Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Сальков В.Н.

ФГБНУ Научный центр неврологии

Воронков Д.Н.

ФГБНУ «Научный центр неврологии»

Худоерков Р.М.

ФГБНУ Научный центр неврологии

Роль ртути и мышьяка в этиологии и патогенезе болезней Паркинсона и Альцгеймера

Авторы:

Сальков В.Н., Воронков Д.Н., Худоерков Р.М.

Подробнее об авторах

Журнал: Архив патологии. 2022;84(5): 59‑64

Прочитано: 3993 раза


Как цитировать:

Сальков В.Н., Воронков Д.Н., Худоерков Р.М. Роль ртути и мышьяка в этиологии и патогенезе болезней Паркинсона и Альцгеймера. Архив патологии. 2022;84(5):59‑64.
Salkov VN, Voronkov DN, Khudoyerkov RM. The role of mercury and arsenic in the etiology and pathogenesis of Parkinson’s and Alzheimer’s diseases. Russian Journal of Archive of Pathology. 2022;84(5):59‑64. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/patol20228405159

Рекомендуем статьи по данной теме:
Диаг­нос­ти­ка и под­хо­ды к ле­че­нию си­ало­реи у па­ци­ен­тов с бо­лез­нью Пар­кин­со­на. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(10):29-34
Ней­ро­хи­ми­чес­кие ме­ха­низ­мы воз­ник­но­ве­ния тре­мо­ра при бо­лез­ни Пар­кин­со­на. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(11):64-72
Ког­ни­тив­ные на­ру­ше­ния у па­ци­ен­тов с бо­лез­нью Пар­кин­со­на. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(11):81-90
Дис­фун­кция мо­че­во­го пу­зы­ря у па­ци­ен­тов с I—III ста­ди­ями бо­лез­ни Пар­кин­со­на. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(11):91-99
Ха­рак­те­рис­ти­ка пос­мер­тных из­ме­не­ний го­лов­но­го моз­га. Су­деб­но-ме­ди­цин­ская эк­спер­ти­за. 2024;(6):56-61

Среди нейродегенеративных заболеваний, диагностируемых в пожилом возрасте, наиболее распространены болезни Паркинсона (БП) и Альцгеймера (БА) [1]. Оба заболевания характеризуются неблагоприятным исходом, который в случае БП проявляется стойким нарушением двигательной активности и инвалидизацией [2], а при БА — нарастанием когнитивных расстройств вплоть до деменции и высокой смертностью [3].

Патоморфологическим субстратом БП являются накопление фосфорилированного альфа-синуклеина — патологически измененного белка в телах нейронов (тельца Леви) и их отростках (нейриты Леви) — и гибель значительного количества дофаминовых нейронов в черном веществе головного мозга на ранних стадиях заболевания [4]. БА патоморфологически характеризуется накоплением в структурах головного мозга аномальных форм белков: бета-амилоида и тау-белка, которые образуют вне- и внутриклеточные агрегаты соответственно, что приводит к гибели нейронов [5]. По данным литературы [6], при нейродегенеративных заболеваниях нарушается формирование третичной структуры (фолдинг) белков, что вызвано окислительным стрессом, который возникает при нарушении метаболизма металлов. Среди этих металлов различают биометаллы, необходимые для формирования и функционирования головного мозга (железо, кальций, цинк, медь и др.), и токсичные металлы, в норме не включаемые в биологические процессы и пагубно влияющие на головной мозг и организм в целом (ртуть, свинец, кадмий и алюминий) [7]. Нарушение обмена биометаллов в формировании патологических субстратов при БП и БА в литературе охарактеризовано достаточно полно, а роль токсичных металлов показана явно недостаточно. Среди последних особое внимание при изучении влияния на головной мозг в контексте инициации и течения нейродегенеративного процесса уделяют ртути и мышьяку — металлоиду, сочетающему химические свойства металлов и неметаллов [8]. В литературе [9] показано, что острая интоксикация этими микроэлементами вызывает у пациентов двигательные нарушения, сходные с таковыми при паркинсонизме, и существенные когнитивные расстройства, аналогичные тем, которые развиваются при БА. Другие исследователи предполагают, что хроническая интоксикация ртутью или мышьяком в субклинической дозе может являться одним из основных этиологических факторов БП [10].

