Федорова А.С.

ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова»

Сидоров И.В.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Дмитрия Рогачева» Минздрава России

Коновалов Д.М.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Дмитрия Рогачева» Минздрава России;
ФГБОУ ДПО «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Минздрава России

Ангиоматоидная фиброзная гистиоцитома: обзор литературы и описание двух наблюдений

Авторы:

Федорова А.С., Сидоров И.В., Коновалов Д.М.

Подробнее об авторах

Журнал: Архив патологии. 2021;83(5): 31‑38

Прочитано: 6154 раза


Как цитировать:

Федорова А.С., Сидоров И.В., Коновалов Д.М. Ангиоматоидная фиброзная гистиоцитома: обзор литературы и описание двух наблюдений. Архив патологии. 2021;83(5):31‑38.
Fedorova AS, Sidorov IV, Konovalov DM. Angiomatoid fibrous histiocytoma: a literature review and a report of two cases. Russian Journal of Archive of Pathology. 2021;83(5):31‑38. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/patol20218305131

Рекомендуем статьи по данной теме:
Кли­ни­чес­кий слу­чай: се­мей­ная пу­зыр­чат­ка Хей­ли—Хей­ли или бо­лезнь Дарье?. Кли­ни­чес­кая дер­ма­то­ло­гия и ве­не­ро­ло­гия. 2024;(5):537-541
Гной­ный гид­ра­де­нит: кли­ни­чес­кий слу­чай. Кли­ни­чес­кая дер­ма­то­ло­гия и ве­не­ро­ло­гия. 2024;(5):542-545
Пси­хо­па­то­ло­ги­чес­кие расстройства в де­бю­те юве­ниль­но­го пар­кин­со­низ­ма в дет­ском воз­рас­те. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2024;(11-2):96-102
Пиг­мен­тная фор­ма бо­лез­ни Боуэна. Кли­ни­чес­кая дер­ма­то­ло­гия и ве­не­ро­ло­гия. 2024;(6):667-672
Кли­ни­чес­кий слу­чай ВИЧ-ас­со­ци­иро­ван­ной фор­мы сар­ко­мы Ка­по­ши. Кли­ни­чес­кая дер­ма­то­ло­гия и ве­не­ро­ло­гия. 2024;(6):782-786

Ангиоматоидная фиброзная гистиоцитома (АФГ) является редкой опухолью с промежуточным потенциалом злокачественности и относительно благоприятным прогнозом (местные рецидивы встречаются в 15% случаев, а метастазы, по данным разных исследований, — не более чем в 5% случаев) [1, 2], 5-летняя и бессобытийная выживаемость составляют 98,9—100% [1]. Впервые опухоль была описана в работе F. Enzinger в 1979 г. [3]. Клинически АФГ представляет собой безболезненную опухоль мягких тканей, которая может сопровождаться системными проявлениями [1, 3]. Развитие заболевания наиболее характерно для детей и молодых людей [1]. Описаны морфологические и иммуногистохимические признаки, используемые в диагностике АФГ, которая является опухолью, ассоциированной с транслокациями (EWSR1-CREB1, EWSR1-ATF1, FUS-ATF1) [4—9]. Описание наблюдений АФГ представляет значительный интерес в связи с низкой частотой встречаемости данной опухоли и частыми ошибками диагностики.

Цель работы — описание двух собственных клинических наблюдений АФГ и обзор литературы.

Клиническое наблюдение №1

Девочка, 14 лет. В 2018 г. обнаружено образование на передней поверхности правого бедра. В связи с ростом образования девочка была консультирована хирургом, госпитализирована для оперативного вмешательства в ноябре 2020 г. Стоит отметить, что системные явления (лихорадка, слабость, похудание) на момент госпитализации отсутствовали, показатели функций дыхательной, сердечно-сосудистой и других систем органов находились в пределах нормы. Произведено оперативное вмешательство: удаление новообразования. Макроскопически новообразование бледно-серого цвета с капсулой, размером 1,7×1×1,5 см. При гистологическом исследовании материал представлен фрагментами опухолевой ткани, ограниченной толстой фиброзной капсулой. Неопластическая ткань состояла из клеток с овоидными ядрами со светлым хроматином и мелкими эозинофильными ядрышками и амфофильной цитоплазмой с нечеткими границами. Клетки организованы в короткие разнонаправленные пучки. Среди клеток определялись полости, заполненные кровью. На периферии располагалась густая лимфоидная инфильтрация с очаговым формированием фолликулов. При иммуногистохимическом исследовании клетки опухоли экспрессировали CD99, CD68, фокально Desmin, EMA, SMA. Был поставлен диагноз АФГ (рис. 1).

Рис. 1. Микроскопическая и иммуногистохимическая картина наблюдения №1.

а — микропрепарат: видны фиброзная псевдокапсула, перифокальный лимфоидный инфильтрат, окраска гематоксилином и эозином, ×200; б — увеличенное изображение микропрепарата, видны веретеновидные клетки, окраска гематоксилином и эозином, ×300; в — иммуногистохимическая реакция с CD99, ×300; г — иммуногистохимическая реакция с Desmin, ×400.

