Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Плаксин С.А.

ГБОУ ВПО «Пермский государственный медицинский университет им. акад. Е.А. Вагнера» Минздрава России

Диагностика и лечение доброкачественных опухолей легких

Авторы:

Плаксин С.А.

Подробнее об авторах

Прочитано: 17262 раза


Как цитировать:

Плаксин С.А. Диагностика и лечение доброкачественных опухолей легких. Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2021;(6):106‑111.
Plaksin SA. Diagnosis and treatment of benign lung tumors. Pirogov Russian Journal of Surgery. 2021;(6):106‑111. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/hirurgia2021061106

Рекомендуем статьи по данной теме:
Псо­ри­аз у бе­ре­мен­ных. Кли­ни­чес­кая дер­ма­то­ло­гия и ве­не­ро­ло­гия. 2024;(5):517-524
Ту­бер­ку­лез­ный сред­ний отит у под­рос­тка. Кли­ни­чес­кий слу­чай. Вес­тник ото­ри­но­ла­рин­го­ло­гии. 2024;(5):63-66
Труд­нос­ти при­жиз­нен­ной ди­аг­нос­ти­ки бо­лез­ни Крейтцфельдта—Яко­ба. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(11):19-27
Чер­ный акан­тоз: воп­ро­сы ди­аг­нос­ти­ки и ле­че­ния. Кли­ни­чес­кая дер­ма­то­ло­гия и ве­не­ро­ло­гия. 2024;(6):709-712

Доброкачественные опухоли бронхов и легких объединяют большое количество неоднородных групп новообразований, их доля среди всех опухолей легких, по данным разных авторов [1, 2], варьирует от 2 до 12%. За последние десятилетия появились совершенно новые методы диагностики и лечения с преимущественным использованием мини-инвазивных технологий [1, 3, 4]. Бронхолегочные опухоли развиваются из стенки бронха, реже — из легочной ткани [5]. В 2004 г. в классификации опухолей легких сделаны изменения, содержащие морфологический код Международной классификации болезней в онкологии — Inernational Classification of Deseases in Oncology (ICDO) [5, 6]. В классификации, принятой Всемирной организацией здравоохранения в 2015 г., в классификацию рака легкого включен учет результатов иммуногистохимических исследований, генетических исследований с молекулярными тестами, персонифицирующих лечение этих больных. Относительно доброкачественных опухолей изменены термины: «склерозирующая гемангиома» на «склерозирующая пневмоцитома», «гамартома» на «легочная гамартома», создана группа ПЕКоматозных опухолей (PEComatous tumors), включающая: а) лимфангиолейомиоматоз, б) доброкачественную ПЕКому, в) злокачественную ПЕКому, в том числе легочную миксоидную саркому, добавлены миоэпителиома и миоэпителиоидная саркома, группа эктопированных органных опухолей, включающая эмбриональноклеточные опухоли, внутрилегочную тимому, меланому и менингиому [7].

Данная классификация выделяет 4 основные группы опухолей и охватывает главным образом солитарные новообразования: 1) эпителиальные — аденому, папиллому; 2) мезенхимальные — легочную гамартому, хондрому, ПЕКоматозные опухоли, лимфангиолейомиоматоз, врожденную перибронхиальную и воспалительную миофибробластические опухоли, эпителиоидную гемангиоэндотелиому, миоэпителиому; 3) лимфогистиоцитарные опухоли — лимфомы, лимфоматоидный гранулематоз, внутрисосудистую В-клеточную лимфому, гистиоцитоз клеток Лангерганса, болезнь Эрдгейма—Честера; 4) опухоли эктопированных органов — тератому, внутрилегочную тимому, меланому, менингиому.

Дополнительно предложена классификация множественных доброкачественных новообразований легких, включающая доброкачественную метастазирующую лейомиому, кистозную фиброкистозную опухоль (метастатическую дерматофиброму), легочный капиллярный гемангиоматоз, легочную гиалинизирующую гранулему и легочный лимфангиолейомиоматоз [1]. Для уточнения морфологической формы опухоли нередко требуется иммуногистохимическое исследование [8]. При солитарной фиброзной опухоли наблюдается веретеноклеточная экспрессия CD34, bcl2, CD99 [9]. Без этого исследования невозможно определить наличие лейомиоматозной гамартомы, лейомиоматоза [10]. J. Kashima и соавт. [11] провели генетический и иммуногистохимический анализ у 5 больных с реснитчатой слизистоузловой папиллярной опухолью легкого, растущей в терминальных бронхиолах, и у всех получили положительную реакцию на муцин 1 и 4, фактор транскрипции щитовидной железы и цитокератин. После того как карциноидные, мукоэпидермоидные и цилиндроматозные аденомы были отнесены к злокачественным новообразованиям, частота центральных доброкачественных опухолей снизилась с 44,7 до 9,8% [12].