Цель работы — проанализировать данные литературы о влиянии токсичных элементов (ртути и мышьяка) на формирование морфохимических изменений в головном мозге человека и лабораторных животных и оценить связь этих изменений с этиопатогенезом БП и БА.

Роль ртути в этиопатогенезе БП

Ртуть присутствует в воздухе, почве и воде в виде органических и неорганических соединений [11]. Последние, являясь более токсичными, чем первые, при попадании в организм человека проникают через гематоэнцефалический барьер и транспортируются в головной мозг [12]. Соединения ртути, как и других металлов, переносятся через гематоэнцефалический барьер при помощи транспортеров. Они образуют комплекс с L-цистеином, который, имитируя метионин, обеспечивает их транспорт. В головном мозге соединения ртути препятствуют физиологическому течению внутриклеточных процессов. Они снижают активность эндоплазматического ретикулума и рибосом, затрудняют синтез ДНК и белков [13], при этом, ингибируя метиониновые связи металлопротеинов, высвобождают свободную форму меди, которая отличается высокой токсичностью и нарушает функцию медь-, цинксодержащей супероксиддисмутазы (Cu-СОД, Zn-СОД) — фермента, регулирующего содержание активных форм кислорода в клетках и являющегося важным компонентом антиоксидантной защиты нервной ткани [14]. Кроме того, соединения ртути могут ингибировать важные этапы синтеза митохондриального гемоглобина, а в высокой концентрации — экспрессию мРНК [15].

Показано, что у лиц при длительном воздействии ртутью (зубные пломбы из амальгамы) заболеваемость БП была в 6 раз выше, чем у не подвергавшихся такому воздействию [16]. У врача-стоматолога 47 лет был диагностирован паркинсонизм на основании клинической симптоматики (тремор покоя и феномен «зубчатого колеса») и результата анализа мочи, показавшего наличие ртути; терапия агентами, хелатирующими ртуть, улучшила клиническое состояние больного [17]. У дантистов и ассистентов стоматолога, работа которых была связана с материалом, содержащим ртуть, отмечается повышенная смертность от БП и деменции [18]. Сообщается, что у мужчины, проработавшего на заводе по производству хлора 30 лет и в течение этого периода подвергавшегося интоксикации ртутью, развился паркинсонизм [19]. Предполагают, что БП у лиц, испытавших хроническую интоксикацию ртутью, связана не столько с ее непосредственным влиянием, сколько с нарушением регуляции или истощением внутриклеточного трипептида глутатиона [20]. В естественных условиях тяжелые металлы выводятся из организма, конъюгируясь с глутатионом, а при изменении этих условий, например при старении, внутриклеточное содержание этого трипептида снижается, что способствует накоплению ртути в нервной ткани.

Накопление ртути исследовали методом автометаллографии в структурах медиального и латерального коленчатых тел головного мозга (на аутопсийных образцах) 50 людей с неврологической патологией и психическими расстройствами [21]. Ртуть обнаруживали в нейронах, олигодендроцитах, астроцитах и эндотелиальных клетках капилляров. По мнению авторов, накопление ртути нарушало функцию коленчатых тел, что способствовало появлению зрительных и слуховых нарушений, которые могут сопутствовать диагнозу основного заболевания у больных с неврологической патологией и психическими расстройствами. Метод автометаллографии в сочетании с методиками иммуногистохимии, позволяющими выявить отложения альфа-синуклеина и локализацию глиальных клеток, использовали при исследовании аутопсийного материала головного мозга больных с БП, лиц, перенесших хроническую интоксикацию ртутью, а также у тех, у кого при жизни не выявляли неврологическую симптоматику, и у лиц, не подвергавшихся воздействию ртутью (контрольная группа) [22]. В результате показано, что при БП ртуть определялась в нейронах черного вещества, двигательной области коры, стриатума, таламуса и мозжечка, а также в олигодендроцитах белого вещества и мозжечка. Ртуть, обнаруживаемая в нейронах, локализовалась в клетках, не только содержавших тельца Леви (альфа-синуклеин), но и без таковых. У людей, имевших в анамнезе указание на интоксикацию ртутью, и лиц из группы контроля распределение ртути в структурах головного мозга имело ограниченный характер: в первой группе ее определяли преимущественно в нейронах голубого пятна, латерального коленчатого тела и ядре блокового нерва, а в контрольной группе — в нейронах латерального коленчатого тела и зубчатом ядре мозжечка. В этих двух группах ртуть не обнаруживали в структурах черного вещества, стриатуме и таламусе, поражение которых может вызывать характерную для БП симптоматику.

