Идентификация иммунокомпетентных клеток в тканях при сканирующей электронной микроскопии в обратно-рассеянных электронах

Мухамадияров Р.А.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний»

Мильто И.В.

ФГБОУ ВО «Сибирский государственный медицинский университет» Минздрава России; ФГУП «Северский биофизический научный центр» Федерального медико-биологического агентства России

Кутихин А.Г.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний»

Идентификация иммунокомпетентных клеток в тканях при сканирующей электронной микроскопии в обратно-рассеянных электронах

Журнал: Архив патологии. 2020;82(4): 70-78

DOI 10.17116/patol20208204170

Загрузок : 3

Связаться с автором

Как цитировать

Мухамадияров Р.А., Мильто И.В., Кутихин А.Г. Идентификация иммунокомпетентных клеток в тканях при сканирующей электронной микроскопии в обратно-рассеянных электронах. Архив патологии. 2020;82(4):70-78. https://doi.org/10.17116/patol20208204170

Авторы:

Мухамадияров Р.А.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний»

Все авторы (3)

Закрыть метаданные

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ

Описать структуру и провести идентификацию иммунокомпетентных клеток в тканях при различных сердечно-сосудистых заболеваниях методом сканирующей электронной микроскопии в обратно-рассеянных электронах.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

В качестве эталонных объектов исследования выбран фрагмент стентированной внутренней сонной артерии, участок внутренней сонной артерии с атеросклеротической бляшкой, извлеченный в ходе коррекции тетрады Фалло стент, ксеноаортальный биопротез клапана сердца, участок средней мозговой артерии с аневризмой и фрагмент внутренней грудной артерии быка. Все образцы фиксировали в забуференном формалине, постфиксировали в тетраоксиде осмия, обезвоживали в этиловом спирте возрастающей концентрации, окрашивали уранилацетатом, пропитывали и заключали в эпоксидную смолу, шлифовали, полировали и контрастировали цитратом свинца. Визуализацию проводили посредством сканирующей электронной микроскопии в обратно-рассеянных электронах после напыления на полированную поверхность эпоксидных блоков углерода.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Наибольшее количество макрофагов выявлено в неоинтиме атеросклеротических бляшек внутренней сонной артерии (как первичной, так и извлеченной вследствие рестеноза стента), при этом морфологически определялись макрофаги с множеством различных органелл аппарата внутриклеточного переваривания, содержащих преимущественно клеточный детрит либо липиды. Значительное число нейтрофилов с большим количеством первичных и вторичных гранул выявлено в межклеточном матриксе створки удаленного ксеноаортального биопротеза клапана сердца. Тучные клетки, содержащие большое количество характерных крупных полиморфных гранул, наблюдались в составе всех изученных образцов.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Представленный метод позволяет достоверно идентифицировать иммунокомпетентные клетки в тканях системы кровообращения.

Ключевые слова:

электронная микроскопия

Авторы:

Мухамадияров Р.А.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний»

Мильто И.В.

Кутихин А.Г.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний»

Даты поступления:

16.11.1019

Даты принятия в печать:

19.02.2020

Список литературы:

Chen L, Deng H, Cui H, Fang J, Zuo Z, Deng J, Li Y, Wang X, Zhao L. Inflammatory responses and inflammation-associated diseases in organs. Oncotarget. 2017;9(6):7204-7218. https://doi.org/10.18632/oncotarget.23208
Golia E, Limongelli G, Natale F, Fimiani F, Maddaloni V, Pariggiano I, Bianchi R, Crisci M, D’Acierno L, Giordano R, Di Palma G, Conte M, Golino P, Russo MG, Calabrò R, Calabrò P. Inflammation and cardiovascular disease: from pathogenesis to therapeutic target. Curr Atheroscler Rep. 2014;16(9):435. https://doi.org/10.1007/s11883-014-0435-z
Buja LM, Butany J. Cardiovascular Pathology. 4th ed. Elsevier, Academic Press; 2015.
Paquissi FC. The role of inflammation in cardiovascular diseases: the predictive value of neutrophil-lymphocyte ratio as a marker in peripheral arterial disease. Ther Clin Risk Manag. 2016;12:851-860. https://doi.org/10.2147/TCRM.S107635
Calabrese F, Angelini A, Carturan E, Thiene G. Myocarditis and inflammatory cardiomyopathy: histomorphological diagnosis. Ernst Schering Res Found Workshop. 2006;55:305-321.
Galis ZS, Lessner SM. Will the real plaque vasculature please stand up? Why we need to distinguish the vasa plaquorum from the vasa vasorum. Trends Cardiovasc Med. 2009;19(3):87-94. https://doi.org/10.1016/j.tcm.2009.06.001
Akhavanpoor M, Wangler S, Gleissner CA, Korosoglou G, Katus HA, Erbel C. Adventitial inflammation and its interaction with intimal atherosclerotic lesions. Front Physiol. 2014;5:296. https://doi.org/10.3389/fphys.2014.00296
Nosalski R, Guzik TJ. Perivascular adipose tissue inflammation in vascular disease. Br J Pharmacol. 2017;174(20):3496-3513. https://doi.org/10.1111/bph.13705
Sander B, Golas MM. Visualization of bionanostructures using transmission electron microscopical techniques. Microsc Res Tech. 2011;74(7):642-663. https://doi.org/10.1002/jemt.20963
Mukhamadiyarov RA, Sevostyanova VV, Shishkova DK, Nokhrin AV, Sidorova OD, Kutikhin AG. Grinding and polishing instead of sectioning for the tissue samples with a graft: Implications for light and electron microscopy. Micron. 2016;85:1-7. https://doi.org/10.1016/j.micron.2016.03.005
Мухамадияров Р.А., Кутихин А.Г. Исследование нормальной и патологической микроскопической анатомии кровеносных сосудов при помощи сканирующей электронной микроскопии в обратно-рассеянных электронах. Фундаментальная и клиническая медицина. 2019;4(1):6-14. https://doi.org/10.23946/2500-0764-2019-4-1-6-14
Gordon S, Martinez-Pomares L. Physiological roles of macrophages. Pflugers Arch. 2017;469(3-4):365-374. https://doi.org/10.1007/s00424-017-1945-7
Wynn TA, Vannella KM. Macrophages in tissue repair, regeneration, and fibrosis. Immunity. 2016;44(3):450-462. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2016.02.015
Afari ME, Bhat T. Neutrophil to lymphocyte ratio (NLR) and cardiovascular diseases: an update. Expert Rev Cardiovasc Ther. 2016;14(5):573-577. https://doi.org/10.1586/14779072.2016.1154788
Balta S, Celik T, Mikhailidis DP, Ozturk C, Demirkol S, Aparci M, Iyisoy A. The relation between atherosclerosis and the neutrophil-lymphocyte ratio. Clin Appl Thromb Hemost. 2016;22(5):405-411. https://doi.org/10.1177/1076029615569568
Beghdadi W, Madjene LC, Benhamou M, Charles N, Gautier G, Launay P, Blank U. Mast cells as cellular sensors in inflammation and immunity. Front Immunol. 2011;2:37. https://doi.org/10.3389/fimmu.2011.00037
Theoharides TC, Alysandratos KD, Angelidou A, Delivanis DA, Sismanopoulos N, Zhang B, Asadi S, Vasiadi M, Weng Z, Miniati A, Kalogeromitros D. Mast cells and inflammation. Biochim Biophys Acta. 2012;822(1):21-33. https://doi.org/10.1016/j.bbadis.2010.12.014
Нохрин А.В., Тарасов Р.С., Мухамадияров Р.А., Барбараш Л.С. Этапный подход: стентирование выводного отдела правого желудочка с последующей радикальной коррекцией тетрады Фалло у маловесных детей — непосредственные и отдаленные результаты. Детские болезни сердца и сосудов. 2017;14(2):90-100. https://doi.org/10.24022/1810-0686-2017-14-2-90-100
Ackland GL, Abbott TEF, Cain D, Edwards MR, Sultan P, Karmali SN, Fowler AJ, Whittle JR, MacDonald NJ, Reyes A, Paredes LG, Stephens RCM, Del Arroyo AG, Woldman S, Archbold RA, Wragg A, Kam E, Ahmad T, Khan AW, Niebrzegowska E, Pearse RM. Preoperative systemic inflammation and perioperative myocardial injury: prospective observational multicentre cohort study of patients undergoing non-cardiac surgery. Br J Anaesth. 2019;122(2):180-187. https://doi.org/10.1016/j.bja.2018.09.002

Закрыть метаданные