Лапкина Е.З.

Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого

Есимбекова А.Р.

Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого

Рукша Т.Г.

ФГБОУ ВО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Минздрава России

Васкулогенная мимикрия

Авторы:

Лапкина Е.З., Есимбекова А.Р., Рукша Т.Г.

Подробнее об авторах

Журнал: Архив патологии. 2023;85(6): 62‑69

Прочитано: 3300 раз


Как цитировать:

Лапкина Е.З., Есимбекова А.Р., Рукша Т.Г. Васкулогенная мимикрия. Архив патологии. 2023;85(6):62‑69.
Lapkina EZ, Esimbekova AR, Ruksha TG. Vasculogenic mimicry. Russian Journal of Archive of Pathology. 2023;85(6):62‑69. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/patol20238506162

Рекомендуем статьи по данной теме:

Васкулогенная мимикрия представляет собой механизм образования опухолевыми клетками микрососудистых структур для снабжения их питательными веществами и кислородом, а также распространения в отдаленные органы путем попадания одиночных или кластерных клеток, отделившихся от первичной массы опухоли и мигрировавших в систему кровотока. В настоящее время феномен описан при:

— увеальной меланоме и меланоме кожи;

— глиоме головного мозга;

— раке желудка;

— раке молочной железы;

— раке яичников;

— гепатоцеллюлярной карциноме;

— колоректальном раке.

Подобное явление характеризует пластичность опухолевых клеток, которые способны формировать сосудистые сети de novo, что связано со злокачественным фенотипом опухолей, повышенной резистентностью к химиотерапии и плохим клиническим исходом [1, 2].

Васкулогенная мимикрия развивается в высокоагрессивных солидных опухолях и является одним из вариантов неоангиогенеза, отличающимся отсутствием эндотелиальных клеток в структурированных трехмерных сосудоподобных структурах, содержащих в просветах эритроциты [3]. Расширение сосудистой сети при росте опухоли обусловлено недостаточным поступлением необходимых метаболитов в опухолевые клетки, что приводит к стимуляции различных вариантов дополнительной васкуляризации опухоли:

— прорастание и инвагинирующий тип ангиогенеза;

— кооптация сосудов;

— трансдифференцировка опухолевых клеток;

— васкулогенная мимикрия [4, 5].

Ангиогенез опухоли подразумевает образование новых сосудов за счет прорастания из ранее существовавших структур кровообращения. Сосудистая кооптация — формирование резистентности к антиангиогенной терапии, при котором опухоль растет вдоль существующих сосудов. Васкулогенная мимикрия — механизм развития новых сосудов, когда опухолевые стволовые клетки создают сосудистую сеть de novo, что также связано с формированием резистентности к антиангиогенной терапии (рис. 1).

Рис. 1. Механизмы ангиогенеза опухолей.

До исследования феномена васкулогенной мимикрии считалось, что формирование сосудистой сети опухоли происходит параллельно физиологическим процессам неоваскуляризации, при этом прорастание эндотелия и пролиферация эндотелиоцитов являются основными путями образования новых кровеносных сосудов.

В 1999 г. A. Maniotis и соавт. [6] продемонстрировали в меланоме узорчатые (паттернированные) сосудистые каналы, характерные для агрессивной первичной и диссеминированной меланомы, отличающиеся от ангиогенных сосудов тем, что сосудистые каналы в опухоли были встроены в высокоструктурированный матрикс с отсутствием эндотелия и образованы скоплениями опухолевых клеток, тогда как ангиогенные сосуды характеризуются монослоем эндотелиальных клеток и не имеют специфического узора. Впоследствии было установлено, что эти каналы имитируют нормальные сосуды и сформированы опухолевыми клетками, толерантными к антиангиогенной терапии [7].

В исследованиях особенностей сосудов, образованных опухолевыми клетками, определено, что они содержат структуры, позитивные при ШИК-реакции, это в свою очередь указывает на наличие гликопротеинов, полисахаридов, гликолипидов, и не экспрессируют эндотелиальные маркеры, такие как CD31 или CD34. Наличие ШИК-положительных веществ в CD31-негативных клетках меланомы в настоящее время рассматривается в качестве маркера клеток меланомы, участвующих в формировании феномена васкулогенной мимикрии. Молекулярные изменения, лежащие в основе васкулогенной мимикрии, традиционно подтверждаются на моделях высокоинвазивных клеточных линий, а функциональность полых структур подтверждена in vitro при перфузии красителя и в биоптатах опухоли с определением наличия эритроцитов в просвете структур васкулогенной мимикрии [6,7].

Описаны два типа васкулогенной мимикрии:

1. Узорчатый тип состоит из островков опухолевых клеток, окруженных внеклеточным матриксом, компонентом которого является ламинин или гепарансульфат. Морфологически структуры этого типа значительно отличаются от обычных кровеносных сосудов, но способны формировать с ними анастомозы [8].

2. Трубчатый тип имитирует нормальный эндотелий сосудов и образует полые и перфузируемые трубчатые каналы, выстилаемые опухолевыми клетками.

В опухоли, содержащей каналы васкулогенной мимикрии, при сниженной плотности сосудов отсутствует некроз, что доказывает наличие альтернативного кровоснабжения. Таким образом, васкулогенная мимикрия является вариантом экстраваскулярной сети и представлена каналами, содержащими эритроциты и плазму крови между опухолевыми клетками, отрицательными к маркерам эндотелиальных клеток CD31 и CD34 и содержащими ШИК-положительные вещества [9]. У пациентов с меланомой кожи, имеющих в опухоли признаки васкулогенной мимикрии, медиана выживаемости составила 15 мес и была ниже, чем у пациентов без признаков подобных изменений в опухоли [10].

