Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Сальков В.Н.

ФГБНУ Научный центр неврологии

Худоерков Р.М.

ФГБНУ Научный центр неврологии

Роль алюминия и свинца в развитии болезней Альцгеймера и Паркинсона

Авторы:

Сальков В.Н., Худоерков Р.М.

Подробнее об авторах

Журнал: Архив патологии. 2021;83(3): 56‑61

Прочитано: 8638 раз


Как цитировать:

Сальков В.Н., Худоерков Р.М. Роль алюминия и свинца в развитии болезней Альцгеймера и Паркинсона. Архив патологии. 2021;83(3):56‑61.
Salkov VN, Khudoyerkov RM. The role of aluminum and lead in the development of Alzheimer’s and Parkinson’s diseases. Russian Journal of Archive of Pathology. 2021;83(3):56‑61. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/patol20218303156

Рекомендуем статьи по данной теме:
Ней­ро­хи­ми­чес­кие ме­ха­низ­мы воз­ник­но­ве­ния тре­мо­ра при бо­лез­ни Пар­кин­со­на. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(11):64-72
Ког­ни­тив­ные на­ру­ше­ния у па­ци­ен­тов с бо­лез­нью Пар­кин­со­на. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(11):81-90
Дис­фун­кция мо­че­во­го пу­зы­ря у па­ци­ен­тов с I—III ста­ди­ями бо­лез­ни Пар­кин­со­на. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(11):91-99
Ха­рак­те­рис­ти­ка пос­мер­тных из­ме­не­ний го­лов­но­го моз­га. Су­деб­но-ме­ди­цин­ская эк­спер­ти­за. 2024;(6):56-61
Пор­трет вра­ча с бо­лез­нью Пар­кин­со­на. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(12):160-164

Изучение этиологии и патогенеза нейродегенеративных заболеваний, в частности болезни Альцгеймера (БА) и болезни Паркинсона (БП), вызывает у исследователей особое внимание в связи с тем, что они широко распространены и демонстрируют стабильно высокий уровень заболеваемости [1]. Так, число пациентов с деменцией — наиболее частым синдромом БА в мире — составляет в настоящее время 47 млн человек [2], а число пациентов с БП — 10 млн [3]. Значение ряда биометаллов (железа, цинка, меди и др.), участвующих в обменных процессах, протекающих в организме больных БА и БП, изучено достаточно полно [4, 5]. В то же время влияние других металлов (алюминия, свинца, ртути и кадмия), которые не столь существенны для жизнедеятельности организма, в происхождении и механизмах патогенеза нейродегенеративных заболеваний исследовано явно недостаточно [6]. Вместе с тем в литературе отмечается, что как легкие, так и тяжелые металлы, оказывая токсическое воздействие на центральную нервную систему, могут быть вовлечены в этиопатогенез БА и БП [3, 7]. Наиболее значимая корреляция с заболеваемостью БА и БП отмечена у лиц, подвергавшихся токсическому воздействию алюминия и свинца в связи с поступлением этих металлов в организм с питьевой водой [8], антацидными препаратами (алюминий) [9] и никотином [10] или при работе на вредном производстве (свинец) [11].

На основании вышеизложенного в настоящей работе подвергли анализу и обобщению данные литературы о результатах токсического воздействия алюминия и свинца на структуры головного мозга человека и проанализировали взаимосвязь этого воздействия с этиологией и патогенезом БА и БП.

Роль алюминия в этиопатогенезе БА и БП

После случайного загрязнения в 1988 г. питьевой воды алюминием в Камелфорде (Англия) медицинская служба города на протяжении 10 лет наблюдала за состоянием здоровья его жителей, что позволило выявить у них различные симптомы церебральных нарушений, в частности такие как ухудшение концентрации внимания и кратковременной памяти [12].

