Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Головина В.И.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Панфилов В.А.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Золотухин И.А.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Гесперидин: потенциальные, но недооцененные возможности

Авторы:

Головина В.И., Панфилов В.А., Золотухин И.А.

Подробнее об авторах

Журнал: Флебология. 2023;17(4): 352‑360

Прочитано: 6070 раз


Как цитировать:

Головина В.И., Панфилов В.А., Золотухин И.А. Гесперидин: потенциальные, но недооцененные возможности. Флебология. 2023;17(4):352‑360.
Golovina VI, Panfilov VA, Zolotukhin IA. Hesperidin: Potential but Underestimated Opportunities. Journal of Venous Disorders. 2023;17(4):352‑360. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/flebo202317041352

Рекомендуем статьи по данной теме:

Хронические заболевания вен (ХЗВ) — распространенная патология, обсуловливающая значительные социально-экономические затраты на восстановление функционального состояния пациентов и их качества жизни (КЖ) [1]. ХЗВ нижних конечностей развиваются в результате первичного и вторичного поражения стенок вен с развитием рефлюкса, обструкции или комбинации этих состояний [2, 3]. Первичное ХЗВ является результатом воспаления, инициированного взаимодействием лейкоцитов и эндотелия, что приводит к ремоделированию венозной стенки и разрушению клапанов, в то время как вторичное ХЗВ является результатом тромбоза глубоких вен с последующей реканализацией, нарушением венозного оттока вследствие обструкции и разрушения клапанов вен. Несмотря на то что первичное и вторичное ХЗВ имеют разные механизмы развития, они приводят к одинаковым клиническим проявлениям [2, 3]. Симптоматика ХЗВ включает боль, тяжесть, утомляемость и судороги в ногах в вечернее время, ряд других субъективных признаков, варикозное расширение вен, отек, гиперпигментацию, липодерматосклероз и трофические язвы [4—6].

Наиболее частым и социально значимым проявлением ХЗВ является варикозная болезнь, характеризующаяся несостоятельностью подкожных вен [7]. Накопленный десятилетиями опыт показал, что хирургическое лечение, включающее в себя прерывание приустьевого рефлюкса путем лигирования или термооблитерации магистральных подкожных вен в сочетании с удалением/облитерацией стволов и мини-флебэктомией, представляет собой основу помощи пациентам [8]. В последнее десятилетие эндоваскулярные методы лечения, такие как радиочастотная облитерация (РЧО) и эндовенозная лазерная облитерация (ЭВЛО) в комбинации с мини-флебэктомией, стали стандартным хирургическим подходом [9].

Вместе с тем хирургическое вмешательство очевидным образом не может быть отнесено к методам лечения с патогенетической направленностью, поскольку его точкой приложения является конечный результат патологического процесса, лежащего в основе варикозной трансформации подкожных вен. Удаление/облитерация ремоделированных вен — это не более чем симптоматическое вмешательство. Неудивительно, что эффект хирургических вмешательств, оцененный на длительных промежутках времени, нельзя назвать удовлетворительным. Частота рецидивов варикозной болезни при наблюдении за пациентами в течение 5 лет после операции достигает 54% [10]. С другой стороны, конкурентоспособной альтернативы хирургическим способам лечения в настоящее время не предложено. Причины, приводящие к старту веноспецифического воспаления, на сегодняшний день неизвестны, а звенья этого процесса лишь только начинают глубоко изучать.

Разные авторы описывают в целом схожую последовательность патогенетических этапов, происходящих в венозной стенке, однако их детализация в ряде исследований может существенно различаться. Например, причиной изменения структурной целостности и функции венозной стенки и клапанов исследователи называют и провоспалительную реакцию с участием интерлейкина (IL)-6, активных формы кислорода (АФК), и активацию матриксных металлопротеиназ (MMP) [11—13]. Веноспецифическое воспаление приводит к пролиферации гладкомышечных клеток, а также деградации внеклеточного матрикса в венозной стенке. Этот процесс активируется за счет адгезии и активации лейкоцитов и широко известен как ремоделирование венозной стенки. Моноцитарный хемотаксический фактор-1 (MCP-1) — это цитокин, ответственный за адгезию лейкоцитов к венозной стенке [14]. Указывают на возможную роль фактора роста эндотелия сосудов (VEGF), который играет важную роль в поддержании целостности венозной стенки совместно с оксидом азота (NO) посредством регуляции проницаемости сосудистой стенки и вазодилатации [15]. VEGF — один из важнейших факторов ангиогенеза, влияющий на активность эндотелиальных и воспалительных клеток [16]. VEGF стимулирует экспрессию эндотелиальной синтазы оксида азота (eNOS) и, следовательно, приводит к поддержанию увеличения образования NO, который, в свою очередь, обладает вазодилатирующим действием и стимулирует пролиферацию гладкомышечных клеток [17]. Помимо этого, имеются данные о том, что причиной варикозного расширения вен могут быть воспалительные цитокины и молекулы адгезии, особенно трансформирующий фактор роста бета (TGF-β), IL-6, IL-8, васкулярная молекула клеточной адгезии VCAM-1 (vascular cell adhesion molecule 1), а повышенная экспрессия фактора роста фибробластов (FGF) бета и TGF-β1 в венах может играть ключевую роль в гипертрофии венозной стенки [18, 19]. Моноциты и макрофаги также оказывают влияние на развитие варикозного расширения вен. Их миграция в стенку вены и клапанов в сочетании с венозным застоем вызывает высвобождение IL-1β, IL-6 и фактора некроза опухоли альфа (TNF-α). Все вышеперечисленные механизмы приводят к активации эндотелиальных клеток несостоятельных вен и их vasa vasorum, на что указывает повышение регуляции молекулы клеточной адгезии ICAM-1 (intercellular adhesion molecule 1), IL-1α и TNF-α [20].

Даже разрозненные и неполные представления о патогенезе ХЗВ дают понимание ограничений хирургического воздействия. Без вмешательства в патологический процесс на более ранних этапах ожидать кардинального улучшения результатов лечения нет оснований. Одним из наиболее вероятных путей воздействия на молекулярно-клеточные механизмы заболевания является фармакологический [21]. Несмотря на то что на сегодняшний день нет лекарственных средств, которые могут остановить или обратить вспять процесс варикозной трансформации, уже создан ряд препаратов, способных по меньшей мере облегчить течение ХЗВ.

