Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.
Поиск диагностических и прогностических биомаркеров иммуновоспалительных дерматозов с помощью проточной цитофлуориметрии
Журнал: Клиническая дерматология и венерология. 2025;24(2): 170‑177
Прочитано: 1235 раз
Как цитировать:
Иммуновоспалительные дерматозы, несмотря на их клиническое разнообразие, нередко характеризуются общими патогенетическими механизмами, в цепочке которых лежат дисфункции в различных звеньях иммунной системы, ассоциированные, поддерживаемые или индуцируемые триггерными факторами различной природы. Поиск и устранение этих факторов являются важнейшими задачами, но, к сожалению, выявить их сложно и не всегда выполнимо, а устранение триггерных факторов зачастую и вовсе невозможно. В связи с этим мы должны посмотреть на патогенез этих дерматозов изнутри, с позиций врожденного и адаптивного иммунитета, управление которым поможет нам достичь желаемых результатов и приблизиться к прерыванию порочного круга взаимодействия триггеров и иммунной системы.
Псориаз и атопический дерматит (АтД) — наиболее распространенные заболевания кожи. В целом и псориаз, и АтД являются примерами заболеваний, при которых углубленное понимание молекулярных механизмов и путей воспаления приводит к успешным терапевтическим разработкам. Несмотря на то что в патогенезе псориаза преобладает иммунный ответ типа Th17 (основанный на выделении интерлейкина (IL)-17 соответствующим подтипом T-хелперов), а при АтД — иммунный ответ типов Th2 и Th22 с общей поляризацией Th1-типа в очагах, вероятно, существуют биомаркеры, общие для этих заболеваний, позволяющие прогнозировать течение дерматоза и фармакологический эффект методов терапии [1—4].
К дерматозам сложного иммуногенеза, для которых отсутствуют как специфические биологические маркеры, так и специфическая этиопатогенетическая терапия, относятся также красный плоский лишай (КПЛ), липоидный некробиоз, инверсные акне, многоформная эритема.
IL-13 и IL-15 известны как биомаркеры синдрома Стивенса—Джонсона и токсического эпидермального некролиза. Уровни IL-13 и IL-15 в образцах плазмы, а также IL-13-позитивных клеток в образцах пораженной кожи в очагах у таких больных были значительно более высокими по сравнению с таковыми в образцах пораженной кожи при многоформной эритеме [5, 6]. Однако эти цитокины не являются специфичными для лекарственных кожных реакций. Уровень IL-13 повышен при атопическом дерматите [2—4], содержание IL-15 также повышено при буллезных заболеваниях, T-клеточной лимфоме и псориазе [2, 4].
S.M. Volkers и соавт. [7] описали клинический случай многоформной эритемы, связанной с микоплазменной инфекцией, и отметили появление CD4+CD8+-T-лимфоцитов в воспалительном экссудате (пузырной жидкости) — до 50% T-клеток и в периферической крови — 24,9% всех T-клеток до лечения и 13,4% после лечения. Применение системных препаратов привело к регрессу этой клеточной популяции. При этом эти клетки принадлежали к подгруппе CD4lowCD8high CD4+CD8+-T-клеток и, следовательно, могли произойти от зрелых CD8+-T-клеток. Кроме того, почти все CD4+CD8+-T-клетки были TCRVβ2+-клетками, что свидетельствует о моноклональной (или олигоклональной) их экспансии, предположительно направленной против определенного антигена. Авторы предположили, что эта популяция CD4+CD8+-T-клеток была вовлечена в патофизиологию заболевания.
В патогенезе КПЛ участвуют во взаимодействии друг с другом различные популяции T-клеток (CD4+, CD8+, Tregs), плазмоцитоидные дендритные клетки (пДК) и тучные клетки, при этом запускается сложный воспалительный каскад с повреждением базальных кератиноцитов. Стимулированные внешними агентами (лекарствами, инфекциями, контактными или неизвестными до сих пор аллергенами) пДК и кератиноциты выделяют интерфероны (IFN) 1-го типа, такие как IFN-α, что приводит к активации CD8+-цитотоксических T-клеток, вызывающих повреждение базальных клеток эпидермиса с помощью CD4+-T-хелперов. Поврежденные базальные кератиноциты привлекают еще больше CD8+-T-клеток, что приводит к самоподдерживаему воспалению. RANTES, выделяемый T-клетками, приводит к дегрануляции тучных клеток, выделяющих TNF-α, который, в свою очередь, повышает секрецию RANTES T-клетками, что является еще одним фактором, способствующим формированию петли положительной обратной связи. Во врожденном иммунном ответе также участвуют провоспалительные миелоидные дендритные клетки (mDCs), T-регуляторные клетки (Tregs), полифункциональные T-клетки и Toll-подобные рецепторы (TLRs) [8].