Клиническое наблюдение №2

Девочка, 12 лет. В октябре 2020 г. было отмечено появление подвижного безболезненного образования в мягких тканях по задней поверхности средней трети правого бедра. По данным МРТ установлено объемное поликистозное образование с уровнями жидкости и толстыми перегородками в верхней трети правого бедра между латеральной и промежуточной широкой мышцей, размер 3,9×3,4×5,5 см, неправильной формы с преимущественно четкими бугристыми контурами. Перегородки образования накапливали контраст. Системных симптомов (лихорадка, слабость, похудание) выявлено не было. В общем анализе крови отмечались повышенное содержание тромбоцитов (589.109/л), пониженный уровень гемоглобина (95 г/л). Выполнено оперативное вмешательство: макроскопически радикальное удаление опухоли. При выписке в общем анализе крови уровень тромбоцитов снизился до 370.109/л, уровень гемоглобина увеличился до 110 г/л. При гистологическом исследовании материал представлен фрагментами хорошо отграниченной опухолевой ткани, состоящей из веретеновидных клеток среднего размера с небольшим количеством эозинофильной цитоплазмы и овоидными ядрами с мелкодисперсным хроматином. Клетки организованы в пучки. Также в опухолевой ткани определялись мелкие полости без эндотелиальной выстилки, заполненные кровью, диффузная инфильтрация из сидерофагов, перифокальная лимфоидная инфильтрация. При иммуногистохимическом исследовании клетки опухоли экспрессировали CD99, EMA, Desmin. Установлен диагноз АФГ (рис. 2).

Рис. 2. Микроскопическая и иммуногистохимическая картина наблюдения №2.

a — микропрепарат: видны кистозные полости, заполненные кровью, депозиты гемосидерина, окраска гематоксилином и эозином, ×150; б — увеличенное изображение микропрепарата, видны веретеновидные клетки, депозиты гемосидерина, окраска гематоксилином и эозином, ×300; в — иммуногистохимическая реакция с CD99, ×300; г — иммуногистохимическая реакция с Desmin, ×300.

Эпидемиология

АФГ — редкая опухоль с частотой встречаемости около 1:100 000 [10]. Она составляет 0,3% от всех опухолей мягких тканей, однако истинная частота может быть выше вследствие гиподиагностики из-за большого сходства с другими опухолями [11]. В литературе встречаются разные данные относительно распределения заболеваемости по полу: согласно одним авторам, опухоль одинаково часто встречается у представителей обоих полов [12], согласно другим, она в 3 раза чаще выявляется у лиц мужского пола [10]. АФГ может развиваться в любом возрасте от младенчества (включая случаи врожденных опухолей) до девятого 10-летия жизни [11], при этом пик заболеваемости приходится на первые 20 лет [1, 4].

Локализация

Чаще всего опухоль располагается на конечностях, а также туловище, голове и шее [12]. В последнее время появляется все больше сообщений об обнаружении АФГ вне мягких тканей: в головном мозге [5], спинном мозге [13], легких [14], яичниках, вульве, средостении, забрюшинном пространстве [15], сальнике [16], костях [17], молочной железе [18], надпочечниках [19], трахее [20].

Клиническая картина

Клинически опухоль обычно представляет собой медленно растущее поверхностное безболезненное образование, не связанное с кожей, напоминающее гематому или гемангиому [1, 3, 12]. Редко у пациентов с АФГ наблюдаются такие системные проявления, как общее недомогание, лихорадка, анемия, потеря массы тела, тромбоцитоз, повышенные уровни белков острой фазы воспаления (C-реактивный белок, фибриноген и др.), что позволяет предположить повышенную продукцию провоспалительных цитокинов [1, 3, 16]. В работе M. Akiyama и соавт. [21] высказали предположение, что имеет место, в частности, гиперпродукция IL-6, высокий уровень которого был обнаружен в опухолевых клетках. Причиной гиперпродукции является повышенная активность гена CREB1, задействованного в транскрипционной регуляции IL-6, обусловленная слиянием CREB1 с геном EWSR1. Это дает возможность использовать в терапии пациентов с АФГ такие препараты, как тоцилизумаб (рекомбинантное гуманизированное моноклональное антитело к рецептору IL-6), который влияет не только на течение воспалительного паранеопластического синдрома, но и на активность опухолевого процесса по данным ПЭТ [22]. Также описаны случаи сопутствующей патологии тромбоцитарного гемостаза, связанной с дефицитом плотных гранул [23]. Системные явления более характерны для случаев нетипичной локализации опухоли [15], после резекции они исчезают.

Макроскопическое описание

Макроскопически АФГ представляет собой плотное твердое узловатое образование, иногда с кистозными полостями. Размер опухоли варьирует в широких пределах (0,7—12 см), медиана составляет, по разным данным, 2—2,5 см. Поверхность среза блестящая, желто-коричневого или белого цвета с множественными очагами кровоизлияний [1, 3, 12].

Гистологическое описание

Микроскопически опухоли дольчатые или мультинодулярные, отграниченные от окружающих тканей толстой фиброзной псевдокапсулой. Они характеризуются четырьмя основными морфологическими компонентами, которые могут сочетаться в различных пропорциях:

1) солидные узлы клеток различной морфологии (овоидные, эпителиоидные, веретеновидные) со средним количеством эозинофильной цитоплазмы и везикулярными ядрами;

2) полости, заполненные кровью и выстланные опухолевыми клетками;

3) депозиты гемосидерина;

4) плотный перикапсулярный лимфоплазмоцитарный инфильтрат с формированием герминативных центров.