К потенциальным механизмам образования каналов, характерных для васкулогенной мимикрии, относятся: участие процесса эпителиально-мезенхимального перехода и опухолевых стволовых клеток, а также активация различных сигнальных путей с вовлечением кадгерина сосудистого эндотелия (VE-кадгерин), эритропоэтинпродуцирующего гепатоцеллюлярного рецептора A2 (EphA2), фосфатидилинозитол-3-киназы (PI3K), матриксных металлопротеиназ (MMPs), рецептора фактора роста эндотелия сосудов (VEGFR1), циклического аденозинмонофосфата (цАМФ), киназы фокальной адгезии (FAK) и индуцируемого гипоксией фактора-1α (HIF-1α). Выявлено, что при формировании каналов васкулогенной мимикрии в опухолевых клетках активируются многочисленные регуляторы эпителиально-мезенхимального перехода и соответствующие факторы транскрипции [10]. При развитии эпителиально-мезенхимального перехода наблюдаются изменения, при которых эпителиальные клетки ослабляют свое прикрепление к соседним клеткам и теряют апико-базальную полярность, приобретая черты мезенхимальных клеток, начиная экспрессировать виментин, N-кадгерин и фибронектин [11].

Таким образом, формирование структур васкулогенной мимикрии представляет собой сложный процесс, в котором задействованы разнообразные механизмы. Можно предположить, что активация молекул адгезии, связанных с эпителиально-мезенхимальным переходом, может также вносить вклад в развитие васкулогенной мимикрии и открывает новые возможности терапевтических стратегий для противоопухолевой терапии через целенаправленное воздействие на белки с повышенной экспрессией при активации эпителиально-мезенхимального перехода.

Связь васкулогенной мимикрии с функционированием опухоли и микроокружением

Несмотря на сходство между эпителиально-мезенхимальным переходом и васкулогенной мимикрией, в нескольких исследованиях подчеркивается определяющая роль опухолевого микроокружения в развитии васкулогенной мимикрии. Микроокружение опухоли представляет собой сложную клеточную среду, в которой наибольшее влияние на развитие васкулогенной мимикрии оказывают следующие компоненты:

Опухолевые стволовые клетки. Это немногочисленные популяции клеток, способные инициировать образование новых очагов опухолевого роста в соответствующих условиях и являющиеся причиной прогрессирования, инвазии, метастазирования и резистентности к терапии новообразований [12]. Экспрессия маркеров васкулогенной мимикрии в опухолевых стволовых клетках указывает на то, что последние могут участвовать в этом процессе. В частности, CD133+ опухолевые клетки сохраняют пролиферативную активность и способны дифференцироваться в другие типы клеток [13]. Еще одним биомаркером опухолевых стволовых клеток при злокачественных новообразованиях печени, легких, яичников, желудка, молочной железы и прямой кишки является альдегиддегидрогеназа 1 (ALDH1), индуктор пролиферации и дифференцировки опухолевых клеток [14]. В недавних исследованиях трижды негативного рака молочной железы было подтверждено, что опухолевые стволовые клетки напрямую принимают участие в формировании каналов васкулогенной мимикрии, обеспечивают синергизм их образования CD133+ и ALDH1+ клетками in vivo [15].

Ассоциированные с опухолью фибробласты. Под воздействием продуцируемого опухолевыми клетками и опухоль-ассоциированными фибробластами фактора роста сосудистого эндотелия (VEGF) эндотелиальные клетки прорастают из ранее существовавших кровеносных сосудов во время индуцированного опухолью ангиогенеза, а опухолевые клетки интегрируются в эндотелий или мимикрируют и замещают его в сосудах васкулогенной мимикрии [16]. Ассоциированные с опухолью фибробласты являются основными компонентами стромы, пулом коллагенпродуцирующих клеток, которые окружают опухолевые клетки и принимают участие в процессах ангиогенеза, метастазирования, иммуногенности и резистентности к терапии, играя значимую роль в прогрессировании злокачественных новообразований. Показано, что плотность опухолеассоциированных фибробластов повышается при гепатоцеллюлярной карциноме [17]. Описана роль ассоциированных с опухолью фибробластов в развитии структур васкулогенной мимикрии при раке желчного пузыря за счет усиления экспрессии оксидазы NOX4 посредством активации сигнального каскада IL-6-JAK-STAT3, регулирующей процессы адгезии и миграции клеток. Повышение уровня NOX в опухоли при раке желчного пузыря было связано с негативным прогнозом течения заболевания [18]. Показано, что кондиционированная среда, полученная от опухолеассоциированных фибробластов, способствует формированию опухолевыми клетками капилляроподобной структуры in vitro при меланоме [17].