Наиболее часто применяют веноактивные препараты на основе биофлавоноидов, которые представляют собой большую группу фенольных соединений, широко распространенных в растениях. Флавоноиды стимулируют высвобождение NO эндотелиальными клетками за счет повышения внутриклеточного уровня кальция, а введение флавоноидов в коронарное кровообращение может спровоцировать немедленную вазодилатацию [22]. Антиангиогенный эффект флавоноидов был продемонстрирован в ряде исследований in vitro [23, 24].

Одним из наиболее известных и изученных представителей флавоноидов является диосмин. Диосмин (диосметин 7-О-рутинозид) представляет собой природный флавоноидный гликозид, который может быть выделен из различных растительных источников или получен из гесперидина (3,5,7-тригидроксифлаванон 7-рамноглюкозид, гесперетин-7-О-рутинозид), другого флавоноида, который химически и структурно очень похож на диосмин [25]. Действие диосмина в основном опосредуется его метаболитом — агликоном диосметином. Противовоспалительный, антитромботический эффект этого вещества был выявлен как в экспериментальных, так и в клинических исследованиях. Кроме того, документально подтвержден антиэкссудативный эффект диосмина, приводящий к регрессии возможного отека тканей [26, 27]. При этом комбинация флавоноидов превосходила по эффективности диосмин, что было продемонстрировано в ряде исследований [28].

Препараты на основе одного флавоноида, обычно диосмина, изучены, но в меньшем числе исследований [29, 30]. Показано влияние диосмина в дозе 1200 мг в день на цитокины, участвующие в воспалительном каскаде [29]. После 3 мес лечения у 35 пациентов с венозной недостаточностью значительно снизился уровень TNF-α, VEGF-A и VEGF-C, FGF2 и IL-6. Субъективные показатели свидетельствовали о незначительном уменьшении отечности нижних конечностей, снижении выраженности болевого синдрома. Несмотря на отсутствие контрольной группы, был зафиксирован противовоспалительный эффект диосмина, а снижение концентрации исследуемых маркеров воспаления, например TNF-α, было заметным.

На основе систематических обзоров и метаанализов клинических исследований, посвященных влиянию отдельных веноактивных препаратов на симптомы ХЗВ, была доказана их эффективность в отношении улучшения КЖ, снижения выраженности ассоциированных с ХЗВ тяжести и усталости в ногах, уменьшения отека нижних конечностей [28, 31, 32]. Комбинация флавоноидов в стандартизированных дозировках (10% гесперидина + 90% диосмина, препарат Венарус) снижает выраженность симптомов, ассоциированных с ХЗВ, а также может уменьшать выраженность болевого синдрома, обусловленного острым приступом геморроя [33]. Оптимальное соотношение доза/эффект при ХЗВ наблюдается при приеме 1000 мг в день. В дополнение к исследованиям, показывающим снижение выраженности симптомов ХЗВ, недавнее проспективное сравнительное исследование с применением препарата Венарус показало тенденцию к снижению концентрация MCP-1 в плазме крови у пациентов с варикозной болезнью после приема в течение 2 мес [34].

Удивительно, но такой флавоноид, как гесперидин, присутствующий во многих флеботропных средствах в весьма заметной концентрации, обойден вниманием ученых-флебологов, несмотря на то что в литературе можно найти подтверждения его влияния на сосудистую стенку [35, 36].

Гесперидин принадлежит к флаваноновым соединениям, одному из подклассов флавоноидов, и представляет собой флаваноновый гликозид, состоящий из агликона флавона гесперетина, связанного с дисахаридом (рисунок). Дисахаридная единица состоит из одной молекулы рамнозы и одной молекулы глюкозы и может принимать две изомерные формы — рутинозу или неогесперидозу. Гесперидин и его производные являются характерными соединениями для цитрусовых (семейство Rutaceae (рутовые)), таких как апельсин (Citrus sinensis), грейпфрут (Citrus paradisi), мандарин (Citrus reticulata), лайм (Citrus aurantiifolia) и лимон (Citrus limon). Их содержание в цитрусовых зависит от сорта плода, части самого плода, климата и степени созревания. Согласно обзору G. Gattuso и соавт. [37], 100 мл соответствующего сока содержат 20—60 мг гесперидина для апельсина, 8—46 мг для мандарина, 4—41 мг для лимона и 2—17 для грейпфрута. Цитрусовые флаведо (цветной внешний слой кожуры) и альбедо (мягкая белая срединная часть) содержат большее количество гесперидина по сравнению с соком, выжатым вручную [38]. Гесперидином также богаты коммерческие соки, отжатые с компонентами кожуры. Помимо цитрусовых гесперидин обнаружен также в некоторых видах мяты (Mentha) и зеленом чае [39, 40]. Следует отметить, что гесперетин, агликоновая форма гесперидина, встречается в природе реже, чем его гликозиды.

Рис. Химическая структура гесперидина.

После перорального приема гесперидин гидролизуется микробными рамнозидазами кишечника в тонком кишечнике и главным образом в толстом кишечнике в гесперетин, а затем превращается в глюкурониды в толстом кишечнике. Метаболиты гесперидина, которые можно обнаружить в плазме крови уже через 3 ч после приема апельсинового сока, представляют собой сульфаты гесперетина (гесперетин-7-О-глюкуронид и гесперетин-3-О-глюкуронид) [41]. Другие диглюкурониды и сульфоглюкурониды гесперетина также выявляются в плазме крови человека в качестве второстепенных компонентов после приема апельсинового сока [42, 43]. В моче человека после употребления апельсинового сока были обнаружены аналогичные метаболиты, в частности гесперетин-7-О-глюкуронид, гесперетин-3-О-глюкуронид, два гесперетин-сульфоглюкуронида и гесперетина сульфат [41]. Ферменты, необходимые для гидролиза рамнозы, не экспрессируются в тонком кишечнике. Этот факт отразился в очень незначительном гидролизе или абсорбции, наблюдаемой после прямой перфузии гесперетин-7-орутинозида, при этом для кишечного перфузата степень извлечения составила примерно 80%. Помимо этого, в крови не наблюдалось метаболитов гесперетина, а в моче обнаруживались лишь следы таковых [44]. Другие исследования показали, что гесперетин-7-О-рутинозид у здоровых мужчин давал интактные метаболиты гесперетина в количествах, соответствующих 14% дозы в моче, тогда как агликон — 3,3% [45, 46]. Результаты исследования питания с включением богатого полифенолом напитка, в котором проводили сравнение пациентов с илеостомой и здоровых добровольцев, показали, что значительные количества гесперетин-7-О-рутинозида проходят из тонкого в толстый кишечник, где после расщепления фрагмента рутинозы гесперетин подвергается метаболизму фазы II и всасывается в воротную вену в виде сульфатированных и глюкуронидных конъюгатов [47]. Действие микробиоты толстой кишки приводит к расщеплению основных структур флавоноида, что приводит к образованию конъюгированных форм феруловой и м-кумаровой кислот, фенилпропионовой кислоты, бензойной кислоты, гиппуровой кислоты и пр. [48]. Эти низкомолекулярные соединения попадают в кровеносную систему, где некоторые из них могут подвергаться дополнительному метаболизму в печени и почках перед почечной экскрецией [49].