Будучи типичными, эти признаки, однако, не встречаются во всех без исключения случаях АФГ. Приблизительно в трети случаев отсутствуют кистозные полости, заполненные кровью [11, 24], а воспалительный инфильтрат отсутствует в 20% случаев [1, 3]. Таким образом, наиболее постоянным признаком являются пласты или короткие пучки клеток вышеописанной разнообразной морфологии [12]. При этом описаны случаи, когда опухоль была представлена исключительно пучками веретеновидных клеток и не имела ни одной из трех других характерных черт [25]. Иногда обнаруживаются атипичные фигуры митоза, но в целом они являются редкой находкой. При этом клеточная атипия и увеличенное число фигур митоза не коррелируют с плохим прогнозом [1]. Строма может быть миксоидной, склеротической или десмопластической [15]. Иногда АФГ представляет собой мелкокруглоклеточную опухоль, клетки которой имеют гиперхромные ядра и скудную эозинофильную цитоплазму [2]. Могут встречаться гигантские многоядерные клетки [24].

Иммуногистохимические признаки

Иммуногистохимические исследования в диагностике АФГ носят вспомогательный характер, так как не существует специфического набора маркеров, свойственных для этой опухоли [11, 12, 26]. В половине случаев обнаруживается экспрессия Desmin, EMA, CD99, CD68. При этом миогенные маркеры (Myogenin, MyoD1), а также CD21, CD35, s100, HMB-45, PanCK, CD34, CD31 нехарактерны. Экспрессия Ki-67 низкая. Лимфоидный инфильтрат, окружающий опухоль, состоит из B- и T-лимфоцитов, среди которых встречаются рассеянные Desmin-положительные клетки [11].

В связи с отсутствием специфических иммуногистохимических маркеров в последние годы активно ведутся исследования, направленные на обнаружение новых молекул, экспрессия которых может использоваться для подтверждения диагноза АФГ. По данным A. Cheah и соавт. [27], в большинстве (82%) опухолей этого типа обнаруживается экспрессия ALK (исследование проводилось с использованием клонов антител D5F3, 5A4, ALK1, причем D5F3 и 5A4, дававшие положительную реакцию в 82 и 66,6% случаев соответственно, оказались чувствительнее, чем ALK1, реакция с которым была положительна только в 11% случаев). По мнению Р. van Zwam и соавт. [28], выявление экспрессии ALK вместе с Desmin и EMA может использоваться для подтверждения диагноза АФГ, кроме того, является более доступным, чем определение характерных для АФГ генетических перестроек. Однако, ориентируясь на экспрессию ALK, АФГ можно перепутать с воспалительной миофибробластической опухолью [27]. В работе L. Berklite и соавт. [29] в 85% АФГ была выявлена экспрессия SOX9, маркера, характерного для опухолей с хондроидной дифференцировкой, а также для других опухолей костей и мягких тканей (хондросаркома, синовиальная саркома, мезенхимальная хондросаркома, хондробластома, саркома Юинга) [30—33]. Авторы предполагают, что апрегуляция экспрессии SOX9 в АФГ обусловлена свойственными для данной опухоли генетическими перестройками (EWSR1-CREB1, EWSR1-ATF1, FUS-ATF1). Применение этого маркера может помочь дифференцировать АФГ от других мягкотканных опухолей с промежуточным потенциалом злокачественности, в том числе от воспалительной миофибробластической опухоли, для которой экспрессия SOX9 нехарактерна. При этом в аневризмальной фиброзной гистиоцитоме экспрессия SOX9 присутствует, однако снижена по сравнению с АФГ [29]. Также в 22,2% АФГ обнаруживается MUC4, но причины этого неясны, а использование этого маркера может привести к трудностям в дифференциальной диагностике с low-grade фибромиксоидной саркомой и склерозирующей эпителиоидной фибросаркомой, поэтому не рекомендуется авторами соответствующего исследования [34]. В работе J. Byers и соавт. [35] более чем в половине АФГ обнаружили белок PD-L1. PD-L1 (B7-H1) является регулятором иммунного ответа. Известно, что связывание PD-L1 с его рецептором PD-1 позволяет опухолям избегать иммунного ответа [36]. Применение ингибиторов PD-1/PD-L1 рассматривается как перспективное направление в лечении опухолей [37], что может быть особенно важно в случае АФГ, так как применение нехирургических методов в этом случае изучено недостаточно хорошо.

Генетические особенности

АФГ относится к опухолям, ассоциированным с транслокациями. Наиболее изучены три транслокации, характерные для данной опухоли: t(2;22) (q33;q12) (EWSR1-CREB1) [4, 6], t(12;22) (q13;q12) (EWSR1-ATF1) [5, 6, 7], t(12;16) (q13;p11) (FUS-ATF1) [8, 9]. Слияние генов EWSR1-CREB1 является наиболее распространенной генетической перестройкой в АФГ, встречающейся в 90% опухолей [4]. Также описано наличие в АФГ слияния генов EWSR1-CREM [38]. На сегодняшний день считается, что тип химерного гена не коррелирует с клинической картиной, гистологическими и иммуногистохимическими характеристиками, прогнозом и ответом на терапию [39]. Показано лишь, что наличие слияния EWSR1-ATF свойственно АФГ висцеральной локализации [15].