В отношении вышеперечисленных патологий продолжается поиск новых мишеней патогенетически обоснованных целевых препаратов. Выявление и определение биомаркеров для оценки тяжести течения, а также для объективизации оценки эффективности терапии крайне важно.
Цель исследования — изучение иммунофенотипа лейкоцитов периферической крови у пациентов с различными хроническими дерматозами в период рецидива и ремиссии для определения прогностических и диагностических иммунологических маркеров.
Под нашим наблюдением находились 111 больных в возрасте от 18 до 65 лет с хроническими дерматозами: аллергодерматозами (АтД — 25), дерматозами с нарушением пролиферации и дифференцировки кератиноцитов (псориаз вульгарный — 24), реактивными эритемами (многоформная экссудативная эритема — 12), дерматозами с гранулематозной реакцией (липоидный некробиоз — 11), лихеном (КПЛ — 12), заболеванием сально-волосяных фолликулов, апокриновых желез (инверсные акне — 10), бактериальными инфекциями кожи (хронический рецидивирующий фурункулез — 17). Базисная терапия в каждой группе включала традиционную наружную терапию без применения иммунобиологических препаратов.
Субпопуляционный состав лейкоцитов периферической крови определяли методом проточной цитометрии («Beckman Coulter», США) с помощью моноклональных антител к соответствующим антигенам в соответствии с инструкциями производителя в период рецидива и ремиссии заболевания.
Важным показателем состояния врожденного и адаптивного иммунитета является содержание субпопуляций лимфоцитов. У обследованных нами больных АтД в период обострения выявлено повышение процентного и абсолютного содержания CD3-лимфоцитов в периферической крови (81,98±4,15% и 1900,44±190,49 кл/мкл), снижение уровня натуральных киллеров CD45+CD3–CD16/56+ (7,42±2,91%) на фоне повышения доли NKT-лимфоцитов (CD45+CD3+CD16/56+; 6,92±8,22%), а также повышение количества лимфоцитов, экспрессирующих γδ-TCR (5,53±2,85) и снижение уровня B-лимфоцитов CD19 (10,57±3,59) (табл. 1)
Таблица 1. Содержание субпопуляций лимфоцитов в периферической крови больных АтД до и после лечения (M±σ)
| Иммунофенотип клеток | Референсные значения | В период рецидива | В период ремиссии |
| T-лимфоциты CD3+, % | 60—76 | 81,98±4,15* | 73,73±2,93* |
| CD3+, кл/мкл | 1100—1700 | 1900,44±190,49* | 1352,44±279,63* |
| T-хелперы CD3+CD4+, % | 38—46 | 44,68±6,38 | 42,12±3,76 |
| CD3+CD4+, кл/мкл | 700—1100 | 828,67±227,85 | 839,44±152,72 |
| T-киллеры CD3+CD8+, % | 31—40 | 34,34±7,11 | 38,40±5,73 |
| CD3+CD8+, кл/мкл | 500—1000 | 416,78±107,31 | 511,11±143,21 |
| NK-лимфоциты CD45+CD3–CD16/56+, % | 10—19 | 7,42±2,91 | 7,38±2,26 |
| NKT-лимфоциты CD45+CD3+CD16/56+, % | 0—5 | 6,92±8,22 | 8,24±9,86 |
| HLA-DR+, % | 7—21 | 14,56±4,98 | 13,58±2,33 |
| HLA-DR+, кл/мкл | 120—520 | 261,11±50,10 | 197,33±26,00 |
| CD38+, % | 17—29 | 31,14±6,29 | 22,06±3,81 |
| B-лимфоциты CD19+, % | 11—16 | 10,57±3,59 | 10,22±3,55 |
| CD25+, % | 0—5 | 13,66±4,49 | 14,39±3,68 |
| CD95+, % | 41—63 | 16,72±8,11 | 15,00±4,67 |
| γδ-TCR+, % | 0—3 | 5,53±2,85* | 3,24±1,45* |
Примечание. Здесь и в табл. 2—7: М — среднее арифметическое, σ — стандартное отклонение. * — p≤0,05, достоверность различий показателей в группах до и после лечения (по T-критерию Уилкоксона для парных измерений).
