10.1038/cddis.2015.29
  24. Zeitvogel J, Jokmin N, Rieker S, Klug I, Brandenberger C, Werfel T. GATA3 regulates FLG and FLG2 expression in human primary keratinocytes. Sci Rep. 2017;7(1):11847. https://doi.org/10.1038/s41598-017-10252-x
  25. Liljedahl ER, Wahlberg K, Lidén C, Albin M, Broberg K. Genetic variants of filaggrin are associated with occupational dermal exposure and blood DNA alterations in hairdressers. Sci Total Environ. 2019;653:45-54.  https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2018.10.328
  26. Bandier J, Ross-Hansen K, Carlsen BC, Menné T, Linneberg A, Stender S, Szecsi PB, Meldgaard M, Thyssen JP, Johansen JD. Carriers of filaggrin gene (FLG) mutations avoid professional exposure to irritants in adulthood. Contact Dermatitis. 2013;69(6):355-362.  https://doi.org/10.1111/cod.12097
  27. Cascella R, Foti Cuzzola V, Lepre T, Galli E, Moschese V, Chini L, Mazzanti C, Fortugno P, Novelli G, Giardina E. Full sequencing of the FLG gene in Italian patients with atopic eczema: evidence of new mutations, but lack of an association. J Invest Dermatol. 2011;131(4):982-984.  https://doi.org/10.1038/jid.2010.398
  28. Thawer-Esmail F, Jakasa I, Todd G, Wen Y, Brown SJ, Kroboth K, Campbell LE, O’Regan GM, McLean WH, Irvine AD, Kezic S, Sandilands A. South African amaXhosa patients with atopic dermatitis have decreased levels of filaggrin breakdown products but no loss-of-function mutations in filaggrin. J Allergy Clin Immunol. 2014;133(1):280-2.e1-2.  https://doi.org/10.1016/j.jaci.2013.09.053
  29. Margolis DJ, Gupta J, Apter AJ, Ganguly T, Hoffstad O, Papadopoulos M, Rebbeck TR, Mitra N. Filaggrin-2 variation is associated with more persistent atopic dermatitis in African American subjects. J Allergy Clin Immunol. 2014;133(3):784-789.  https://doi.org/10.1016/j.jaci.2013.09.015
  30. Wan P, Chen J. A Calm, Dispassionate Look at Skin Microbiota in Atopic Dermatitis: An Integrative Literature Review. Dermatol Ther (Heidelb). 2020;10(1):53-61.  https://doi.org/10.1007/s13555-020-00352-4
  31. Kim JE, Kim HS. Microbiome of the Skin and Gut in Atopic Dermatitis (AD): Understanding the Pathophysiology and Finding Novel Management Strategies. J Clin Med. 2019;8(4):444.  https://doi.org/10.3390/jcm8040444
  32. Geoghegan JA, Irvine AD, Foster TJ. Staphylococcus aureus and Atopic Dermatitis: A Complex and Evolving Relationship. Trends Microbiol. 2018; 26(6):484-497.  https://doi.org/10.1016/j.tim.2017.11.008
  33. Miajlovic H, Fallon PG, Irvine AD, Foster TJ. Effect of filaggrin breakdown products on growth of and protein expression by Staphylococcus aureus. J Allergy Clin Immunol. 2010;126:1184-1190.e3. 
  34. Fleury OM, McAleer MA, Feuillie C, Formosa-Dague C, Sansevere E, Bennett DE, Towell AM, McLean WHI, Kezic S, Robinson DA, Fallon PG, Foster TJ, Dufrêne YF, Irvine AD, Geoghegan JA. Clumping Factor B Promotes Adherence of Staphylococcus aureus to Corneocytes in Atopic Dermatitis. Infect Immun. 2017;85(6):e00994-16.  https://doi.org/10.1128/IAI.00994-16
  35. Feuillie C, Vitry P, McAleer MA, Kezic S, Irvine AD, Geoghegan JA, Dufrêne YF. Adhesion of Staphylococcus aureus to Corneocytes from Atopic Dermatitis Patients Is Controlled by Natural Moisturizing Factor Levels. mBio. 2018;9(4):e01184-18.  https://doi.org/10.1128/mBio.01184-18
  36. Clausen ML, Agner T, Lilje B, Edslev SM, Johannesen TB, Andersen PS. Association of Disease Severity With Skin Microbiome and Filaggrin Gene Mutations in Adult Atopic Dermatitis. JAMA Dermatol. 2018;154(3):293-300.  https://doi.org/10.1001/jamadermatol.2017.5440
  37. Majmundar VD, Baxi K. Hereditary And Acquired Ichthyosis Vulgaris. 2021 Aug 14. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2021. PMID: 32965989.