Опухолеассоциированные макрофаги являются ключевыми клетками, которые создают иммуносупрессивное микроокружение опухоли, продуцируя цитокины, хемокины, факторы роста и запуская высвобождение ингибирующих белков иммунных контрольных точек в T-клетках. При этом они выполняют важные функции, способствуя диссеминации опухолевых клеток. В ранних исследованиях показано, что наличие признаков васкулогенной мимикрии ассоциировано с повышенным уровнем макрофагов в микроокружении [19]. Позднее стало известно, что опухолеассоциированные макрофаги регулируются сложными молекулярными сигналами, в том числе множеством белков, составляющих контрольные точки иммунного ответа, которые являются мишенями для иммунотерапевтических противоопухолевых средств [20]. Исследования показали, что блокада иммуноглобулиноподобных рецепторов лейкоцитов LILRB2 LILRB2-специфичными моноклональными антителами вызывает поляризацию макрофагов в сторону воспалительного фенотипа и усиливает провоспалительные реакции, таким образом действуя как миелоидный иммунный контрольный пункт, перепрограммируя опухолеассоциированнные макрофаги и провоцируя противоопухолевый иммунитет. Сравнительно недавно при анализе биоптатов, полученных от 417 пациентов с меланомой кожи, было установлено, что наличие выраженного ангиогенеза в опухоли, в том числе признаков васкулогенной мимикрии, коррелирует не только с повышенным количеством макрофагов, но и с наличием изъязвления опухоли и рассматривается как неблагоприятный прогностический фактор [21]. Повышенное присутствие макрофагов при наличии в опухоли структур васкулогенной мимикрии соотносится с данными L. Tan и соавт. [22], указывающими, что клетки меланомы при этом экспрессируют высокое количество молекул адгезии, а это способствует рекрутингу лейкоцитов, включая макрофаги. Опухолеассоциированные макрофаги, в основном присутствующие в виде иммуносупрессивного фенотипа M2, при глиобластоме способны стимулировать генерацию структур васкулогенной мимикрии в зависимости от уровня циклооксигеназы-2, опосредуя взаимодействия провоспалительных и периваскулярных компонентов микроокружения [23]. Исследования клеточных линий глиомы in vitro показали, что M2-подобные макрофаги способствуют развитию васкулогенной мимикрии при почечно-клеточном раке посредством высвобождения экзосомальных частиц, содержащих микроРНК miR-193a-5p, которая в свою очередь снижает уровень тканевого ингибитора металлопротеиназы 2 в опухолевых клетках, влияя на опухолевую прогрессию, в том числе на формирование структур васкулогенной мимикрии [24]. Макрофаги со сверхэкспрессией белка метадгерина способствуют миграции и инвазии опухолевых клеток, принимающих участие в развитии васкулогенной мимикрии in vitro при плоскоклеточном раке головы и шеи через активацию сигнального пути VEGFA-165/Flt-1 [25]. Также установлено, что в условиях гипоксии клетки глиобластомы высвобождают фактор, ингибирующий миграцию макрофагов (MIF), что приводит к активации сигнального каскада CXCR4-AKT. Таким образом, MIF функционирует в качестве медиатора гипоксии и через активацию CXCR4 индуцирует эпителиально-мезенхимальный переход, лежащий в основе развития структур васкулогенной мимикрии [26].

В микроокружении опухоли сразу несколько факторов могут влиять на исход и прогрессирование опухолевого процесса. Например, гипоксия и воспаление способствуют повышению пластичности опухолевых клеток, что может инициировать как эпителиально-мезенхимальный переход, так и развитие васкулогенной мимикрии. Одновременно опухолеассоциированные макрофаги, также являющиеся важными медиаторами микроокружения опухоли, усиливают провоспалительный характер микроокружения и могут взаимодействовать сразу с несколькими стромальными клетками, внося вклад в стабилизацию формирующейся сети васкулогенной мимикрии.

Сигнальные пути, вовлеченные в формирование васкулогенной мимикрии злокачественных новообразований

Мультипотентный фенотип опухолевых клеток лежит в основе функциональной пластичности васкулогенной мимикрии и поддерживается сложной интеграцией внутриклеточных сигнальных каскадов.

Основные гены и белки, модулирующие процесс неоангиогенеза по типу васкулогенной мимикрии, могут быть классифицированы в соответствии с механизмами передачи сигнала, связанными с ангиогенезом, стволовыми клетками, микроокружением опухоли и гипоксией. Схематичная модель сигнальных путей, вовлеченных в развитие васкулогенной мимикрии, наиболее полно представлена R. Seftor и соавт. [27] (рис. 2).

Рис. 2. Сигнальные пути васкулогенной мимикрии.

Молекулы, связанные с ангиогенезом, обозначены красным цветом, с эмбриональными стволовыми клетками — зеленым, с микроокружением опухоли — фиолетовым, с гипоксией — синим. Молекулы, заштрихованные двумя разными цветами, демонстрируют перекрытие между основными сигнальными путями. Знаки вопроса — потенциальное участие в модуляции васкулогенной мимикрии в опухолевых клетках, для которых основные сигнальные пути еще четко не определены.

Впервые установленными белками, участвующими в формировании структур васкулогенной мимикрии при меланоме, были VE-кадгерин, молекула межклеточной адгезии, связанная с эндотелиальными клетками (ICAM-1), и рецептор 2 эфрина типа A (EphA2)-киназа, ассоциированная с эпителиальными клетками, участвующая в эфрин-A1-индуцированном ангиогенезе. VE-кадгерин представляет собой трансмембранный гликопротеин семейства кадгеринов, который способствует гомотипическим межклеточным взаимодействиям и считается специфичным для эндотелия сосудов, критическим для васкулогенных явлений. Было продемонстрировано, что при подавлении VE-кадгерина или EphA2 происходит ингибирование процесса васкулогенной мимикрии [28].

В дальнейших исследованиях ряд авторов установили важность цитоплазматических киназ, участвующих в процессах формирования васкулогенной мимикрии в опухолях, включая фосфоинозитид-3-киназу (PI3K) и FAK, киназу фокальной адгезии. Показана способность фосфорилированного эфринового рецептора EphA2 активировать PI3K и усиливать экспрессию матриксных металлопротеиназ 14 и 2 (MMP14, MMP2). MMP14, MMP2 способствуют расщеплению 5γ2-цепи ламинина на промигрирующие фрагменты γ2′ и γ2x, которые в свою очередь стимулируют миграцию, инвазию и васкулогенную мимикрию в клетках меланомы [29].