После проведенной базисной терапии в период ремиссии у больных отмечена нормализация содержания αβ- и γδ-T-лимфоцитов.
Таким образом, в целом в клеточном составе лейкоцитов крови при АтД можно отметить увеличение доли T-лимфоцитов с небольшим относительным снижением доли B-лимфоцитов. Наблюдали увеличение доли CD4+-лимфоцитов со снижением доли CD8+-лимфоцитов, что указывает на активацию ключевого звена адаптивного иммунного ответа — T-хелперов. После лечения происходили изменения в противоположном направлении со снижением значения иммунорегуляторного индекса.
Повышалась доля лимфоцитов, экспрессирующих маркер ранней активации CD25, и снижался уровень клеток с рецептором апоптоза CD95, что отражает их увеличенную выживаемость.
Известно, что в патогенезе АтД играют роль различные факторы адаптивного и врожденного иммунитета, в том числе и T-лимфоциты, и NKT-лимфоциты, инфильтрирующие кожу в поражениях. В нашем исследовании доли тех и других в крови были увеличены. Однако если после терапии количество и процент T-клеток в крови уменьшались, то доля NKT-лимфоцитов выросла; можно предположить, что проводимое лечение не затрагивало их на уровне целостного организма.
Роль γδ-T-лимфоцитов в патогенезе АтД остается неясной. Данные об изменении уровня циркулирующих γδ-T-лимфоцитов противоречивы. Установлено снижение уровня циркулирующих NK- и γδ-T-лимфоцитов, нарушение функции которых авторы сочли патогенетическим механизмом АтД, а также повышение уровня γδ-T-лимфоцитов в крови детей с АтД, коррелировавшее с тяжестью заболевания [9].
У обследованных нами больных липоидным некробиозом в период обострения выявлено повышение процентного и абсолютного содержания лимфоцитов CD3+CD8+ в периферической крови (24,37±4,02% и 425,33±30,22 кл/мкл), снижение содержания B-лимфоцитов CD19+ (10,3±3%), повышение количества лимфоцитов с маркером ранней активации CD25+ (рецептор для IL-2) (19,13±1,51%), маркер апоптоза CD95+ находился на нижней границе нормы (41,5±3%), доля экспрессирующих γδ-TCR была повышена (4,37±2,71%). После проведенной базисной терапии в период ремиссии у больных отмечена нормализация содержания CD3+CD8+ (30,07±3,16%) (табл. 2).
Таблица 2. Содержание субпопуляций лимфоцитов в периферической крови больных липоидным некробиозом до и после лечения (M±σ)
| Иммунофенотип клеток | Референсные значения | В период рецидива | В период ремиссии |
| T-лимфоциты CD3+, % | 60—76 | 75,1±2,27* | 67,63±3,04* |
| CD3+, кл/мкл | 1100—1700 | 1543,67±70,89 | 1396,67±131,11 |
| T-хелперы CD3+CD4+, % | 38—46 | 45,67±2,51 | 42,7±6,20 |
| CD3+CD4+, кл/мкл | 700—1100 | 836,33±50,89 | 981,67±78,89 |
| T-киллеры CD3+CD8+, % | 31—40 | 24,37±4,02 | 30,07±3,16 |
| CD3+CD8+, кл/мкл | 500—1000 | 425,33±30,22 | 530±73,33 |
| NK-лимфоциты CD45+CD3–CD16/56+, % | 10—19 | 14,93±0,18 | 14,0±1,33 |
| NKT-лимфоциты CD45+CD3+CD16/56+, % | 0—5 | 3,43±1,22 | 3,37±1,44 |
| HLA-DR+, % | 7—21 | 15,37±1,91 | 17,4±3,07 |
| HLA-DR+, кл/мкл | 120—520 | ||
| CD38+, % | 17—29 | 21,55±3,56 | 24,17±5,11 |
| B-лимфоциты CD19+, % | 11—16 | 10,3±3 | 9,77±2,11 |
| CD25+, % | 0—5 | 19,13±1,51 | 17,17±1,56 |
| CD95+, % | 41—63 | 41,5±3 | 42,23±1,56 |
| Γδ-TCR+, % | 0—3 | 4,37±2,71 | 4,3±2,47 |
Изолированное снижение количества CD8+-лимфоцитов может быть одним из компонентов патогенеза липоидного некробиоза (нарушение киллерной функции в отношении измененных клеток) либо проявлением смещения функции иммунной системы в сторону иных типов клеток.
