Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Поздняков Д.И.

Пятигорский медико-фармацевтический институт — филиал ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет» Минздрава России

Вихорь А.А.

Пятигорский медико-фармацевтический институт — филиал ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет» Минздрава России

Регуляция митофагии и митохондриального биогенеза монокарбонильными аналогами куркумина в коре больших полушарий головного мозга крыс в условиях экспериментальной болезни Альцгеймера

Авторы:

Поздняков Д.И., Вихорь А.А.

Подробнее об авторах

Прочитано: 1509 раз


Как цитировать:

Поздняков Д.И., Вихорь А.А. Регуляция митофагии и митохондриального биогенеза монокарбонильными аналогами куркумина в коре больших полушарий головного мозга крыс в условиях экспериментальной болезни Альцгеймера. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2024;124(9):109‑114.
Pozdnyakov DI, Vihor AA. Regulation of mitophagy and mitochondrial biogenesis by monocarbonyl analogues of curcumin in the cerebral cortex of rats in experimental Alzheimer’s disease. S.S. Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry. 2024;124(9):109‑114. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/jnevro2024124091109

Рекомендуем статьи по данной теме:
Ци­то­ки­но­вый ста­тус па­ци­ен­тов с бо­лез­нью Альцгей­ме­ра. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2025;(4-2):5-12
Диф­фе­рен­ци­аль­ный ди­аг­ноз бо­лез­ни Альцгей­ме­ра и со­су­дис­тых ког­ни­тив­ных расстройств. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2025;(4-2):26-35
Ком­плексное ис­сле­до­ва­ние би­омар­ке­ров бо­лез­ни Альцгей­ме­ра в плаз­ме кро­ви и це­реб­рос­пи­наль­ной жид­кос­ти. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2025;(4-2):43-53

Болезнь Альцгеймера (БА) — хроническое прогрессирующее нейродегенеративное заболевание, представляющее собой терминальную форму деменции с высоким риском летального исхода. По данным ВОЗ, БА занимает 6-е место в перечне ведущих причин смертности населения, при этом отмечается, что пик заболеваемости и, соответственно, летальности приходится на возраст старше 60 лет [1]. В то же время в последнее десятилетие наблюдается резкое омоложение БА. Например, J. Jia и соавт. [2] продемонстрировали, что БА может отмечаться в достаточно раннем возрасте (в данном исследовании — 19 лет), причем диагноз был не только основан на характерной симптоматике заболевания, но и подтверждался результатами МРТ с 18F-фтордезоксиглюкозой и исследованием цереброспинальной жидкости. Учитывая растущие эпидемиологические показатели, омоложение заболевания и социально-экономическую составляющую профилактики и лечения, неудивительно, что БА является одной из главных проблем современной медицины, особенно в экономически развитых странах с высокой относительной долей населения старческого возраста [3]. Данные факты побуждают медицинское сообщество к разработке новых и усовершенствованию уже имеющихся тактик лечения БА. При этом, в отличие от первоначального терапевтического подхода, который основывался, прежде всего, на коррекции когнитивного дефицита и других сопутствующих нарушений, большинство современных исследований ставит вот главу угла изучение новых средств патогенетической терапии БА [1]. За последнее десятилетие в данной области был достигнут определенный прогресс, в частности несколько антиамилоидных моноклональных антител (донанемаб и леканемаб), а также препаратов малых молекул — ингибиторов нейровоспаления (маситиниб) проходят клинические испытания и демонстрируют многообещающие результаты в исследованиях II/III фазы [4].

В то же время одним из звеньев патогенеза БА, на который можно воздействовать фармакологически, является митохондриальная дисфункция [5]. Концепция митохондриального каскада при БА подразумевает, что дисбаланс в функциональной активности митохондрий приводит к снижению энергопродукции в клетке, активации апоптоза и окислительного стресса, кальциевой перегрузке клеток и накоплению C-концевого β-амилоида 1—42 (Aβ1—42) [6]. Являясь динамичными структурами, митохондрии постоянно подвержены воздействию ряда негативных факторов, например тау-белка или Aβ1—42, замыкая «порочный круг» БА. Как правило, в ходе взаимодействия митохондрий клетки с патологическими формами белков отмечается нарушение процессов митофагии и митохондриального биогенеза, приводящее к кумуляции в клетке аномальных митохондрий с развитием нейровоспаления и синаптической дисфункции [7]. При этом, как отмечают E. Fang и соавт. [8], характерным признаком БА является то, что процессы лизосомальной деградации дефектных митохондрий при БА подавляются преимущественно в гиппокампе и коре больших полушарий, способствуя формированию когнитивных нарушений.