Клиническая картина при центральных доброкачественных опухолях проявляется в первую очередь одышкой, кашлем, кровохарканьем, болью в груди, рецидивирующей пневмонией, часто расцениваемой как появление бронхиальной астмы, хронической обструктивной болезни легких, хронических воспалительных процессов [13, 14]. S. Chadwisck и соавт. [15] описали осложнение гамартомы легочным кровотечением с летальным исходом. R. Stevik и B. Milenkovic [16] относят к факторам риска малигнизации доброкачественных плоскоклеточных папиллярных папиллом курение, возраст более 40 лет и инфицирование вирусом папилломы человека 16-го и 18-го серотипов. Эндобронхиальная ангиофиброма трахеального бронха вызвала развитие спонтанного пневмомедиастинума [17]. Мезенхимальные кистозные гамартомы могут служить причиной спонтанного пневмоторакса [18]. Множественные доброкачественные метастазирующие лейомиомы легких чаще всего развиваются через 8—10 лет после гистерэктомии по поводу доброкачественной лейомиомы матки [19]. Описан случай множественных метастазов в легкие доброкачественной дерматофибромы кожи плеча [20]. Кистозные гамартомы легкого выглядят как одиночные или множественные воздушные или наполненные жидкостью кисты, буллы больших размеров, спонтанный пневмоторакс, многоячеистые структуры, компримирующие легкое [18, 21, 22]. Диагноз устанавливают только после оперативного удаления кистозного образования или резекции легкого и гистологического исследования стенки кисты [22, 23].

Наиболее детальную визуальную характеристику изображения новообразования дает мультиспиральная компьютерная томография (МСКТ) [24, 25]. Создание программы 3D-реконструкции изображений трахеобронхиального дерева, полученных с помощью МСКТ, с просмотром в режиме реального времени картины внутренней поверхности служит основой метода виртуальной бронхоскопии [26]. Дополнительное изображение в режиме оттесненных поверхностей показывает состояние наружной стенки трахеи и бронхов, их взаимоотношение с окружающими тканями. Осмотр внутренней поверхности трахеобронхиального дерева с помощью виртуальной бронхоскопии получил название fly through — «полет внутри» [27]. Виртуальная бронхоскопия позволяет проследить макроструктуру трахеи, главных, долевых, сегментарных и субсегментарных бронхов. В нормальном состоянии визуализируется гладкая внутренняя поверхность бронхов с контурированными хрящевыми кольцами и постепенным сужением к периферии [27].

M. Luo и соавт. считают характерными признаками доброкачественных опухолей величину менее 30 мм, круглую, овальную или полиповидную форму, пролабирование в просвет с узким основанием или ножкой, гладкую поверхность с ровными краями, гомогенную плотность, отсутствие инфильтрации стенки бронха и разрушения его хрящей, отсутствие увеличения лимфатических узлов. Для злокачественных опухолей типичны различные размеры, обычно диаметр более 30 мм, неровная поверхность, пролабирование в просвет с широким основанием и неравномерным стенозированием, инвазией стенки, внутрипросветным и внепросветным распространением с истончением и инфильтрацией стенки бронха, неравномерной гомогенной или гетерогенной плотностью, очевидным увеличением лимфатических узлов [28]. Иногда внешнее давление и деформация стенки бронха увеличенным лимфатическим узлом дает схожую картину. Уточнить характер поражения в этом случае позволяет комплексная оценка данных нативной МСКТ и виртуального изображения fly through [26].

Сопоставление результатов фибробронхоскопии и виртуальной бронхоскопии подтвердило близость их данных по визуализации трахеи и бронхов. F. Adali и соавт. [29] показали совпадение результатов этих методик в 89% случаев. Виртуальная бронхоскопия обеспечивает четкую внутрипросветную картину до бронхов 7-го порядка и может быть альтернативой при наличии противопоказаний к фибробронхоскопии. Лучевую нагрузку удается снизить путем использования низкодозовой КТ [30]. Таким образом, появилась возможность осмотреть более дистальные участки дыхательных путей, чем при эндоскопическом обследовании, и объективно получить картину бронхов ниже участка сужения, за которое не проходит тубус бронхоскопа [27]. Результаты этого исследования можно также использовать для выбора оптимальной точки биопсии во время фибробронхоскопии. Недостатком виртуальной бронхоскопии является невозможность оценки изменений и распространения процесса по слизистому и подслизистому слоям [16].