КПЛ — хроническое идиопатическое воспалительное заболевание, поражающее кожу и слизистые оболочки. Согласно современным представлениям, иммунопатогенез КПЛ обусловлен клеточно-опосредованной цитотоксичностью, особенно цитотоксическими T-лимфоцитами, на активность которых дополнительно влияют оси Th1 и IL-23/Th-17 [8].
У обследованных нами больных КПЛ в период обострения выявлено повышение процентного и абсолютного содержания лимфоцитов CD3+CD8+ в периферической крови (26,45±8,38% и 411,83±123,83 кл/мкл), повышение доли NKT-лимфоцитов (6,37±5,56%), клеток с маркером ранней активации CD25+ (рецептор для IL-2) (16,26±2,48%), снижение уровня лимфоцитов, экспрессирующих маркер апоптоза CD95+ (25,3±10,23%) (табл. 3). Доля γδ-T-лимфоцитов была на верхней границе нормальных значений (3,08±1,34%). После проведенной базисной терапии в период ремиссии у больных отмечена тенденция к повышению доли CD95+ (32,72±7,98%) и к снижению доли CD25+-клеток (11,23±1,04%), что отражает снижение активации иммунного ответа и повышение готовности иммунных клеток к апоптозу.
Таблица 3. Содержание субпопуляций лимфоцитов в периферической крови больных КПЛ до и после лечения (M±σ)
| Иммунофенотип клеток | Референсные значения | В период рецидива | В период ремиссии |
| T-лимфоциты CD3+, % | 60—76 | 70,83±5,22 | 64,42±6,42 |
| CD3+, кл/мкл | 1100—1700 | 1290,83±327,22 | 1191,67±254,44 |
| T-хелперы CD3+CD4+, % | 38—46 | 44,48±6,74 | 45,25±9,02 |
| CD3+CD4+, кл/мкл | 700—1100 | 712,5±164,33 | 753,83±184,5 |
| T-киллеры CD3+CD8+, % | 31—40 | 26,45±8,38 | 28,53±6,17 |
| CD3+CD8+, кл/мкл | 500—1000 | 411,83±123,83 | 501,5±91,5 |
| NK-лимфоциты CD45+CD3–CD16/56+, % | 10—19 | 17,53±6,2* | 19,67±7,37* |
| NKT-лимфоциты CD45+CD3+CD16/56+, % | 0—5 | 6,37±5,56* | 7,5±6,07* |
| HLA-DR+, % | 7—21 | 19,92±3,82 | 19,1±5,43 |
| CD38+, % | 17—29 | 26,32±8,38 | 35,6±4,27 |
| B-лимфоциты CD19+, % | 11—16 | 11,37±3,17 | 12±3,20 |
| CD25+, % | 0—5 | 16,26±2,48 | 11,23±1,04 |
| CD95+, % | 41—63 | 25,3±10,23* | 32,72±7,98* |
| γδ-TCR+, % | 0—3 | 3,08±1,34 | 3,92±1,42* |
У обследованных нами больных вульгарным псориазом в прогрессирующую стадию выявлено снижение абсолютного содержания лимфоцитов CD3+CD4+ в периферической крови (498,62±171,43 кл/мкл), снижение CD3+CD8+-лимфоцитов (24,93±4,78% и 387,25±128,63 кл/мкл), повышение доли лимфоцитов CD25+ (19,44±2,9%) и CD38+ (35,68±7,12%), снижение количества лимфоцитов, экспрессирующих маркер апоптоза CD95+ (28,33±9,03%), количество экспрессирующих γδ-TCR было немного повышено (3,69±1,6%) (табл. 4). После проведенной базисной терапии в период ремиссии у больных отмечена тенденция к нормализации содержания CD3+CD8+ по абсолютным значениям (473±123 кл/мкл).