Подобные психоневрологические расстройства, как и расстройства, которые по клинической симптоматике сходны с когнитивными нарушениями, наблюдаемыми у больных БА (деменция), обнаруживали у жителей регионов с высокой концентрацией алюминия в питьевой воде [8, 13]. Исследования в Китае выявили незначительную положительную корреляцию между содержанием алюминия в почве и смертностью пациентов с БА [14]. В литературе наряду со сведениями о связи между повышенным содержанием алюминия в воде и почве в некоторых регионах и выявлением у проживающих там людей симптомов когнитивного дефицита и деменции альцгеймеровского типа имеются данные и о содержании алюминия в организме самих пациентов с БА. Так, внутривенное применение этилендиаминтетрауксусной кислоты в качестве хелатирующего агента у пациентов с БА и в контрольной группе позволило обнаружить, что у первых количество выводимого с мочой алюминия было достоверно выше, чем в контроле [15]. В другом исследовании, проведенном при помощи методов атомно-абсорбционной спектрометрии с электротермической атомизацией и экспериментального мультиэлементного анализа с использованием синхротронного излучения и люминесцентной растровой сканирующей спектроскопии, была выявлена статистически значимая тенденция к увеличению содержания алюминия в височной области коры (поля 20, 21 и 22 по Бродману) в образцах головного мозга, полученных от пациентов с БА [16]. У данной категории больных, как было показано методом энергодисперсионной рентгеновской спектроскопии в сочетании со сканирующей электронной микроскопией, алюминий содержится непосредственно в сенильных бляшках [17]. Однако перечисленные работы, где сформировано представление о том, что избыточное поступление алюминия в организм человека может приводить к нарушению памяти и когнитивных функций, а у пациентов с БА его содержание в корковой пластинке увеличено, не позволяют судить ни о тех патологических изменениях в структурах головного мозга, которые могут быть связаны с воздействием на них ионов алюминия, ни о механизмах нейротоксичности этого металла.

В связи с этим особый интерес представляют экспериментальные исследования, в которых было показано, что ионы алюминия, связываясь с фрагментами β-амилоида — белка, накапливающегося в образованиях головного мозга при БА, усиливают олигомеризацию этого белка [18] и этот процесс в присутствии ионов алюминия протекает более интенсивно, чем в присутствии ионов других металлов — железа, меди, кадмия и цинка [19]. Усиление способности β-амилоида к олигомеризации приводит к образованию кольцевых протофибрилл и фибриллярных олигомеров, обладающих высокой нейротоксичностью [20]. Кроме того, в эксперименте показано, что алюминий способен связываться с другими протеинами, роль которых в патогенезе БА доказана (τ-протеином и белком-предшественником β-амилоида — amyloid precursor protein, APP), и вызывать у них конформационные изменения [21, 22].

Алюминий способен связываться с железосвязывающими белками, такими как ферритин, трансферрин и железорегулирующий протеин, а также с хелаторами железа [23]. При образовании связи с железорегулирующим протеином алюминий влияет на экспрессию железосвязывающих белков в целом, повышая концентрацию железа в нейронах и клетках нейроглии [24]. Ионы алюминия могут опосредованно регулировать внутриклеточную концентрацию ионов железа (II) и другим способом: они повышают экспрессию APP у экспериментальных животных [25]. APP, как было показано в эксперименте, обладает ферроксидазной активностью, окисляя ионы железа (II) до трехвалентной формы [26]. Кроме того, алюминий стимулирует индуцированное железом перекисное окисление липидов мембран и вызывает окислительное повреждение in vitro и in vivo, хотя сам непосредственно не участвует в процессе перекисного окисления [27].

Наряду с тем, что алюминий, усиливая олигомеризацию β-амилоида, может стимулировать образование его высокотоксичных агрегатов, а за счет повышения концентрации железа в нейронах и нейроглии он способен опосредованно вызывать окислительный стресс, алюминий также характеризуется способностью усиливать экспрессию микроРНК, в частности таких как miR146a и miR125b [28]. Эти микроРНК участвуют в активации провоспалительного ответа, аналогичного тому, который развивается в структурах головного мозга при БА [29].

Гипотеза о том, что алюминий может играть значительную роль в этиологии идиопатической БП, была сформулирована в конце прошлого столетия [9]. Она нашла подтверждение в работах, выполненных на аутопсийном материале головного мозга человека, в которых было показано, что алюминий при БП может накапливаться в гранулах нейромеланина [30] и его концентрация в черном веществе, хвостатом ядре и бледном шаре у пациентов с БП значительно выше, чем в контроле [31].