Биологические и фармакологические свойства гесперидина были изучены на предмет его антиоксидантных, гиполипидемических, противовоспалительных, противораковых, противовирусных эффектов и защитных свойств в отношении сердечно-сосудистых, а также нейродегенеративных заболеваний.

Показано, что гесперидин подавляет целый ряд регулирующих механизмов, начиная с ядерного транскрипционного фактора (NF-κB), запускающего весь каскад воспалительных реакций, подавляет экспрессию индуцибельной NO-синтазы (iNOS) в месте воспалительной реакции, подавляет провоспалительную циклооксигеназу типа 2 (ЦОГ-2) и снижает экспрессию провоспалительных киназ MAPK (митоген-активируемых протеинкиназ). Доминирующее клиническое значение имеет подавление ЦОГ-2, фермента, синтезирующего сосудорасширяющие провоспалительные простагландины, которые помимо активации инфламмасомы также активируют болевые стимулы. Последующее снижение уровня молекул острой фазы, в частности С-реактивного белка, приводит к подавлению воспаления на многих уровнях [50—53]. Достоверность этих наблюдений с участием пациентов подтверждена клиническими исследованиями, проведенными на здоровой популяции, а также на субпопуляциях, в которых были активированы молекулы острой фазы [35]. Доказательства того, что исследователи наблюдали действительно эффект гесперидина, были представлены в работе [36], где изменения в изучаемых воспалительных цитокинах значительно коррелировали с уровнем гесперидина в плазме крови. Следовательно, можно сделать вывод, что гесперидин обладает собственным эффектом, а именно уменьшает воспалительную реакцию, сопровождающую ремоделирование венозной стенки.

Гесперидин и его метаболит гесперетин могут стимулировать высвобождение холецистокинина, гормона, который регулирует аппетит и используется при лечении ожирения для подавления аппетита. Гесперидин ингибирует гены, участвующие в синтезе жировой ткани, уменьшает выработку адипокинов и других цитокинов, активирующих синтез жировых клеток и воспаление. Дозозависимым образом он положительно влияет на метаболизм липидов и жирных кислот, снижает уровень липопротеинов низкой плотности, очень низкой плотности и значительно увеличивает уровень липопротеинов высокой плотности, а также ингибирует развитие стеатоза печени, замедляет дифференцировку предшественников жировых клеток в адипоциты, стимулирует распад зрелых адипоцитов [54]. В рандомизированном исследовании употребление 178 мг α-глюкозилгесперидина в комбинации с зеленым чаем было ассоциировано со снижением индекса массы тела, уровня триглицеридов и площади висцерального жира, а также процентного содержания жира по сравнению с плацебо [55]. Еще одно двойное слепое параллельное рандомизированное исследование было проведено с участием 40 велосипедистов-любителей, которые были разделены на две равнозначные группы: одна принимала 2S-гесперидин (500 мг в день), а другая — плацебо (500 мг микроцеллюлозы) в течение 8 нед. Для оценки влияния обоих методов лечения на состав тела использовали двухэнергетическую рентгеновскую абсорбциометрию (DXA) и антропометрические измерения. Анализ DXA показал снижение процентного содержания жира в организме (на 10,4%; p=0,035) и жировой массы нижних конечностей (на 10,5%; p=0,029) в пользу 2S-гесперидина по сравнению с плацебо. После оценки антропометрических данных зарегистрировано снижение процентного содержания жира в организме (на 3,7%; p=0,006), общего количества жира в организме (на 3,0%; p=0,047) в группе 2S-гесперидина, но не плацебо. Кроме того, отмечено увеличение процентной доли мышечной массы (на 1,0%; p≤0,001) и общей мышечной массы (на 1,7%; p=0,011) после приема 2S-гесперидина [56].

Ожирение считают одним из факторов риска возникновения и прогрессирования ХЗВ [57, 58]. Ряд крупных обсервационных исследований показал, что ожирение повышает риск возникновения ХЗВ в 3,28—3,6 раза [58—60]. Перспективным может оказаться назначение комбинации «гесперидин + диосмин» у больных с ХЗВ и избыточной массой тела. Причем преимущество будут иметь препараты, содержащие стандартизированную дозировку гесперидина, что делает его эффекты в отношении предотвращения набора массы тела и уменьшения площади висцерального жира более предсказуемыми. Ключевым отличием препарата Венарус являются стандартизированные дозировки двух компонентов (гесперидина 10% и диосмина 90%), в связи с чем он может быть предпочтительным для терапии пациентов с ХЗВ и избыточной массой тела.

Ряд исследователей изучали антиоксидантную активность гесперидина которая проявляется главным образом в прямом захвате свободных радикалов или косвенно в ингибировании прооксидантных ферментов, которые участвуют в образовании этих радикалов, а также в хелатировании переходных металлов, которые, в свою очередь, участвуют в реакциях образования АФК [61—63]. Результаты исследований показали, что гесперидин обладает большей потенциальной железохелатирующей активностью по сравнению с дефероксамином, популярным хелатором для лечения хронической перегрузки железом [64]. Антиоксидантная активность гесперидина проявляется также за счет снижения продукции АФК и повышения активности антиоксидантных ферментов, каталазы и супероксиддисмутазы [65, 66]. Следует отметить, что гесперидин проявляет более низкую антиоксидантную активность по сравнению со своей агликоновой формой, как и другие флавоноиды [67]. Кожура цитрусовых продемонстрировала более высокую антиоксидантную способность по сравнению с мякотью ввиду высокого содержания флавоноидов, витамина С и каротиноидов [68]. H. Al-Ashaal и S. El-Sheltawy [69] сообщили, что гесперидин из экстракта апельсиновой корки проявляет умеренную активность в качестве антиоксиданта; его способность достигла 36% в отношении свободнорадикального ДФПГ (2,2-дифенил-1-пикрилгидразила) по сравнению со 100% результатом, полученным для витамина С.