Таблица 4. Содержание субпопуляций лимфоцитов в периферической крови больных псориазом до и после лечения (M±σ)
| Иммунофенотип клеток | Референсные значения | В период рецидива | В период ремиссии |
| T-лимфоциты CD3+, % | 60—76 | 71,15±7,89 | 69,43±7,38 |
| CD3+, кл/мкл | 1100—1700 | 1296,19±253,81 | 1261,88±280,25 |
| T-хелперы CD3+CD4+, % | 38—46 | 43,59±8,52 | 42,57±8,62 |
| CD3+CD4+, кл/мкл | 700—1100 | 498,62±171,43 | 496,92±154,24 |
| T-киллеры CD3+CD8+, % | 31—40 | 24,93±4,78 | 26,69±6,98 |
| CD3+CD8+, кл/мкл | 500—1000 | 387,25±128,63* | 473±123* |
| NK-лимфоциты CD45+CD3–CD16/56+, % | 10—19 | 16,99±8,84* | 16,93±8* |
| NKT-лимфоциты CD45+CD3+CD16/56+, % | 0—5 | 1,52±1,09 | 2,31±1,65 |
| HLA-DR+, % | 7—21 | 18,41±5,58* | 14,7±2,75* |
| HLA-DR+, кл/мкл | 120—520 | 377,19±196,76 | 344,06±129,69 |
| B-лимфоциты CD19+, % | 11—16 | 11,68±3,19 | 13±1,95 |
| B-лимфоциты CD19+, кл/мкл | 200—400 | 226,38±97,25 | 244,38±71,17 |
| CD38+, % | 17—29 | 35,68±7,12 | 32,35±8,18 |
| CD25+, % | 0—5 | 19,44±2,90* | 10,09±1,99* |
| CD95+, % | 41—63 | 28,33±9,03* | 33,24±9,52* |
| γδ-TCR/CD3+, % | 0—3 | 3,69±1,6* | 5,64±1,92* |
| γδ-TCR/CD8+, % | 1,47±1,1* | 2,28±1,13* | |
| γδ-TCR/CD4+, % | 0,05±0,08 | 0,54±0,64 |
Псориаз — аутоиммунное заболевание, в патогенезе которого основную роль играет гиперпродукция цитокинов IL-17 и IL-23 (вызываемая дендритными клетками кожи и T-хелперами) с последующим привлечением нейтрофилов в эпидермис [10—12].
Снижение доли CD4+- и CD8+-лимфоцитов в крови может быть обусловлено предшествующей терапией псориаза и перераспределением их в очаги воспаления. Как и при других кожных воспалительных заболеваниях, обнаружено увеличение в крови доли клеток с маркерами активации и снижение — с рецептором апоптоза.
У обследованных нами больных хроническим рецидивирующим фурункулезом в период рецидива выявлено повышение относительного содержания T-лимфоцитов (CD3+) в периферической крови (77,6±5,83%), T-хелперов CD3+CD4+ (49,18±7,2%), снижение уровня T-киллеров CD3+CD8+ (27,51±6,13%, 429,29±137,47 кл/мкл), повышение доли CD38+-клеток (28,4±7,32%), снижение доли B-лимфоцитов (10,36±3,48%), клеток, экспрессирующих Fas-рецептор апоптоза CD95+ (22,02±15,38%) (табл. 5). Относительное количество γδ-TCR было немного повышено (4,04±1,96%). После проведенной базисной терапии в период ремиссии у больных отмечено повышение абсолютных значений CD3+CD8+.
Таблица 5. Содержание субпопуляций лимфоцитов в периферической крови больных фурункулезом до и после лечения
| Иммунофенотип клеток | Референсные значения | В период рецидива | В период ремиссии |
| T-лимфоциты CD3+, % | 60—76 | 77,6±5,83 | 74,41±6,93 |
| CD3+, кл/мкл | 1100—1700 | 1450,25±377,19 | 1343,67±357,78 |
| T-хелперы CD3+CD4+, % | 38—46 | 49,18±7,2 | 47,26±8,49 |
| CD3+CD4+, кл/мкл | 700—1100 | 1075±214,29 | 1035±175 |
| T-киллеры CD3+CD8+, % | 31—40 | 27,51±6,13 | 28,81±4,3 |
| CD3+CD8+, кл/мкл | 500—1000 | 429,29±137,47 | 632±138,67 |
| NK-лимфоциты CD45+CD3–CD16/56+, % | 10—19 | 11,83±5,64 | 9,2±2,8 |
| NKT-лимфоциты CD45+CD3+CD16/56+, % | 0—5 | 3,75±3,44 | 5,73±2,51 |
| HLA-DR+, % | 7—21 | 12,37±1,49 | 13,67±3,56 |
| CD38+, % | 0—5 | 28,4±7,32 | 30,83±3,89 |
| B-лимфоциты CD19+, % | 11—16 | 10,36±3,48 | 9,63±1,53 |
| CD25+, % | 0—5 | 6,2±0,86 | 7,56±1,67 |
| CD95+, % | 41—63 | 22,02±15,38 | 23,53±16,44 |
| γδ-TCR+, % | 0—3 | 4,04±1,96 | 4,36±1,12 |
Помимо признаков активации иммунного ответа, таких как увеличение содержания T-хелперов и клеток с маркерами активации, можно отметить умеренное количество лейкоцитов крови, а значит, можно предположить недостаточность иммунного ответа на бактериальные патогены, в борьбе с которыми наибольшую роль играют гранулоциты.