  38. Metze D, Traupe H, Süßmuth K. Ichthyoses-A Clinical and Pathological Spectrum from Heterogeneous Cornification Disorders to Inflammation. Dermatopathology (Basel). 2021;8(2):107-123.  https://doi.org/10.3390/dermatopathology8020017
  39. Esparza-Gordillo J, Matanovic A, Marenholz I, Bauerfeind A, Rohde K, Nemat K, Lee-Kirsch MA, Nordenskjöld M, Winge MC, Keil T, Krüger R, Lau S, Beyer K, Kalb B, Niggemann B, Hübner N, Cordell HJ, Bradley M, Lee YA. Maternal filaggrin mutations increase the risk of atopic dermatitis in children: an effect independent of mutation inheritance. PLoS Genet. 2015;11(3):e1005076. https://doi.org/10.1371/journal.pgen.1005076
  40. Paternoster L, Standl M, Waage J, Baurecht H, Hotze M, Strachan DP, Curtin JA, Bønnelykke K, Tian C, Takahashi A, Esparza-Gordillo J, Alves AC, Thyssen JP, den Dekker HT, Ferreira MA, Altmaier E, Sleiman PM, Xiao FL, Gonzalez JR, Marenholz I, Kalb B, Yanes MP, Xu CJ, Carstensen L, Groen-Blokhuis MM, Venturini C, Pennell CE, Barton SJ, Levin AM, Curjuric I, Bustamante M, Kreiner-Møller E, Lockett GA, Bacelis J, Bunyavanich S, Myers RA, Matanovic A, Kumar A, Tung JY, Hirota T, Kubo M, McArdle WL, Henderson AJ, Kemp JP, Zheng J, Smith GD, Rüschendorf F, Bauerfeind A, Lee-Kirsch MA, Arnold A, Homuth G, Schmidt CO, Mangold E, Cichon S, Keil T, Rodríguez E, Peters A, Franke A, Lieb W, Novak N, Fölster-Holst R, Horikoshi M, Pekkanen J, Sebert S, Husemoen LL, Grarup N, de Jongste JC, Rivadeneira F, Hofman A, Jaddoe VW, Pasmans SG, Elbert NJ, Uitterlinden AG, Marks GB, Thompson PJ, Matheson MC, Robertson CF; Australian Asthma Genetics Consortium (AAGC), Ried JS, Li J, Zuo XB, Zheng XD, Yin XY, Sun LD, McAleer MA, O’Regan GM, Fahy CM, Campbell LE, Macek M, Kurek M, Hu D, Eng C, Postma DS, Feenstra B, Geller F, Hottenga JJ, Middeldorp CM, Hysi P, Bataille V, Spector T, Tiesler CM, Thiering E, Pahukasahasram B, Yang JJ, Imboden M, Huntsman S, Vilor-Tejedor N, Relton CL, Myhre R, Nystad W, Custovic A, Weiss ST, Meyers DA, Söderhäll C, Melén E, Ober C, Raby BA, Simpson A, Jacobsson B, Holloway JW, Bisgaard H, Sunyer J, Hensch NMP, Williams LK, Godfrey KM, Wang CA, Boomsma DI, Melbye M, Koppelman GH, Jarvis D, McLean WI, Irvine AD, Zhang XJ, Hakonarson H, Gieger C, Burchard EG, Martin NG, Duijts L, Linneberg A, Jarvelin MR, Noethen MM, Lau S, Hübner N, Lee YA, Tamari M, Hinds DA, Glass D, Brown SJ, Heinrich J, Evans DM, Weidinger S. Multi-ancestry genome-wide association study of 21,000 cases and 95,000 controls identifies new risk loci for atopic dermatitis. Nat Genet. 2015;47(12):1449-1456. https://doi.org/10.1038/ng.3424
  41. Løset M, Brown SJ, Saunes M, Hveem K. Genetics of Atopic Dermatitis: From DNA Sequence to Clinical Relevance. Dermatology. 2019;235(5): 355-364.  https://doi.org/10.1159/000500402
  42. Heede NG, Thyssen JP, Thuesen BH, Linneberg A, Johansen JD. Anatomical patterns of dermatitis in adult filaggrin mutation carriers. J Am Acad Dermatol. 2015;72(3):440-448.  https://doi.org/10.1016/j.jaad.2015.01.001
  43. Paternoster L, Savenije OEM, Heron J, Evans DM, Vonk JM, Brunekreef B, Wijga AH, Henderson AJ, Koppelman GH, Brown SJ. Identification of atopic dermatitis subgroups in children from 2 longitudinal birth cohorts. J Allergy Clin Immunol. 2018;141(3):964-971.  https://doi.org/10.1016/j.jaci.2017.09.044
  44. Zheng T, Yu J, Oh MH, Zhu Z. The atopic march: progression from atopic dermatitis to allergic rhinitis and asthma. Allergy Asthma Immunol Res. 2011; 3(2):67-73.  https://doi.org/10.4168/aair.2011.3.2.67
  45. Henderson J, Northstone K, Lee SP, Liao H, Zhao Y, Pembrey M, Mukhopadhyay S, Smith GD, Palmer CN, McLean WH, Irvine AD. The burden of disease associated with filaggrin mutations: a population-based, longitudinal birth cohort study. J Allergy Clin Immunol. 2008;121(4):872-7.e9.  https://doi.org/10.1016/j.jaci.2008.01.026