Сердечно-сосудистые защитные эффекты гесперидина выражаются в снижении диастолического артериального давления, уровня глюкозы и различных параметров липидного профиля, уменьшении агрегации тромбоцитов и повышении экспрессии антиоксидантных ферментов [70—73]. В некоторых источниках утверждается, что гесперидин также проявляет кардиопротективный эффект, снижая кардиотоксичность доксорубицина, широко используемого противоопухолевого препарата [74]. R. Rezaee и соавт. [75] обнаружили, что гесперидин оказывает защитное действие в отношении повреждения сердца, вызванного угарным газом, у крыс. Введение гесперидина снижало экспрессию цинк-пальцевого гомеобокса 2, связывающего Е-бокс (ZEB2, фактор транскрипции, который связывается со специфическими областями ДНК), путем повышения экспрессии мРНК-132, что, в свою очередь, способствовало апоптозу и ингибировало пролиферацию клеток немелкоклеточного рака легкого у мышей [76]. Было доказано, что экстракты кожуры цитрусовых, которые могут изменять метаболизм углеводов, белков и жиров, являются перспективным терапевтическим средством при сахарном диабете, характеризующемся дефектами метаболизма инсулина [77—79].

Все больше данных свидетельствует о том, что гесперидин обладает ингибирующим действием в отношении развития нейродегенеративных состояний, таких как болезни Альцгеймера и Паркинсона [80—82]. Продемонстрировано участие иммунитета в развитии и прогрессировании нейродегенеративных заболеваний [81]. Нейропротективный потенциал гесперидина опосредуется улучшением факторов роста нейронов и функций эндогенной антиоксидантной защиты, уменьшением нейровоспалительных и апоптотических путей. Пищевые добавки, содержащие гесперидин, могут значительно улучшить мозговой кровоток, когнитивные функции и память [82]. Несколько исследователей посвятили свои усилия изучению нейрофармакологических механизмов и молекулярной мишени цитрусовых флавоноидов, в том числе гесперидина [80, 82].

Потенциальные противовоспалительные эффекты гесперидина оценивали на предмет его возможного терапевтического применения против различных заболеваний [53, 83—85]. S. Xiao и соавт. [83] использовали его для усиления хондрогенеза мезенхимальных стволовых клеток человека с целью облегчения восстановления хрящевой ткани путем ингибирования воспалительного процесса. Результаты, представленные F. Homayouni и соавт. [84], предполагают, что добавка гесперидина может оказывать противовоспалительное и антигипертензивное действие при сахарном диабете 2-го типа. Повышение противомикробной устойчивости к синтетическим антибиотикам привлекло внимание ученых к использованию встречающихся в природе соединений в качестве эффективных антибактериальных средств [86]. В ряде сообщений было показано, что гесперидин также может действовать против различных патогенных бактерий [86, 87]: напрямую ингибировать рост бактерий или действовать косвенно, модулируя экспрессию факторов вирулентности, при этом оба пути снижают микробную патогенность. Помимо этого, можно найти упоминания о защите от УФ-излучения, заживлении ран и влиянии на функции кожи, а также о радиозащитных свойствах в отношении ионизирующего излучения [88, 89].

Необходимо провести дополнительные клинические исследования, чтобы окончательно связать потенциальное противовоспалительное действие гесперидина с его профилактической и/или терапевтической ролью в отношении заболеваний, связанных с воспалительными процессами. Такие новые исследования должны быть сосредоточены на определении надлежащей дозы, биодоступности, эффективности и безопасности гесперидина.

Заключение

Гесперидин и гесперетин — флавоноиды цитрусовых, обладающие различной биологической активностью. За последнее десятилетие было проведено большое количество исследований по определению молекулярных мишеней и механизмов, лежащих в основе действия данных флавоноидов, а также их метаболитов. Гесперидин продемонстрировал противовоспалительные, антиоксидантные, нейропротективные и противораковые свойства. В клинических исследованиях гесперидин предотвращал набор массы тела, уменьшал площадь висцерального жира, а также процентное содержание жира. Таким образом, применение препарата со стандартизированной дозировкой флавоноидов (Венарус) у пациентов с ХЗВ и избыточной массой тела может быть более предпочтительным.

Участие авторов:

Концепция статьи — И.А. Золотухин, В.И. Головина

Сбор материала и анализ данных — В.И. Головина, В.А. Панфилов

Написание текста — В.И. Головина

Редактирование — И.А. Золотухин

Конфликт интересов. Статья подготовлена при поддержке АО «АЛИУМ». Компания не оказывала влияния на интерпретацию данных и подготовку текста. И.А. Золотухин сообщает о получении гонораров за лекторскую поддержку от компаний АО «АЛИУМ», «Сервье», «Иннотек», «Доминанта Сервис». В.И. Головина сообщает о получении гонораров за лекторскую поддержку от компании «Сервье».

Conflict of interest. The manuscript was support by the ALIUM JSC Company. This company had no influence on data interpretation and preparation of text. I.A. Zolotukhin received fees for lecture support from the companies JSC ALIUM, Servier, Innotek and Dominanta Service. V.I. Golovina received honoraria for lecture support from the Servier company.

Литература / References:

  1. Staffa R. Chronic venous insufficiency-epidemiology. Bratisl Lek Listy. 2002;103(4-5):166-168. 
  2. Nicolaides A, Kakkos S, Baekgaard N, Comerota A, de Maeseneer M, Eklof B, Giannoukas AD, Lugli M, Maleti O, Myers K, Nelzén O, Partsch H, Perrin M. Management of chronic venous disorders of the lower limbs. Guidelines According to Scientific Evidence. Part I. Int Angiol. 2018;37(3):181-254.  https://doi.org/10.23736/S0392-9590.18.03999-8
  3. Labropoulos N, Gasparis AP, Pefanis D, Leon LR Jr, Tassiopoulos AK. Secondary chronic venous disease progresses faster than primary. J Vasc Surg. 2009;49(3):704-710.  https://doi.org/10.1016/j.jvs.2008.10.014
  4. Spiridon M, Corduneanu D. Chronic Venous Insufficiency: A Frequently Underdiagnosed and Undertreated Pathology. Maedica (Bucur). 2017;12(1):59-61. 
  5. Raju S, Neglén P. Clinical practice. Chronic venous insufficiency and varicose veins. N Engl J Med. 2009;360(22):2319-2327. https://doi.org/10.1056/NEJMcp0802444
  6. Caggiati A, Rosi C, Franceschini M, Innocenzi D. The nature of skin pigmentations in chronic venous insufficiency: a preliminary report. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2008;35(1):111-118.  https://doi.org/10.1016/j.ejvs.2007.08.007
  7. Bergan J. Molecular mechanisms in chronic venous insufficiency. Ann Vasc Surg. 2007;21(3):260-266.  https://doi.org/10.1016/j.avsg.2007.03.011
  8. Budzyń M, Iskra M, Turkiewicz W, Krasiński Z, Gryszczyńska B, Kasprzak MP. Plasma concentration of selected biochemical markers of endothelial dysfunction in women with various severity of chronic venous insufficiency (CVI)-A pilot study. PLoS One. 2018;13(1):e0191902. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0191902
  9. Pfisterer L, König G, Hecker M, Korff T. Pathogenesis of varicose veins — lessons from biomechanics. Vasa. 2014;43(2):88-99.  https://doi.org/10.1024/0301-1526/a000335
  10. Whing J, Nandhra S, Nesbitt C, Stansby G. Interventions for great saphenous vein incompetence. Cochrane Database Syst Rev. 2021;8(8):CD005624. https://doi.org/10.1002/14651858.CD005624.pub4
  11. Castro-Ferreira R, Cardoso R, Leite-Moreira A, Mansilha A. The Role of Endothelial Dysfunction and Inflammation in Chronic Venous Disease. Ann Vasc Surg. 2018;46:380-393.  https://doi.org/10.1016/j.avsg.2017.06.131
  12. Nicolaides AN. Chronic venous disease and the leukocyte-endothelium interaction: from symptoms to ulceration. Angiology. 2005;56(1):11-19.  https://doi.org/10.1177/00033197050560i103
  13. Kahn SR. The post-thrombotic syndrome. Hematology Am Soc Hematol Educ Program. 2016;1:413-418.  https://doi.org/10.1182/asheducation-2016.1.413
  14. Singh S, Anshita D, Ravichandiran V. MCP-1: Function, regulation, and involvement in disease. Int Immunopharmacol. 2021;101(Pt B):107598. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2021.107598
  15. Tomasian D, Keaney JF, Vita JA. Antioxidants and the bioactivity of endothelium-derived nitric oxide. Cardiovasc Res. 2000;47(3):426-435.  https://doi.org/10.1016/s0008-6363(00)00103-6
  16. Celik A, Ersoy OF, Ozkan N, Kayaoglu HA, Ozugurlu F, Cakir EA, Lordlar N, Omeroglu S. Comparison of the effects of troxerutin and heparinoid on flap necrosis. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 2010;63(5):875-883.  https://doi.org/10.1016/j.bjps.2009.01.082
  17. Bouloumié A, Schini-Kerth VB, Busse R. Vascular endothelial growth factor up-regulates nitric oxide synthase expression in endothelial cells. Cardiovasc Res. 1999;41(3):773-780.  https://doi.org/10.1016/s0008-6363(98)00228-4
  18. Satokawa H, Hoshino S, Igari T, Iwaya F, Midorikawa H. The Appearance of Cytokines and Adhesion Molecules in Saphenous Vein Valves in Chronic Venous Insufficiency. Phlebology. 2002;16(3):106-110.  https://doi.org/10.1177/026835550201600305
  19. Головина В.И., Селиверстов Е.И., Ефремова О.И., Золотухин И.А. Роль цитокинов в патогенезе варикозной болезни. Флебология. 2021;15(2):117-126.  https://doi.org/10.17116/flebo202115021117
  20. Takase S, Bergan JJ, Schmid-Schönbein G. Expression of adhesion molecules and cytokines on saphenous veins in chronic venous insufficiency. Ann Vasc Surg. 2000;14(5):427-435.  https://doi.org/10.1007/s100169910092
  21. Порембская О.Я. Микроциркуляторные нарушения при хронических заболеваниях вен и основы их системной фармакологической коррекции. Флебология. 2021;15(2):110-116.  https://doi.org/10.17116/flebo202115021110
  22. Olszanecki R, Gebska A, Kozlovski VI, Gryglewski RJ. Flavonoids and nitric oxide synthase. J Physiol Pharmacol. 2002;53(4 Pt 1):571-584. 
  23. Liang YC, Huang YT, Tsai SH, Lin-Shiau SY, Chen CF, Lin JK. Suppression of inducible cyclooxygenase and inducible nitric oxide synthase by apigenin and related flavonoids in mouse macrophages. Carcinogenesis. 1999;20(10):1945-1952. https://doi.org/10.1093/carcin/20.10.1945
  24. Kim MH. Flavonoids inhibit VEGF/bFGF-induced angiogenesis in vitro by inhibiting the matrix-degrading proteases. J Cell Biochem. 2003;89(3): 529-538.  https://doi.org/10.1002/jcb.10543
  25. Rabe E, Guex JJ, Morrison N, Ramelet AA, Schuller-Petrovic S, Scuderi A, Staelens I, Pannier F. Treatment of chronic venous disease with flavonoids: recommendations for treatment and further studies. Phlebology. 2013;28(6):308-319.  https://doi.org/10.1177/0268355512471929
  26. Takase S, Pascarella L, Lerond L, Bergan JJ, Schmid-Schönbein GW. Venous hypertension, inflammation and valve remodeling. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2004;28(5):484-493.  https://doi.org/10.1016/j.ejvs.2004.05.012
