Лебедева Е.В.

ГБУЗ Москвы «Московский научно-практический центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения Москвы»

Артемьева С.И.

ГБУЗ Москвы «Московский научно-практический центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения Москвы»

Радионова Е.Е.

ГБУЗ Москвы «Московский научно-практический центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения Москвы»

Маляренко Е.Н.

ГБУЗ Москвы «Московский научно-практический центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения Москвы»

Хамаганова И.В.

РНИМУ им. Н.И. Пирогова

Вакцинация АКДС — триггер манифестации вульгарной пузырчатки?

Авторы:

Лебедева Е.В., Артемьева С.И., Радионова Е.Е., Маляренко Е.Н., Хамаганова И.В.

Подробнее об авторах

Прочитано: 3139 раз


Как цитировать:

Лебедева Е.В., Артемьева С.И., Радионова Е.Е., Маляренко Е.Н., Хамаганова И.В. Вакцинация АКДС — триггер манифестации вульгарной пузырчатки? Клиническая дерматология и венерология. 2020;19(6):823‑830.
Lebedeva EV, Artemyeva SI, Radionova EE, Malyarenko EN, Khamaganova IV. DTP vaccination — a trigger for the manifestation of pemphigus vulgaris? Russian Journal of Clinical Dermatology and Venereology. 2020;19(6):823‑830. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/klinderma202019061823

Рекомендуем статьи по данной теме:
Расстройства ши­зоф­ре­ни­чес­ко­го спек­тра и бо­лезнь Пар­кин­со­на. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(3):136-141
Син­дром эпи­леп­сии, свя­зан­ный с феб­риль­ной ин­фек­ци­ей. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(7):34-40

Введение

Вульгарная пузырчатка (ВП), или Pemphigus vulgaris — хроническое аутоиммунное заболевание кожи и слизистых оболочек, которое характеризуется образованием пузырей интраэпидермальной локализации из-за потери межклеточных связей в супрабазальных отделах эпидермиса, что обусловлено образованием IgG-антител к специфическим молекулам клеточной адгезии. ВП является наиболее часто встречающейся формой истинной акантолитической пузырчатки [1, 2].

Среди больных преобладают женщины в возрасте 40–60 лет, однако в клинической практике встречаются случаи возникновения ВП как в молодом, так и в старческом возрасте, когда важным является исключение паранеопластического характера дерматоза. Заболевание более чем у половины пациентов начинается с поражения слизистых оболочек, прежде всего слизистой оболочки ротовой полости. Во многих случаях такое начало приводит к диагностическим ошибкам, пациенты на протяжении длительного периода времени могут обращаться к стоматологам, ЛОР-врачам, которые диагностируют многоформную экссудативную эритему, стоматит, конъюнктивит и другие заболевания, отдаляя своевременное назначение необходимой терапии. Первичное поражение кожи может клинически симулировать пиодермию, микробную экзему, розовый лишай и другие дерматозы, вызывая определенные диагностические трудности.

В 1964 г. E. Beutner и R. Jordan выявили циркулирующие антитела к клеточным поверхностям кератиноцитов у больных с ВП, что позволило сделать вывод об аутоиммунной природе дерматоза. В 1982 г. J. Stanley и соавт. определили молекулярную массу антигена ВП — 130 кД (позднее получил название десмоглеин 3), в 1984 г. определена масса антигена, названного десмоглеин 1 — 160 кД [1, 2]. Циркулирующие аутоантитела играют патогенетическую роль в формировании пузырей. Образуются аутоантитела класса IgG к компонентам десмосом — десмоглеину 1 и 3, которые вызывают разрушение десмосом вследствие выделения протеолитических ферментов, нарушающих адгезивную функцию этих молекул, что приводит к разъединению кератиноцитов — акантолизу. Прикрепление антител также влечет к изменению цитоскелета кератиноцитов и их последующему частичному сжатию в размерах, а уменьшение размеров клеток приводит к механическому разрыву десмосом. Супрабазальный уровень акантолиза при ВП объясняется тем, что базальные кератиноциты являются менее регидными и их сжатие при повреждении цитоскелета происходит быстрее.