Поскольку митохондриальная дисфункция является основным связующим звеном между всеми предполагаемыми патофизиологическими механизмами БА, воздействие на митохондрии клетки может быть актуальным направлением разработки новых средств для патогенетической терапии БА. При этом вектор фармакологического вмешательства может быть смещен с «классических» подходов митохондриальной медицины (восстановление синтеза АТФ, коррекция окислительного стресса, шунтирование метаболических путей) на нормализацию процессов митохондриальной динамики и баланса митофагия/митохондриальный биогенез [9].

Перспективными молекулами-корректорами митохондриальной дисфункции могут являться монокарбонильные производные куркумина, оказывающие выраженное антиоксидантное действие [10]. Кроме того, в ранее проведенном исследовании было показано, что курсовое введение двух новых моноенольных производных куркумина животным с β-амилоид-индуцированной БА приводило к восстановлению дыхательной функции митохондрий гиппокампа, что и послужило основанием для выбора данных соединений в качестве анализируемых веществ [11].

Цель работы — в условиях экспериментальной БА оценить влияние монокарбонильных производных куркумина на изменение реакций митофагии и митохондриального биогенеза в клетках коры больших полушарий.

Материал и методы

Исследование выполнено на 100 половозрелых крысах линии Wistar (50 самок и 50 самцов) с массой тела 200—220 г, полученных из питомника лабораторных животных «Рапполово» (Россия). Во время эксперимента животные содержались в стандартных условиях в полипропиленовых клетках по 5 особей. Полнорационный корм и воду животные получали ad libitum. Подстил (гранулированная фракция твердых пород древесины) меняли не реже чем 1 раз в 3 дня. Условия содержания исключали стрессирование животных: температура окружающего воздуха 22±2 °C, относительная влажность 55—65% при 12-часовом цикле день/ночь. БА воспроизводили у крыс путем прямого введения фрагментов Aβ1—42 в CA1 фрагмент гиппокампа (стереотаксические координаты: передне-задняя — 3,8 мм, медиально-латеральная — 2 мм, дорсально-вентральная — 2,6 мм от брегмы). Агрегаты Aβ1—42 («Sigma-Aldrich», Германия) получали путем растворения Aβ1—42 в смеси диметилсульфоксида («Вектон», Россия) и фосфатно-солевого буферного раствора в соотношении 1:10 при температуре 4 °C и pH=7,4. Агрегаты Aβ1—42 вводили анестезированным хлоралгидратом животным (350 мг/кг, внутрибрюшинно) в конечной концентрации 1 ммоль/л и объеме 5 мкл. Игла оставалась в месте инъекции в течение 5 мин, после чего ее извлекали. Рану ушивали и обрабатывали 10% раствором повидон-йода [12].

Все животные были рандомизированы в 5 равных групп по 20 особей в каждой (10 самцов и 10 самок). Первая группа — ложнооперированные животные (ЛО), к которой применялись все последовательные процедуры, исключая введение агрегатов Aβ1—42; вторая группа — негативный контроль (НК), группа животных с воспроизведенной БА, но не получавшая терапию. Остальным группам также моделировали БА: 3-я группа получала референсный препарат — донепезил в дозе 50 мг/кг перорально; 4-й и 5-й группам вводили анализируемые соединения: (1E, 4E)-1,5-бис (3,4,5-триметоксифенил) пента-1,4-диен-3-он (шифр AZBAX4) и (1E, 4E)-1,5-бис (2,4,6-триметоксифенил) пента-1,4-диен-3-он (шифр AZBAX6) в дозе 20 мг/кг перорально [11]. Продолжительность введения составила 30 дней с момента воспроизведения БА.

