Микаелян К.А.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов» Минобрнауки России

Крылов К.Ю.

ГБУ «Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт скорой помощи им. И.И. Джанелидзе»

Петрова М.В.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов» Минобрнауки России

Шестопалов А.Е.

Национальная ассоциация клинического питания и метаболизма;
ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»

Изменение морфологии и микробиоценоза кишечника у нейрохирургических пациентов в критическом состоянии

Авторы:

Микаелян К.А., Крылов К.Ю., Петрова М.В., Шестопалов А.Е.

Подробнее об авторах

Прочитано: 2614 раз


Как цитировать:

Микаелян К.А., Крылов К.Ю., Петрова М.В., Шестопалов А.Е. Изменение морфологии и микробиоценоза кишечника у нейрохирургических пациентов в критическом состоянии. Журнал «Вопросы нейрохирургии» имени Н.Н. Бурденко. 2021;85(1):104‑110.
Mikaelyan KA, Krylov KY, Petrova MV, Shestopalov AE. Intestine morphology and microbiocenosis changes in critically ill patients in neurosurgery. Burdenko's Journal of Neurosurgery. 2021;85(1):104‑110. (In Russ., In Engl.)
https://doi.org/10.17116/neiro202185011104

Рекомендуем статьи по данной теме:
Рас­ту­щий пе­ре­лом вер­хней стен­ки ор­би­ты. Кли­ни­чес­кий слу­чай и об­зор ли­те­ра­ту­ры. Жур­нал «Воп­ро­сы ней­ро­хи­рур­гии» име­ни Н.Н. Бур­ден­ко. 2024;(5):77-86
Мик­ро­би­ота ки­шеч­ни­ка при би­по­ляр­ном аф­фек­тив­ном расстройстве. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(11):28-33

Список сокращений

ОРИТ — отделение реанимации и интенсивной терапии

ЖКТ — желудочно-кишечный тракт

Статистика

Многие годы выдвигались гипотезы о важной роли кишечника в развитии системного воспаления и полиорганной недостаточности у больных, находящихся в критическом состоянии, со временем нашедшие подтверждение с помощью современных методов диагностики и лечения в исследованиях, выполненных специалистами разных профилей [1].

Ежегодно более 5,7 млн пациентов в США госпитализируются в отделения реанимации и интенсивной терапии (ОРИТ) по причине критических состояний, что составляет до 10% всех поступлений взрослого населения, занимает пятую часть всех больничных расходов, а частота смертности среди этих больных выше, чем от всех остальных причин [2]. Прогноз пациентов, у которых критическое состояние приобретает статус хронического, главным образом неблагоприятный, с годичной выживаемостью около 25% [3].

Одной из ведущих причин развития критического состояния является повреждение головного мозга различной этиологии. По данным литературы, травматическое поражение головного мозга является главной причиной инвалидности и смертности среди всех видов травм у лиц до 45 лет. В США до 5,3 млн человек с последствиями травм живут не только с физическими, когнитивными, эмоциональными и поведенческими нарушениями, но также с нарушением функции желудочно-кишечного тракта (ЖКТ), что ежегодно обходится экономике страны в 60 млрд долларов [4—6].

У больных, находящихся в критическом состоянии в отделении реанимации, постоянно проводится мониторинг основных жизненно важных показателей, при этом изменения в кишечнике зачастую не принимаются во внимание, так как обычно интенсивная терапия направлена на поддержание функции других, более доступных для мониторинга органов и систем, в то время как кишечник, на первый взгляд, выключается из процесса пищеварения и не создает угрожающих жизни ситуаций [7, 8]. Тем не менее за время пребывания в ОРИТ у 59,1% пациентов выявляется как минимум один симптом расстройства ЖКТ, что может служить предиктором или начальным проявлением изменений на более глубоких уровнях регуляции его функции и морфологической структуры [9]. В клинической практике у больных, находящихся в критическом состоянии, часто возникают бактериемия, сепсис или синдром полиорганной недостаточности в отсутствие видимого источника инфекции; это свидетельствует о том, что бактерии и продукты их жизнедеятельности, содержащиеся в ЖКТ, потенциально способны мигрировать из его просвета в лимфатические узлы, системный кровоток и внутренние органы [1, 10, 11]. Результаты ряда исследований показывают, что штаммы микроорганизмов, полученные из образцов крови пациентов с бактериемией, зачастую идентичны штаммам, выделенным из их каловых масс [10]. Таким образом, недооценка состояния ЖКТ у пациентов, находящихся в критическом состоянии, может служить причиной ухудшения клинических исходов и развития вторичных осложнений.