Гены EWSR1 и FUS кодируют многофункциональные белки, относящиеся к семейству РНК-связывающих белков FET. Они участвуют в регуляции экспрессии генов, поддержании целостности генома, процессинге иРНК и микроРНК [40]. Реаранжировки этих генов встречаются во многих опухолях, как мягкотканных, так и гемопоэтических и эпителиальных, причем в некоторых генетические перестройки идентичны характерным для АФГ. Так, в светлоклеточной саркоме и в злокачественной гастроинтестинальной нейроэндокринной опухоли выявляются химерные гены EWSR1-ATF1 и EWSR1-CREB1, в первичной легочной миксоидной саркоме — EWSR1-CREB1, а в некоторых светлоклеточных карциномах, миоэпителиальных опухолях может встречаться слияние EWSR1-CREM [41]. В гиалинизирующей светлоклеточной карциноме слюнных желез [42] и ангиосаркоме [43] указано на слияние EWSR1-ATF1. Химерный ген FUS-ATF1 описан в некоторых злокачественных мезотелиомах [44]. При этом эти опухоли, как правило, гистологически и клинически отличны от АФГ.

Как уже было сказано, в АФГ обнаружена экспрессия ALK, которая является рецепторной тирозинкиназой из суперсемейства инсулинового рецептора. Кодирующий ее ген ALK расположен на хромосоме 2p23 [27]. Слияния ALK с другими генами встречаются в различных опухолях: анапластической крупноклеточной лимфоме [45], некоторых легочных аденокарциномах [46], воспалительной миофибробластической опухоли [47, 48], эпителиоидной фиброзной гистиоцитоме [49]. Во всех этих случаях образуются продукты химерных генов с конститутивно активным тирозинкиназным доменом. Однако в исследовании A. Cheah и соавт. [27] в АФГ не удалось обнаружить реаранжировку с участием ALK или увеличение числа копий этого гена, в связи с чем было высказано предположение, что ALK регулируется продуктами химерных генов, характерных для этой опухоли. Предполагается, что ингибиторы ALK могут рассматриваться как перспективные препараты для терапии АФГ.

Дифференциальная диагностика

Важно понимать, что единственной постоянной чертой АФГ, как уже было сказано, являются пласты клеток различной морфологии (чаще овоидных или веретеновидных), а такие характерные признаки, как псевдокапсула и лимфоплазмоцитарный инфильтрат, могут отсутствовать. АФГ приходится дифференцировать от широкого спектра патологических процессов: от реактивных изменений (например, гранулем) до доброкачественных и злокачественных опухолей [12]. Нозологии, с которыми чаще всего приходится дифференцировать АФГ, и параметры, важные для дифференциальной диагностики, представлены в таблице.

Патология, наиболее часто требующая дифференциальной диагностики с АФГ

Патология

Полости, заполненные кровью, депозиты гемосидерина

Периферический лимфоплазмоцитарный инфильтрат

Псевдокапсула

Глубина расположения

ИГХ

Ссылки на литературу

АФГ

+

+

+

Поверхностно без связи с кожей

Desmin+

EMA+

CD99+

CD68+

ALK+

SOX9+

[1, 3, 11, 12, 24, 26, 27, 29]

Рабдомиосаркома

Инвазивный рост

Глубоко в мягких тканях

Desmin+

Myogenin+

MyoD1+

[12]

Аневризмальная доброкачественная фиброзная гистиоцитома (дерматофиброма)

+

В дерме

Desmin-

[12, 50, 51]

Саркома Капоши

+

В дерме

HHV8+

CD34+

[12, 52]

Воспалительная миофибробластическая опухоль

+ (лимфоцитарная инфильтрация располагается диффузно в опухолевой ткани)

В мягких тканях брюшной полости, легких, средостении и др.

ALK+

[1, 3, 27]

Другое заболевание, с которым АФГ может иметь сходство, — это саркома Юинга. АФГ может состоять из мелких округлых клеток с высоким ядерно-цитоплазматическим соотношением, кроме того, для обеих опухолей характерны экспрессия CD99 и наличие реаранжировок гена EWSR1. Тем не менее саркому Юинга можно отличить от АФГ по экспрессии Nkx-2.2, FLI1, ERG [53—55], кроме того, для нее свойственны другие гены-партнеры EWSR1. Светлоклеточная саркома мягких тканей, как и АФГ, может поражать нижние конечности и встречается в сходной возрастной группе. Она представлена солидными гнездами униформных овоидных или веретеновидных клеток, разделенных фиброзными септами, в связи с чем может иметь морфологическое сходство с АФГ. Кроме того, она, как уже было сказано, иногда имеет характерные для АФГ генетические перестройки. Однако для светлоклеточной саркомы характерны экспрессия s100, HMB-45, Melan-A, MiTF-M и активация сигнального пути MiTF [7, 56, 57]. Миоэпителиальные опухоли, как и АФГ, поражают детей и молодых людей и локализуются на конечностях, голове, шее и туловище. Ретикулярный паттерн и экспрессия EMA также придают им сходство с АФГ, однако миоэпителиальные опухоли могут также формировать протоковые и трубчатые структуры и хондромиксоидную строму и экспрессировать PanCK, s100, SMA, CD10 и Calponin, что нехарактерно для АФГ. Генетические перестройки с участием EWSR1 в миоэпителиальных опухолях, как правило, затрагивают несвойственные для АФГ гены-партнеры [12]. Экспрессия ALK [27], затрудняющая дифференцирование АФГ от воспалительной миофибробластической опухоли, может также привести к трудностям в дифференциальной диагностике АФГ и эпителиоидной фиброзной гистиоцитомы, как и экспрессия EMA [58], однако последняя, как правило, располагается поверхностнее (в поверхностных слоях дермы), не имеет псевдокапсулы, периферического лимфоплазмоцитарного инфильтрата и полостей, заполненных кровью. Для этой солидной опухоли характерны мономорфные полигональные клетки с овоидными везикулярными ядрами (могут встречаться многоядерные формы клеток) и эозинофильной или амфифильной цитоплазмой.