Кроме того, для опухолевых клеток характерна пластичность генотипа и способность к развитию васкулогенной мимикрии через механизмы передачи сигнала, опосредованные VEGFR1 [30]. Также показано, что и EphA2 может влиять на экспрессию VEGF, индуцированный VEGF ангиогенез в клетках карциномы молочной железы и островков поджелудочной железы, что указывает на роль EphA2 в формировании структур васкулогенной мимикрии, опосредованном VEGF [31]. Установлено, что аутокринная секреция фактора роста сосудистого эндотелия A (VEGF-A) активирует сигнальный каскад PI3K/PKCα и опосредуемую интегринами активацию VEGFR1, тем самым стимулируя развитие васкулогенной мимикрии [32]. Нокаут VEGF в клеточной линии меланомы хориоидеи OCM-1 приводил к нарушению структур васкулогенной мимикрии посредством дисрегуляции сигнального каскада PI3/AKT [33].

Выделяют два наиболее важных сигнальных пути, участвующих в регуляции эмбриональных стволовых клеток и функционирующих в агрессивных опухолевых клетках, способствуя васкулогенной мимикрии, — Notch и Nodal [34]. Во время эмбрионального развития экспрессия Nodal находится под влиянием рецептора Notch. Передача сигналов с участием Notch играет важную роль в ангиогенезе опухоли, регулируя прогрессирование первичной меланомы в сторону агрессивного фенотипа. Показано, что экспрессия Notch4 стимулирует формирование сетчатой структуры сосудов при меланоме кожи [35]. Установлено, что целенаправленное ингибирование активности Notch4 уменьшало формирование структур васкулогенной мимикрии на фоне снижения экспрессии VE-кадгерина [34].

Ключевым регулятором экспрессии генов, чувствительных к Notch, является фактор, индуцируемый гипоксией 1α (HIF-1α). Гипоксия рассматривается как отличительная черта большинства опухолей, она регулирует процессы поддержания фенотипа, подобного стволовым клеткам, и развитие феномена васкулогенной мимикрии [36]. Гипоксия способствует формированию васкулогенной мимикрии, индуцируя эпителиально-мезенхимальный переход при раке яичников [37]. Более того, гипоксия напрямую модулирует экспрессию генов VEGF-A, VEGFR1, EphA2, Twist-родственного белка 1 (Twist1), Nodal, COX-2 [38]. В условиях гипоксии повышается генерация митохондриями активных форм кислорода. Активные формы кислорода регулируют стабильность HIF-1α, что в свою очередь активирует протоонкоген MET, запуская метастатическую программу клеток меланомы, усиливая их распространение во внеклеточном матриксе, активируя рост метастатических колоний и способность образовывать капилляроподобные структуры за счет васкулогенной мимикрии [39].

Таким образом, результаты исследования сигнальных путей, участвующих в формировании васкулогенной мимикрии, подчеркивают пластичность опухолевых клеток, обусловленную их недифференцированным состоянием.

Некодирующие РНК как регуляторы развития васкулогенной мимикрии в злокачественных новообразованиях и перспективы терапевтического воздействия

Некодирующие РНК — это функциональные молекулы РНК, которые играют важную регуляторную роль и подразделяются на длинные (более 200 нуклеотидов), малые (менее 200 нуклеотидов), микроРНК (меньше 50 нуклеотидов) [40].

Глиома головного мозга обладает наибольшей способностью к образованию структур васкулогенной мимикрии, в связи с чем имеется ряд исследований о супрессорной и промоторной роли микроРНК, об их участии в этом процессе. Способность глиомы головного мозга к васкулогенной мимикрии подавляется микроРНК miR-Let-7f посредством блокирования периостина, опосредующего миграцию клеток [41]. MiR-584-3p супрессирует индуцированное гипоксией образование протеинкиназы ROCK1 стрессовых волокон, ингибируя дальнейшее формирование структур васкулогенной мимикрии в опухолях. Рецептор тирозинкиназы EphA2 является мишенью miR-141 и имеет отрицательную корреляцию с ее уровнями в клетке [42].

Транскрипционный фактор Twist1, который идентифицирован как прямая мишень микроРНК miR-539-5p, активирует промоторную активность MMP2 и MMP14 [43]. Также в исследованиях показано, что miR-373 способствует повышению экспрессии VE-кадгерина, MMP2 и MMP9 опосредованно через рецептор эпидермального фактора роста (EGFR) [44].

Образование структур васкулогенной мимикрии при гепатоцеллюлярной карциноме ингибируется посредством miR-27a-3p, мишенью которой является 3’-нетранслируемая область (3’-UTR) VE-кадгерина [45]. Показано, что miR-204 может осуществлять тонкую регуляцию сигнальных каскадов PI3K/AKT/FAK, критически важных для формирования васкулогенной мимикрии [46]. При раке яичников уровни экспрессии miR-200a и miR-27b обратно коррелируют с образованием васкулогенной мимикрии, miR-200a регулирует экспрессию EphA2, а miR-27b связывается с 3’-UTR мРНК VE-кадгерина [47, 48].

Экспериментальные терапевтические подходы в отношении васкулогенной мимикрии

Одним из способов лечения злокачественных новообразований является терапия антиангиогенными препаратами, способными индуцировать апоптоз и ингибировать пролиферацию эндотелиальных клеток. Известно, что антиангиогенные препараты индуцируют развитие гипоксии, однако гипоксия стимулирует образование структур васкулогенной мимикрии и тем самым способствует снижению терапевтической эффективности этих средств.

Образование структур васкулогенной мимикрии обусловливает терапевтическую резистентность опухоли, наблюдаемую при химиотерапии, так как опухолевые клетки, резистентные к действию противоопухолевого агента, могут образовывать структуры васкулогенной мимикрии для обеспечения необходимыми метаболитами и кислородом, что повышает устойчивость опухолевых клеток.