Выделяют две иммунопатологические формы ВП. При одной из них поражаются только слизистые оболочки, при этом выявляются аутоантитела к десмоглеину 3, при второй форме происходит вовлечение слизистых оболочек и кожи и определяются аутоантитела к десмоглеину 1 и 3.

Гистологически при ВП ранними проявлениями являются межклеточный отек в эпидермисе, разрыв межклеточных мостиков между эпителиоцитами на уровне нижних отделов росткового слоя, из-за чего образуются щели, далее — пузыри, которые расположены супрабазально. В полости пузыря расположены акантолитические клетки, характеризующиеся наличием больших гиперхромных ядер и бледной протоплазмой.

Методом прямой иммунофлюоресценции в пораженной и прилегающей к высыпаниям коже, а в ряде случаев и на отдаленных от очагов участках обнаруживаются аутоантитела класса IgG к антигенам клеточных мембран эпидермоцитов, локализованные в межклеточных промежутках эпидермиса.

Методом непрямой иммунофлюоресценции в сыворотке большинства больных выделяют циркулирующие аутоантитела к компонентам межклеточной цементирующей субстанции эпидермиса, титры которых коррелируют с активностью процесса. Иммуноблот (Western blotting) определяет циркулирующие IgG-антитела к протеину 130 кД или протеину 160 кД у больных ВП.

Важную роль в патогенезе играют генетические факторы. Выявлено что наиболее подвержены заболеванию определенные этнические группы (евреи ашкеназы), отмечена ассоциация с локусами HLA-DRB1*0402, у других этнических групп также могут быть обнаружены и другие локусы, пр.: DRB1*1401/04 и DQB1*0503 [3—5].

ВП, как и другие аутоиммунные заболевания, развивается при генетической предрасположенности, также необходимо воздействие триггерных факторов, запускающих каскад реакций, что, в свою очередь, приводит к возникновению и взаимодействию аутоантител с неизмененными аутоантигенами кожи и слизистых оболочек и, как следствие этого процесса, к клиническим проявлениям болезни [6].

Анализ литературы позволил выделить роль следующих триггерных факторов в развитии ВП (рис. 1):

— аутоиммунные заболевания — наличие аутоиммунных заболеваний в семейном анамнезе повышает риск возникновения ВП [5, 6];

— инфекции — инфекционные агенты рассматриваются в качестве триггерного фактора для многих аутоиммунных заболеваний [7]. Описаны случаи индукции ВП вирусом простого герпеса [8]. В одном из крупных исследований проанализированы сыворотки крови пациентов с подтвержденными буллезными дерматозами (истинная акантолитическая пузырчатка и буллезный пемфигоид) на наличие антител к различным патогенам до начала проведения иммуносупрессивной терапии по сравнению со здоровым контролем. Некоторые из этих патогенов уже были описаны в литературе как способствующие возникновению пузырчатки [9]. Полученные данные частично подтвердили возможную роль инфекционных агентов в возникновении аутоиммунных буллезных дерматозов. Выявлено значительное увеличение титра HBcAb, антител IgG к H. pylori у пациентов с буллезными дерматозами по сравнению с группой контроля. Продемонстрирована новая связь HCV с ВП. [7] Тем не менее важно отметить, что лечение вирусного гепатита С интерфероном может также способствовать развитию ВП, что уменьшает роль HCV как прямого триггерного фактора [7—13]:

— эмоциональный стресс [14];

— ультрафиолетовое излучение, инсоляция, в исследованиях [15, 16] продемонстрирована роль ультрафиолетового излучения и инсоляции в развитии и обострениях ВП;

— лучевая терапия [17—20];

— онкологические заболевания [6];

— травматизация кожи и слизистых оболочек [21];