После указанного времени крыс декапитировали под хлоралгидратной анестезией, извлекали головной мозг, выделяя кору больших полушарий (масса навески 300 мг), которую гомогенизировали в буферной системе, состоящей из 0,1% раствора бычьего сывороточного альбумина («Sigma-Aldrich», Германия), 215 ммоль маннита («Sigma-Aldrich», Германия), 1 ммоль этиленгликольтетраацетата натрия («Sigma-Aldrich», Германия), 75 ммоль сахарозы («Sigma-Aldrich», Германия), 20 ммоль 4-(2-гидроксиэтил)-1-пиперазинэтансульфоновой кислоты («Sigma-Aldrich», Германия). Гомогенат центрифугировали в течение 2 мин при 1100 g. Полученный супернатант в количестве 700 мкл переносили в пробирки Эппендорфа и наслаивали 75 мкл 10% перколла («Sigma-Aldrich», Германия). Полученную смесь центрифугировали в течение 10 мин при 18 000 g. Осадок ресуспендировали в 1 мл изолирующей среды и повторно центрифугировали в течение 5 мин при 10 000 g. Во вторичном супернатанте оценивали изменение активности ферментативных маркеров митохондриального биогенеза — сукцинатдегидрогеназы (СДГ) и цитохром-с-оксидазы (CoX) [13], а также митофагии — активности цитратсинтазы (ЦС) [14].

Активность СДГ оценивали спектрофотометрически в реакции сукцинатзависимого восстановления дихлорфенолиндофенола при добавлении в анализируемую среду ротенона при 600 нм [15]. Активность CoX определяли спектрофотометрически в ходе реакции окисления цитохрома C (II) в присутствии цианида калия при 500 нм [16]. Активность ЦС оценивали спектрофотометрическим методом, основанным на определении окрашенных продуктов реакции деградации 5,5’-ди-тиобис-(2-нитробензойной кислоты) в присутствии ацетил-КоА и оксалоацетата при 412 нм [17]. Активность выражали в единицах действия (Ед) в пересчете на концентрацию белка в образце (мг/мин), которую определяли по методу Бредфорда.

Работа была одобрена локальным Этическим комитетом ПМФИ (протокол №8 от 07.07.23). Исследование соответствовало положениям Директивы ЕС 2010/63.

Результаты обрабатывали методами вариационной статистики с применением возможностей программного комплекса StatPlus 7.0 («AnalystSoft Inc.», США, лицензия 16887385). Полученные данные были проверены на нормальность распределения согласно критерию Шапиро—Уилка. Для сравнения групп средних применяли параметрические методы ANOVA с пост-тестом Ньюмена—Кейлса и непараметрические методы статического анализа — тест Краскела—Уоллиса. Различия считались статистически значимыми при p<0,05.

Результаты

В ходе исследования было показано, что у НК группы животных наблюдалось уменьшение активности СДГ (рис. 1), CoX и ЦС по отношению к ЛО группе крыс на 67,6 (p=0,012); 75,1 (p=0,028) и 57,3% (p=0,039) соответственно. На фоне введения животным донепезила отмечено достоверное увеличение активности CoX и ЦС в сравнении с показателями ЛО группы крыс на 76,5 (p=0,001) и 77,9% (p=0,001) соответственно, тогда как активность СДГ статистически значимо не изменилась.

Рис. 1. Влияние монокарбонильных куркуминоидов и донепезила на активность анализируемых ферментов в гомогенате коры больших полушарий у крыс-самок с экспериментальной болезнью Альцгеймера (M±SD).

Здесь и на рис. 2: Донепезил — животные, получавшие донепезил; AZBAX4 — животные, получавшие AZBAX4 ((1E, 4E)-1,5-бис (3,4,5-триметоксифенил) пента-1,4-диен-3-он); AZBAX6 — животные, получавшие AZBAX6 ((1E, 4E)-1,5-бис (2,4,6-триметоксифенил) пента-1,4-диен-3-он); # — достоверно относительно ЛО группы; * — достоверно относительно НК группы; Δ — достоверно относительно группы, получавшей донепезил.

У группы животных, которым вводили изучаемое соединение AZBAX4, наблюдалось увеличение активности СДГ, CoX и ЦС по отношению к НК группе крыс на 93,4% (p=0,021); 125,1% (p=0,0017) и 115,3% (p=0,01) соответственно. В то же время у крыс при применении AZBAX4 отмечено повышение активности анализируемых ферментов относительно группы животных, которым вводили донепезил: СДГ — на 66,9% (p=0,016); CoX — на 27,5% (p=0,019) и ЦС — на 21,0% (p=0,001).