В экспериментальных исследованиях выявлено, что алюминий может активировать моноаминоксидазу B — катаболизирующий дофамин фермент, концентрация которого в нигростриатных образованиях головного мозга увеличивается при старении и БП [32]. Этот фермент, как отмечается в литературе [33], может способствовать образованию спиралей α-синуклеина — пресинаптического нейронального протеина, аномальное внутриклеточное накопление которого выявляется при БП. Позже было установлено, что в присутствии ионов алюминия ускоряется олигомеризация не только β-амилоида и τ-протеина, но и α-синуклеина [34]. Кратковременное воздействие сублетальных доз алюминия приводило к дегенерации дофаминовых нейронов у трансгенной нематоды Caenorhabditis elegans, а отмечающееся при этом воздействии увеличение экспрессии α-синуклеина ускоряло клеточную гибель [35]. Механизм воздействия сублетальных доз алюминия на дофаминовые нейроны выражается в том, что ионы алюминия транспортируются гомологом двухвалентного транспортера металлов в нейроны, а это приводит к снижению трансмембранного потенциала митохондрий и дефициту АТФ. Митохондрии, очевидно, являются внутриклеточной мишенью для ионов алюминия [36], который ингибирует обмен ионов натрия и кальция, что повышает содержание ионов кальция в митохондриях и увеличивает концентрации продуктов окислительного стресса, а также обусловливает высвобождение цитохрома C и последующее развитие апоптоза [19, 37]. Другой возможный механизм воздействия ионов алюминия на структуры головного мозга при паркинсонизме был продемонстрирован на экспериментальных животных, которым вводили нейротоксин MPTP и после этого поили водой с низким содержанием алюминия [38]. У животных регистрировали активацию транскрипционного фактора NF-ϰB и инициацию воспалительного процесса, а это позволяет предполагать, что в условиях дисфункции дофаминовых нейронов не только высокие, но и малые концентрации алюминия способны вызывать нейровоспаление.

Роль свинца в развитии БА и БП

Поступление свинца в организм с пищей и последующее его накопление в нервной ткани, как показали исследования, проведенные на лабораторных животных (мышах и африканских песчанках), обусловливает развитие интоксикации [39], которая угнетает двигательную активность [40] и когнитивные функции животных [41]. В других работах было установлено, что крысы, подвергавшиеся в раннем возрасте свинцовой интоксикации, в возрасте 20 мес демонстрировали снижение памяти и обучаемости, что, вероятно, обусловлено ускоренной экспрессией матричной РНК белка APP и повышенной агрегацией β-амилоида [42]. Кроме того, в литературе [43] показано, что у лабораторных животных (крыс) под воздействием свинца опосредованно увеличивался синтез β-амилоида в лобной области коры и гиппокампе в связи с увеличением экспрессии как самого белка APP, так и ферментов, участвующих в его образовании, — β-секретаз BACE1 и PSEN. Авторы исследования предполагают, что непосредственной причиной увеличения экспрессии APP явилось избыточное образование интерлейкина-1, обусловленное окислительным стрессом, который был вызван свинцовой интоксикацией. Это предположение основано на том факте, что 5'UTR-область матричной РНК APP особо чувствительна к интерлейкину-1 [1].

Экспериментальным методом у 23-летних самок приматов, подвергавшихся воздействию ацетата свинца в суточной дозе 1,5 мг/кг на протяжении первых 400 дней жизни, были выявлены значительные патологические изменения в головном мозге, связанные с усилением экспрессии ключевых генов амилоидогенеза, которые характеризовались отложением β-амилоида и формированием сенильных амилоидных бляшек в лобной области коры [44]. В других экспериментальных исследованиях показано, что ранние постнатальные воздействия свинца приводили не только к стимуляции амилоидогенеза, но и к значительному повышению концентрации τ-протеина в структурах головного мозга у мышей при достижении ими возраста 7 мес [45].

При исследовании концентрации свинца в крови людей обнаружили, что концентрация свинца у пациентов с БА была достоверно выше, чем в контрольной группе [46]. Этот же показатель, как было установлено исследователями из США на выборке, включающей результаты обследования 8080 пожилых людей (старше 60 лет), имел положительную взаимосвязь с данными по смертности пациентов с БА [47]. Воздействие свинца в раннем возрасте было признано потенциальным фактором риска развития БА у лиц из мексиканской популяции [48]. При количественном исследовании накопления ионов свинца в структурах головного мозга у курильщиков, пациентов с БА и БП обнаружили [10], что у лиц, имевших никотиновую зависимость и пациентов с БА количество свинца в белковой фракции как серого вещества коры головного мозга, так и подкоркового белого вещества в лобных и височных долях увеличивалось в 10 раз, тогда как у пациентов с БП авторы отмечали подобное увеличение количества свинца в липидной фракции тех же структур головного мозга.