  46. De Benedetto A, Kubo A, Beck LA. Skin barrier disruption: a requirement for allergen sensitization? J Invest Dermatol. 2012;132(3 Pt 2):949-963.  https://doi.org/10.1038/jid.2011.435
  47. Margolis DJ, Apter AJ, Gupta J, Hoffstad O, Papadopoulos M, Campbell LE, Sandilands A, McLean WH, Rebbeck TR, Mitra N. The persistence of atopic dermatitis and filaggrin (FLG) mutations in a US longitudinal cohort. J Allergy Clin Immunol. 2012;130(4):912-917.  https://doi.org/10.1016/j.jaci.2012.07.008
  48. Silverberg JI, Hanifin J, Simpson EL. Climatic factors are associated with childhood eczema prevalence in the United States. J Invest Dermatol. 2013; 133(7):1752-1759. https://doi.org/10.1038/jid.2013.19
  49. Silverberg JI, Hanifin J, Simpson EL. Climatic factors are associated with childhood eczema prevalence in the United States. J Invest Dermatol. 2013; 133(7):1752-1759. https://doi.org/10.1038/jid.2013.19
  50. Rieko K-K, Motonobu N. Effect of cis-urocanic acid on atopic dermatitis in NC/Nga mice. J Dermatol Sci. 2016;84(1):65-66.  https://doi.org/10.1016/J.JDERMSCI.2016.08.203
  51. Lee CW, Lin ZC, Hu SC, Chiang YC, Hsu LF, Lin YC, Lee IT, Tsai MH, Fang JY. Urban particulate matter down-regulates filaggrin via COX2 expression/PGE2 production leading to skin barrier dysfunction. Sci Rep. 2016;6:27995. https://doi.org/10.1038/srep27995
  52. Danby SG, Brown K, Wigley AM, Chittock J, Pyae PK, Flohr C, Cork MJ. The Effect of Water Hardness on Surfactant Deposition after Washing and Subsequent Skin Irritation in Atopic Dermatitis Patients and Healthy Control Subjects. J Invest Dermatol. 2018;138(1):68-77.  https://doi.org/10.1016/j.jid.2017.08.037
  53. Malik V, Rodino-Klapac LR, Viollet L, Wall C, King W, Al-Dahhak R, Lewis S, Shilling CJ, Kota J, Serrano-Munuera C, Hayes J, Mahan JD, Campbell KJ, Banwell B, Dasouki M, Watts V, Sivakumar K, Bien-Willner R, Flanigan KM, Sahenk Z, Barohn RJ, Walker CM, Mendell JR. Gentamicin-induced readthrough of stop codons in Duchenne muscular dystrophy. Ann Neurol. 2010;67(6):771-780.  https://doi.org/10.1002/ana.22024
  54. Stout TE, McFarland T, Mitchell JC, Appukuttan B, Timothy Stout J. Recombinant filaggrin is internalized and processed to correct filaggrin deficiency. J Invest Dermatol. 2014;134(2):423-429.  https://doi.org/10.1038/jid.2013.284
  55. Zhang C, Gurevich I, Aneskievich BJ. Organotypic modeling of human keratinocyte response to peroxisome proliferators. Cells Tissues Organs. 2012; 196(5):431-441.  https://doi.org/10.1159/000336268
  56. Kim H, Lim YJ, Park JH, Cho Y. Dietary silk protein, sericin, improves epidermal hydration with increased levels of filaggrins and free amino acids in NC/Nga mice. Br J Nutr. 2012;108(10):1726-1735. https://doi.org/10.1017/S0007114511007306
  57. Hou M, Sun R, Hupe M, Kim PL, Park K, Crumrine D, Lin TK, Santiago JL, Mauro TM, Elias PM, Man MQ. Topical apigenin improves epidermal permeability barrier homoeostasis in normal murine skin by divergent mechanisms. Exp Dermatol. 2013;22(3):210-215.  https://doi.org/10.1111/exd.12102
  58. Otsuka A, Doi H, Egawa G, Maekawa A, Fujita T, Nakamizo S, Nakashima C, Nakajima S, Watanabe T, Miyachi Y, Narumiya S, Kabashima K. Possible new therapeutic strategy to regulate atopic dermatitis through upregulating filaggrin expression. J Allergy Clin Immunol. 2014;133(1):139-46.e1-10.  https://doi.org/10.1016/j.jaci.2013.07.027
  59. Paolo U. Giacomoni.Human Stratum Corneum homeostasis: the relevance of filaggrin and of inducers of filaggrin production. Relata Technica. 2016;1-4. 
  60. Granato L. Modulator from fractions of vegetable unsaponifiables. Personal Care. 2012;5(4):69-72. 

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.