При введении животным соединения AZBAX6 активность СДГ увеличилась относительно НК группы крыс — на 78,0% (p=0,014), тогда как активность CoX и ЦС повысилась на 116,0 (p=0,024) и 97,5% (p=0,032) соответственно. Стоит отметить, что у крыс, получавших AZBAX6, активность СДГ, CoX и ЦС была выше аналогичной у группы животных, которым вводили донепезил, на 53,7 (p=0,026); 22,4 (p=0,037) и 11,0% (p=0,042) соответственно. При этом статистически значимых отличий между группами животных, получавших AZBAX4 и AZBAX6, установлено не было.

В ходе исследования было показано, что у крыс-самцов НК группы отмечено достоверное уменьшение активности СДГ, CoX и ЦС (рис. 2) по отношению к ЛО животным на 81,7 (p=0,023); 65,6 (p=0,001) и 61,4% (p=0,017) соответственно. В то же время у животных, получавших донепезил, наблюдалось повышение активности CoX и ЦС в сравнении с группой нелеченых животных на 50,9 (p=0,041) и 112,5% (p=0,045) соответственно, тогда как активность СДГ у крыс-самцов, получавших донепезил, достоверно не отличалась от таковой у НК группы животных.

Рис. 2. Влияние монокарбонильных куркуминоидов и донепезила на активность анализируемых ферментов в гомогенате коры больших полушарий у крыс-самцов с экспериментальной болезнью Альцгеймера (M±SD).

На фоне введения AZBAX4 отмечено увеличение активности СДГ, CoX и ЦС относительно НК группы крыс на 52,9 (p=0,013); 70,4 (p=0,029) и 137,5% (p=0,022) соответственно. В то же время активность СДГ, CoX и ЦС у крыс-самцов, получавших AZBAX4, была выше аналогичной у животных, которым вводили донепезил, на 34,4 (p=0,041); 12,9 (p=0,04) и 11,8% (p=0,037) соответственно. При применении AZBAX6 наблюдалось повышение (по отношению к нелеченым животным) активности СДГ на 66,7% (p=0,001); CoX на 79,8% (p=0,019) и ЦС на 143,3% (p=0,001). Также стоит отметить, что у крыс-самцов, получавших AZBAX6, активность СДГ, CoX и ЦС была выше аналогичной у группы животных, которой вводили донепезил, на 46,5 (p=0,039); 19,1 (p=0,048) и 14,4% (p=0,03) соответственно.

Обсуждение

В настоящее время лечение нейродегенеративных заболеваний, в частности БА, представляет собой одну из главных задач медицины. Наряду с классическими средствами симптоматической терапии, постоянно ведется разработка новых лекарственных средств, влияющих на патогенез заболевания. В данном исследовании было показано, что курсовое введение монокарбонильных производных куркумина под шифрами AZBAX4 и AZBAX6 способствовало повышению активности ЦС в коре больших полушарий у крыс с амилоид-индуцированной экспериментальной БА, как у самок, так и у самцов. Подобные изменения могут отражать значимое воздействие анализируемых соединений на митохондриальную функцию, прежде всего митофагию. Известно, что поддержание равновесия в системе образования митохондрий de novo и элиминации поврежденных митохондрий играет ведущую роль в обеспечении сохранения целостности клеток, предотвращении цитотоксичности Aβ и обеспечении нейропротективного эффекта [18]. Возможность регуляции митофагии и митохондриального биогенеза была описана для многих соединений, в том числе для куркумина. Так, A. Moustapha и соавт. [19] продемонстрировали, что куркумин способствовал образованию митофагических вакуолей, активируя LC-3-зависимую митофагию в культуре клеток гепатомы человека Huh-7. В исследовании, проведенным S. Cao и соавт. [20], показано, что введение куркумина приводило к повышению элиминации окислительно поврежденных митохондрий за счет повышения активности PARKIN-зависимого пути митофагии.

Альтернативно митофагии, об активности которой свидетельствуют каталитические свойства ЦС, при применении веществ AZBAX4 и AZBAX6 отмечено повышение активности СДГ и CoX (при отсутствии гендерных отличий), что может являться свидетельством увеличения интенсивности процессов митохондриального биогенеза. Митохондриальный биогенез является относительно новой мишенью в терапии БА, но, несмотря на это, были достигнуты определенные успехи в понимании фармакологической коррекции данного процесса. Известно, что Aβ подавляет митохондриальный биогенез посредством блокады сигнального пути АМФК-SIRT-1 и PGC-1α, в связи с чем активность подавляющего большинства соединений, восстанавливающих митохондриальный биогенез, рассматривалась в контексте регуляции данного каскадного сигнала. Было показано, что несколько соединений, в частности, мелатонин [21], ресвератрол [22] и берберин [23], оказывают нейропротективное действие за счет повышения PGC-1α-зависимого митохондриального биогенеза. В свою очередь куркумин и некоторые его аналоги также увеличивали интенсивность митохондриального биогенеза за счет активации пути цАМФ-АМФК. Так, показано, что введение куркумина дозозависимо повышало митохондриальный биогенез в ткани головного мозга крыс [24].