В последнее время показаны перспективы таргетного воздействия на такие молекулярные мишени, как VEGF, MMP2, MMP14, FAK, TGF-β, VE-кадгерин, стимулирующие и способствующие васкулогенной мимикрии, что может влиять на эффективность терапии антиангиогенными препаратами. Показано, что гинзенозид Rg3 (тетрациклический тритерпеноидный сапонин) снижал выраженность структур васкулогенной мимикрии при раке поджелудочной железы в ксенотрансплантационных мышиных моделях, в то время как экспрессия мРНК и белков VE-кадгерина, EphA2, MMP2 и MMP9 подавлялась обработкой гинзенозидом Rg3 in vitro и in vivo [49]. Талидомид ингибирует образование каналов васкулогенной мимикрии и мозаичных сосудов при меланоме за счет регуляции VEGF, ядерного антигена пролиферирующих клеток (PCNA), MMP2 и MMP9 и может индуцировать некроз клеток меланомы, что дает основание рассматривать талидомид для лечения солидных опухолей с признаками васкулогенной мимикрии [50]. Никлозамид ингибировал пролиферацию клеток плоскоклеточного рака ротовой полости, способствовал их апоптозу и ингибировал образование структур васкулогенной мимикрии in vitro и in vivo посредством подавления экспрессии генов VEGFA, MMP2 и ROCK1 [51]. В экспериментах in vitro на клетках рака легкого обнаружено разрушение каналов васкулогенной мимикрии и ингибирование метастазирования опухоли мицеллами паклитаксела и лигустразина, модифицированными деквалинием, путем ингибирования экспрессии VEGF, MMP2, TGF-β1 и VE-кадгерина [52].

Рапамицин (сиролимус), ингибитор мишени рапамицина у млекопитающих (mTOR) и HIF-1α, способен предотвращать развитие васкулогенной мимикрии при раке яичников за счет подавления CD31 [53]. Обнаружена способность ингибиторов гистоновой деацетилазы ингибировать образование капилляроподобных структур васкулогенной мимикрии на модели глиомы головного мозга у крыс [54].

Воздействие на клетки рака молочной железы ингибитором гистоновой деацетилазы энтиностатом снижает экспрессию VEGF-A и генов, связанных с эпителиально-мезенхимальным переходом, виментина и β-катенина [55]. Наиболее эффективным способом воздействия на пластичность опухолевых клеток является одновременное ингибирование нескольких сигнальных путей. Показано, что комбинированная терапия бевацизумабом и дибензазепином для блокирования передачи сигналов дельтаподобного лиганда 4 (DLL4)-Notch может повысить эффективность ингибиторов VEGF ксенотрансплантатов опухоли глиобластомы человека [56]. Другим перспективным способом воздействия является комбинаторный подход, влияющий на компоненты сигнальных каскадов Notch и VEGF.

Заключение

Васкулогенная мимикрия опухолевых клеток иллюстрирует функциональную пластичность агрессивного фенотипа опухолевых клеток и может обеспечить дополнительные источники кровоснабжения опухоли. Механизмы и сигнальные пути, регулирующие образование каналов васкулогенной мимикрии в опухолях, требуют дальнейшего изучения в качестве потенциальных терапевтических целей и диагностических индикаторов пластичности, лекарственной устойчивости и агрессивного метастатического фенотипа опухолевых клеток.

Исследование выполнено при поддержке Российского научного фонда (№19-15-00110, https://rscf</em>.ru/project/ 19-15-00110/).