  27. das Graças C de Souza M, Cyrino FZ, de Carvalho JJ, Blanc-Guillemaud V, Bouskela E. Protective Effects of Micronized Purified Flavonoid Fraction (MPFF) on a Novel Experimental Model of Chronic Venous Hypertension. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2018;55(5):694-702.  https://doi.org/10.1016/j.ejvs.2018.02.009
  28. Kakkos SK, Nicolaides AN. Efficacy of micronized purified flavonoid fraction (Daflon) on improving individual symptoms, signs and quality of life in patients with chronic venous disease: a systematic review and meta-analysis of randomized double-blind placebo-controlled trials. Int Angiol. 2018;37(2):143-154.  https://doi.org/10.23736/S0392-9590.18.03975-5
  29. Feldo M, Wójciak-Kosior M, Sowa I, Kocki J, Bogucki J, Zubilewicz T, Kęsik J, Bogucka-Kocka A. Effect of Diosmin Administration in Patients with Chronic Venous Disorders on Selected Factors Affecting Angiogenesis. Molecules. 2019;24(18):3316. https://doi.org/10.3390/molecules24183316
  30. Стойко Ю.М., Цыплящук А.В., Крыжановский С.М., Маркин С.М. Терапия диосмином при хронических заболеваниях вен в условиях амбулаторной практики: результаты неинтервенционного исследования СТАТУС. Флебология. 2020;14(3):230-236.  https://doi.org/10.17116/flebo202014031230
  31. De Maeseneer MG, Kakkos SK, Aherne T, Baekgaard N, Black S, Blomgren L, Giannoukas A, Gohel M, de Graaf R, Hamel-Desnos C, Jawien A, Jaworucka-Kaczorowska A, Lattimer CR, Mosti G, Noppeney T, van Rijn MJ, Stansby G, Esvs Guidelines Committee, Kolh P, Bastos Goncalves F, Chakfé N, Coscas R, de Borst GJ, Dias NV, Hinchliffe RJ, Koncar IB, Lindholt JS, Trimarchi S, Tulamo R, Twine CP, Vermassen F, Wanhainen A, Document Reviewers, Björck M, Labropoulos N, Lurie F, Mansilha A, Nyamekye IK, Ramirez Ortega M, Ulloa JH, Urbanek T, van Rij AM, Vuylsteke ME. Editor’s Choice — European Society for Vascular Surgery (ESVS) 2022 Clinical Practice Guidelines on the Management of Chronic Venous Disease of the Lower Limbs. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2022;63(2):184-267.  https://doi.org/10.1016/j.ejvs.2021.12.024
  32. Gloviczki P, Lawrence PF, Wasan SM, Meissner MH, Almeida J, Brown KR, Bush RL, Di Iorio M, Fish J, Fukaya E, Gloviczki ML, Hingorani A, Jayaraj A, Kolluri R, Murad MH, Obi AT, Ozsvath KJ, Singh MJ, Vayuvegula S, Welch HJ. The 2023 Society for Vascular Surgery, American Venous Forum, and American Vein and Lymphatic Society clinical practice guidelines for the management of varicose veins of the lower extremities. Part II: Endorsed by the Society of Interventional Radiology and the Society for Vascular Medicine. J Vasc Surg Venous Lymphat Disord. 2023:S2213-333X(23)00322-0.  https://doi.org/10.1016/j.jvsv.2023.08.011
  33. Головина В.И., Золотухин И.А. Применение диосминсодержащих препаратов в лечении хронических заболеваний вен. Лечебное дело. 2023;2:67-73.  https://doi.org/10.24412/2071-5315-2023-12881
  34. Zolotukhin I, Golovanova O, Efremova O, Golovina V, Seliverstov E. Monocyte chemoattractant protein 1 plasma concentration in blood from varicose veins decreases under venoactive drug treatment. Int Angiol. 2022;41(6): 457-463.  https://doi.org/10.23736/S0392-9590.22.04940-9
  35. Milenkovic D, Deval C, Dubray C, Mazur A, Morand C. Hesperidin displays relevant role in the nutrigenomic effect of orange juice on blood leukocytes in human volunteers: A randomized controlled cross-over study. PLoS One. 2011;6(11):e26669. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0026669
  36. Morand C, Dubray C, Milenkovic D, Lioger D, Martin JF, Scalbert A, Mazur A. Hesperidin contributes to the vascular protective effects of orange juice: A randomized crossover study in healthy volunteers. Am J Clin Nutr. 2011;93(1):73-80.  https://doi.org/10.3945/ajcn.110.004945
  37. Gattuso G, Barreca D, Gargiulli C, Leuzzi U, Caristi C. Flavonoid composition of Citrus juices. Molecules. 2007;12(8):1641-1673.
  38. Chen Q, Wang D, Tan C, Hu Y, Sundararajan B, Zhou Z. Profiling of Flavonoid and Antioxidant Activity of Fruit Tissues from 27 Chinese Local Citrus Cultivars. Plants (Basel). 2020;9(2):196.  https://doi.org/10.3390/plants9020196
  39. Bodalska A, Kowalczyk A, Włodarczyk M, Fecka I. Analysis of Polyphenolic Composition of a Herbal Medicinal Product-Peppermint Tincture. Molecules. 2019;25(1):69.  https://doi.org/10.3390/molecules25010069
  40. Sentkowska A, Pyrzynska K. Flavonoid Content and Antioxidant Properties of Different Black Tea Infusions. J Nutr Health Sci. 2017;4(1):104.  https://doi.org/10.15744/2393-9060.4.104
  41. Silveira JQ, Cesar TB, Manthey JA, Baldwin EA, Bai J, Raithore S. Pharmacokinetics of flavanone glycosides after ingestion of single doses of fresh-squeezed orange juice versus commercially processed orange juice in healthy humans. J Agric Food Chem. 2014;62(52):12576-12584. https://doi.org/10.1021/jf5038163
  42. Bredsdorff L, Nielsen IL, Rasmussen SE, Cornett C, Barron D, Bouisset F, Offord E, Williamson G. Absorption, conjugation and excretion of the flavanones, naringenin and hesperetin from alpha-rhamnosidase-treated orange juice in human subjects. Br J Nutr. 2010;103(11):1602-1609. https://doi.org/10.1017/S0007114509993679
  43. Mullen W, Archeveque MA, Edwards CA, Matsumoto H, Crozier A. Bioavailability and metabolism of orange juice flavanones in humans: impact of a full-fat yogurt. J Agric Food Chem. 2008;56(23):11157-11164. https://doi.org/10.1021/jf801974v
  44. Actis-Goretta L, Dew TP, Lévèques A, Pereira-Caro G, Rein M, Teml A, Schäfer C, Hofmann U, Schwab M, Eichelbaum M, Crozier A, Williamson G. Gastrointestinal absorption and metabolism of hesperetin-7-O-rutinoside and hesperetin-7-O-glucoside in healthy humans. Mol Nutr Food Res. 2015;59(9):1651-1662. https://doi.org/10.1002/mnfr.201500202