Предполагают, что патогенетические механизмы, объясняющие токсическое воздействие свинца на ЦНС, могут быть обусловлены способностью его двухвалентных ионов (Pb2+) замещать ионы металлов, необходимых для формирования и функционирования головного мозга и входящих в состав металлопротеинов, нарушение метаболизма которых может усиливать окислительный стресс [6], в частности таких как катионы кальция (Ca2+) и цинка (Zn2+) [49, 50]. Кроме того, в качестве объяснения механизмов токсичности свинца и его связи с патогенезом БА рассматривают эпигенетические модификации, среди которых наиболее изученными являются метилирование ДНК, ацетилирование и фосфорилирование гистонов, а также увеличение экспрессии некодирующих РНК [51]. Воздействие свинца в раннем возрасте изменяет экспрессию генов, что сопровождается значительным снижением образования ферментов, участвующих в метилировании ДНК, таких как ДНК-метилтрансфераза-1, ДНК-метилтрансфераза-3а, метил-цитозинфосфатгуанин-связывающий протеин-2, и увеличением содержания ацетилированной формы гистона H3 по лизину-9 (H3K9ac), диметилированной формы гистона H3 по лизину-4 (H3K4me2) и других гистонов [52]. Снижение образования ферментов метилирования ДНК согласуется с гипометилирующими эффектами, которые способствуют усилению регуляции генов, в то время как изменения модификации гистонов связывают с репрессией генов. Следовательно, воздействие свинца в раннем возрасте может перепрограммировать экспрессию генов, обусловливая как увеличение, так и понижение регуляции генов через альтернативные эпигенетические пути, способствующие усилению нейродегенерации в пожилом возрасте [52].

В связи с тем, что в настоящее время не разработаны эффективные модели паркинсонизма, развивающегося в результате воздействия на структуры головного мозга свинцовой интоксикации, в отличие от моделей, используемых при изучении БА, это не позволяет в полной мере оценить не только патофизиологические нарушения у лабораторных животных, которые однозначно можно отнести к индуцированным воздействиям свинца, но и эпигенетические последствия этого воздействия [51]. Вместе с тем в эксперименте на африканских песчанках, которым внутрибрюшинно вводили свинец на протяжении 3 дней в суточной дозе 25 мг на 1 кг массы, было показано, что свинец оказывает нейротоксическое воздействие, вызывая угнетение двигательной активности лабораторных животных [40]. Подобная интоксикация свинцом снижала содержание тирозингидроксилазы в нейронах компактной части черного вещества, голубого пятна и вентральной области покрышки.

Содержание свинца в большеберцовой и пяточной костях у лиц, подвергавшихся свинцовой интоксикации, связанной с работой на промышленном производстве (121 пациент с БП и 424 человека — контрольная группа), исследовали методом рентгенофлуоресцентного анализа, одновременно определяли у пациентов обеих групп концентрацию свинца в крови для исключения острой интоксикации, что позволило распределить полученные результаты по квартилям в соответствии с количеством среднего накопления свинца [53]. При этом самый низкий (первый) квартиль выявлял концентрации свинца у людей контрольной группы, имевших наименьшее его содержание в исследуемых костях. Авторы обнаружили, что риск БП был повышен более чем в 2 раза у людей с самым высоким квартилем накопления свинца по сравнению с людьми, у которых накопление свинца в костях описывалось самым низким квартилем. В другом исследовании, оценивавшем накопление свинца в большеберцовой кости, обнаружили, что у людей с самым высоким квартилем содержания свинца по сравнению с людьми, у которых его содержание в костях описывалось самым низким квартилем, отношение шансов развития БП составляло 3,21 (95% доверительный интервал, значения c2 в диапазоне 1,17—8,83), а это указывало на то, что кумулятивное воздействие свинца увеличивает риск развития БП [54].

Накопление свинца существенно снижает высвобождение дофамина и чувствительность постсинаптических дофаминовых D1-рецепторов, как было установлено на микродиализатах структур среднего мозга, полученных от крыс, подвергавшихся воздействию свинца в дозе 50 мг в сутки на протяжении 90 дней [55], и крыс, получавших свинец с питьевой водой в концентрации 250 мг/л в течение 3—6 нед [56]. Кроме того, свинцовая интоксикация усиливает перекисное окисление липидов и снижает антиоксидантную способность клеток [57], а также вызывает фибрилляцию и агрегацию α-синуклеина [58], который индуцирует повреждение гиппокампа и снижает способность к обучению и память у крыс, подвергавшихся воздействию свинца [58, 59]. Среди эпигенетических модификаций, связанных с патогенезом индуцированной свинцом БП, в литературе описываются гипометилирование промотора α-синуклеина [60], снижение содержания гистона H3K9ac и увеличение уровня ацетилированных форм гистона H3 по лизину-14 и лизину-18 (H3K14ac и H3K18ac соответственно) у человека в двигательной области коры головного мозга [61].

Заключение

Анализ литературы показал, что алюминий и свинец, накапливаясь в структурах головного мозга, вызывают хроническую интоксикацию, которая может сопровождаться морфологическими признаками, характерными для БА (накопление β-амилоида и τ-протеина преимущественно в лобной и височной областях коры) или для БП (угнетение дофаминовых нейронов вплоть до их дегенерации, накопление α-синуклеина). Механизмы воздействия этой интоксикации на молекулярном уровне могут быть связаны с прямым замещением ионов двухвалентных биометаллов, участвующих в биохимических реакциях, которые протекают в головном мозге, со стимуляцией перекисного окисления липидов или с формированием эпигенетических модификаций гистонов и усилением экспрессии некодирующих РНК.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

The authors declare no conflicts of interest.