— лекарственные препараты — манифестация пузырчатки, по данным литературы, в ряде случаев ассоциируется с применением лекарственных препаратов. К таким препаратам относятся группа тиоловых лекарственных веществ, некоторые ингибиторы ангиотензиновых рецепторов. В состав препаратов входят сульфгидрильные группы (тиоловые группы, -SH), которые взаимодействуют с сульфгидрильными группами десмоглеинов 1 и 3, нарушая их адгезивную функцию. Кроме того, некоторые препараты могут обладать собственным акантолитическим свойством и стимулировать образование аутоантител. Препараты фенола, в том числе наркотические средства (героин), могут стимулировать кератиноциты к высвобождению провоспалительных цитокинов, включая ФНО-α и ИЛ-1, которые участвуют в акантолизе посредством прямых и косвенных механизмов. Существуют также некоторые нетиоловые, нефенольные лекарственные средства, которые могут вызывать заболевание или вызывать обострение через различные сигнальные пути. В литературе наиболее часто сообщается о следующих препаратах, индуцирующих пузырчатку: анальгин, имиквимод, пенициллин, фозиноприл, каптоприл, глибенкламид и цилазаприл, пеницилламин, рифампицин, цефтазидим, хлорохин/гидроксихлорохин [22—37];

— диетические ингредиенты, богатые тиолами, фенолами и танинами рассматриваются как возможные триггеры (некоторые овощи, такие как чеснок, лук и лук-порей) [38];

— дефицит витамина D с учетом его иммунорегуляторной роли связан с развитием аутоиммунных заболеваний [39]. Существует нескольких сообщений о дефиците витамина D у пациентов с пузырчаткой [40]. В дополнение к дефициту витамина D у пациентов с ВП отмечалось значительное снижение содержания селена, меди и цинка в сыворотке крови [41];

— вакцинация. В литературе описаны случаи манифестации ВП, вызванной вакцинацией против гриппа, гепатита В, краснухи, полиомиелита. Вакцина или ее адъювант могут вызывать неспецифическую активацию иммунной системы.

Рис. 1. Возможные триггеры ВП [6].

Одним из предложенных механизмов является теория молекулярной мимикрии, согласно которой антиген рекомбинантной вакцины может напоминать антиген хозяина, как в случае возникновения нескольких инфекций одновременно. Другой предположительный механизм заключается в том, что иммунный ответ на патогены с неспецифической активацией врожденной иммунной системы способствует активации и размножению аутореактивных Т-клеток [42—51].

Приводим наше клиническое наблюдение.

Пациентка С., 1938 года рождения, поступила в МНПЦДК ДЗМ филиал «Клиника им. В.Г. Короленко» с жалобами на распространенные высыпания на коже туловища и конечностей, сопровождаемые болью в местах высыпаний, чувством «жжения»; масса тела за последние 10 дней снизилась на 5 кг.

Из анамнеза заболевания известно, что считает себя больной с марта 2018 г., когда после проведенной терапевтом по месту жительства вакцинации адсорбированной коклюшно-дифтерийно-столбнячной вакциной (АКДС) впервые отметила появление высыпаний на коже туловища. В апреле 2018 г. в связи с ухудшением кожного процесса обратилась к дерматологу по месту жительства в кожно-венерологический диспансер Омска, со слов пациентки диагноз не был выставлен, даны рекомендации по лечению: топические глюкокортикостероидные средства (ГКС), пероральный прием препаратов кальция; после лечения отмечен незначительный положительный эффект. Консультирована онкологом, со слов пациентки, онкологический процесс исключен. Летом 2018 г. отметила распространение высыпаний на кожу спины, в связи с чем при повторном обращении к дерматологу рекомендован прием антигистаминных препаратов, проведены внутримышечные инъекции раствора преднизолона №3 (дозу уточнить затрудняется, выписной эпикриз не предоставлен) с временным положительным эффектом. В сентябре 2019 г. по прибытии в Москву отметила появление новых высыпаний, сопровождающихся интенсивным зудом, болью в местах высыпаний, в связи с чем в октябре 2019 г. обратилась к дерматологу по месту пребывания в Москве, которым диагностирован аллергический дерматит и даны рекомендации по лечению в амбулаторных условиях (цетиризин, топические ГКС-препараты); отмечен временный положительный эффект. В ноябре 2019 г., после проведения водных процедур отметила резкое ухудшение кожного процесса в виде распространения высыпаний на кожу туловища и конечностей. Вызвана бригада скорой помощи, выполнившая инъекцию раствора преднизолона внутривенно (дозу уточнить затрудняется), больная госпитализирована в терапевтическое отделение многопрофильной больницы, где находилась в течение 3 дней с диагнозом «токсико-аллергическая реакция по типу эпидермального некролиза». Проведенное лечение: раствор преднизолона в дозе 120 мг с раствором натрия хлорида 400 мл внутривенно, омепразол, рекомендована госпитализация в дерматологическое отделение.