Критическое состояние и морфология кишечника

Влияние циркуляторной гипоксии на слизистую оболочку кишечника

Развивающаяся в результате критического состояния централизация кровоснабжения, сохраняющаяся на протяжении длительного времени, приводит к гипоперфузии различных органов, в частности, ЖКТ. В экспериментальном исследовании на крысах и мышах, в котором воспроизводилось травматическое повреждение головного и спинного мозга как модели критического состояния, выявлены типичные изменения морфологии кишечника, вызванные циркуляторной гипоксией на фоне сниженного сердечного выброса. Прежде всего это сужение крипт, увеличение количества тучных клеток [12], явления престаза и стаза в различных структурах и отделах кишечника, увеличение глубины повреждения слизистой оболочки и утолщение гладкомышечного слоя [13], диапедезные кровоизлияния, эрозии, язвы, а также развитие желудочно-кишечного кровотечения (табл. 1). При этом морфологические проявления нарушений микроциркуляции регистрируются неравномерно на протяжении всего кишечника и сильнее выражены в участках наибольшего скопления сосудов [14]. Установлено, что именно слизистая оболочка тонкой кишки наиболее уязвима к циркуляторной гипоксии из-за явлений артериоло-венозного шунтирования через анастомозы подслизистого слоя, в которых происходят отслоение и десквамация эпителия, ранняя деструкция мембран энтероцитов и нарушение транскапиллярного обмена с последующим некрозом слизистой оболочки кишечника [12, 14]. В частности, изучение нарушений микроциркуляции слизистой оболочки кишечника в исследованиях на грызунах с моделью мезентериального тромбоза продемонстрировало отсутствие существенного повреждения тонкой кишки, но выявило грубые нарушения кровоснабжения после реперфузии ее участков, расположенных противоположно от брыжеечного края, которые нарастали с течением времени и проявлялись геморрагическими изменениями спустя 6 ч [15]. Слизистая оболочка двенадцатиперстной кишки наиболее уязвима к гипоксии, в то время как в подвздошной кишке отмечаются лишь минимальные нарушения, что связано с активацией резервных зон пристеночного пищеварения, свойственных для пищеварительной системы крыс [16]. Помимо этого в результате гипоксии наблюдается снижение числа T- и B-лимфоцитов в пейеровых бляшках [17].

Таблица 1. Структурные изменения желудочно-кишечного тракта у животных в ответ на гипоксию в эксперименте

Структурные изменения желудочно-кишечного тракта

Сужение крипт

Престаз/стаз

Утолщение гладкомышечного слоя

Эрозии, язвы

Диапедезные кровоизлияния, желудочно-кишечное кровотечение

Гипоперфузия апикального участка кишечной ворсинки

Циркуляторная гипоксия также отражается на строении кишечных ворсинок. Ввиду особенностей их микроциркуляции централизация кровообращения уже на ранних сроках вызывает в них кислородное голодание и нарушение питания, которое в норме на 50—80% обеспечивается напрямую из просвета кишки [18]. Артериальное и венозное кровоснабжение ворсинок кишечника происходит в противоположном направлении, что обусловливает «шунтирование» крови в основной части ворсинки, оставляя ее апикальный конец в состоянии гипоперфузии, что, в свою очередь, приводит к ишемии слизистой оболочки ЖКТ, нарушению пристеночного пищеварения и деструкции ворсинок [7, 19—21].

Влияние критического состояния на экспрессию медиаторов воспаления

Гипоксия вызывает усиление продукции провоспалительных цитокинов и других медиаторов воспаления (лейкотриены, простагландины и др.), которые наряду с повышением тонуса симпатической нервной системы приводят к нарушению целостности плотных контактов между энтероцитами, снижению моторно-эвакуационной функции ЖКТ и транслокации бактерий [22—24]. Особый интерес представляют результаты экспериментов на мышах с моделью травматического поражения головного мозга, в которых исследовалась взаимосвязь между воспалением и функциональными и гистопатологическими изменениями в толстой кишке в разные сроки после повреждения (через 24 ч и 28 суток). В ходе эксперимента явной связи между изменениями кишечной стенки и уровнем экспрессии как про-, так и противовоспалительных цитокинов не отмечалось, что продемонстрировало нарушение барьерной функции ЖКТ именно в качестве отсроченного последствия повреждения головного мозга, а не воспалительного ответа в кишечнике. Выявлена взаимосвязь между повышением проницаемости слизистой оболочки толстой кишки и снижением экспрессии специфического белка плотных контактов клаудина 1-го и 5-го типов и окклюдина с одновременным повышением экспрессии клаудина 2-го типа и молекул адгезии JAM-A [13, 25, 26].