Отдельную трудность представляет собой дифференциальная диагностика АФГ и метастатического поражения. Лимфоплазмоцитарная манжета вокруг опухоли может придавать ей сходство с метастатическим поражением лимфатических узлов, однако в АФГ скопление лимфоидных клеток представлено произвольно расположенными герминативными центрами без признаков обычной для лимфатических узлов архитектоники (субкапсулярные и медуллярные синусы). Локализация АФГ в легких, головном мозге и других опухолях также может напоминать метастатическое поражение и требует тщательной диагностики для поиска первичной опухоли [12].

Заключение

В настоящей статье представлены два клинических случая АФГ у детей 12 и 14 лет, что соответствует возрастной группе, в которой наиболее часто встречается данная опухоль. В обоих случаях опухоль располагалась на конечностях, что также типично для АФГ. Важно помнить, из-за того, что АФГ может иметь сходство с широким спектром нозологий, для достоверной диагностики данной опухоли требуется применение иммуногистохимических маркеров, количество которых в последние годы увеличивается (в диагностическую панель должны быть включены Desmin, EMA, CD99, CD68, ALK, SOX9, Myogenin, MyoD1, CD34, HHV8), а в некоторых случаях также молекулярно-генетического исследования для выявления характерных для АФГ транслокаций. Интересно отметить, что в наблюдении №2 опухолевому процессу сопутствовал тромбоцитоз, при этом уровень тромбоцитов снизился после резекции опухоли. Изучение патогенеза системных явлений при АФГ, в том числе роль синтеза IL-6 клетками опухоли, помимо своей диагностической значимости при сопоставлении морфологической картины с клинической, может оказать влияние на разработку новых методов лечения в дополнение к принятому сейчас хирургическому подходу.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

The authors declare no conflicts of interest.

Литература / References:

  1. Costa MJ, Weiss SW. Angiomatoid malignant fibrous histiocytoma. A follow-up study of 108 cases with evaluation of possible histologic predictors of outcome. Am J Surg Pathol. 1990;14(12):1126-1132.
  2. Fanburg-Smith JC, Miettinen M. Angiomatoid «malignant» fibrous histiocytoma: a clinicopathologic study of 158 cases and further exploration of the myoid phenotype. Hum Pathol. 1999;30(11):1336-1343. https://doi.org/10.1016/s0046-8177(99)90065-5
  3. Enzinger FM. Angiomatoid malignant fibrous histiocytoma: a distinct fibrohistiocytic tumor of children and young adults simulating a vascular neoplasm. Cancer. 1979;44(6):2147-2157. https://doi.org/10.1002/1097-0142(197912)44:6<2147::aid-cncr2820440627>3.0.co;2-8 "> 3.0.co;2-8" target="_blank">https://doi.org/10.1002/1097-0142(197912)44:6<2147::aid-cncr2820440627>3.0.co;2-8
  4. Antonescu CR, Dal Cin P, Nafa K, Teot LA, Surti U, Fletcher CD, Ladanyi M. EWSR1-CREB1 is the predominant gene fusion in angiomatoid fibrous histiocytoma. Genes Chromosomes Cancer. 2007;46(12):1051-1060. https://doi.org/10.1002/gcc.20491
  5. Dunham C, Hussong J, Seiff M, Pfeifer J, Perry A. Primary intracerebral angiomatoid fibrous histiocytoma: report of a case with a t(12;22)(q13;q12) causing type 1 fusion of the EWS and ATF-1 genes. Am J Surg Pathol. 2008;32(3):478-484.  https://doi.org/10.1097/PAS.0b013e3181453451
  6. Rossi S, Szuhai K, Ijszenga M, Tanke HJ, Zanatta L, Sciot R, Fletcher CD, Dei Tos AP, Hogendoorn PC. EWSR1-CREB1 and EWSR1-ATF1 fusion genes in angiomatoid fibrous histiocytoma. Clin Cancer Res. 2007;13(24):7322-7328. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-07-1744
  7. Hallor KH, Micci F, Meis-Kindblom JM, Kindblom LG, Bacchini P, Mandahl N, Mertens F, Panagopoulos I. Fusion genes in angiomatoid fibrous histiocytoma. Cancer Lett. 2007;251(1):158-163.  https://doi.org/10.1016/j.canlet.2006.11.014
  8. Raddaoui E, Donner LR, Panagopoulos I. Fusion of the FUS and ATF1 genes in a large, deep-seated angiomatoid fibrous histiocytoma. Diagn Mol Pathol. 2002;11(3):157-162.  https://doi.org/10.1097/00019606-200209000-00006
  9. Waters BL, Panagopoulos I, Allen EF. Genetic characterization of angiomatoid fibrous histiocytoma identifies fusion of the FUS and ATF-1 genes induced by a chromosomal translocation involving bands 12q13 and 16p11. Cancer Genet Cytogenet. 2000;121(2):109-116.  https://doi.org/10.1016/s0165-4608(00)00237-5
  10. Bauer A, Jackson B, Marner E, Gilbertson-Dahdal D. Angiomatoid fibrous histiocytoma: a case report and review of the literature. J Radiol Case Rep. 2012;6(11):8-15.  https://doi.org/10.3941/jrcr.v6i11.932
  11. Fanburg-Smith JC, Cin PD. Tumors of uncertain differentiation: angiomatoid fibrous histiocytoma. In: World Health Organization classification of tumors: Pathology and genetics of tumours of soft tissue and bone. Lyon: IARC; 2002;194-5. Lyon: IARC.
  12. Thway K, Fisher C. Angiomatoid fibrous histiocytoma: the current status of pathology and genetics. Arch Pathol Lab Med. 2015; 139(5):674-682.  https://doi.org/10.5858/arpa.2014-0234-RA
  13. Ding J, Zhou G, Dong Y, Li X, Wang L, Guo B, Gao C, Xu S, Wang F, Sun T. Angiomatoid fibrous histiocytoma in the spinal canal of T3-T4: a case report and literature review. Br J Neurosurg. 2020;1-7.  https://doi.org/10.1080/02688697.2020.1854686
  14. Wang Z, Zhang L, Ren L, Zhang L, Ren L, Liu D, Du J, Zhang M, Lou G, Song Y, Wang Y, Wu C, Han G.Distinct clinicopathological features of pulmonary primary angiomatoid fibrous histiocytoma: A report of four new cases and review of the literature. Thorac Cancer. 2021;12(3):314-323.  https://doi.org/10.1111/1759-7714.13727
  15. Chen G, Folpe AL, Colby TV, Chen G, Folpe AL, Colby TV, Sittampalam K, Patey M, Chen MG, Chan JK. Angiomatoid fibrous histiocytoma: unusual sites and unusual morphology. Mod Pathol. 2011;24(12):1560-1570. https://doi.org/10.1038/modpathol.2011.126
  16. Fletcher CD. Angiomatoid «malignant fibrous histiocytoma»: an immunohistochemical study indicative of myoid differentiation. Hum Pathol. 1991;22(6):563-568.  https://doi.org/10.1016/0046-8177(91)90233-f
  17. Mangham DC, Williams A, Lalam RK, Brundler MA, Leahy MG, Cool WP. Angiomatoid fibrous histiocytoma of bone: a calcifying sclerosing variant mimicking osteosarcoma. Am J Surg Pathol. 2010;34(2):279-285.  https://doi.org/10.1097/PAS.0b013e3181cb4017
  18. Bruehl FK, Cooper KL, Kilpatrick SE, et al. Intramammary angiomatoid fibrous histiocytoma, a rare EWSR1 rearranged mesenchymal neoplasm in a previously unreported anatomic location with review of the cleveland clinic experience. Case Rep Pathol. 2019;2019:9012878. https://doi.org/10.1155/2019/9012878
  19. Khan IS, Kuick CH, Jain S, et al. Primary adrenal angiomatoid fibrous histiocytoma with novel EWSR1-ATF1 gene fusion exon-exon breakpoint. Pediatr Dev Pathol. 2019;22(5):472-474.  https://doi.org/10.1177/1093526619830287