Аллергологический, эпидемиологический анамнез, наследственность не отягощены.

При объективном осмотре на момент поступления: патологический процесс на коже носит распространенный островоспалительный характер с локализацией на коже ушных раковин, шеи, туловища, конечностей. Представлен в виде множественных эрозивных дефектов, розовато-красного цвета, размером до «ладони взрослого человека», преимущественно на коже инфрамаммарных и ягодичных областей (рис. 2), отмечаются обрывки эпидермиса по периферическому краю элементов (рис. 3), на поверхности большинства эрозивных дефектов слоистые, местами пластинчатые серозные и серозно-геморрагические корки, единичные спавшиеся пузырные элементы с вялой покрышкой, заполненные гнойным содержимым, преимущественно на коже боковых поверхностей туловища. Симптом Никольского краевой и на неизмененной коже резко положительный. Дермографизм красный. Слизистые оболочки, ногтевые пластины интактны.

Рис. 2. Эрозивные дефекты в области ягодичных областей.

Рис. 3. Обрывки эпидермиса по периферическому краю элементов.

По данным лабораторных методов обследования: клинические анализы крови и мочи в пределах референсных значений; уровень электролитов, показатели коагулограммы в пределах нормы; в биохимическом анализе крови выявлено умеренное повышение уровня глюкозы до 6,2 ммоль/л (норма 3,5–6,1 ммоль/л); при исследовании гликемического профиля выявлено повышение уровня глюкозы крови через 2 ч после нагрузки до 10,1 ммоль/л.

Проведена микроскопия пузырной жидкости: акантолитические клетки не обнаружены, эозинофилы — 1%.

По результатам бактериологического посева отделяемого эрозивных дефектов гладкой кожи туловища и конечностей обнаружены: Staphylococcus Co (+), чувствительность которого выявлена к фузидиевой кислоте, промежуточная к гентамицину; Enterococcus Faecalis, чувствительный к пенициллину, мупироцину, тетрациклину, норфлоксацину, промежуточная чувствительность к ципрофлоксацину; а также Escherichia coli, чувствительная к мупироцину, промежуточная чувствительность к цефтазидиму.

На основании данных анамнеза, клинической картины заболевания, лабораторных методов обследования выставлен предварительный диагноз — «вульгарная пузырчатка? Листовидная пузырчатка? Вторичная инфекция». Рекомендовано проведение терапии преднизолоном в суточной дозе 120 мг внутривенно капельно, а также пероральный прием преднизолона в суточной дозе 80 мг, терапия сопровождения (препараты калия, магния, кальция, гастропротективная терапия), наружно комбинированные топические ГКС-средства и растворы анилиновых красителей.

За период стационарного лечения оказана консультативная помощь врача-терапевта, невролога, эндокринолога, диагностированы: ишемическая болезнь сердца, гипертоническая болезнь II стадии, степень II, риск ССО 3. Дислипидемия II-Б типа. Нарушение толерантности к глюкозе (на фоне терапии преднизолоном?). Энцефалопатия смешенного генеза. Вестибуло-атактический синдром. Цереброваскулярная болезнь. Хроническая ишемия головного мозга сложного генеза. Остеоартроз. Двусторонний гонартроз III степени. Двусторонний коксартроз. ФН 1. Открытоугольная глаукома. Осложненная катаракта.

Врачом-терапевтом по результатам анамнестических данных и осмотра с целью исключения онкологического процесса рекомендовано проведение ультразвукового исследования органов брюшной полости и почек, по результатам которого установлены эхографические признаки диффузно- неоднородных изменений печени, поджелудочной железы, хронического холецистита. Микроулитиаз. Свободной жидкости в брюшной и плевральной полостях не выявлено.

С целью верификации диагноза проведены патоморфологическое и иммунофлюоресцентное исследования.