  45. Krogholm KS, Bredsdorff L, Knuthsen P, Haraldsdóttir J, Rasmussen SE. Relative bioavailability of the flavonoids quercetin, hesperetin and naringenin given simultaneously through diet. Eur J Clin Nutr. 2010;64(4):432-435.  https://doi.org/10.1038/ejcn.2010.6
  46. Kanaze FI, Bounartzi MI, Georgarakis M, Niopas I. Pharmacokinetics of the citrus flavanone aglycones hesperetin and naringenin after single oral administration in human subjects. Eur J Clin Nutr. 2007;61(4):472-477.  https://doi.org/10.1038/sj.ejcn.1602543
  47. Borges G, Lean ME, Roberts SA, Crozier A. Bioavailability of dietary (poly)phenols: A study with ileostomists to discriminate between absorption in small and large intestine. Food Funct. 2013;4(5):754-762.  https://doi.org/10.1039/c3fo60024f
  48. Booth AN, Jones FT, Deeds F. Metabolic fate of hesperidin, eriodictyol, homoeridictyol, and diosmin. J Biol Chem. 1958;230(2):661-668. 
  49. Pereira-Caro G, Borges G, van der Hooft J, Clifford MN, Del Rio D, Lean ME, Roberts SA, Kellerhals MB, Crozier A. Orange juice (poly)phenols are highly bioavailable in humans. Am J Clin Nutr. 2014;100(5): 1378-1384. https://doi.org/10.3945/ajcn.114.090282
  50. Ding Z, Sun G, Zhu Z. Hesperidin attenuates influenza A virus (H1N1) induced lung injury in rats through its anti-inflammatory effect. Antivir Ther. 2018;23(7):611-615.  https://doi.org/10.3851/IMP3235
  51. Parhiz H, Roohbakhsh A, Soltani F, Rezaee R, Iranshahi M. Antioxidant and anti-inflammatory properties of the citrus flavonoids hesperidin and hesperetin: an updated review of their molecular mechanisms and experimental models. Phytother Res. 2015;29(3):323-331.  https://doi.org/10.1002/ptr.5256
  52. Lee HJ, Im AR, Kim SM, Kang HS, Lee JD, Chae S. The flavonoid hesperidin exerts anti-photoaging effect by downregulating matrix metalloproteinase (MMP)-9 expression via mitogen activated protein kinase (MAPK)-dependent signaling pathways. BMC Complement Altern Med. 2018;18(1):39.  https://doi.org/10.1186/s12906-017-2058-8
  53. Tejada S, Pinya S, Martorell M, Capó X, Tur JA, Pons A, Sureda A. Potential Anti-inflammatory Effects of Hesperidin from the Genus Citrus. Curr Med Chem. 2018;25(37):4929-4945. https://doi.org/10.2174/0929867324666170718104412
  54. Xiong H, Wang J, Ran Q, Lou G, Peng C, Gan Q, Hu J, Sun J, Yao R, Huang Q. Hesperidin: A Therapeutic Agent For Obesity. Drug Des Devel Ther. 2019;13:3855-3866. https://doi.org/10.2147/DDDT.S227499
  55. Yoshitomi R, Yamamoto M, Kumazoe M, Fujimura Y, Yonekura M, Shimamoto Y, Nakasone A, Kondo S, Hattori H, Haseda A, Nishihira J, Tachibana H. The combined effect of green tea and α-glucosyl hesperidin in preventing obesity: A randomized placebo-controlled clinical trial. Sci Rep. 2021;11(1):19067. https://doi.org/10.1038/s41598-021-98612-6
  56. Martínez Noguera FJ, Alcaraz PE, Carlos Vivas J, Chung LH, Marín Cascales E, Marín Pagán C. 8 weeks of 2S-Hesperidin supplementation improves muscle mass and reduces fat in amateur competitive cyclists: randomized controlled trial. Food Funct. 2021;12(9):3872-3882. https://doi.org/10.1039/d0fo03456h
  57. Suehiro K, Morikage N, Yamashita O, Harada T, Samura M, Takeuchi Y, Mizoguchi T, Hamano K. Risk Factors in Patients with Venous Stasis-Related Skin Lesions without Major Abnormalities on Duplex Ultrasonography. Ann Vasc Dis. 2016;9(3):201-204.  https://doi.org/10.3400/avd.oa.16-00059
  58. Beebe-Dimmer JL, Pfeifer JR, Engle JS, Schottenfeld D. The epidemiology of chronic venous insufficiency and varicose veins. Ann Epidemiol. 2005;15(3):175-184.  https://doi.org/10.1016/j.annepidem.2004.05.015
  59. Vuylsteke ME, Thomis S, Guillaume G, Modliszewski ML, Weides N, Staelens I. Epidemiological study on chronic venous disease in Belgium and Luxembourg: prevalence, risk factors, and symptomatology. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2015;49(4):432-439.  https://doi.org/10.1016/j.ejvs.2014.12.031
  60. Clark A, Harvey I, Fowkes FG. Epidemiology and risk factors for varicose veins among older people: cross-sectional population study in the UK. Phlebology. 2010;25(5):236-240.  https://doi.org/10.1258/phleb.2009.009045
  61. Fraga CG, Croft KD, Kennedy DO, Tomás-Barberán FA. The effects of polyphenols and other bioactives on human health. Food Funct. 2019; 10(2):514-528.  https://doi.org/10.1039/c8fo01997e
  62. Kanaze FI, Termentzi A, Gabrieli C, Niopas I, Georgarakis M, Kokkalou E. The phytochemical analysis and antioxidant activity assessment of orange peel (Citrus sinensis) cultivated in Greece-Crete indicates a new commercial source of hesperidin. Biomed Chromatogr. 2009;23(3):239-249.  https://doi.org/10.1002/bmc.1090
  63. Parhiz H, Roohbakhsh A, Soltani F, Rezaee R, Iranshahi M. Antioxidant and anti-inflammatory properties of the citrus flavonoids hesperidin and hesperetin: an updated review of their molecular mechanisms and experimental models. Phytother Res. 2015;29(3):323-331.  https://doi.org/10.1002/ptr.5256
  64. Liu N, Li X, Zhao P, Zhang X, Qiao O, Huang L, Guo L, Gao W. A review of chemical constituents and health-promoting effects of citrus peels. Food Chem. 2021;365:130585. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2021.130585
  65. Estruel-Amades S, Massot-Cladera M, Garcia-Cerdà P, Pérez-Cano FJ, Franch À, Castell M, Camps-Bossacoma M. Protective Effect of Hesperidin on the Oxidative Stress Induced by an Exhausting Exercise in Intensively Trained Rats. Nutrients. 2019;11(4):783.  https://doi.org/10.3390/nu11040783
  66. Aalikhani M, Safdari Y, Jahanshahi M, Alikhani M, Khalili M. Comparison Between Hesperidin, Coumarin, and Deferoxamine Iron Chelation and Antioxidant Activity Against Excessive Iron in the Iron Overloaded Mice. Front Neurosci. 2022;15:811080. https://doi.org/10.3389/fnins.2021.811080