Роль мышьяка в этиопатогенезе БП

Неорганические соединения мышьяка более токсичны, чем органические [23]. Триоксид мышьяка (As2O3) — наиболее распространенная неорганическая форма мышьяка, которая содержится в воздухе, в то время как другие неорганические формы — арсенаты (AsO43−) и арсениты (AsO2) менее распространены и содержатся в воде, почве и пищевых продуктах [24]. Кроме этих соединений мышьяка, широко распространен арсенид галлия (GaAs), который используется в электронной промышленности, но токсичен для организма человека [23]. Метилированные формы мышьяка по своему воздействию на человеческий организм менее вредны, чем его неорганические формы [25]. Их источником в основном являются морепродукты, рис, мясо птицы и грибы. Вместе с тем некоторые из органических соединений мышьяка чрезмерно токсичны [26]. Так, в эксперименте было показано, что астроциты коры головного мозга, подвергавшиеся острому воздействию монометиларсиновой кислоты, демонстрировали повышенную экспрессию генов провоспалительных цитокинов.

Токсическое действие мышьяка на нервную систему осуществляется двумя путями [27]. В первом случае, нарушая целостность цитоскелета нейронов, мышьяк снижает скорость проведения нервных импульсов, что клинически проявляется в форме периферических нейропатий. Во втором случае он вызывает нейротоксичность за счет индукции апоптоза в нейронах головного мозга путем активации путей митогенактивируемой протеинкиназы P38 и N-концевых киназ c-Jun. В этом случае, увеличивая высвобождение активных форм кислорода, он способствует развитию окислительного стресса, который в свою очередь приводит к снижению экспрессии ферментов антиоксидантной защиты нейронов (каталазы, супероксиддисмутазы, глутатионпероксидазы, глутатион S-трансферазы и др.) и развитию дегенеративных изменений дофаминовых нейронов [28]. Продолжительное действие мышьяка обусловливает значительное снижение уровня моноаминов в лобной области коры, полосатом теле и гиппокампе [29]. Кроме того, хроническая интоксикация, развивающаяся в головном мозге при продолжительном поступлении мышьяка в организм, приводит к дисбалансу внутриклеточного содержания ионов кальция, митохондриальным нарушениям, нарушению синтеза аденозинтрифосфата, изменению мембранного потенциала митохондрий и гибели нейронов [30].

У крыс, которые 16 нед подвергались воздействию арсенита натрия, содержавшегося в питьевой воде, снижалась концентрация в центральной нервной системе таких нейротрансмиттеров, как дофамин, норадреналин и 5-гидрокситриптамин [31]. В исследовании, проведенном на Тайване, изучалась корреляционная связь между высоким содержанием токсичных химических элементов в почве и распространенностью БП. В результате установлено, что из всех изученных токсинов только содержание мышьяка коррелировало с высокой заболеваемостью БП в этом регионе, составлявшей от 83 до 213 случаев на 100 000 населения [32].

Концентрация мышьяка в цереброспинальной жидкости у лиц с БП была достоверно выше, чем в контрольной группе, которую составляли пациенты без неврологической симптоматики [33]. Вместе с тем концентрация мышьяка в аутопсийных образцах головного мозга больных БП, определяемая методом нейтронно-активационного анализа, была более низкой, чем в контроле [34]. Подобный результат, вероятно, можно объяснить тем, что астроциты первыми из клеток головного мозга поглощают мышьяк, который поступает через гематоэнцефалический барьер, и сами же элиминируют его из мозга [35]. Наиболее вероятной причиной, которая способствует поддержанию постоянной концентрации мышьяка в астроцитах, является быстрое установление равновесия между поглощением клетками арсенита или арсената и элиминацией этих неорганических форм мышьяка из клеток [36].

Следовательно, последующее снижение поступления соединений мышьяка в клетки головного мозга будет приводить к снижению его концентрации в мозге, а основные клеточные изменения будут инициированы теми биохимическими изменениями, которым подвергнутся астроциты (снижение содержания глутатиона, увеличение гликолитического лактата и др.).