К магнитно-резонансной томографии можно прибегнуть при наличии противопоказаний к КТ или при необходимости избежать облучения. Более информативной эта методика может быть при липоме и гамартоме трахеи и крупных бронхов [16].

Фибробронхоскопия с биопсией имеет ведущее значение в определении гистологической формы опухоли бронха, определении ее доброкачественного характера [4, 5, 31]. При сложных ситуациях с дифференциацией со злокачественными новообразованиями используют методики аутофлюоресцентной бронхоскопии и эндобронхиальной ультразвуковой сонографии [32—34]. N. Rednic и O. Orasan считают ультразвуковыми признаками доброкачественного новообразования круглую или дольчатую, часто инкапсулированную, эхогенную, имеющую ножку с центральным сосудом структуру, тогда как для злокачественной опухоли характерны неровная поверхность, изменение нормальной структуры легкого, смещение, ампутация или деструкция бронхиальных ветвей, смещение сосудов к периферии опухоли, спиральная форма и разный диаметр, анархическая васкуляризация; также может определяться инвазия в плевру, грудную стенку и средостение [35].

Для доброкачественных опухолей характерно отсутствие динамики роста или очень медленный темп увеличения образования, не превышающий 2—3 мм в год [31, 36]. Патогномоничным признаком бронхолегочных гамартом служит обнаружение вкраплений извести в тени новообразования в виде попкорна в сочетании с правильной формой, ровным наружным контуром и наличием участков жировой плотности по данным МСКТ [4, 16]. У 10—30% больных с легочными гамартомами на КТ определяется кальцификация образования [37].

Одним из основных признаков, отличающих злокачественные опухоли от доброкачественных, является опухолевый ангиогенез. Методами, позволяющими оценить кровоснабжение узла в легком, служат динамическая и перфузионная КТ [38]. Выполняется серия томографических срезов через образование с частыми повторениями сканирования до и после введения контрастного вещества [39]. Метод динамической КТ характеризует денситометрическую плотность образования в динамике. Метод перфузионной КТ характеризует кровоснабжение тканей с помощью построения цветовых карт и расчета определенных параметров перфузии [40]. Кровоснабжение доброкачественных опухолей практически идентично кровоснабжению нормальной легочной ткани, тогда как в злокачественных новообразованиях развивается патологическая сосудистая сеть с увеличением артериовенозных шунтов и концентрацией крови в опухолевом узле. Динамическая КТ показывает при доброкачественных опухолях, лишенных собственных сосудов, отсутствие накопления контрастного вещества в узле [41]. Чувствительность динамической КТ в дифференциальной диагностике доброкачественных и злокачественных новообразований варьирует в пределах 81—98% [40]. Показатели перфузионной КТ хорошо коррелируют с ангиогенезом опухоли и отражают микрососудистую плотность и экспрессию сосудистого эндотелиального фактора роста, обеспечивая количественную оценку кровотока периферических узлов в легких, — показатели повышены при раке и воспалении в отличие от доброкачественных опухолей [41].

Высокоэффективным метод дифференциации доброкачественных и злокачественных опухолей в периферических отделах и воротах легких — позитронно-эмиссионная томография в сочетании с КТ (ПЭТ/КТ) [1, 4, 42]. D. Divisi и соавт. [43], сравнив информативность КТ к ПЭТ/КТ, показали, что при увеличении размера узла с 0,5 до 0,99 см происходит возрастание чувствительности метода с 73 до 95%, а специфичности — с 64 до 72%. K.Tang и соавт., разделив 182 пациентов на 3 группы в зависимости от размеров узла (6—10 мм, 10—20 мм и 20—30 мм), при сравнении доброкачественных и злокачественных процессов получили чувствительность 98,4%, специфичность 70,1% с наилучшим результатом при величине образования от 10 до 20 мм [44]. По данным ряда авторов [42, 43, 45], при ПЭТ/КТ с использованием препаратов 18F-FDG, 11С-метионина и 82Rb-хлорида у пациентов с доброкачественными опухолями легкого регистрируется фоновое распределение радиофармацевтических препаратов, что позволяет достоверно дифференцировать эти опухоли от рака легкого и воспалительных процессов. В то же время S. McDermott и соавт. во время обследования 21 пациента со злокачественными и 106 больных с доброкачественными новообразованиями с синдромом матового стекла и солитарными узлами в легких отметили более высокую активность накопления 18F-FDG во второй группе [46].