В результате диагностического патоморфологического исследования кожи установлен умеренный акантоз эпидермиса с неравномерным удлинением межсосочковых эпидермальных отростков. В центральной части на уровне зернистого слоя — поверхностная эрозия, покрытая фибриновой коркой, пропитанной лейкоцитарным детритом и гемолизированными эритроцитами. Нейтрофильные лейкоциты проникают в верхние ряды шиповатого слоя. В отдельных срезах над поверхностью эрозии присутствуют единичные акантолитические клетки. Коллагеновые волокна дермы без признаков структурных изменений. В сетчатом слое дермы присутствуют придатковые структуры обычного гистологического строения. Заключение: выявленные изменения не позволяют исключить листовидную пузырчатку с признаками вторичного инфицирования, клинически необходимо дифференцировать с IgA-линейным дерматозом. Для уточнения диагноза рекомендуется проведение ПИФ на замороженных срезах.

Иммуногистохимическое исследование: при проведении реакции прямой иммунофлюоресценции с меченными FITC-антителами к IgA, с3с, IgM, IgG, фибриногеном на замороженных срезах определяются:

— отсутствие свечения IgA вдоль базальной мембраны;

— отсутствие свечения С3С вдоль базальной мембраны;

— очаговое гранулярное свечение IgM вдоль базальной мембраны;

— свечение IgG в межклеточных пространствах базального и супрабазального слоя эпидермиса;

— отсутствие свечения фибриногена вдоль базальной мембраны.

Заключение: иммуноморфологические признаки соответствуют картине акантолитической пузырчатки.

Во время госпитализации поставлен клинический диагноз: вульгарная пузырчатка, лечение — преднизолон в суточной дозе 80 мг, парентерально преднизолон в дозе 60 мг.

За период курирования пациентки клиническая картина заболевания существенно изменилась, с учетом выраженной положительной динамики проведено постепенное титрование дозы преднизолона с последующей отменой парентеральной части и снижением дозы перорального преднизолона до 75 мг/сут.

После 20 дней лечения больная выписана из стационара с выраженной положительной динамикой кожного процесса: большинство эрозивных дефектов на коже регрессировали до поствоспалительных пятен застойного цвета. Сохраняются отдельные эрозивные дефекты на коже туловища и конечностей, на поверхности которых находятся сухие, состоятельные корочки в стадии активного отторжения. Симптом Никольского краевой и на неизмененной коже отрицательный. Свежих элементов нет (рис. 4). Пациентке рекомендовано продолжить прием преднизолона в суточной дозе 75 мг с последующим снижением дозы с учетом положительной динамики кожного процесса под строгим контролем дерматолога по месту жительства, контролем результатов лабораторного скрининга крови и мочи, до максимально эффективной поддерживающей дозы.

Рис. 4. Состояние после лечения. Очаги обработаны фукорцином.