Связь между интоксикацией, вызываемой ртутью и мышьяком, и развитием БА

Клиническая картина, наблюдаемая при БА и хронической интоксикации ртутью, характеризуется сходной симптоматикой, проявляющейся в первую очередь со стороны когнитивной и двигательно-рефлекторной сфер [37]. В настоящее время показано, что большинство морфофункциональных изменений, развивающихся в организме человека при этих патологических состояниях, имеет сходную картину [38]. В основе этих изменений лежит накопление соединений ртути в организме, концентрация которых в крови пациентов с БА в 2 раза выше, чем у людей без нейродегенеративных расстройств [39]. Кроме того, при моделировании БА на лабораторных животных показано, что ртуть накапливается в структурах конечного мозга [40]. Подобные изменения выявляют в аналогичных структурах головного мозга (затылочная доля) у пожилых людей [41].

Механизм развития БА при накоплении ртути в структурах головного мозга, вероятно, связан с тем, что ее соединения могут взаимодействовать с бета-амилоидным пептидом Аβ-42 и образовывать на его основе крупные аморфные нерастворимые агрегаты, т.е. ртуть может изменять агрегацию этого пептида [42]. Ионы ртути (II) могут также взаимодействовать с N-концевой областью бета-амилоида через остатки гистидина (His-6, His-13, His-14), демонстрируя способ, который характерен для связывания с этой областью ионов меди (II) и цинка (II). Следовательно, как и ионы биометаллов (железа, меди, цинка и кальция), ионы ртути (II) способны связываться с бета-амилоидными пептидами и модулировать процессы их агрегации [43]. Наряду с тем, что присутствие ртути повышает образование аморфных нерастворимых форм бета-амилоидных пептидов, ее высокие концентрации вызывают гиперфосфорилирование тау-протеина [44]. Изменение химической структуры тау-протеина нарушает его функции, что усиливает нейродегенеративный процесс [10].

Другим возможным механизмом токсического воздействия соединений ртути на головной мозг в контексте патогенеза БА является активация нейроглии. При длительном воздействии ртутью на культуры клеток головного мозга в них обнаруживаются реактивная микроглия и астроциты, что предшествует морфологическим повреждениям нейронов [45]. Подобное воздействие ртути на организм человека происходит у людей, занимающихся очисткой золота, в крови которых определяют более высокую концентрацию провоспалительных цитокинов, чем у лиц, не подвергавшихся воздействию ртутью [46]. Хроническая интоксикация ртутью у рабочих вредных производств может приводить к аутоиммунной дисфункции с сопутствующим нейровоспалением, напоминающим упомянутую воспалительную реакцию при отравлении ртутью у людей, занимающихся очисткой золота [46]. Подобная реакция на интоксикацию ртутью — активация цитокиновых каскадов с вовлечением аутоиммунного ответа, а также стимуляция экспрессии циклооксигеназы-2 и NO-синтазы [47] — может усиливать нейровоспаление и нейродегенерацию при БА.

В качестве фактора риска развития БА может выступать интоксикация не только ртутью и ее соединениями, но и мышьяком. Связь между интоксикацией мышьяком в результате употребления питьевой воды и нарушением памяти показана как в эксперименте [48], так и при клиническом обследовании пожилых людей [49]. Установлено, что в странах с высоким содержанием мышьяка в почве (Италия, Швейцария, Испания, Франция, Бельгия и Норвегия) по сравнению со странами с низким его содержанием в почве (Люксембург, Дания, Финляндия, Великобритания) распространенность деменции среди населения, в том числе обусловленной БА, значительно выше [50]. В то же время отмечена отрицательная корреляционная зависимость между концентрацией мышьяка в сыворотке крови и когнитивными способностями у пациентов с БА [51].

Ключевым звеном в ослаблении памяти и когнитивных функций, обусловленным вредным воздействием мышьяка, является нарушение амилоидного обмена [5]. На культуре клеток показано, что в холинергических нейронах, инкубированных на протяжении 12—24 ч с арсенитом натрия или органической формой диметиларсиновой кислоты в количестве 5—10 мкмоль, увеличивалось содержание как белка — предшественника бета-амилоида (APP), так и самого бета-амилоида [52]. Подобная повышенная экспрессия APP выявлена этими же авторами в нейронах мышей линии Tg2576, которые подвергались токсическому воздействию арсенита натрия. Кроме того, установлено, что при интоксикации мышьяком наряду с накоплением АРР в нейронах в астроцитах ингибируется клиренс глутамата вследствие подавления экспрессии глутаминсинтетазы. В связи с этим нарушение взаимоотношения между содержанием глутамата и ГАМК-глутамина в астроцитах некоторые исследователи считают основным механизмом нейротоксичности, индуцированной мышьяком [53].