У обследованных нами больных инверсными акне в период рецидива выявлено содержание CD3+CD8+-лимфоцитов на нижних границах нормы (31,1±6,16%), остальные показатели были в пределах нормальных значений (табл. 6). В патогенезе этой болезни, как считается, основную роль играют нарушения врожденного иммунного ответа, не находящие, вероятно, отражения в субпопуляциях T-лимфоцитов [13].
Таблица 6. Содержание субпопуляций лимфоцитов в периферической крови больных инверсными акне до и после лечения (M±σ)
| Иммунофенотип клеток | Референсные значения | В период рецидива | В период ремиссии |
| T-лимфоциты, CD3+, % | 60—76 | 73,18±9,78 | 72,3±2,8 |
| CD3+, кл/мкл | 1100—1700 | 1483,6±355,68 | 1307,5±167,5 |
| T-хелперы, CD3+CD4+, % | 38—46 | 41,24±3,30 | 41,675±3,11 |
| CD3+CD4+, кл/мкл | 700—1100 | 1098,0±198,4 | 1200,0±250,0 |
| T-киллеры, CD3+CD8+, % | 31—40 | 31,1±6,16 | 30,85±1,53 |
| CD3+CD8+, кл/мкл | 500—1000 | 534±133,6 | 695±215,0 |
У обследованных нами больных многоформной эритемой в период рецидива выявлено повышение уровня CD3+CD4+-клеток (48,68±7,08%), снижение уровня CD3+CD8+-лимфоцитов (22,65±4,27%, 308,33±98,33 кл/мкл), повышение доли NKT-лимфоцитов (9,33±4,48%), количества CD38+-клеток (28,38±6,73%), B-лимфоцитов (16,93±6,71%), выраженное снижение содержания лимфоцитов, экспрессирующих маркер апоптоза CD95+ (14,05±3,8%), количество экспрессирующих γδ-TCR-лимфоцитов было незначительно повышено (3,58±1,54%) (табл. 7). После проведенной базисной терапии в период ремиссии у больных отмечена тенденция к снижению содержания натуральных киллеров (6,27±4,02%), к повышению абсолютных значений исходно сниженного содержания CD3+CD8+ (494,4±131,52 кл/мкл).
Таблица 7. Содержание субпопуляций лимфоцитов в периферической крови больных многоформной эритемой до и после лечения (M±σ)
| Иммунофенотип клеток | Референсные значения | В период рецидива, % | В период ремиссии, % |
| T-лимфоциты CD3+, % | 60—76 | 73,62±6,28 | 68,63±3,77 |
| CD3+, кл/мкл | 1100—1700 | 1631,5±385,33 | 1434±307,2 |
| T-хелперы CD3+CD4+, % | 38—46 | 48,68±7,08* | 43,42±6,22* |
| CD3+CD4+, кл/мкл | 700—1100 | 998±288,67 | 772,4±102,08 |
| T-киллеры, CD3+CD8+, % | 31—40 | 22,65±4,27 | 27,52±4,75 |
| CD3+CD8+, кл/мкл | 500—1000 | 308,33±98,33 | 494,4±131,52 |
| NK-лимфоциты CD45+CD3–CD16/56+, % | 10—19 | 16,63±9,17 | 11,95±5,67 |
| NKT-лимфоциты CD45+CD3+CD16/56+, % | 0—5 | 9,33±4,48 | 6,27±4,02 |
| HLA-DR+, % | 7—21 | 18,76±7,55 | 16,84±2,53 |
| CD38+, % | 17—19 | 28,38±6,73 | 24±6,67 |
| B-лимфоциты CD19+, % | 11—16 | 16,93±6,71 | 16,75±3,25 |
| CD95+, % | 41—63 | 9,18±4,9* | 20,7±5,1* |
| γδ-TCR+, % | 0—3 | 3,58±1,54 | 3,3±0,52 |
Сравнительный анализ патологии в период рецидива выявил, что наиболее максимальные значения CD38 были у больных АтД и псориазом, максимально высокие значения γδ-лимфоцитов наблюдали у больных АтД и чуть ниже — при липоидном некробиозе. Уровень лимфоцитов, экспрессирующих маркеры апоптоза CD95, был наиболее низким у больных АтД и многоформной эритемой, в то время как этот показатель был в норме только у больных липоидным некробиозом. Содержание B-лимфоцитов было на верхней границе нормы при многоформной эритеме, на нижней — при остальных патологиях.