Заключение

Описание клинического наблюдения является актуальным в связи с ограниченным количеством информации в научной литературе по влиянию вакцинопрофилактики на развитие ВП. Остается открытым вопрос, является ли наблюдение поствакцинальной пузырчатки случайным или есть причинно-следственная связь между вакцинацией и заболеванием, что требует дальнейшего изучения.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Голдсмит Л.А., Кац С.И., Джилкрест Б.А. и др. Дерматология Фицпатрика в клинической практике. Т. 1. Пер. с англ. Под общ. ред. Потекаева Н.Н., Львова А.Н. Издательство Панфилова; 2015.
  2. Spindler V, Eming R, Schmidt E, Amagai M, Grando S, Jonkman MF, Kowalczyk AP, Muller EJ, Payne AS, Pincelli C, Sinha AA, Sprecher E, Zillikens D, Hertl M, Waschke J. Mechanisms Causing Loss of Keratinocyte Cohesion in Pemphigus. J Invest Dermatol. 2018;138(1):32-37.  https://doi.org/10.1016/j.jid.2017.06.022
  3. Bystryn JC, Rudolph JL. Pemphigus. Lancet. 2005;366(9479):61-73. Review. PubMed PMID: 15993235.
  4. Amber KT, Valdebran M, Grando SA. Paraneoplastic autoimmune multiorgan syndrome (PAMS): Beyond the single phenotype of paraneoplastic pemphigus. Autoimmun Rev. 2018;17(10):1002-1010. https://doi.org/10.1016/j.autrev.2018.04.008
  5. Shoenfeld Y, Gilburd B, Abu-Shakra M, Amital H, Barzilai O, Berkun Y, Blank M, Zandman-Goddard G, Katz U, Krause I, Langevitz P, Levy Y, Orbach H, Pordeus V,Ram M, Sherer Y, Toubi E, Tomer Y. The mosaic of autoimmunity: genetic factors involved in autoimmune diseases-2008. Isr Med Assoc J. 2008;10(1):3-7. Review. PubMed PMID: 18300562.
  6. Tavakolpour S. Pemphigus trigger factors: special focus on pemphigus vulgaris and pemphigus foliaceus. Arch Dermatol Res. 2018 Mar;310(2):95-106. Epub 2017 Nov 6. Review. PubMed PMID: 29110080. https://doi.org/10.1007/s00403-017-1790-8
  7. Sagi L, Baum S, Agmon-Levin N, Sherer Y, Katz BS, Barzilai O, Ram M, Bizzaro N, SanMarco M, Trau H, Shoenfeld Y. Autoimmune bullous diseases the spectrum of infectious agent antibodies and review of the literature. Autoimmun Rev. 2011;10(9):527-535. Epub 2011 Apr 16. Review. PubMed PMID: 21527361. https://doi.org/10.1016/j.autrev.2011.04.003
  8. Takahashi I, Kobayashi TK, Suzuki H, Nakamura S, Tezuka F. Coexistence of Pemphigus vulgaris and herpes simplex virus infection in oral mucosa diagnosed by cytology, immunohistochemistry, and polymerase chain reaction. Diagn Cytopathol. 1998;19(6):446-450. PubMed PMID: 9839135.
  9. Sagi L, Sherer Y, Trau H, Shoenfeld Y. Pemphigus and infectious agents. Autoimmun Rev. 2008;8(1):33-35. Epub 2008 Aug 14. Review. PubMed PMID: 18707028. https://doi.org/10.1016/j.autrev.2008.07.021
  10. Ye B, Liu X, Li X, Kong H, Tian L, Chen Y (2015) T-cell exhaustion in chronic hepatitis B infection: current knowledge and clinical significance. Cell Death Dis. 2015;6:e1694. https://doi.org/10.1038/cddis.2015.42
  11. Marinho RT, Johnson NW, Fatela NM, Serejo FS, Glória H, Raimundo MO, Velosa JF, Ramalho FJ, Moura MC. Oropharyngeal pemphigus in a patient with chronic hepatitis C during interferon alpha-2a therapy. Eur J Gastroenterol Hepatol. 2001;13(7):869-872. PubMed PMID: 11474319.
  12. Niizeki H, Inamoto N, Nakamura K, Tsuchimoto K, Hashimoto T, Nishikawa T. A case of pemphigus foliaceus after interferon alpha-2a therapy. Dermatology. 1994;189(1):129-130. PubMed PMID: 8049554.
  13. Ruocco E, Ruocco V, Lo Schiavo A, Brunetti G, Wolf R. Viruses and pemphigus: an intriguing never-ending story. Dermatology. 2014;229(4):310-315. Epub 2014 Nov 20. Review. PubMed PMID: 25413257. https://doi.org/10.1159/000365845