Нарушение проницаемости и транслокация бактерий

У мышей с моделью травматического повреждения головного мозга измерялось трансэпителиальное электрическое сопротивление стенок тощей и толстой кишок. Доказано, что проницаемость стенки тощей кишки у мышей исследуемой группы в первые сутки после повреждения головного мозга значительно повышалась в отличие от мышей группы контроля. К 28-м суткам после травмы головного мозга она возвращалась к норме и не отличалась от таковой в контрольной группе. При этом проницаемость стенки толстой кишки оставалась значительно повышенной вплоть до 28-го дня (окончания исследования) после травмы по сравнению с таковой у животных группы контроля.

В исследовании В.С. Вербицкой продемонстрировано увеличение уровня веществ низкой и средней молекулярной массы в крови воротной вены в посттравматическом периоде, что свидетельствовало об их транслокации через стенку кишечника в системный кровоток (парацеллюлярно) ввиду повышенного их образования [27]. Некоторые авторы в своих исследованиях сомневаются в концепции развития вторичного сепсиса через парацеллюлярный путь: не подтверждено влияние критического состояния на структуру плотных контактов двенадцатиперстной кишки человека, исследуемых методом электронной микроскопии [8], в то время как в экспериментах с животными такие изменения были отмечены [28]. Предполагается, что барьерная функция межклеточного пространства энтероцитов более сохранна, чем считалось ранее, и что парацеллюлярный механизм транслокации бактерий у людей может быть не столь значимым, как у животных. Этот вопрос может стать поводом для рассмотрения трансцеллюлярного пути как ведущего способа транслокации [10, 29, 30].

Нарушения ферментативной активности

В ответ на критическое состояние наблюдаются также изменения ферментативной активности кишечника. В исследованиях зарегистрировано стадийное повышение уровней всех фракций амилазы слизистой оболочки различных отделов кишечника, что свидетельствует о начальных явлениях ухудшения пристеночного пищеварения и повреждении энтероцитов [14, 16, 27]. Наблюдаемое уже в ранние сроки критического состояния повышение активности труднодесорбируемых фракций свидетельствует о нарушении связей этих ферментов с мембранами энтероцитов [16].

Функциональные изменения ЖКТ

Критическое состояние существенно отражается на функции ЖКТ. По данным литературы, в остром периоде на ранних этапах наблюдается сужение просвета кишечника, после чего возникает его парез, наиболее выраженный в тонкой кишке. Возникновение пареза обусловлено изменениями в вегетативных нервных сплетениях. В свою очередь это препятствует нормальному проведению энтерального питания и приводит к развитию кишечной недостаточности [12]. Возникающее повреждение слизистой оболочки кишечника приводит к нарушению процессов адсорбции в щеточной кайме, резкому уменьшению площади всасывания и угнетению процессов пристеночного пищеварения.

Результаты экспериментального воспроизведения таких критических состояний, как острая массивная кровопотеря с исходом в клиническую смерть, оперативное вмешательство в объеме гемигепатэктомии, ушиб сердца, имитирующий последствия автотравмы, также свидетельствуют о функциональных нарушениях всех видов пищеварения и структурных изменениях кишечника вследствие расстройств микроциркуляции, что может приводить к транслокации бактерий [7, 14, 25, 31]. Компоненты клеточной стенки бактерий вызывают каскад патологических процессов, приводящих к выработке медиаторов септической реакции. Оксид азота является ключевым компонентом в генерации воспалительного ответа и тормозных процессов в кишечнике [24, 32]. В конечном счете это приводит к генерализации инфекции, сепсису, полиорганной недостаточности и летальному исходу [8, 23, 33].