Наиболее детально тактика ведения пациентов с впервые выявленными одиночными или множественными очагами или узлами в легких представлена в 2017 г. в европейском руководстве по ведению взрослых больных с бессимптомно выявленными узлами в легких [47]. Очаги в легких разделены по величине на 3 группы (<6; от 6 до 8; >8 мм), а также по клиническим факторам на группы низкого и высокого риска. Единичные тени размером менее 6 мм, случайно обнаруженные при КТ, рассматриваются как вариант нормальных внутрилегочных анатомических структур и не требуют динамического наблюдения. Факторы группы низкого риска с вероятностью развития рака менее 5% включают такие, как молодой возраст, некурящие, маленькие размеры узла, ровные границы тени и расположение не в верхних долях легкого. Факторы группы высокого риска включают старший возраст, длительный стаж курения, большие размеры узла, неровные контуры узла или наличие шипов, верхнедолевую локализацию. При средней степени риска (от 5 до 65%), занимающей промежуточное положение, и величине узла от 8 до 30 мм необходимо дополнить обследование ПЭТ/КТ, сделать КТ с контрастированием сосудов, трансторакальную биопсию при периферической локализации узла или траснбронхиальную биопсию при центральной. При отрицательных результатах этих обследований можно повторить КТ через 3 мес, 6 мес, 12 мес и 24 мес. При малых образованиях величиной от 6 до 20 мм целесообразно их удаление без предоперационной морфологической верификации диагноза до операции с экспресс-гистологическим исследованием и определением объема вмешательства интраоперационно [2, 36]. Новые перспективы совершенствования дифференциальной диагностики открывает внедрение автоматизированных технологий обработки данных КТ [48]. Так, G. Zhang и соавт. на основании классификации узлов в легких по текстуре, форме и глубине залегания элементов, 3D-преобразования изображения и компьютерной обработки провели дифференцировку злокачественных и доброкачественных узлов в легких с точностью 93,8% [25].

Лечение центральных доброкачественных новообразований крупных бронхов проводится эндоскопическим методом путем лазерной, электрохирургической, аргоноплазменной деструкции опухоли при наличии ножки, отсутствии прорастания мышечной стенки бронха или перибронхиальной формы роста опухоли [49—51]. L. Dalar и соавт. убрали доброкачественные опухоли бронхов у 44 пациентов методами лазерной или аргоноплазменой коагуляции с последующей криотерапией для разрушения резидуальных тканей и получили в 70% случаев очень хороший и в 30% случаев хороший результат [52]. Частота пневмоторакса после эндоскопических резекций бронхиальных опухолей варьирует от 2 до 25% [53]. При радикальном лечении опухолей с широким и глубоким распространением на бронхиальную стенку применяют бронхопластические операции, а при необратимых изменениях легкого ниже места окклюзии — анатомические резекции легкого [49, 53—55]. P. Pak и соавт. произвели циркулярную резекцию левого главного бронха с сохранением легкого по поводу эндобронхиальной солитарной фиброзной опухоли, полностью окклюзирующей бронх до субкарины, размером 2,1×1,4 см [56]. Периферические доброкачественные опухоли чаще всего имеют небольшие размеры, и при поверхностном расположении их легко удаляют методами энуклеации, краевой аппаратной резекции легкого или прецизионного иссечения с помощью видеоторакоскопии или видеоассистированной мини-торакотомии [2, 9, 57]. Как правило, при этом диагноз уточняется интраоперационно при экспресс-гистологическом исследовании удаленной опухоли [10, 36]. C. Liu и соавт. выполнили однопортовую торакоскопическую сегментэктомию у 2 пациентов с доброкачественными опухолями легкого [58]. Для облегчения поиска глубоко расположенного опухолевого узла предложены методики предоперационного введения красителя, радиоизотопных препаратов под контролем КТ, интраоперационное ультразвуковое исследование, интраоперационная игловая пункция узла [3, 59]. Больным пожилого возраста с тяжелыми сопутствующими заболеваниями с учетом медленного темпа роста опухоли от оперативного лечения лучше воздержаться [1, 4, 60].