Литература / References:

  1. Chin-Chan M, Navarro-Yepes J, Quintanilla-Vega B. Environmental pollutants as risk factors for neurodegenerative disorders: Alzheimer and Parkinson diseases. Front Cell Neurosci. 2015;9:124.  https://doi.org/10.3389/fncel.2015.00124
  2. World Health Organization. Dementia: a public health priority. Geneva: World Health Organization; 2017.
  3. Ball N, Teo W-P, Chandra S, Chapman J. Parkinson’s disease and the environment. Front Neurol. 2019;10:218.  https://doi.org/10.3389/fneur.2019.00218
  4. Carboni E, Lingor P. Insights on the interaction of alpha-synuclein and metals in the pathophysiology of Parkinson’s disease. Metallomics. 2015;7(3):395-404.  https://doi.org/10.1039/c4mt00339j
  5. Jomova K, Vondrakova D, Lawson M, Valko M. Metals, oxidative stress and neurodegenerative disorders. Mol Cell Biochem. 2010; 345(1-2):91-104.  https://doi.org/10.1007/s11010-010-0563-x
  6. Li Y, Jiao Q, Xu H, Du X, Shi L, Jia F, Jiang H. Biometal dyshomeostasis and toxic metal accumulations in the development of Alzheimer’s disease. Front Mol Neurosci. 2017;10:339.  https://doi.org/10.3389/fnmol.2017.00339
  7. Gupta VB, Anitha S, Hegde ML, Zecca L, Garruto RM, Ravid R, Shankar SK, Stein R, Shanmugavelu P, Rao KSJ. Aluminium in Alzheimer’s disease: are we still at a crossroad? Cell Mol Life Sci. 2005;62(2):143-158.  https://doi.org/10.1007/s00018-004-4317-3
  8. Rondeau V, Jacqmin-Gadda H, Commenges D, Helmer C, Dartigues JF. Aluminum and silica in drinking water and the risk of Alzheimer’s disease or cognitive decline: findings from 15-year follow-up of the PAQUID cohort. Am J Epidemiol. 2009;169(4): 489-96.  https://doi.org/10.1093/aje/kwn348
  9. Altschuler E. Aluminum-containing antacids as a cause of idiopathic Parkinson’s disease. Med Hypotheses. 1999;53(1):22-23.  https://doi.org/10.1054/mehy.1997.0701
  10. Momcilović B, Alkhatib HA, Duerre JA, Cooley M, Long WM, Harris TR, Lykken GI. Environmental lead-210 and bismuth-210 accrue selectively in the brain proteins in Alzheimer disease and brain lipids in Parkinson disease. Alzheimer Dis Assoc Disord. 2001; 15(2):106-115.  https://doi.org/10.1097/00002093-200104000-00012
  11. Gunnarsson L-G, Bodin L. Occupational exposures and neurodegenerative diseases — a systematic literature review and meta-analyses. Int J Environ Res Public Health. 2019;16(3):337.  https://doi.org/10.3390/ijerph16030337
  12. Altmann P, Cunningham J, Dhanesha U, Ballard M, Thompson J, Marsh F. Disturbance of cerebral function in people exposed to drinking water contaminated with aluminium sulphate: retrospective study of the Camelford water incident. BMJ. 1999;319(7213): 807-811.  https://doi.org/10.1136/bmj.319.7213.807
  13. Flaten TP. Aluminium as a risk factor in Alzheimer’s disease, with emphasis on drinking water. Brain Res Bull. 2001;55(2):187-196.  https://doi.org/10.1016/s0361-9230(01)00459-2
  14. Shen XL, Yu JH, Zhang DF, Xie JX, Jiang H. Positive relationship between mortality from Alzheimer’s disease and soil metal concentration in mainland China. J Alzheimers Dis. 2014;42(3):893-900.  https://doi.org/10.3233/JAD-140153
  15. Fulgenzi A, Vietti D, Ferrero ME. Aluminium involvement in neurotoxicity. Biomed Res Int. 2014;2014:758323. https://doi.org/10.1155/2014/758323
  16. Lukiw WJ, Kruck ThPA, Percy ME, Pogue AI, Alexandrov PN, Walsh WJ, Sharfman NM, Jaber VR, Zhao Yu, Li W, Bergeron C, Culicchia F, Fang ZH, McLachlan DRC. Aluminum in neurological disease — a 36 year multicenter study. J Alzheimers Dis Parkinsonism. 2019;8(6):457.  https://doi.org/10.4172/2161-0460.1000457