  14. Morell-Dubois S, Carpentier O, Cottencin O, Queyrel V, Hachulla E, Hatron PY, Delaporte E. Stressful life events and pemphigus. Dermatology. 2008;216(2):104-108. Epub 2008 Jan 23. PubMed PMID: 18216471. https://doi.org/10.1159/000111506
  15. Fryer EJ, Lebwohl M. Pemphigus vulgaris after initiation of psoralen and UVA therapy for psoriasis. J Am Acad Dermatol. 1994;30(4):651-653. PubMed PMID: 8157795.
  16. Muramatsu T, Iida T, Ko T, Shirai T. Pemphigus vulgaris exacerbated by exposure to sunlight. J Dermatol. 1996;23(8):559-563. PubMed PMID: 8854590.
  17. Ambay A, Stratman E. Ionizing radiation-induced pemphigus foliaceus. J Am Acad Dermatol. 2006;54(5):251-252. PubMed PMID: 16631963.
  18. Jang HW, Chun SH, Lee JM, Jeon J, Hashimoto T, Kim IH. Radiotherapy-induced pemphigus vulgaris. J Dermatol. 2014 Sep;41(9):851-852. Epub 2014 Aug 11. PubMed PMID: 25109377. https://doi.org/10.1111/1346-8138.12582
  19. Orion E, Matz H, Wolf R. Pemphigus vulgaris induced by radiotherapy. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2004;18(4):508-509. Review. PubMed PMID: 15196175.
  20. Ruocco E, Lo Schiavo A, Caccavale S. Pemphigus induced by radiotherapy for breast cancer: an instance of immunocompromised district. Eur J Dermatol. 2014;24(2):278-279. PubMed PMID: 24776819. https://doi.org/10.1684/ejd.2014.2365
  21. Daneshpazhooh M, Fatehnejad M, Rahbar Z, Balighi K, Ghandi N, Ghiasi M, Abedini R, Lajevardi V, Chams-Davatchi C. Trauma-induced pemphigus: a case series of 36 patients. J Dtsch Dermatol Ges. 2016;14(2):166-171. PubMed PMID: 26819113. https://doi.org/10.1111/ddg.12738
  22. Heymann AD, Chodick G, Kramer E, Green M, Shalev V. Pemphigus variant associated with penicillin use: a case-cohort study of 363 patients from Israel. Arch Dermatol. 2007;143(6):704-707. PubMed PMID: 17576935.
  23. Kaplan RP, Potter TS, Fox JN. Drug-induced pemphigus related to angiotensin-converting enzyme inhibitors. J Am Acad Dermatol. 1992;26(2 Pt 2):364-366. Review. PubMed PMID: 1569260.
  24. Kim SC, Won JH, Ahn SK. Pemphigus foliaceus induced by nifedipine. Acta Derm Venereol. 1993;73(3):210-211. PubMed PMID: 8105622.
  25. Lin R, Ladd DJ Jr, Powell DJ, Way BV. Localized pemphigus foliaceus induced by topical imiquimod treatment. Arch Dermatol. 2004;140(7):889-890. PubMed PMID: 15262711.
  26. Parodi A, Cozzani E, Milesi G, Drosera M, Rebora A. Fosinopril as a possible pemphigus-inducing drug. Dermatology. 2002;204(2):139-141. PubMed PMID: 11937741.
  27. Patterson CR, Davies MG. Carbamazepine-induced pemphigus. Clin Exp Dermatol. 2003;28(1):98-99. PubMed PMID: 12558646.
  28. Patterson CR, Davies MG. Pemphigus foliaceus: an adverse reaction to lisinopril. J Dermatolog Treat. 2004;15(1):60-62. PubMed PMID: 14754654.
  29. Pellicano R, Iannantuono M, Lomuto M. Pemphigus erythematosus induced by ceftazidime. Int J Dermatol. 1993;32(9):675-676. PubMed PMID: 8407098.
  30. Zone J, Ward J, Boyce E, Schupbach C. Penicillamine-induced pemphigus. JAMA. 1982;247(19):2705-2707. PubMed PMID: 7077766.
  31. Fellner MJ, Wininger J. Pemphigus erythematosus and heroin addiction. Int J Dermatol. 1978;17(4):308-311. PubMed PMID: 659032.
  32. Puca RV, Ruocco E, Lo Schiavo A. Pemphigus and drug addiction. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2009;23(8):958. Epub 2009 May 26. PubMed PMID: 19298488. https://doi.org/10.1111/j.1468-3083.2009.03146.x
  33. Brenner S, Bialy-Golan A, Crost N. Dipyrone in the induction of pemphigus. J Am Acad Dermatol. 1997;36(3 Pt 1):488-490. PubMed PMID: 9091491.