Таким образом, высокотехнологичные методы диагностики — МСКТ, ПЭТ/КТ, виртуальная бронхоскопия, эндоскопическая биопсия позволяют с высокой степенью достоверности определить доброкачественный характер новообразования и его распространенность. В лечении доброкачественных опухолей с успехом используют преимущественно мини-инвазивные технологии — эндоскопическое удаление эндобронхиальных новообразований электрохирургической, лазерной, аргоноплазменной деструкцией, а при периферических опухолях применяют видеоторакоскопические резекции или бронхопластические операции.

Автор заявляет об отсутствии конфликта интересов.

The author declares no conflicts of interest.

Литература / References:

  1. Shields TW, Locicero III J, Reed CE, Feins RH, eds. General thoracic surgery. Wolters Kluwer/Lippincott Williams and Wilkins; 2009.
  2. Синицын М.В., Плоткин Д.В., Абу Аркуб Т.И., Барский Б.Г., Позднякова Е.И., Решетников М.Н., Мазурова Н.В., Степанов Е.А., Зюзя Ю.Р. Оперативная диагностика редких заболеваний легких. Хирург. 2018;11-12:82-93. 
  3. Сигал Е.И., Жестков К.Г., Бурмистров М.В., Пикин О.В. Торакоскопическая хирургия. М.: Дом книги; 2012.
  4. Adult Chest Surgery. Second Edition. Ed. by Sugarbaker D.J., Bueno R., Colson Y.L., Jaklitsch M.T., Krasna M.J., Mentzer S.J. McGraw Hill Education; 2015.
  5. ESTS textbook of thoracic surgery. Ed. Kuzdzal J. Medycyna Practyczna. Cracow. 2014.
  6. Брамбийя Е., Травис В.Д., Колби Т.В., Коррин Б., Шимосато Й. Новая классификация легочных опухолей всемирной организации здравоохранения. Пульмонология. 2004;6:11-21. 
  7. Travis WD, Brambilla E, Nicholson AG, Yatabe Y, Austin HM, Beasley MB, Chirieac LR, Dacic S, Duhig E, Flieder DB, Geisinger K, Hirsch FR, Ishikawa Y, Kerr KM, Noguchi M, Pelosi G, Powell CA, Tsao MS, Wistuba I. The 2015 World Healty Organization Classification of Lug Tumors. Impact of Genetic, Clinical and Radiologic Advances Since the 2004 Classification. J Thorac Oncol. 2015;10(9): 1243-1260. https://doi.org/10.1097/JTO.0000000000000630
  8. Yuan X, Sun Y, Jin Y, Xu L, Dai H,Wang J, Zhang Z, Chen X. Multiple Organ Benign Metastasizing Leiomyoma: A Case Report and Literature Review. J Obstet Gynaecol Res. 2019;45(10):2132-2136. https://doi.org/10.1111/jog.14066
  9. Davoli F, Lo Faso F, Rossi G, Caruso D, Raulli GD, Stella F. Intrapulmonary solitary fibrous tumour: a rare neoplasm of the lung and a challenging pre-operative diagnosis. Ann Ital Chir. 2019;90. pii: S2239253X19000008.
  10. Cheng D, Zhang F, Hu K. An unusual case report of multiple pulmonary leiomyomatous hamartoma. Medicine (Baltimore). 2019;98(30):e16496. https://doi.org/10.1097/MD.0000000000016496
  11. Kashima J, Hishima T, Tonooka A, Horiguchi SI, Motoi T, Okuma Y, Hosimi Y, Horio H. Genetic and immunohistocemical analyses of ciliated muconodular papillary tumors of the lung: A report of five cases. SAGE Open Med Case Rep. 2019;7:2050313X19830483. https://doi.org/10.1177/2050313X19830483
  12. Трахтенберг А.Х., Чиссов В.И. Рак легкого. Руководство. Атлас. М.: ГЭОТАР Медицина; 2009.
  13. Бирюков Ю.В., Астрожников Ю.В., Русаков М.А. Трахеобронхиальная эндоскопическая хирургия. М.: Медицина; 1987.
  14. Hammerling S, Becker S, Mall MA. Rare cause of haemoptysis in an adolescent: Bronchial capillary hemangioma. Pediatr Pulmonol. 2017;52(7):40-42.  https://doi.org/10/1002/ppul.23673
  15. Chadwisck SL, Corrin B, Hansell DM, Geddes DM. Fatal haemorrage from mesenchymal cystic hamartoma of the lung. Eur Respir J. 1995;8(12):2182-2184. https://doi.org/10.1183/09031936.95.08122182