  20. Bouma W, Koning KJ, Suurmeijer AJH, Slebos DJ, Mariani MA, Klinkenberg TJ. Hybrid bronchoscopic and surgical resection of endotracheal angiomatoid fibrous histiocytoma. J Cardiothorac Surg. 2019;14(1):48.  https://doi.org/10.1186/s13019-019-0861-7
  21. Akiyama M, Yamaoka M, Mikami-Terao Y, Yokoi K, Inoue T, Hiramatsu T, Ashizuka S, Yoshizawa J, Katagi H, Ikegami M, Ida H, Nakazawa A, Okita H, Matsumoto K. Paraneoplastic syndrome of angiomatoid fibrous histiocytoma May Be Caused by EWSR1-CREB1 fusion-induced excessive interleukin-6 production. J Pediatr Hematol Oncol. 2015;37(7):554-559.  https://doi.org/10.1097/MPH.0000000000000390
  22. Potter SL, Quintanilla NM, Johnston DK, Naik-Mathuria B, Venkatramani R. Therapeutic response of metastatic angiomatoid fibrous histiocytoma carrying EWSR1-CREB1 fusion to the interleukin-6 receptor antibody tocilizumab. Pediatr Blood Cancer. 2018;65(10):e27291. https://doi.org/10.1002/pbc.27291
  23. Morgan LM, Miller ER, Raj AB, Coventry SC, Elster JD. Angiomatoid fibrous histiocytoma with paraneoplastic platelet storage pool deficiency. Pediatrics. 2018;141(3):e20162065. https://doi.org/10.1542/peds.2016-2065
  24. Kao YC, Lan J, Tai HC, Li CF, Liu KW, Tsai JW, Fang FM, Yu SC, Huang HY. Angiomatoid fibrous histiocytoma: clinicopathological and molecular characterisation with emphasis on variant histomorphology. J Clin Pathol. 2014;67(3):210-215.  https://doi.org/10.1136/jclinpath-2013-201857
  25. Thway K, Strauss DC, Wren D, Fisher C. ‘Pure’ spindle cell variant of angiomatoid fibrous histiocytoma, lacking classic histologic features. Pathol Res Pract. 2016;212(11):1081-1084. https://doi.org/10.1016/j.prp.2016.08.015
  26. Fletcher CDM, Bridge JA, Hogendoorn PCW, Mertens F, eds. WHO classification of tumours of soft tissue and bone. Lyon: Chan JK, Cheuk W, Shimizu. M. 2013.
  27. Cheah AL, Zou Y, Lanigan C, Billings SD, Rubin BP, Hornick JL, Goldblum JR. ALK expression in angiomatoid fibrous histiocytoma: a potential diagnostic pitfall. Am J Surg Pathol. 2019;43(1):93-101.  https://doi.org/10.1097/PAS.0000000000001103
  28. Van Zwam P, Mentzel T, Flucke U. ALK expression in angiomatoid fibrous histiocytoma: confirmation of the findings of Cheah et al. Am J Surg Pathol. 2019;43(8):1156. https://doi.org/10.1097/PAS.0000000000001263
  29. Berklite L, John I, Ranganathan S, Parafioriti A, Alaggio R. SOX9 Immunohistochemistry in the distinction of angiomatoid fibrous histiocytoma from histologic mimics: diagnostic utility and pitfalls. Appl Immunohistochem Mol Morphol. 2020;28(8):635-640.  https://doi.org/10.1097/PAI.0000000000000809
  30. Cajaiba MM, Jianhua Luo, Goodman MA, Fuhrer KA, Rao UN. Sox9 expression is not limited to chondroid neoplasms: variable occurrence in other soft tissue and bone tumors with frequent expression by synovial sarcomas. Int J Surg Pathol. 2010;18(5):319-323.  https://doi.org/10.1177/1066896910367650
  31. Wehrli BM, Huang W, De Crombrugghe B, Ayala AG, Czerniak B. Sox9, a master regulator of chondrogenesis, distinguishes mesenchymal chondrosarcoma from other small blue round cell tumors. Hum Pathol. 2003;34(3):263-269.  https://doi.org/10.1053/hupa.2003.41
  32. Li J, Shen J, Wang K, Hornicek F, Duan Z. The roles of sox family genes in sarcoma. Curr Drug Targets. 2016;17(15):1761-1772. https://doi.org/10.2174/1389450117666160502145311
  33. Zhu H, Tang J, Tang M, Cai H. Upregulation of SOX9 in osteosarcoma and its association with tumor progression and patients’ prognosis. Diagn Pathol. 2013;8:183.  https://doi.org/10.1186/1746-1596-8-183
  34. Abrahao-Machado LF, Bacchi LM, Fernandes IL, Costa FD, Bacchi CE. MUC4 expression in angiomatoid fibrous histiocytoma. Appl Immunohistochem Mol Morphol. 2020;28(8):641-645.  https://doi.org/10.1097/PAI.0000000000000816
  35. Byers J, Yin H, Rytting H, Logan S, He M, Yu Z, Wang D, Warren M, Mangray S, Dehner LP, Zhou S. PD-L1 expression in angiomatoid fibrous histiocytoma. Sci Rep. 2021;11(1):2183. https://doi.org/10.1038/s41598-021-81746-y
  36. Dong H, Strome SE, Salomao DR, Tamura H, Hirano F, Flies DB, Roche PC, Lu J, Zhu G, Tamada K, Lennon VA, Celis E, Chen L. Tumor-associated B7-H1 promotes T-cell apoptosis: a potential mechanism of immune evasion. Nat Med. 2002;8(8):793-800. Correction in Nat Med. 2002;8(9):1039. https://doi.org/10.1038/nm730
  37. Büttner R, Gosney JR, Skov BG, Adam J, Motoi N, Bloom KJ, Dietel M, Longshore JW, López-Ríos F, et al. Programmed death-ligand immunohistochemistry testing: A review of analytical assays and clinical implementation in Non-Small-Cell Lung Cancer. J Clin Oncol. 2017;35(34):3867-3876. https://doi.org/10.1200/JCO.2017.74.7642
  38. Yoshida A, Wakai S, Ryo E, Miyata K, Miyazawa M, Yoshida KI, Motoi T, Ogawa C, Iwata S, Kobayashi E, Watanabe SI, Kawai A, Mori T. et al. Expanding the phenotypic spectrum of mesenchymal tumors harboring the EWSR1-CREM fusion. Am J Surg Pathol. 2019;43(12):1622-1630. https://doi.org/10.1097/PAS.0000000000001331