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Hendrix MJ, Seftor EA, Seftor RE, Chao JT, Chien DS, Chu YW. Tumor cell vascular mimicry: novel targeting opportunity in melanoma. Pharmacol Ther. 2016;159:83-92.  https://doi.org/10.1016/j.pharmthera.2016.01.006
  2. Andreucci E, Peppicelli S, Ruzzolini J, Bianchini F, Calorini L. Physicochemical aspects of the tumour microenvironment as drivers of vasculogenic mimicry. Cancer Metastasis Rev. 2022;41(4):935-951.  https://doi.org/10.1007/s10555-022-10067-x
  3. Krishna Priya S, Nagare RP, Sneha VS, Sidhanth C, Bindhya S, Manasa P, Ganesan TS. Tumour angiogenesis-origin of blood vessels. Int J Cancer. 2016;139(4):729-735.  https://doi.org/10.1002/ijc.30067
  4. Harry JA, Ormiston ML. Novel pathways for targeting tumor angiogenesis in metastatic breast cancer. Front Oncol. 2021;11:772305. https://doi.org/10.3389/fonc.2021.772305
  5. Kuczynski EA, Vermeulen PB, Pezzella F, Kerbel RS, Reynolds AR. Vessel co-option in cancer. Nat Rev Clin Oncol. 2019;16(8):469-493.  https://doi.org/10.1038/s41571-019-0181-9
  6. Maniotis AJ, Folberg R, Hess A, Seftor EA, Gardner LM, Pe’er J, Trent JM, Meltzer PS, Hendrix MJ. Vascular channel formation by human melanoma cells in vivo and in vitro: vasculogenic mimicry. Am J Pathol. 1999;155(3):739-752. 
  7. Treps L, Faure S, Clere N. Vasculogenic mimicry, a complex and devious process favoring tumorigenesis — interest in making it a therapeutic target. Pharmacol Ther. 2021;223:107805. https://doi.org/10.1016/j.pharmthera.2021.107805
  8. Valdivia A, Mingo G, Aldana V, Pinto MP, Ramirez M, Retamal C, Gonzalez A, Nualart F, Corvalan AH, Owen GI. Fact or fiction, it is time for a verdict on vasculogenic mimicry? Front Oncol. 2019;9:680.  https://doi.org/10.3389/fonc.2019.00680
  9. Stålhammar G, See TRO, Phillips SS, Grossniklaus HE. Density of PAS positive patterns in uveal melanoma: correlation with vasculogenic mimicry, gene expression class, BAP-1 expression, macrophage infiltration, and risk for metastasis. Mol Vis. 2019;25:502-516. 
  10. Liu Q, Qiao L, Liang N, Xie J, Zhang J, Deng G, Luo H, Zhang J. The relationship between vasculogenic mimicry and epithelial-mesenchymal transitions. J Cell Mol Med. 2016;20(9):1761-1769. https://doi.org/10.1111/jcmm.12851
  11. Kim H, Lee S, Shin E, Seong KM, Jin YW, Youn H, Youn B. The emerging roles of exosomes as EMT regulators in cancer. Cells. 2020;9(4):861.  https://doi.org/10.3390/cells9040861
  12. Peitzsch C, Tyutyunnykova A, Pantel K, Dubrovska A. Cancer stem cells: the root of tumor recurrence and metastases. Semin Cancer Biol. 2017;44:10-24.  https://doi.org/10.1016/j.semcancer.2017.02.011
  13. Zhang D, Sun B, Zhao X, Sun H, An J, Lin X, Zhu D, Zhao X, Wang X, Liu F, et al. Twist1 accelerates tumour vasculogenic mimicry by inhibiting Claudin15 expression in triple-negative breast cancer. J Cell Mol Med. 2020;24(13):7163-7174. https://doi.org/10.1111/jcmm.15167
  14. Vishnubalaji R, Manikandan M, Fahad M, Hamam R, Alfayez M, Kassem M, Aldahmash A, Alajez NM. Molecular profiling of ALDH1+ colorectal cancer stem cells reveals preferential activation of MAPK, FAK, and oxidative stress pro-survival signalling pathways. Oncotarget. 2018;9(17):13551-13564. https://doi.org/10.18632/oncotarget.24420
  15. Sun H, Yao N, Cheng S, Li L, Liu S, Yang Z, Shang G, Zhang D, Yao Z. Cancer stem-like cells directly participate in vasculogenic mimicry channels in triple-negative breast cancer. Cancer Biol Med. 2019;16(2):299-311.  https://doi.org/10.20892/j.issn.2095-3941.2018.0209
  16. Cavaco A, Rezaei M, Niland S, Eble JA. Collateral damage intended-cancer-associated fibroblasts and vasculature are potential targets in cancer therapy. Int J Mol Sci. 2017;18(11):2355. https://doi.org/10.3390/ijms18112355
  17. Yang J, Lu Y, Lin YY, Zheng ZY, Fang JH, He S, Zhuang SM. Vascular mimicry formation is promoted by paracrine TGF-β and SDF1 of cancer-associated fibroblasts and inhibited by miR-101 in hepatocellular carcinoma. Cancer Lett. 2016;383(1):18-27.  https://doi.org/10.1016/j.canlet.2016.09.012
  18. Pan MS, Wang H, Ansari KH, Li XP, Sun W, Fan YZ. Gallbladder cancer-associated fibroblasts promote vasculogenic mimicry formation and tumor growth in gallbladder cancer via upregulating the expression of NOX4, a poor prognosis factor, through IL-6-JAK-STAT3 signal pathway. J Exp Clin Cancer Res. 2020;39(1):234.  https://doi.org/10.1186/s13046-020-01742-4
  19. Shi L, Lei D, Ma C, Xu F, Li Y, Wang Y, Cong N, Liu D, Pan XL. Clinicopathological implications of tumour-associated macrophages and vascularization in sinonasal melanoma. J Int Med Res. 2010;38(4):1276-1286. https://doi.org/10.1177/147323001003800409
  20. Tsai YM, Wu KL, Liu YW, Chang WA, Huang YC, Chang CY, Tsai PH, Liao SH, Hung JY, Hsu YL. Cooperation between cancer and fibroblasts in vascular mimicry and N2-type neutrophil recruitment via Notch2-Jagged1 interaction in lung cancer. Front Oncol. 2021;11:696931. https://doi.org/10.3389/fonc.2021.696931