  16. Stevic R, Milenkovic B. Tracheobronchial tumors. J Thorac Dis. 2016;8(11):3401-3413. https://doi.org/10.21037/jtd.2016.11.24
  17. Kim KS, Moon YK, Jeon HW, Park CB, Ahn MI, Lee KY, Park JK. Endobronchial angiofibroma in the aberrant tracheal bronchus as spontaneous pneumomediastinum. J Cardiothorac Surg. 2015;10:100.  https://doi.org/10.1186/s13019-015-0286-x
  18. Chida M, Minowa M, Eba S, Odajima H. Mesenchymal cystic hamartoma of the lung: a rare cause of pneumothorax. Gen Thorac Cardiovasc Surg. 2009;57(3):166-168.  https://doi.org/10.1007/s11748-008-0333-9
  19. Barnas E, Ksiazek M, Ras R, Skret A, Skret-Maqierlo J, Dmoch-Gajzlerska E. Benign metastasing leiomyoma: A rewiew of current literature in respect to the time and type of previous gynecological surgery. PLoS One. 2017;12(4):e0175875. https://doi.org/10.1371/journal.pone.01755875
  20. Casero BE, Alonso PD, Losada QS, Rivero LL. Dermatofibroma metastasing to the lung: current treatment. Arch Bronconeumol. 2009;45(10):521-523.  https://doi.org/10.1016/j.arbes.2009.02.003
  21. Fasanya AA, Hattab Y, Patel A, Lega M. Mesenchimal cystic hamartoma of the lung. Respir Med Case Rep. 2017;21:158-160.  https://doi.org/10.1016/j.rmcr.2017.05.004. eCollection 2017
  22. Saudi MM, Barakeh DH, Hussain S, Hajjar WM. Lurge multicystic pulmonary chondroid hamartoma in a child presenting as pneumothorax. Saudi Med J. 2015;36(4):487-489.  https://doi.org/10.15537/smj.2015.4.10210
  23. Yorita K, Ayabe T, Chosa E, Uchino N, Nagamoto Y, Yamaguchi T, Nakatani Y, Kataoka H. Unusual cystic hamarrtomatous lung lesion with clinical manifestation of subpleural bullae in a woman of reproductive age: A case report. Pathol Int. 2015;65(10):558-562.  https://doi.org/10.1111/pin.12342
  24. Chen M, Song LX, Jiang T, Tang YH. Clinical and imaging manifestations of primary benign tracheobronchial tumors. Zhongguo Yi Xue Ke Xue Yuan Xue Bao. 2019;41(2):143-148. (In Chinese). https://doi.org/10.388/j.issn.1000-503X.11147
  25. Zhang G, Yang Z, Gong L, Jiang S, Wang L. Classification of benign and malignant lug nodules from CT images based on hybrid features. Phys Med Biol. 2019;64(12):125011. https://doi.org/10.1088/1361-6560/ab2544
  26. Котляров П.М., Егорова Е.В., Ребрикова В.А. Виртуальная бронхоскопия в уточненной диагностике патологии легких. Трудный пациент. 2018;16(11):50-53. 
  27. Jugpal TS, Garg A, Sethi GR, Daga MK, Kumar J. Multi-detector computed tomography imaging of large airway pathology: A pictorial review. World J Radiol. 2015;7(12):459-474.  https://doi.org/10.4329/wjr.v7.i12.459
  28. Luo M, Duan C, Qui J, Zhu D, Cai W. Diagnostic value of multidetector CT and its multiplanar reformation, volume rendering and virtual bronchoscopy postprocessing techniques for primary trachea and main bronchus tumors. Can Respir J. 2019;5269728. https://doi.org/10.1155/2019/5269728
  29. Adali F, Uysal A, Bayramoglu S, Guner NT, Yilmaz G, Cimilli T. Virtual and fiber-optic bronchoscopy in patients with indication for tracheobronchial evaluation. Ann Thorac Med. 2010;5:104-109.  https://doi.org/10.4103/1817-1737.62474
  30. Das KM, Lababidi H, Al Dandan S, Raja S, Sakkijha H, Al Zoum M, AlDosari K, Larsson SG. Computed tomography virtual bronchoscopy: normal variants, pitfalls, and spectrum of common and rare pathology. Can Assoc Radiol J. 2015;66(1):58-70.  https://doi.org/10.1016/j.carj.2013.10.002