  17. Yumoto S, Kakimi S, Ohsaki A, Ishikawa A. Demonstration of aluminum in amyloid fibers in the cores of senile plaques in the brains of patients with Alzheimer’s disease. J Inorg Biochem. 2009;103(11):1579-1584. https://doi.org/10.1016/j.jinorgbio.2009.07.023
  18. Mocanu CS, Jureschi M, Drochioiu G. Aluminium binding to modified amyloid-β peptides: implications for Alzheimer’s disease. Molecules. 2020;25(19):4536. https://doi.org/10.3390/molecules25194536
  19. Kawahara M, Kato-Negishi M. Link between aluminum and the pathogenesis of Alzheimer’s disease: the integration of the aluminum and amyloid cascade hypotheses. Int J Alzheimers Dis. 2011;2011:276393. https://doi.org/10.4061/2011/276393
  20. Bolognin S, Messori L, Drago D, Gabbiani Ch, Cendron L, Zatta P. Aluminum, copper, iron and zinc differentially alter amyloid-Aβ(1-42) aggregation and toxicity. Int J Biochem Cell Biol. 2011;43(6):877-885.  https://doi.org/10.1016/j.biocel.2011.02.009
  21. Bader B, Nübling G, Mehle A, Nobile S, Kretzschmar H, Giese A. Single particle analysis of tau oligomer formation induced by metal ions and organic solvents. Biochem Biophys Res Commun. 2011;411(1):190-196.  https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2011.06.135
  22. Sato N, Hori O, Yamaguchi A, Lambert JC, Chartier-Harlin MC, Robinson PA, Delacourte A, Schmidt AM, Furuyama T, Imaizumi K, Tohyama M, Takagi T. A novel presenilin-2 splice variant in human Alzheimer’s disease brain tissue. J Neurochem. 2002;72(6):2498-2505. https://doi.org/10.1046/j.1471-4159.1999.0722498.x
  23. Muckenthaler MU, Galy B, Hentze MW. Systemic iron homeostasis and the iron-responsive element/iron-regulatory protein (IRE/IRP) regulatory network. Annu Rev Nutr. 2008;28(1):197-213.  https://doi.org/10.1146/annurev.nutr.28.061807.155521
  24. Crichton RR, Wilmet S, Legssyer R, Ward RJ. Molecular and cellular mechanisms of iron homeostasis and toxicity in mammalian cells. J Inorg Biochem. 2002;91(1):9-18.  https://doi.org/10.1016/s0162-0134(02)00461-0
  25. Walton JR, Wang MX. APP expression, distribution and accumulation are altered by aluminum in a rodent model for Alzheimer’s disease. J Inorg Biochem. 2009;103(11):1548-1554. https://doi.org/10.1016/j.jinorgbio.2009.07.027
  26. Duce JA, Tsatsanis A, Cater MA, James S, Robb E, Wikhe K, Leong S, Perez K, Johanssen T, Greenough M, Cho H, Galatis D, Moir R, Masters C, McLean C, Tanzi R, Cappai R, Barnham K, Ciccotosto G, Rogers J, Bush A. Iron-export ferroxidase activity of β-amyloid precursor protein is inhibited by zinc in Alzheimer’s disease. Cell. 2010;142(6):857-867.  https://doi.org/10.1016/j.cell.2010.08.014
  27. Kaneko N, Sugioka T, Sakurai H. Aluminum compounds enhance lipid peroxidation in liposomes: insight into cellular damage caused by oxidative stress. J Inorg Biochem. 2007;101(6):967-975.  https://doi.org/10.1016/j.jinorgbio.2007.03.005
  28. Zhao Y, Bhattacharjee S, Jones BM, Hill J, Dua P, Lukiw WJ. Regulation of neurotropic signaling by the inducible, NF-kB-sensitive miRNA-125b in Alzheimer’s disease (AD) and in primary human neuronal-glial (HNG) cells. Mol Neurobiol. 2014;50(1):97-106.  https://doi.org/10.1007/s12035-013-8595-3
  29. Lukiw WJ. NF-kappaB-regulated, proinflammatory miRNAs in Alzheimer’s disease. Alzheimers Res Ther. 2012;4(6):47.  https://doi.org/10.1186/alzrt150
  30. Good PF, Olanow CW, Perl DP. Neuromelanin-containing neurons of the substantia nigra accumulate iron and aluminum in Parkinson’s disease: a LAMMA study. Brain Res. 1992;593(2):343-346.  https://doi.org/10.1016/0006-8993(92)91334-b
  31. Yasui M, Kihira T, Ota K. Calcium, magnesium and Al concentrations in Parkinson’s disease. Neurotoxicology. 1991;13(3):593-600. 