Стоит отметить, что донепезил оказывал несколько меньшее влияние на изменение анализируемых параметров, нежели исследуемые соединения AZBAX4 и AZBAX6. Данный факт может объясняться особенностями митохондриально-ориентированного действия донепезила, которые представлены в работе J. Wang и соавт. [25]. Авторами было показано, что донепезил повышает интенсивность клеточного дыхания в неповрежденных митохондриях, о чем может свидетельствовать увеличение активности CoX и ЦС, но не оказывает влияния на процессы элиминации дефектных митохондрий.

Таким образом, можно предположить, что соединения AZBAX4 и AZBAX6, являясь структурными аналогами куркумина, способны воздействовать на процесс митохондриального биогенеза и митофагии на уровне регуляции внутриклеточных сигнальных путей, превосходя при этом донепезил, что, однако, требует дальнейшего изучения.

Заключение

На основании полученных данных можно предполагать, что применение новых монокарбонильных аналогов куркумина AZBAX4 и AZBAX6 способствует повышению митохондриального биогенеза и митофагии в коре больших полушарий у крыс обоих полов с экспериментальной БА. В совокупности результаты данного исследования демонстрируют актуальность дальнейшего изучения соединений AZBAX4 и AZBAX6 как нейропротективных соединений, используемых в терапии БА.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Abbott A. Conquering Alzheimer’s: a look at the therapies of the future. Nature. 2023;616(7955):26-28.  https://doi.org/10.1038/d41586-023-00954-w
  2. Jia J, Zhang Y, Shi Y, et al. A 19-Year-Old Adolescent with Probable Alzheimer’s Disease. J Alzheimers Dis. 2023;91(3):915-922.  https://doi.org/10.3233/JAD-221065
  3. Passeri E, Elkhoury K, Morsink M, et al. Alzheimer’s Disease: Treatment Strategies and Their Limitations. Int J Mol Sci. 2022;23(22):13954. https://doi.org/10.3390/ijms232213954
  4. Villain N. Therapeutic news in Alzheimer’s disease: Soon a disease-modifying therapy? Rev Neurol (Paris). 2022;178(5):437-440.  https://doi.org/10.1016/j.neurol.2022.02.456
  5. Ashleigh T, Swerdlow RH, Beal MF. The role of mitochondrial dysfunction in Alzheimer’s disease pathogenesis. Alzheimers Dement. 2023;19(1):333-342.  https://doi.org/10.1002/alz.12683
  6. Mangrulkar SV, Wankhede NL, Kale MB, et al. Mitochondrial Dysfunction as a Signaling Target for Therapeutic Intervention in Major Neurodegenerative Disease. Neurotox Res. 2023;41(6):708-729.  https://doi.org/10.1007/s12640-023-00647-2
  7. Tammineni P, Ye X, Feng T, et al. Impaired retrograde transport of axonal autophagosomes contributes to autophagic stress in Alzheimer’s disease neurons. Elife. 2017;6:e21776. https://doi.org/10.7554/eLife.21776
  8. Fang EF, Hou Y, Palikaras K, et al. Mitophagy inhibits amyloid-β and tau pathology and reverses cognitive deficits in models of Alzheimer’s disease. Nat Neurosci. 2019;22(3):401-412.  https://doi.org/10.1038/s41593-018-0332-9
  9. Lou G, Palikaras K, Lautrup S, et al. Mitophagy and Neuroprotection. Trends Mol Med. 2020;26(1):8-20.  https://doi.org/10.1016/j.molmed.2019.07.002
  10. He W, Wang J, Jin Q, et al. Design, green synthesis, antioxidant activity screening, and evaluation of protective effect on cerebral ischemia reperfusion injury of novel monoenone monocarbonyl curcumin analogs. Bioorg Chem. 2021;114:105080. https://doi.org/10.1016/j.bioorg.2021.105080
  11. Pozdnyakov DI, Vikhor AA, Rukovitsina VM, et al. Correction of mitochondrial dysfunction with trimethoxy-substituted monocarbonyl curcumin analogues in experimental Alzheimer’s disease. Pharmacy & Pharmacology. 2023;11(6):471-481.  https://doi.org/10.19163/2307-9266-2023-11-6-471-481