  31. Sellke FW, del Nido PJ, Swanson SJ, eds. Sabiston and Spencer surgery of the chest. Ninth edition. Elsevier; 2016.
  32. Zxeng X, Xiong H, Li Y, Han B, Sun J. RGB and HSV quantative analysis of autofluorescence bronchscopy used for characterization and identification of bronchopulmonary cancer. Cancer Med. 2020;9(10):3634. https://doi.org/10.1002/cam4.2961
  33. He T, Mehta AC. Linear endobronchial ultrasound: What’s New? Semin Respir Crit Care Med. 2018;39(6):649-660.  https://doi.org/10.1015/s-0038-1676646
  34. Вакурова Е.С., Давыдов М.И., Унгиадзе Г.В., Поддубный Б.К., Чистякова О.В., Тополь К.Ю. Эффективность эндобронхиальной ультрасонографии в диагностике периферических новообразований легких. Поволжский онкологический вестник. 2016;26(4):52-56. 
  35. Rednic N, Orasan O. Subpleural lung tumors ultrasonography. Med Ultrason. 2010;12(1):81-87. PMID: 21165459.
  36. Вишневский А.А., Пикунов М.Ю., Кармазановский Г.Г., Щеголев А.И., Мацкевич Г.Н., Лапина Т.В. Вопросы диагностики малых очаговых периферических образований легких. Альманах Института хирургии им. А.В. Вишневского. 2007;2(2):19-37. 
  37. Khan AN, Al-Jahdali HH, Allen CM, Irion KL, Al Ghanem S, Kotevar SS. The calcified lung nodule: What does it mean? Ann Thorac Med. 2010;5(2):67-79.  https://doi.org/10.4103/1817-1737.62469
  38. Li Y, Yang ZG, Chen TW, Yu JQ, Sun JP, Chen HJ. First-pass perfusion imaging of solitary pulmonary nodules with 64-detector row CT: comparision of perfusion parameters of malignant and benign lesions. Br J Radiol. 2010;83(9):785-790.  https://doi.org/10.1259/bjr/58020866
  39. Wang M, Li B, Sun H, Huang T, Zhang X, Jin K, Wang F, Luo X. Correlation study between dual source CT perfusion imaging and the microvascular composition of solitary pulmonary nodules. Lung Cancer. 2019;130:115-120.  https://doi.org/10.1016/j.lungcan.2019.02.013
  40. Силантьева Н.К., Петросян А.П., Агабян Т.А., Шавлад З.Н. Динамическая и перфузионная компьютерная томография при одиночных очагах в легких. Онкология. 2017;6:55-61.  https://doi.org/10.17116/oncolog20176655-61
  41. Ma S, Le H, Jia B, Wang Z, Xiao Z, Cheng X, Mei W, Wu M, Hu Z, Li Y. Peripheral pulmonary nodules: Relationship between multi-slice spiral CT perfusion imaging and tumor angiogenesis and VEGF expression. DVC Cancer. 2008;8(1):186.  https://doi.org/10.1186/1471-2407-8-186
  42. Тлостанова М.С., Аветисян А.О., Козак А.Р. Сравнительный анализ информативности позитронной эмиссионной томографии с 18F-фтордезоксиглюкозой и 11С-метионином в дифференциальной диагностике одиночных образований в легком. Вестник рентгенологии и радиологии. 2014;3:13-19. 
  43. Divisi D, Di Tomasso S, Di Leonardo G, Brianzoni E, De Vico A, Crisci R. 18-fluorine fluorodeoxyglucose positron emission tomography with computerized tomography versus computerized tomography alone for the management of solitary lung nodules with diameters inferior to 1,5 cm. Thorac Cardiovasc Surg. 2010;58(7):422-426.  https://doi.org/10.1055/s-0030-1249945
  44. Tang K, Wang L, Lin J, Zheng X, Wu Y. The value of 18F-FDG PET/CT in the diagnosis of different size of solitary pulmonary nodules. Medicine (Baltimore). 2019;98(11):e14813. https://doi.org/10.1097/MD.0000000000014813
  45. Cengiz A, Aydin F, Sipahi M, Dertsiz L, Ozbilim G, Bozkurt S, Gungor F, Boz A, Erkilic M. The role of F-18 FDG PET/CT in differentiatinges and accompanying lymph nodes. Tuberk Toraks. 2018;66(2):130-135.  https://doi.org/10.5578/tt.10809