  21. Barricklow Z, DiVincenzo MJ, Angell CD, Carson WE. Ulcerated cutaneous melanoma: a review of the clinical, histologic, and molecular features associated with a clinically aggressive histologic phenotype. Clin Cosmet Investig Dermatol. 2022;15:1743-1757. https://doi.org/10.2147/CCID.S372287
  22. Tan LY, Cockshell MP, Moore E, Myo Min KK, Ortiz M, Johan MZ, Ebert B, Ruszkiewicz A, Brown MP, Ebert LM, et al. Vasculogenic mimicry structures in melanoma support the recruitment of monocytes. Oncoimmunology. 2022;11(1):2043673. https://doi.org/10.1080/2162402X.2022.2043673
  23. Rong X, Huang B, Qiu S, Li X, He L, Peng Y. Tumor-associated macrophages induce vasculogenic mimicry of glioblastoma multiforme through cyclooxygenase-2 activation. Oncotarget. 2016;7(51):83976-83986. https://doi.org/10.18632/oncotarget.6930
  24. Liu Q, Zhao E, Geng B, Gao S, Yu H, He X, Li X, Dong G, You B. Tumor-associated macrophage-derived exosomes transmitting miR-193a-5p promote the progression of renal cell carcinoma via TIMP2-dependent vasculogenic mimicry. Cell Death Dis. 2022;13(4):382.  https://doi.org/10.1038/s41419-022-04814-9
  25. Zhang L, Xu Y, Sun J, Chen W, Zhao L, Ma C, Wang Q, Sun J, Huang B, Zhang Y, et al. M2-like tumor-associated macrophages drive vasculogenic mimicry through amplification of IL-6 expression in glioma cells. Oncotarget. 2017;8(1):819-832.  https://doi.org/10.18632/oncotarget.13661
  26. Zhang L, Xu Y, Sun J, Chen W, Zhao L, Ma C, Wang Q, Sun J, Huang B, Zhang Y, et al. M2-like tumor-associated macrophages drive vasculogenic mimicry through amplification of IL-6 expression in glioma cells. Oncotarget. 2017;8(1):819-832.  https://doi.org/10.18632/oncotarget.13661
  27. Seftor RE, Hess AR, Seftor EA, Kirschmann DA, Hardy KM, Margaryan NV, Hendrix MJ. Tumor cell vasculogenic mimicry: from controversy to therapeutic promise. Am J Pathol. 2012;181(4):1115-1125. https://doi.org/10.1016/j.ajpath.2012.07.013
  28. Hess AR, Seftor EA, Gruman LM, Kinch MS, Seftor RE, Hendrix MJ. VE-cadherin regulates EphA2 in aggressive melanoma cells through a novel signaling pathway: implications for vasculogenic mimicry. Cancer Biol Ther. 2006;5(2):228-233.  https://doi.org/10.4161/cbt.5.2.2510
  29. Hess AR, Seftor EA, Seftor RE, Hendrix MJ. Phosphoinositide 3-kinase regulates membrane Type 1-matrix metalloproteinase (MMP) and MMP-2 activity during melanoma cell vasculogenic mimicry. Cancer Res. 2003;63(16):4757-4762.
  30. Koch S, Tugues S, Li X, Gualandi L, Claesson-Welsh L. Signal transduction by vascular endothelial growth factor receptors. Biochem J. 2011;437(2):169-183.  https://doi.org/10.1042/BJ20110301
  31. Brantley-Sieders DM, Fang WB, Hwang Y, Hicks D, Chen J. Ephrin-A1 facilitates mammary tumor metastasis through an angiogenesis-dependent mechanism mediated by EphA receptor and vascular endothelial growth factor in mice. Cancer Res. 2006;66(21): 10315-10324. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-06-1560
  32. Vartanian A, Stepanova E, Grigorieva I, Solomko E, Baryshnikov A, Lichinitser M. VEGFR1 and PKCα signaling control melanoma vasculogenic mimicry in a VEGFR2 kinase-independent manner. Melanoma Res. 2011;21(2):91-98.  https://doi.org/10.1097/CMR.0b013e328343a237
  33. Xu X, Zong Y, Gao Y, Sun X, Zhao H, Luo W, Jia S. VEGF induce vasculogenic mimicry of choroidal melanoma through the PI3k signal pathway. Biomed Res Int. 2019;2019:3909102. https://doi.org/10.1155/2019/3909102
  34. Hardy KM, Kirschmann DA, Seftor EA, Margaryan NV, Postovit LM, Strizzi L, Hendrix MJ. Regulation of the embryonic morphogen Nodal by Notch4 facilitates manifestation of the aggressive melanoma phenotype. Cancer Res. 2010;70(24):10340-10350. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-10-0705
  35. Vartanian A, Gatsina G, Grigorieva I, Solomko E, Dombrovsky V, Baryshnikov A, Stepanova E. The involvement of Notch signaling in melanoma vasculogenic mimicry. Clin Exp Med. 2013;13(3):201-209.  https://doi.org/10.1007/s10238-012-0190-9
  36. Kirschmann DA, Seftor EA, Hardy KM, Seftor RE, Hendrix MJ. Molecular pathways: vasculogenic mimicry in tumor cells: diagnostic and therapeutic implications. Clin Cancer Res. 2012;18(10): 2726-2732. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-11-3237
  37. Du J, Sun B, Zhao X, Gu Q, Dong X, Mo J, Sun T, Wang J, Sun R, Liu Y. Hypoxia promotes vasculogenic mimicry formation by inducing epithelial-mesenchymal transition in ovarian carcinoma. Gynecol Oncol. 2014;133(3):575-583.  https://doi.org/10.1016/j.ygyno.2014.02.034
  38. Fernández-Barral A, Orgaz JL, Gomez V, del Peso L, Calzada MJ, Jiménez B. Hypoxia negatively regulates antimetastatic PEDF in melanoma cells by a hypoxia inducible factor-independent, autophagy dependent mechanism. PLoS One. 2012;7(3):e32989. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0032989
  39. Comito G, Calvani M, Giannoni E, Bianchini F, Calorini L, Torre E, Migliore C, Giordano S, Chiarugi P. HIF-1α stabilization by mitochondrial ROS promotes Met-dependent invasive growth and vasculogenic mimicry in melanoma cells. Free Radic Biol Med. 2011;51(4):893-904.  https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2011.05.042