Заключение

Идиопатические формы БП, обусловленные мутациями в генах SNCA, LRRK2, GBA, PINK1 и PARK2 и подтвержденные клинически отягощенным семейным анамнезом, свидетельствуют о роли наследственности в этиологии этого заболевания и составляют не более 10% от общего количества всех его случаев [54]. Распространенность генетически обусловленной пресенильной формы БА 1—6% от всех случаев заболевания, а при сенильной форме БА генетическая компонента составляет 58—79% [55]. В остальных случаях причины БП и БА остаются до конца не выясненными. Вместе с тем представленный анализ источников литературы свидетельствует, что при БП и БА ртуть накапливается в структурах головного мозга, а мышьяк, поступая в них, элиминируется астроцитами. Кроме того, наш анализ свидетельствует также о том, что биохимические и морфологические изменения, развивающиеся в головном мозге при интоксикации ртутью и мышьяком, во многом совпадают с теми изменениями, которые характерны для БП и БА. Учитывая, что клиническая симптоматика при интоксикации ртутью и мышьяком во многом коррелирует с симптомами рассматриваемых нейродегенеративных заболеваний, а их патогенетические механизмы (окислительный стресс и нейровоспаление) совпадают, можно охарактеризовать роль токсического воздействия ртути и мышьяка при БП и БА как влияние наиболее значимых факторов риска.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Wareham LK, Liddelow SA, Temple S, Benowitz LI, Di Polo A, Wellington C, Goldberg JL, He Z, Duan X, Bu G, Davis AA, Shekhar K, Torre A, Chan DC, Canto-Soler MV, Flanagan JG, Subramanian P, Rossi S, Brunner T, Bovenkamp DE, Calkins DJ. Solving neurodegeneration: common mechanisms and strategies for new treatments. Mol Neurodegener. 2022;17(1):23.  https://doi.org/10.1186/s13024-022-00524-0
  2. Тимофеева А.А., Белозерцева И.И. Вопросы медико-социальной экспертизы при болезни Паркинсона. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2016;116(9):93-97.  https://doi.org/10.17116/jnevro20161169193-97
  3. World Health Organization. World Health Statistics 2020: monitoring the health for the SDGs, sustainable development goals. Geneva: World Health Organization; 2020. https://apps.who.int/iris/handle/10665/332070
  4. Пчелина С.Н. Альфа-синуклеин как биомаркер болезни Паркинсона. Анналы клинической и экспериментальной неврологии. 2011;5(4):46-51. 
  5. Chin-Chan M, Navarro-Yepes J, Quintanilla-Vega B. Environmental pollutants as risk factors for neurodegenerative disorders: Alzheimer and Parkinson diseases. Front Cell Neurosci. 2015;9:124.  https://doi.org/10.3389/fncel.2015.00124
  6. Jomova K, Vondrakova D, Lawson M, Valko M. Metals, oxidative stress and neurodegenerative disorders. Mol Cell Biochem. 2010; 345(1-2):91-104.  https://doi.org/10.1007/s11010-010-0563-x
  7. Li Y, Jiao Q, Xu H, Du X, Shi L, Jia F, Jiang H. Biometal dyshomeostasis and toxic metal accumulations in the development of Alzheimer’s disease. Front Mol Neurosci. 2017;10:339.  https://doi.org/10.3389/fnmol.2017.00339
  8. Roe K. An alternative explanation for Alzheimer’s disease and Parkinson’s disease initiation from specific antibiotics, gut microbiota dysbiosis and neurotoxins. Neurochem Res. 2022;47(3):517-530.  https://doi.org/10.1007/s11064-021-03467-y
  9. Carpenter DO. Effects of metals on the nervous system of humans and animals. Int J Occup Med Environ Health. 2001;14(3):209-218. 
  10. Monnet-Tschudi F, Zurich MG, Boschat C, Corbaz A, Honegger P. Involvement of environmental mercury and lead in the etiology of neurodegenerative diseases. Rev Environ Health. 2006;21(2):105-117.  https://doi.org/10.1515/reveh.2006.21.2.105