  12. Kim HY, Lee DK, Chung BR, et al. Intracerebroventricular Injection of Amyloid-β Peptides in Normal Mice to Acutely Induce Alzheimer-like Cognitive Deficits. J Vis Exp. 2016;(109):53308. https://doi.org/10.3791/53308
  13. Connolly NMC, Theurey P, Adam-Vizi V, et al. Guidelines on experimental methods to assess mitochondrial dysfunction in cellular models of neurodegenerative diseases. Cell Death Differ. 2018;25(3):542-572.  https://doi.org/10.1038/s41418-017-0020-4
  14. Ding WX, Yin XM. Mitophagy: mechanisms, pathophysiological roles, and analysis. Biol Chem. 2012;393(7):547-564.  https://doi.org/10.1515/hsz-2012-0119
  15. Wang H, Huwaimel B, Verma K, et al. Synthesis and Antineoplastic Evaluation of Mitochondrial Complex II (Succinate Dehydrogenase) Inhibitors Derived from Atpenin A5. ChemMedChem. 2017;12(13):1033-1044. https://doi.org/10.1002/cmdc.201700196
  16. Li Y, D’Aurelio M, Deng JH, et al. An assembled complex IV maintains the stability and activity of complex I in mammalian mitochondria. J Biol Chem. 2007;282(24):17557-17562. https://doi.org/10.1074/jbc.M701056200
  17. Grassi M, Laubscher B, Pandey AV, et al. Expanding the p.(Arg85Trp) Variant-Specific Phenotype of HNF4A: Features of Glycogen Storage Disease, Liver Cirrhosis, Impaired Mitochondrial Function, and Glomerular Changes. Mol Syndromol. 2023;14(4):347-361.  https://doi.org/10.1159/000529306
  18. Fang EF. Mitophagy and NAD+ inhibit Alzheimer disease. Autophagy. 2019;15(6):1112-1114. https://doi.org/10.1080/15548627.2019.1596497
  19. Moustapha A, Pérétout PA, Rainey NE, et al. Curcumin induces crosstalk between autophagy and apoptosis mediated by calcium release from the endoplasmic reticulum, lysosomal destabilization and mitochondrial events. Cell Death Discov. 2015;1:15017. https://doi.org/10.1038/cddiscovery.2015.17
  20. Cao S, Wang C, Yan J, et al. Curcumin ameliorates oxidative stress-induced intestinal barrier injury and mitochondrial damage by promoting Parkin dependent mitophagy through AMPK-TFEB signal pathway. Free Radic Biol Med. 2020;147:8-22.  https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2019.12.004
  21. Song C, Li M, Xu L, et al. Mitochondrial biogenesis mediated by melatonin in an APPswe/PS1dE9 transgenic mice model. Neuroreport. 2018;29(18):1517-1524. https://doi.org/10.1097/WNR.0000000000001139
  22. Peng K, Tao Y, Zhang J, et al. Resveratrol Regulates Mitochondrial Biogenesis and Fission/Fusion to Attenuate Rotenone-Induced Neurotoxicity. Oxid Med Cell Longev. 2016;2016:6705621. https://doi.org/10.1155/2016/6705621
  23. Yerra VG, Kalvala AK, Sherkhane B, et al. Adenosine monophosphate-activated protein kinase modulation by berberine attenuates mitochondrial deficits and redox imbalance in experimental diabetic neuropathy. Neuropharmacology. 2018;131:256-270.  https://doi.org/10.1016/j.neuropharm.2017.12.029
  24. Kotha RR, Luthria DL. Curcumin: Biological, Pharmaceutical, Nutraceutical, and Analytical Aspects. Molecules. 2019;24(16):2930. https://doi.org/10.3390/molecules24162930
  25. Wang J, Guo X, Lu W, et al. Donepezil Combined with DL-3-n-Butylphthalide Delays Cognitive Decline in Patients with Mild to Moderate Alzheimer’s Disease: A Multicenter, Prospective Cohort Study. J Alzheimers Dis. 2021;80(2):673-681.  https://doi.org/10.3233/JAD-201381

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.