  46. McDermott S, Kilcoyne A, Wang Y, Scott JA, Halpern EF, Ackman JB. Comparison of the 18F-FDG avidity at PET of benign and malignant pure-glass opacities: a paradox? Clin Radiol. 2019;74(3):187-195.  https://doi.org/10.1016/j/crad/2018/12/009
  47. MacMahon H, Naidich DP, Goo JM, Lee KS, Leung ANC, Mayo JR, Mehta FC, Ohno Y, Powell CA, Prokop M, Rubin GD, Schaefer-Prokop CM, Travis WD, Van Schil PE, Bankier AA. Guidelines for management of incidental pulmonary nodul es detected on CT images: from the Fleischner society 2017. Radiology. 2017;284(1):228-243.  https://doi.org/10.1148/radiol.2017161659
  48. Wu W, Hu H, Gong J, Li X, Huang G, Nie S. Malignant-benign classification of pulmonary nodules based on random forest aided by clustering analysis. Phys Med Biol. 2019;64(3):035017. ttps://doi.org/10.1088/1361-6560/aafab0
  49. Akella P, Jindal V, Bhandari BS, Siddiqui AD. Meta-analysis of a master mimicker: endobronchial lipoma. Chin Clin Oncol. 2020;9(2). Published: Sept 12, 2019. pii: cco.2019.08.17.  https://doi.org/10.21037/cco.2019.08.17
  50. Kadamkulam Syriac A, Bhaskarla AV, Elrifai M, Alraiyes AH. Incidental endobronchial hamartoma in a patient with enchondroma. BMJ Case Rep. 2019;12(9). pii: e229670. https://doi.org/10.1136/bcr-2019-229670
  51. Zhu Z, Lian X, Yang D. Right main bronchial pleomorphic adenoma: A case report and literature review. Medicine (Baltimore). 2018;97(42): e12648. https://doi.org/10.1097/MD.0000000000012648
  52. Dalar L, Ozdemir C, Sokucu SN, Nur Urer H, Altin S. Bronchoscopic Treatment of Benign Endoluminal Lung Tumors. Can Respir J. Feb 27, 2019;5269728. https://doi.org/10.1155/2019/5269728. eCollection 2019
  53. Hady SMA, Elbastawisy SE, Hassabala AS, Elsayed HH. Is surgical resection superior to bronchoscopic resection in patients with symptomatic endobronchial hamartoma? Interact CardioVasc Thorac Surg. 2017;24(5):778-782.  https://doi.org/10.1093/icvts/ivw443
  54. Mathisen DJ, Morse CR. eds. Thoracic surgery. Lung resection — Bronchoplasty. Wolters Kluwer; 2015.
  55. Liao H, Song W, Chen N, Chen F, Liu C, Lin F. Left lower lobe sleeve resection for endobronchial schwannoma. Ann Transl Med. 2019;7(3):50.  https://doi.org/10.21037/atm.2018.12.32
  56. Pak PS, Yanagawa J, Abtin F, Wallace WD, Holmes EC, Lee JM. Surgical management of endobronchial solitary fibrous tumors. Ann Thorac Surg. 2010;90(2):659-661.  https://doi.org/10.1016/j.athoracsur.2010.02.024
  57. Mikubo M, Maruyama R, Kakinuma H, Yoshida T, Satoh Y. Ciliated muconodular papillary tumors of the lung: Cytologic features and diagnostic pitfalls in intraoperative examinations. Diagn Cytopathol. 2019;47(7):716-719.  https://doi.org/10.1002/dc.24169
  58. Liu C, Liao H, Guo C, Pu Q, Mei J, Liu L. Single-direction thoracoscopic basal segmentectomy. J Thorac Cardiovasc Surg. 2020;160(6): 1586-1594. Published: January 31, 2020. pii: S0022-5223(20)30249-X.  https://doi.org/10.1016/j.jtcvs.2020.01.028
  59. Павлов Ю.В., Аблицов Ю.А., Харнас С.С., Рыбин В.К., Аблицов А.Ю., Павлов А.Ю. Интраоперационное ультразвуковое исследование и лазерная спектроскопия для диагностики онкологического процесса у больных с опухолями легких. Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2006;2:52-56. 
  60. Zhang W, Zhang H, Hou Q, Hou H, Xu D, Liu J, Shi L. Ectopic thyroid microfollicular adenoma in the lung: A case report. Medicine (Baltimore). 2019;98(35):e16832. https://doi.org/10.1097/MD.0000000000016832

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.