  11. Rice KM, Walker EM Jr, Wu M, Gillette C, Blough ER. Environmental mercury and its toxic effects. J Prev Med Public Health. 2014;47(2):74-83.  https://doi.org/10.3961/jpmph.2014.47.2.74
  12. Yokel RA. Blood-brain barrier flux of aluminum, manganese, iron and other metals suspected to contribute to metal-induced neurodegeneration. J Alzheimers Dis. 2006;10(2-3):223-253.  https://doi.org/10.3233/jad-2006-102-309
  13. Jan AT, Azam M, Siddiqui K, Ali A, Choi I, Haq QM. Heavy metals and human health: mechanistic insight into toxicity and counter defense system of antioxidants. Int J Mol Sci. 2015;16(12):29592-29630. https://doi.org/10.3390/ijms161226183
  14. Sharma B, Singh S, Siddiqi NJ. Biomedical implications of heavy metals induced imbalances in redox systems. Biomed Res Int. 2014; 2014:640754. https://doi.org/10.1155/2014/640754
  15. Echeverria D, Woods JS, Heyer NJ, Rohlman D, Farin FM, Li T, Garabedian CE. The association between a genetic polymorphism of coproporphyrinogen oxidase, dental mercury exposure and neurobehavioral response in humans. Neurotoxicol Teratol. 2006;28(1):39-48.  https://doi.org/10.1016/j.ntt.2005.10.006
  16. Pierozan P, Biasibetti H, Schmitz F, Ávila H, Fernandes CG, Pessoa-Pureur R, Wyse ATS. Neurotoxicity of methylmercury in isolated astrocytes and neurons: the cytoskeleton as a main target. Mol Neurobiol. 2017;54(8):5752-5767. https://doi.org/10.1007/s12035-016-0101-2
  17. Finkelstein Y, Vardi J, Kesten MM, Hod I. The enigma of parkinsonism in chronic borderline mercury intoxication, resolved by challenge with penicillamine. Neurotoxicology. 1996;17(1):291-295. 
  18. Schulte PA, Burnett CA, Boeniger MF, Johnson J. Neurodegenerative diseases: occupational occurrence and potential risk factors, 1982 through 1991. Am J Public Health. 1996;86(9):1281-1288. https://doi.org/10.2105/ajph.86.9.1281
  19. Ngim C, Devathasan G. Epidemiologic study on the association between body burden mercury level and idiopathic Parkinson’s disease. Neuroepidemiology. 1989;8(3):128-141.  https://doi.org/10.1159/000110175
  20. Ballatori N, Krance SM, Notenboom S, Shi S, Tieu K, Hammond CL. Glutathione dysregulation and the etiology and progression of human diseases. Biol Chem. 2009;390(3):191-214.  https://doi.org/10.1515/BC.2009.033
  21. Pamphlett R, Kum Jew S, Doble PA, Bishop DP. Elemental imaging shows mercury in cells of the human lateral and medial geniculate nuclei. PLoS One. 2020;15(4):e0231870. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0231870
  22. Pamphlett R, Bishop DP. Mercury is present in neurons and oligodendrocytes in regions of the brain affected by Parkinson’s disease and co-localises with Lewy bodies. PLoS One. 2022;17(1):e0262464. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0262464
  23. Jomova K, Valko M. Advances in metal-induced oxidative stress and human disease. Toxycology. 2011;283(2-3):65-87.  https://doi.org/10.1016/j.tox.2011.03.001
  24. Ding W, Hudson LG, Liu KJ. Inorganic arsenic compounds cause oxidative damage to DNA and protein by inducing ROS and RNS generation in human keratinocytes. Mol Cell Biochem. 2005;279(1-2):105-112.  https://doi.org/10.1007/s11010-005-8227-y
  25. Mandal BK. Arsenic round the world: a review. Talanta. 2002; 58(1):201-235. 
  26. Escudero-Lourdes C, Uresti-Rivera EE, Oliva-González C, Torres-Ramos MA, Aguirre-Bañuelos P, Gandolfi AJ. Cortical astrocytes acutely exposed to the monomethylarsonous acid (MMAIII) show increased pro-inflammatory cytokines gene expression that is consistent with APP and BACE-1: over-expression. Neurochem Res. 2016;41(10):2559-2572. https://doi.org/10.1007/s11064-016-1968-z