  67. Biesaga M, Pyrzyńska K. Stability of bioactive polyphenols from honey during different extraction methods. Food Chem. 2013;136(1):46-54.  https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2012.07.095
  68. Hu Y, Li Y, Zhang W, Kou G, Zhou Z. Physical stability and antioxidant activity of citrus flavonoids in arabic gum-stabilized microcapsules: Modulation of whey protein concentrate. Food Hydrocoll. 2018;77:588-597.  https://doi.org/10.1016/j.foodhyd.2017.10.037
  69. Al-Ashaal HA, El-Sheltawy ST. Antioxidant capacity of hesperidin from citrus peel using electron spin resonance and cytotoxic activity against human carcinoma cell lines. Pharm Biol. 2011;49(3):276-282.  https://doi.org/10.3109/13880209.2010.509734
  70. Cao R, Zhao Y, Zhou Z, Zhao X. Enhancement of the water solubility and antioxidant activity of hesperidin by chitooligosaccharide. J Sci Food Agric. 2018;98(6):2422-2427. https://doi.org/10.1002/jsfa.8734
  71. Binkowska I. Hesperidin: synthesis and characterization of bioflavonoid complex. SN Appl Sci. 2020;2(3):1-9.  https://doi.org/10.1007/s42452-020-2256-8
  72. Tommasini S, Calabrò ML, Stancanelli R, Donato P, Costa C, Catania S, Villari V, Ficarra P, Ficarra R. The inclusion complexes of hesperetin and its 7-rhamnoglucoside with (2-hydroxypropyl)-beta-cyclodextrin. J Pharm Biomed Anal. 2005;39(3-4):572-580.  https://doi.org/10.1016/j.jpba.2005.05.009
  73. Corciova A, Ciobanu C, Poiata A, Mircea C, Nicolescu A. Antibacterial and antioxidant properties of hesperidin: β- cyclodextrin complexes obtained by different techniques. J Incl Phenom Macrocycl Chem. 2015;81(1):71-84.  https://doi.org/10.1007/s10847-014-0434-2
  74. Syahputra RA, Harahap U, Dalimunthe A, Nasution MP, Satria D. The Role of Flavonoids as a Cardioprotective Strategy against Doxorubicin-Induced Cardiotoxicity: A Review. Molecules. 2022;27(4):1320. https://doi.org/10.3390/molecules27041320
  75. Rezaee R, Sheidary A, Jangjoo S, Ekhtiary S, Bagheri S, Kohkan Z, Dadres M, Oana Docea A, Tsarouhas K, Sarigiannis DA, Karakitsios S, Tsatsakis A, Kovatsi L, Hashemzaei M. Cardioprotective effects of hesperidin on carbon monoxide poisoned in rats. Drug Chem Toxicol. 2021;44(6):668-673.  https://doi.org/10.1080/01480545.2019.1650753
  76. Dias MC, Pinto DCGA, Silva AMS. Plant Flavonoids: Chemical Characteristics and Biological Activity. Molecules. 2021;26(17):5377. https://doi.org/10.3390/molecules26175377
  77. Aruoma OI, Landes B, Ramful-Baboolall D, Bourdon E, Neergheen-Bhujun V, Wagner KH, Bahorun T. Functional benefits of citrus fruits in the management of diabetes. Prev Med. 2012;54:12-16.  https://doi.org/10.1016/j.ypmed.2012.02.012
  78. Ali AM, Gabbar MA, Abdel-Twab SM, Fahmy EM, Ebaid H, Alhazza IM, Ahmed OM. Antidiabetic Potency, Antioxidant Effects, and Mode of Actions of Citrus reticulata Fruit Peel Hydroethanolic Extract, Hesperidin, and Quercetin in Nicotinamide/Streptozotocin-Induced Wistar Diabetic Rats. Oxid Med Cell Longev. 2020;2020:1730492. https://doi.org/10.1155/2020/1730492
  79. Al-Goblan AS, Al-Alfi MA, Khan MZ. Mechanism linking diabetes mellitus and obesity. Diabetes Metab Syndr Obes. 2014;7:587-591.  https://doi.org/10.2147/DMSO.S67400
  80. Amor S, Puentes F, Baker D, van der Valk P. Inflammation in neurodegenerative diseases. Immunology. 2010;129(2):154-169.  https://doi.org/10.1111/j.1365-2567.2009.03225.x
  81. Hwang SL, Shih PH, Yen GC. Neuroprotective effects of citrus flavonoids. J Agric Food Chem. 2012;60(4):877-885.  https://doi.org/10.1021/jf204452y
  82. Roohbakhsh A, Parhiz H, Soltani F, Rezaee R, Iranshahi M. Neuropharmacological properties and pharmacokinetics of the citrus flavonoids hesperidin and hesperetin — a mini-review. Life Sci. 2014 Sept 15;113(1-2):1-6. PMID: 25109791. https://doi.org/10.1016/j.lfs.2014.07.029
  83. Xiao S, Liu W, Bi J, Liu S, Zhao H, Gong N, Xing D, Gao H, Gong M. Anti-inflammatory effect of hesperidin enhances chondrogenesis of human mesenchymal stem cells for cartilage tissue repair. J Inflamm (Lond). 2018;15:14.  https://doi.org/10.1186/s12950-018-0190-y
  84. Homayouni F, Haidari F, Hedayati M, Zakerkish M, Ahmadi K. Blood pressure lowering and anti-inflammatory effects of hesperidin in type 2 diabetes; a randomized double-blind controlled clinical trial. Phytother Res. 2018;32(6):1073-1079. https://doi.org/10.1002/ptr.6046
  85. Guazelli CFS, Fattori V, Ferraz CR, Borghi SM, Casagrande R, Baracat MM, Verri WA Jr. Antioxidant and anti-inflammatory effects of hesperidin methyl chalcone in experimental ulcerative colitis. Chem Biol Interact. 2021;333:109315. https://doi.org/10.1016/j.cbi.2020.109315
  86. González A, Casado J, Lanas Á. Fighting the Antibiotic Crisis: Flavonoids as Promising Antibacterial Drugs Against Helicobacter pylori Infection. Front Cell Infect Microbiol. 2021;11:709749. https://doi.org/10.3389/fcimb.2021.709749
  87. Suriyaprom S, Mosoni P, Leroy S, Kaewkod T, Desvaux M, Tragoolpua Y. Antioxidants of Fruit Extracts as Antimicrobial Agents against Pathogenic Bacteria. Antioxidants (Basel). 2022;11(3):602.  https://doi.org/10.3390/antiox11030602
  88. Man MQ, Yang B, Elias PM. Benefits of Hesperidin for Cutaneous Functions. Evid Based Complement Alternat Med. 2019;2019:2676307. https://doi.org/10.1155/2019/2676307
  89. Musa AE, Omyan G, Esmaely F, Shabeeb D. Radioprotective Effect of Hesperidin: A Systematic Review. Medicina (Kaunas). 2019;55(7):370.  https://doi.org/10.3390/medicina55070370

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.