  32. Zatta P, Zambenedetti P, Milanese M. Activation of monoamine oxidase type-B by aluminum in rat brain homogenate. Neuroreport. 1999;10(17):3645-2648. https://doi.org/10.1097/00001756-199911260-00033
  33. Burke WJ, Kumar VB, Pandey N, Panneton WM, Gan Q, Franko MW, O’Dell M, Li SW, Pan Y, Chung HD, Galvin JE. Aggregation of alpha-synuclein by DOPAL, the monoamine oxidase metabolite of dopamine. Acta Neuropathol. 2008;115(2):193-203.  https://doi.org/10.1007/s00401-007-0303-9
  34. Uversky VN, Li J, Fink AL. Metal-triggered structural transformations, aggregation, and fibrillation of human alpha-synuclein. A possible molecular NK between Parkinson’s disease and heavy metal exposure. J Biol Chem. 2001;276(47):44284-44296. https://doi.org/10.1074/jbc.M105343200
  35. VanDuyn N, Settivari R, LeVora J, Zhou SH, Unrine J, Nass R. The metal transporter SMF-3/DMT-1 mediates aluminum-induced dopamine neuron degeneration. J Neurochem. 2013;124(1):147-157.  https://doi.org/10.1111/jnc.12072
  36. Iglesias-González J, Sánchez-Iglesias S, Beiras-Iglesias A, Méndez-Álvarez E, Soto-Otero R. Effects of aluminium on rat brain mitochondria bioenergetics: an in vitro and in vivo study. Mol Neurobiol. 2017;54(1):563-570.  https://doi.org/10.1007/s12035-015-9650-z
  37. Bharathi, Vasudevaraju P, Govindaraju M, Palanisamy AP, Sambamurti K, Rao KS. Molecular toxicity of aluminium in relation to neurodegeneration. Indian J Med Res. 2008;128(4):545-556. 
  38. Bondy SC. Low levels of aluminum can lead to behavioral and morphological changes associated with Alzheimer’s disease and age-related neurodegeneration. Neurotoxicology. 2016;52:222-229.  https://doi.org/10.1016/j.neuro.2015.12.002
  39. Bhat AH, Dar KB, Anees S, Zargar MA, Masood A, Sofi MA, Ganie SA. Oxidative stress, mitochondrial dysfunction and neurodegenerative diseases; a mechanistic insight. Biomed Pharmacother. 2015;74:101-110.  https://doi.org/10.1016/j.biopha.2015.07.025
  40. Tamegart L, Abbaoui A, Makbal R, Zroudi M, Bouizgarne B, Bouyatas MM, Gamrani H. Crocus sativus restores dopaminergic and noradrenergic damages induced by lead in Meriones shawi: A possible link with Parkinson’s disease. Acta Histochem. 2019;12(2):171-181.  https://doi.org/10.1016/j.acthis.2018.12.003
  41. Liu F, Xue Z, Li N, Huang H, Ying Y, Li J, Wang L, Li W. Effects of lead exposure on the expression of amyloid beta and phosphorylated tau proteins in the C57BL/6 mouse hippocampus at different life stages. J Trace Elem Med Biol. 2014;28(2):227-232.  https://doi.org/10.1016/j.jtemb.2014.01.002
  42. Basha MR, Wei W, Bakheet SA, Benitez N, Siddiqi HK, Ge YW, Lahiri DK, Zawia NH. The fetal basis of amyloidogenesis: exposure to lead and latent overexpression of amyloid precursor protein and beta-amyloid in the aging brain. J Neurosci. 2005;25(4):823-829.  https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.4335-04.2005
  43. Ashok A, Rai NK, Tripathi S, Bandyopadhyay S. Exposure to As-, Cd- and Pb-mixture induces Aβ, amyloidogenic APP processing and cognitive impairments via oxidative stress-dependent neuroinflammation in young rats. Toxicol Sci. 2015;143(1):64-80.  https://doi.org/10.1093/toxsci/kfu208
  44. Wu J, Basha MR, Brock B, Cox DP, Cardozo-Pelaez F, McPherson CA, Harry J, Rice DC, Maloney B, Chen D, Lahiri DK, Zawia NH. Alzheimer’s disease (AD)-like pathology in aged monkeys after infantile exposure to environmental metal lead (Pb): Evidence for a developmental origin and environmental link for AD. J Neurosci. 2008;28(1):3-9.  https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.4405-07.2008
  45. Wu S, Liu H, Zhao H, Wang X, Chen J, Xia D, Xiao C, Cheng J, Zhao Z, He Y. Environmental lead exposure aggravates the progression of Alzheimer’s disease in mice by targeting on blood brain barrier. Toxicol Lett. 2020;319:138-147.  https://doi.org/10.1016/j.toxlet.2019.11.009