При изучении особенностей иммунного ответа при рецидиве и ремиссии показано, что в группе КПЛ и липоидным некробиозом отмечено повышение уровня T-киллеров (CD3+CD8+) в ремиссию по сравнению с рецидивом, оба заболевания имеют сходный патогенез. Однако тенденция к повышению этого показателя в результате терапии отмечена и при других исследованных воспалительных патологиях, кроме инверсных акне. Повышение значений в период ремиссии заболевания, вероятно, связано с переходом иммунной системы из состояния «болезни» и гиперактивации в состояние «покоя», «дежурства».
Липоидный некробиоз характеризовался также повышением уровня лимфоцитов с маркером CD25 и значительным повышением уровня γδ-клеток, причем это единственная патология, при которой содержание лимфоцитов с маркером апоптоза CD95 было в пределах нормы. Псориаз характеризовался снижением количества T-лимфоцитов хелперов CD3+CD4+ в отличие от других патологий. При АтД в отличие от других патологий отмечено повышение доли NKT-лимфоцитов на фоне снижения доли NK-лимфоцитов, что может отражать участие NKT-клеток в патогенезе воспаления при этой болезни, и максимальными значениями γδ-лимфоцитов. При многоформной эритеме отмечено в отличие от других дерматозов повышение уровня B-лимфоцитов, а также минимальные значения CD95. При фурункулезе в отличие от других патологий отмечено повышение общего количества лимфоцитов.
По достижении ремиссии после базисной терапии при АтД отмечена нормализация содержания γδ-клеток и общего числа лимфоцитов, при КПЛ — нормализация содержания CD95 и CD25.
Поскольку биомаркеры следует оценивать неоднократно, особенно в контексте мониторинга лечения, предпочтение менее инвазивным методам перед биопсией кожи вполне резонно. Кроме того, биопсию кожи еще труднее получить в педиатрической популяции. В настоящее время уже оценивают несколько потенциальных биомаркеров крови, связанных с АтД, псориазом, в дополнение к данным физикального осмотра для определения тяжести заболевания.
Для определения потенциальной роли биомаркеров в прогнозировании и оценки эффективности лечения вышеперечисленных дерматозов крайне важны крупномасштабные клинические исследования с широкой оценкой целого спектра биомаркеров. В будущем это может привести к разработке клинического подхода с использованием их в качестве практического клинического инструмента, при котором выбор терапии этих патологий будет персонифицированным. Поиск и определение надежных и легкодоступных биомаркеров позволит внедрить прецизионную медицину при иммунозависимых дерматозах, улучшить ведение пациентов и ускорить разработку новых терапевтических средств.
Результаты изучения патогенеза иммуновоспалительных дерматозов на иммунологическом и молекулярно-клеточном уровне позволят получить новые знания о возможных терапевтических мишенях; разработка методических подходов, направленных на определение критериев степени тяжести, совершенствование методов патогенетической терапии улучшат медицинскую помощь больным иммуновоспалительными дерматозами.
Участие авторов:
Концепция и дизайн исследования — Сорокина Е.В., Ахматова Э.А.
Сбор и обработка материала — Столпникова В.Н., Бишева И.В., Мишина Н.В.
Написание текста — Сорокина Е.В.,
Калиниченко Е.О.
Редактирование — Сорокина Е.В.
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Authors’ contributions:
The concept and design of the study — Sorokina E.V., Akhmatova E.A.
Collecting and interpreting the data — Stolpnikova V.N., Bisheva I.V., Mishina N.V.
Drafting the manuscript — Sorokina E.V., Kalinichenko E.O.
Revising the manuscript — Sorokina E.V.
Литература / References:
Подтверждение e-mail
На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.
Подтверждение e-mail
Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.