  27. Raj K, Kaur P, Gupta GD, Singh S. Metals associated neurodegeneration in Parkinson’s disease: insight to physiological, pathological mechanisms and management. Neurosci Lett. 2021;753:135873. https://doi.org/10.1016/j.neulet.2021.135873
  28. Singh AP, Goel RK, Kaur T. Mechanisms pertaining to arsenic toxicity. Toxicol Int. 2011;18(2):87-93.  https://doi.org/10.4103/0971-6580.84258
  29. Tyler CR, Allan AM. The effects of arsenic exposure on neurological and cognitive dysfunction in human and rodent studies: a review. Curr Environ Health Rep. 2014;1(2):132-147.  https://doi.org/10.1007/s40572-014-0012-1
  30. Prakash C, Soni M, Kumar V. Mitochondrial oxidative stress and dysfunction in arsenic neurotoxicity: a review. J Appl Toxicol. 2016;36(2):179-188.  https://doi.org/10.1002/jat.3256
  31. Kannan GM, Tripathi N, Dube SN, Gupta M, Flora SJ. Toxic effects of arsenic (III) on some hematopoietic and central nervous system variables in rats and guinea pigs. J Toxicol Clin Toxicol. 2001;39(7):675-682.  https://doi.org/10.1081/clt-100108508
  32. Lee CP, Zhu CH, Su CC. Increased prevalence of Parkinson’s disease in soils with high arsenic levels. Parkinsonism Relat Disord. 2021;88:19-23.  https://doi.org/10.1016/j.parkreldis.2021.05.029
  33. Maass F, Michalke B, Leha A, Boerger M, Zerr I, Koch JC, Tönges L, Bähr M, Lingor P. Elemental fingerprint as a cerebrospinal fluid biomarker for the diagnosis of Parkinson’s disease. J Neurochem. 2018;145(4):342-351.  https://doi.org/10.1111/jnc.14316
  34. Larsen NA, Pakkenberg H, Damsgaard E, Heydorn K, Wold S. Distribution of arsenic, manganese, and selenium in the human brain in chronic renal insufficiency, Parkinson’s disease, and amyotrophic lateral sclerosis. J Neurol Sci. 1981;51(3):437-446.  https://doi.org/10.1016/0022-510x(81)90120-9
  35. Dringen R, Spiller S, Neumann S, Koehler Y. Uptake, metabolic effects and toxicity of arsenate and arsenite in astrocytes. Neurochem Res. 2016;41(3):465-475.  https://doi.org/10.1007/s11064-015-1570-9
  36. Koehler Y, Luther EM, Meyer S, Schwerdtle T, Dringen R. Uptake and toxicity of arsenite and arsenate in cultured brain astrocytes. J Trace Elem Med Biol. 2014;28(3):328-337.  https://doi.org/10.1016/j.jtemb.2014.04.007
  37. Chang JW, Pai MC, Chen HL, Guo HR, Su HJ, Lee CC. Cognitive function and blood methylmercury in adults living near a deserted chloralkali factory. Environ Res. 2008;108(3):334-339.  https://doi.org/10.1016/j.envres.2008.06.006
  38. Siblerud R, Mutter J, Moore E, Naumann J, Walach H. A hypothesis and evidence that mercury may be an etiological factor in Alzheimer’s disease. Int J Environ Res Public Health. 2019;16(24):5152. https://doi.org/10.3390/ijerph16245152
  39. Hock C, Drasch G, Golombowski S, Müller-Spahn F, Willershausen-Zönnchen B, Schwarz P, Hock U, Growdon JH, Nitsch RM. Increased blood mercury levels in patients with Alzheimer’s disease. J Neural Transm (Vienna). 1998;105(1):59-68.  https://doi.org/10.1007/s007020050038
  40. Monnet-Tschudi F, Zurich MG, Honegger P. Comparison of the developmental effects of two mercury compounds on glial cells and neurons in aggregate cultures of rat telencephalon. Brain Res. 1996;741(1-2):52-59.  https://doi.org/10.1016/s0006-8993(96)00895-5
  41. Weiner JA, Nylander M. The relationship between mercury concentration in human organs and different predictor variables. Sci Total Environ. 1993;138(1-3):101-115.  https://doi.org/10.1016/0048-9697(93)90408-x