  39. Cironi L, Provero P, Riggi N, Janiszewska M, Suva D, Suva ML, Kindler V, Stamenkovic I. Epigenetic features of human mesenchymal stem cells determine their permissiveness for induction of relevant transcriptional changes by SYT-SSX1. PLoS One. 2009;4(11):e7904. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0007904
  40. Andersson MK, Ståhlberg A, Arvidsson Y, Olofsson A, Semb H, Stenman G, Nilsson O, Aman P. The multifunctional FUS, EWS and TAF15 proto-oncoproteins show cell type-specific expression patterns and involvement in cell spreading and stress response. BMC Cell Biol. 2008;9:37.  https://doi.org/10.1186/1471-2121-9-37
  41. Thway K, Fisher C. Mesenchymal tumors with EWSR1 gene rearrangements. Surg Pathol Clin. 2019;12(1):165-190.  https://doi.org/10.1016/j.path.2018.10.007
  42. Antonescu CR, Katabi N, Zhang L, Sung YS, Seethala RR, Jordan RC, Perez-Ordoñez B, Have C, Asa SL, et al. EWSR1-ATF1 fusion is a novel and consistent finding in hyalinizing clear-cell carcinoma of salivary gland. Genes Chromosomes Cancer. 2011;50(7):559-570.  https://doi.org/10.1002/gcc.20881
  43. Gru AA, Becker N, Pfeifer JD. Angiosarcoma of the parotid gland with a t(12;22) translocation creating a EWSR1-ATF1 fusion: a diagnostic dilemma. J Clin Pathol. 2013;66(5):452-454.  https://doi.org/10.1136/jclinpath-2012-201433
  44. Desmeules P, Joubert P, Zhang L, Al-Ahmadie HA, Fletcher CD, Vakiani E, Delair DF, Rekhtman N, Ladanyi M, Travis WD, Antonescu CR.A subset of malignant mesotheliomas in young adults are associated with recurrent EWSR1/FUS-ATF1 fusions. Am J Surg Pathol. 2017;41(7):980-988.  https://doi.org/10.1097/PAS.0000000000000864
  45. Morris SW, Kirstein MN, Valentine MB, Dittmer KG, Shapiro DN, Saltman DL, Look AT.Fusion of a kinase gene, ALK, to a nucleolar protein gene, NPM, in non-Hodgkin’s lymphoma. Science. 1994;263(5151):1281-4. Correction in Science Science. 1995;267(5196):316-317.  https://doi.org/10.1126/science.8122112
  46. Soda M, Choi YL, Enomoto M, Takada S, Yamashita Y, Ishikawa S, Fujiwara S, Watanabe H, Kurashina K, et al. Identification of the transforming EML4-ALK fusion gene in non-small-cell lung cancer. Nature. 2007;448(7153):561-566.  https://doi.org/10.1038/nature05945
  47. Chan JK, Cheuk W, Shimizu M. Anaplastic lymphoma kinase expression in inflammatory pseudotumors. Am J Surg Pathol. 2001; 25(6):761-768.  https://doi.org/10.1097/00000478-200106000-00007
  48. Coffin CM, Patel A, Perkins S, Elenitoba-Johnson KS, Perlman E, Griffin CA. ALK1 and p80 expression and chromosomal rearrangements involving 2p23 in inflammatory myofibroblastic tumor. Mod Pathol. 2001;14(6):569-576.  https://doi.org/10.1038/modpathol.3880352
  49. Dickson BC, Swanson D, Charames GS, Fletcher CD, Hornick JL. Epithelioid fibrous histiocytoma: molecular characterization of ALK fusion partners in 23 cases. Mod Pathol. 2018;31(5):753-762.  https://doi.org/10.1038/modpathol.2017.191
  50. Antony A, Kiran CM, Phansalkar M, Jothi C, Jayakar J. Aneurysmal variant of fibrous histiocytoma- a rare entity known for recurrence. J Clin Diagn Res. 2017;11(6):08-9.  https://doi.org/10.7860/JCDR/2017/26524.10080
  51. Liu S, Lozeau D. Giant aneurysmal benign fibrous histiocytoma (dermatofibroma). J Cutan Pathol. 2018;45(10):774-776.  https://doi.org/10.1111/cup.13314
  52. Fletcher CD, Bridge JA, Hogendoorn PC, Mertens F, eds. WHO classification of tumours of soft tissue and bone. Lyon: IARC; 2013.
  53. Folpe AL, Goldblum JR, Rubin BP, Shehata BM, Liu W, Dei Tos AP, Weiss SW. Morphologic and immunophenotypic diversity in Ewing family tumors: a study of 66 genetically confirmed cases. Am J Surg Pathol. 2005;29(8):1025-1033.
  54. Machado I, Yoshida A, Morales MGN, Abrahão-Machado LF, Navarro S, Cruz J, Lavernia J, Parafioriti A, Picci P, Llombart-Bosch A. Review with novel markers facilitates precise categorization of 41 cases of diagnostically challenging, «undifferentiated small round cell tumors». A clinicopathologic, immunophenotypic and molecular analysis. Ann Diagn Pathol. 2018;34:1-12.  https://doi.org/10.1016/j.anndiagpath.2017.11.011
  55. Wang WL, Patel NR, Caragea M, Hogendoorn PC, López-Terrada D, Hornick JL, Lazar AJ. Expression of ERG, an Ets family transcription factor, identifies ERG-rearranged Ewing sarcoma. Mod Pathol. 2012;25(10):1378-1383. https://doi.org/10.1038/modpathol.2012.97
  56. Leu HJ, Makek M. Angiomatoid malignant fibrous histiocytoma. Virchows Arch A. 1982;395(1):99-107. 
  57. Weinreb I, Rubin BP, Goldblum JR. Pleomorphic angiomatoid fibrous histiocytoma: a case confirmed by fluorescence in situ hybridization analysis for EWSR1 rearrangement. J Cutan Pathol. 2008;35(9):855-860.  https://doi.org/10.1111/j.1600-0560.2007.00908.x
  58. Doyle LA, Fletcher CD. EMA positivity in epithelioid fibrous histiocytoma: a potential diagnostic pitfall. J Cutan Pathol. 2011; 38(9):697-703.  https://doi.org/10.1111/j.1600-0560.2011.01747.x

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.