  46. Fathabadi B, Dehghanifiroozabadi M, Aaseth J, Sharifzadeh G, Nakhaee S, Rajabpour-Sanati A, Amirabadizadeh A, Mehrpour O. Comparison of blood lead levels in patients with Alzheimer’s disease and healthy people. Am J Alzheimers Dis Other Demen. 2018;33(8):541-547.  https://doi.org/10.1177/1533317518794032
  47. Horton CJ, Weng HY, Wells EM. Association between blood lead level and subsequent Alzheimer’s disease mortality. Environ Epidemiol. 2019;3(3):e045. https://doi.org/10.1097/EE9.0000000000000045
  48. Gerhardsson L, Lundh T, Minthon L, Londos E. Metal concentrations in plasma and cerebrospinal fluid in patients with Alzheimer’s disease. Dement Geriatr Cogn Disord. 2008;25(6):508-515.  https://doi.org/10.1159/000129365
  49. Kern M, Wisniewski M, Cabell L, Audesirk G. Inorganic lead and calcium interact positively in activation of calmodulin. Neurotoxicology. 2000;21(3):353-363. 
  50. Трахтенберг И.М. Книга о ядах и отравлениях: очерки токсикологии. Киев: Наукова Думка; 2000.
  51. Wang T, Zhang J, Xu Y. Epigenetic basis of lead-induced neurological disorders. Int J Environ Res Public Health. 2020;17(13):4878. https://doi.org/10.3390/ijerph17134878
  52. Bihaqi SW, Huang H, Wu J, Zawia NH. Infant exposure to lead (Pb) and epigenetic modifications in the aging primate brain: Implications for Alzheimer’s disease. J Alzheimers Dis. 2011;27(4):819-833.  https://doi.org/10.3233/JAD-2011-111013
  53. Coon S, Stark A, Peterson E, Gloi A, Kortsha G, Pounds J, Chettle D, Gorell J. Whole-body lifetime occupational lead exposure and risk of Parkinson’s disease. Environ Health Perspect. 2006; 114(12):1872-1876. https://doi.org/10.1289/ehp.9102
  54. Weisskopf MG, Weuve J, Nie H, Saint-Hilaire MH, Sudarsky L, Simon DK, Hersh B, Schwartz J, Wright RO, Hu H. Association of cumulative lead exposure with Parkinson’s disease. Environ Health Perspect. 2010;118(11):1609-1613. https://doi.org/10.1289/ehp.1002339
  55. Kala SV, Jadhav AL. Low level lead exposure decreases in vivo release of dopamine in the rat nucleus accumbens: a microdialysis study. J Neurochem. 1995;65(4):1631-1635. https://doi.org/10.1046/j.1471-4159.1995.65041631.x
  56. Tavakoli-Nezhad M, Pitts DK. Postnatal inorganic lead exposure reduces midbrain dopaminergic impulse flow and decreases dopamine D1 receptor sensitivity in nucleus accumbens neurons. J Pharmacol Exp Ther. 2005;312:1280-1288. https://doi.org/10.1124/jpet.104.076166
  57. Sandhir R, Julka D, Gill KD. Lipoperoxidative damage on lead exposure in rat brain and its implications on membrane bound enzymes. Pharmacol Toxicol. 1994;74(2):66-71.  https://doi.org/10.1111/j.1600-0773.1994.tb01077.x
  58. Yamin G, Glaser CB, Uversky VN, Fink AL. Certain metals trigger fibrillation of methionine-oxidized alpha-synuclein. J Biol Chem. 2003;278(30):27630-27635. https://doi.org/10.1074/jbc.m303302200
  59. Zhang J, Cai T, Zhao F, Yao T, Chen Y, Liu X, Luo W, Chen J. The role of alphasynuclein and tau hyperphosphorylation-mediated autophagy and apoptosis in lead-induced learning and memory injury. Int J Biol Sci. 2012;8(7):935-944.  https://doi.org/10.7150/ijbs.4499
  60. Jowaed A, Schmitt I, Kaut O, Wullner U. Methylation regulates alpha-synuclein expression and is decreased in Parkinson’s disease patients’ brains. J Neurosci. 2010;30(18):6355-6259. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.6119-09.2010
  61. Gebremedhin KG, Rademacher DJ. Histone H3 acetylation in the postmortem Parkinson’s disease primary motor cortex. Neurosci Lett. 2016;627:121-125.  https://doi.org/10.1016/j.neulet.2016.05.060

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.