  42. Meleleo D, Notarachille G, Mangini V, Arnesano F. Concentration-dependent effects of mercury and lead on Aβ42: possible implications for Alzheimer’s disease. Eur Biophys J. 2019;48(2):173-187.  https://doi.org/10.1007/s00249-018-1344-9
  43. Wallin C, Friedemann M, Sholts SB, Noormägi A, Svantesson T, Jarvet J, Roos PM, Palumaa P, Gräslund A, Wärmländer SKTS. Mercury and Alzheimer’s disease: Hg(II) ions display specific binding to the amyloid-β peptide and hinder its fibrillization. Biomolecules. 2019;10(1):44.  https://doi.org/10.3390/biom10010044
  44. Olivieri G, Brack C, Müller-Spahn F, Stähelin HB, Herrmann M, Renard P, Brockhaus M, Hock C. Mercury induces cell cytotoxicity and oxidative stress and increases beta-amyloid secretion and tau phosphorylation in SHSY5Y neuroblastoma cells. J Neurochem. 2000;74(1):231-236.  https://doi.org/10.1046/j.1471-4159.2000.0740231.x
  45. Eskes C, Honegger P, Juillerat-Jeanneret L, Monnet-Tschudi F. Microglial reaction induced by noncytotoxic methylmercury treatment leads to neuroprotection via interactions with astrocytes and IL-6 release. Glia. 2002;37(1):43-52.  https://doi.org/10.1002/glia.10019
  46. Gardner RM, Nyland JF, Silva IA, Ventura AM, de Souza JM, Silbergeld EK. Mercury exposure, serum antinuclear/antinucleolar antibodies, and serum cytokine levels in mining populations in Amazonian Brazil: a cross-sectional study. Environ Res. 2010;110(4):345-354.  https://doi.org/10.1016/j.envres.2010.02.001
  47. Park HJ, Youn HS. Mercury induces the expression of cyclooxygenase-2 and inducible nitric oxide synthase. Toxicol Ind Health. 2013;29(2):169-174.  https://doi.org/10.1177/0748233711427048
  48. Ramos-Chávez LA, Rendón-López CR, Zepeda A, Silva-Adaya D, Del Razo LM, Gonsebatt ME. Neurological effects of inorganic arsenic exposure: altered cysteine/glutamate transport, NMDA expression and spatial memory impairment. Front Cell Neurosci. 2015;9:21.  https://doi.org/10.3389/fncel.2015.00021
  49. O’Bryant SE, Edwards M, Menon CV, Gong G, Barber R. Long-term low-level arsenic exposure is associated with poorer neuropsychological functioning: a Project FRONTIER study. Int J Environ Res Public Health. 2011;8(3):861-874.  https://doi.org/10.3390/ijerph8030861
  50. Dani SU. Arsenic for the fool: an exponential connection. Sci Total Environ. 2010;408(8):1842-1846. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2010.01.027
  51. Baum L, Chan IHS, Cheung SKK, Goggins WB, Mok V, Lam L, Leung V, Hui E, Ng C, Woo J, et al. Serum zinc is decreased in Alzheimer’s disease and serum arsenic correlates positively with cognitive ability. Biometals. 2010;23(1):173-179.  https://doi.org/10.1007/s10534-009-9277-5
  52. Zarazúa S, Bürger S, Delgado JM, Jiménez-Capdeville ME, Schliebs R. Arsenic affects expression and processing of amyloid precursor protein (APP) in primary neuronal cells overexpressing the Swedish mutation of human APP. Int J Dev Neurosci. 2011;29(4):389-396.  https://doi.org/10.1016/j.ijdevneu.2011.03.004
  53. Zhao F, Liao Y, Jin Y, Li G, Lv X, Sun G. Effects of arsenite on glutamate metabolism in primary cultured astrocytes. Toxicol In Vitro. 2012;26(1):24-31.  https://doi.org/10.1016/j.tiv.2011.10.003
  54. Pang SYY, Ho PWL, Liu HF, Leung CT, Li L, Chang EES, Ramsden DB, Ho SL. The interplay of aging, genetics and environmental factors in the pathogenesis of Parkinson’s disease. Transl Neurodegener. 2019;8:23.  https://doi.org/10.1186/s40035-019-0165-9
  55. Robinson M, Lee BY, Hane FT. Recent progress in Alzheimer’s disease research, Part 2: Genetics and Epidemiology. J Alzheimers Dis. 2017;57(2):317-330.  https://doi.org/10.3233/JAD-161149

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.