  34. Butt A, Burge SM. Pemphigus vulgaris induced by captopril. Br J Dermatol. 1995;132(2):315-316. PubMed PMID: 7888377.
  35. Ghaffarpour G, Jalali MH, Yaghmaii B, Mazloomi S, Soltani-Arabshahi R. Chloroquine/hydroxychloroquine-induced pemphigus. Int J Dermatol. 2006; 45(10):1261-1263. PubMed PMID: 17040465.
  36. Goldberg I, Sasson A, Gat A, Srebrnik A, Brenner S. Pemphigus vulgaris triggered by glibenclamide and cilazapril. Acta Dermatovenerol Croat. 2005; 13(3):153-155. PubMed PMID: 16146616.
  37. Korman NJ, Eyre RW, Zone J, Stanley JR. Drug-induced pemphigus: autoantibodies directed against the pemphigus antigen complexes are present in penicillamine and captopril-induced pemphigus. J Invest Dermatol. 1991; 96(2):273-276. PubMed PMID: 1991988.
  38. Ruocco V, Brenner S, Ruocco E. Pemphigus and diet: does a link exist? Int J Dermatol. 2001;40(3):161-163. Review. PubMed PMID: 11422515.
  39. Agmon-Levin N, Theodor E, Segal RM, Shoenfeld Y. Vitamin D in systemic and organ-specific autoimmune diseases. Clin Rev Allergy Immunol. 2013; 45(2):256-266.  https://doi.org/10.1007/s12016-012-8342-y PMID: 23238772
  40. El-Komy MH, Samir N, Shaker OG. Estimation of vitamin D levels in patients with pemphigus vulgaris. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2014 Jul; 28(7):859-863. Epub 2013 May 10. PubMed PMID: 23659586. https://doi.org/10.1111/jdv.12179
  41. Javanbakht M, Daneshpazhooh M, Chams-Davatchi C, Eshraghian M, Zarei M, Chamari M, M D. Serum selenium, zinc, and copper in early diagnosed patients with pemphigus vulgaris. Iran J Public Health. 2012;41(5):105-109. Epub 2012 May 31. PubMed PMID: 23113184; PubMed Central PMCID: PMC3468983.
  42. Berkun Y, Mimouni D, Shoenfeld Y. Pemphigus following hepatitis B vaccination--coincidence or causality? Autoimmunity. 2005;38(2):117-119. PubMed PMID: 16040331. https://doi.org/10.1080/08916930400027078
  43. De Simone C, Caldarola G, D’agostino M, Zampetti A, Amerio P, Feliciani C. Exacerbation of pemphigus after influenza vaccination. Clin Exp Dermatol. 2008;33(6):718-720. Epub 2008 Aug 2. PubMed PMID: 18681883. https://doi.org/10.1111/j.1365-2230.2008.02835.x
  44. Mignogna MD, Lo Muzio L, Ruocco E. Pemphigus induction by influenza vaccination. Int J Dermatol. 2000;39(10):800. PubMed PMID: 11095208.
  45. Yalçin B, Alli N. Pemphigus vulgaris following antirabies vaccination. J Dermatol. 2007;34(10):734-735. PubMed PMID: 17908152. https://doi.org/10.1111/j.1346-8138.2007.00373.X
  46. Cozzani E, Cacciapuoti M, Parodi A, Rebora A. Pemphigus following tetanus and diphtheria vaccination. Br J Dermatol. 2002;147(1):188-189. PubMed PMID:12154773.
  47. Tishler M, Shoenfeld Y. Vaccination may be associated with autoimmune diseases. Isr Med Assoc J. 2004;6(7):430-432. Review. PubMed PMID: 15274537.
  48. Shoenfeld Y, Aharon-Maor A, Sherer Y. Vaccination as an additional player in the mosaic of autoimmunity. Clin Exp Rheumatol. 2000;18(2):181-184. Review. PubMed PMID: 10812488.
  49. Wraith DC, Goldman M, Lambert PH. Vaccination and autoimmune disease: what is the evidence? Lancet. 2003;362(9396):1659-1666. Review. PubMed PMID: 14630450.
  50. Cozzani E, Cacciapuoti M, Parodi A, Rebora A. Pemphigus following tetanus and diphtheria vaccination. Br J Dermatol. 2002;147(1):188-189. PubMed PMID: 12154773.
  51. De Simone C, Caldarola G, D’agostino M, Zampetti A, Amerio P, Feliciani C.Exacerbation of pemphigus after influenza vaccination. Clin Exp Dermatol. 2008;33(6):718-720. Epub 2008 Aug 2. PubMed PMID: 18681883. https://doi.org/10.1111/j.1365-2230.2008.02835.x

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.