  40. Salinas-Vera YM, Gallardo-Rincón D, García-Vázquez R, Hernández-de la Cruz ON, Marchat LA, González-Barrios JA, Ruíz-García E, Vázquez-Calzada C, Contreras-Sanzón E, Resendiz-Hernández M, et al. HypoxamiRs profiling identify miR-765 as a regulator of the early stages of vasculogenic mimicry in SKOV3 ovarian cancer cells. Front Oncol. 2019;9:381.  https://doi.org/10.3389/fonc.2019.00381
  41. Xue H, Gao X, Xu S, Zhang J, Guo X, Yan S, Li T, Guo X, Liu Q, Li G. MicroRNA-Let-7f reduces the vasculogenic mimicry of human glioma cells by regulating periostin-dependent migration. Oncol Rep. 2016;35(3):1771-1777. https://doi.org/10.3892/or.2016.4548
  42. Xu S, Zhang J, Xue H, Guo X, Han X, Li T, Guo X, Gao X, Liu Q, Li G. MicroRNA-584-3p reduces the vasculogenic mimicry of human glioma cells by regulating hypoxia-induced ROCK1 dependent stress fiber formation. Neoplasma. 2017;64(1):13-21.  https://doi.org/10.4149/neo_2017_102
  43. Guo J, Cai H, Liu X, Zheng J, Liu Y, Gong W, Chen J, Xi Z, Xue Y. Long non-coding RNA LINC00339 stimulates glioma vasculogenic mimicry formation by regulating the miR-539-5p/TWIST1/MMPs axis. Mol Ther Nucleic Acids. 2018;10:170-186.  https://doi.org/10.1016/j.omtn.2017.11.011
  44. Gao Y, Yu H, Liu Y, Zheng J, Ma J, Gong W, Chen J, Zhao L, Tian Y, Xue Y. Long noncoding RNA HOXA-AS2 regulates malignant glioma behaviors and vasculogenic mimicry formation via the MiR-373/EGFR axis. Cell Physiol Biochem. 2018;45(1):131-147.  https://doi.org/10.1159/000486253
  45. Zhao N, Sun H, Sun B, Zhu D, Zhao X, Wang Y, Gu Q, Dong X, Liu F, Zhang Y, et al. miR-27a-3p suppresses tumor metastasis and VM by down-regulating VE-cadherin expression and inhibiting EMT: an essential role for Twist-1 in HCC. Sci Rep. 2016;6:23091. https://doi.org/10.1038/srep23091
  46. Lozano-Romero A, Astudillo-de la Vega H, Terrones-Gurrola MCDR, Marchat LA, Hernández-Sotelo D, Salinas-Vera YM, Ramos-Payan R, Silva-Cázares MB, Nuñez-Olvera SI, Hernández-de la Cruz ON, et al. HOX transcript antisense RNA HOTAIR abrogates vasculogenic mimicry by targeting the angiomiR-204/FAK axis in triple negative breast cancer cells. Noncoding RNA. 2020;6(2):19.  https://doi.org/10.3390/ncrna6020019
  47. Liu W, Lv C, Zhang B, Zhou Q, Cao Z. MicroRNA-27b functions as a new inhibitor of ovarian cancer-mediated vasculogenic mimicry through suppression of VE-cadherin expression. RNA. 2017;23(7):1019-1027. https://doi.org/10.1261/rna.059592.116
  48. Sun Q, Zou X, Zhang T, Shen J, Yin Y, Xiang J. The role of miR-200a in vasculogenic mimicry and its clinical significance in ovarian cancer. Gynecol Oncol. 2014;132(3):730-738.  https://doi.org/10.1016/j.ygyno.2014.01.047
  49. Guo JQ, Zheng QH, Chen H, Chen L, Xu JB, Chen MY, Lu D, Wang ZH, Tong HF, Lin S. Ginsenoside Rg3 inhibition of vasculogenic mimicry in pancreatic cancer through downregulation of VE-cadherin/EphA2/MMP9/MMP2 expression. Int J Oncol. 2014;45(3):1065-1072. https://doi.org/10.3892/ijo.2014.2500
  50. Zhang S, Li M, Gu Y, Liu Z, Xu S, Cui Y, Sun B. Thalidomide influences growth and vasculogenic mimicry channel formation in melanoma. J Exp Clin Cancer Res. 2008;27(1):60.  https://doi.org/10.1186/1756-9966-27-60
  51. Li X, Yang Z, Han Z, Wen Y, Ma Z, Wang Y. Niclosamide acts as a new inhibitor of vasculogenic mimicry in oral cancer through upregulation of miR-124 and downregulation of STAT3. Oncol Rep. 2018;39(2):827-833.  https://doi.org/10.3892/or.2017.6146
  52. Xie HJ, Zhao J, Zhuo-Ma D, Zhan-Dui N, Er-Bu A, Tsering T. Inhibiting tumour metastasis by DQA modified paclitaxel plus ligustrazine micelles in treatment of non-small-cell lung cancer. Artif Cells Nanomed Biotechnol. 2019;47(1):3465-3477. https://doi.org/10.1080/21691401.2019.1653900
  53. Su M, Feng YJ, Yao LQ, Cheng MJ, Xu CJ, Huang Y, Zhao YQ, Jiang H. Plasticity of ovarian cancer cell SKOV3ip and vasculogenic mimicry in vivo. Int J Gynecol Cancer. 2008;18(3):476-486.  https://doi.org/10.1111/j.1525-1438.2007.01034.x
  54. Pastorino O, Gentile MT, Mancini A, Del Gaudio N, Di Costanzo A, Bajetto A, Franco P, Altucci L, Florio T, Stoppelli MP, et al. Histone deacetylase inhibitors impair vasculogenic mimicry from glioblastoma cells. Cancers (Basel). 2019;11(6):747.  https://doi.org/10.3390/cancers11060747
  55. Maiti A, Qi Q, Peng X, Yan L, Takabe K, Hait NC. Class I histone deacetylase inhibitor suppresses vasculogenic mimicry by enhancing the expression of tumor suppressor and anti-angiogenesis genes in aggressive human TNBC cells. Int J Oncol. 2019;55(1):116-130.  https://doi.org/10.3892/ijo.2019.4796
  56. Li JL, Sainson RC, Oon CE, Turley H, Leek R, Sheldon H, Bridges E, Shi W, Snell C, Bowden ET, et al. DLL4-Notch signaling mediates tumor resistance to anti-VEGF therapy in vivo. Cancer Res. 2011;71(18):6073-6083. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-11-1704

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.