В последнее время увеличилось количество публикаций о специфическом влиянии головного мозга на работу ЖКТ, состояние его слизистой оболочки и кишечную микробиоту. В исследовании V. Singh и соавт. воспроизводили картину ишемического инсульта в бассейне средней мозговой артерии у мышей. В результате подтверждено, что после тяжелого повреждения головного мозга возникает снижение моторики ЖКТ, которое ассоциируется с избыточным бактериальным ростом в кишечнике и снижением видового многообразия его микробиоты. Однако транслокации бактериальной флоры или бактериальной инвазии в слизистую оболочку кишки не было, что свидетельствует о функционально, но не морфологически нарушенном кишечном барьере. Отмечено также, что менее существенные повреждения коры головного мозга не приводят к изменениям состава микробиома и не вызывают парез кишечника [34].

S. Rauch и соавт. оценивали время эвакуации содержимого из тонкого кишечника у нейрохирургических больных с помощью методов видеовизуализации. По результатам исследования, у пациентов группы внутричерепных кровоизлияний не выявлены статистически значимые отклонения по сравнению с пациентами контрольной группы, однако продемонстрирована высокая частота развития патоморфологических изменений от афт и множественных некровоточащих эрозий до подслизистых петехий в тонкой кишке [35].

Критическое состояние и кишечная микробиота

Микробиоценоз кишечника, представляющий собой экосистему из более чем 1013—1014 микроорганизмов 600—1000 различных штаммов царства бактерий, археев и эукариотов [4, 36], также претерпевает значительные изменения во время критического состояния. Применение в ОРИТ средств, угнетающих желудочную секрецию, в том числе ингибиторов протонного насоса [37], а также вазоактивных веществ, препаратов для проведения седации и анальгезии, замедляющих моторику кишечника, отсутствие энтерального питания сказываются на количественном и качественном составе микробиоты ЖКТ и колонизации микроорганизмами нехарактерных для них отделов кишечника, что приводит к изменению количественного проксимально-дистального градиента микрофлоры [37—39]. В ответ на тяжелое повреждение организма происходит выброс катехоламинов, имеющих свойство повышать вирулентные качества некоторых кишечных патогенных и непатогенных микроорганизмов. В результате изменения состава микробиоты у пациентов, находящихся в критическом состоянии, происходят усугубление пареза кишечника и нарушение функции ЖКТ [4, 40—42].

Изменение микробного пейзажа при критическом состоянии

Влияние критического состояния на микробное представительство в экспериментах на животных

В исследованиях на мышах воспроизводились различные повреждения головного мозга с целью выявления изменений состава микробиоты в зависимости от тяжести повреждения и степени выраженности неврологического дефицита. Обнаружено, что сдвиги происходят в отношении роста Bacteroidetes, Porphyromonadaceae, Firmicutes и α-Proteobacteria в отличие от Peptococcaceae и Prevotellaceae, рост которых обычно наблюдается при воспроизведении ишемического повреждения головного мозга [40]. В аналогичных экспериментах на крысах также наблюдаются изменения гомеостаза слепой кишки, проявляющиеся снижением присутствия анаэробов и значительным ростом уровня Escherichia coli, способной посредством своих факторов патогенности повышать проницаемость плотных контактов энтероцитов [22], что еще раз указывает на высокую вероятность развития инфекционных осложнений у больных с травмой головного мозга [43]. Аналогичное нарушение кишечной проницаемости наблюдалось в экспериментах с внутривенным введением липополисахарида E. coli крысам, подвергшимся системной гипертермии и тепловому удару [32]. Исследование образцов кала пациентов с политравмой демонстрирует рост уровня E. coli и Clostridiales в течение 72 ч с момента поступления с одновременным снижением присутствия Bacteroidales, Fusobacteriales и Verrucomicrobiales [44]. Повреждение кишечной стенки приводит к воспалению слизистой оболочки, снижению ее барьерной функции, вызывая повышение содержания кислорода и нитратов [45], что способствует увеличению присутствия таких микроорганизмов как E. coli, Prevotella oralis и Lactobacilli, поддерживая воспалительные процессы в кишке.

Изменение микробиоценоза кишечника у пациентов, находящихся в критическом состоянии

У больных, находящихся в критическом состоянии, патогенные микроорганизмы способны более интенсивно, чем у здоровых людей, вытеснять других членов микробиома, таким образом меняя его состав [36]. Микробиоценоз кишечника у данной категории больных характеризуется меньшим разнообразием состава ключевых комменсалов, таких как Faecalibacterium, с их доказанной противовоспалительной активностью [46], а также Blautia, Ruminococcus и других, которым отводится роль в продукции витаминов, дифференцировке клеток эпителия и обезвреживании токсичных продуктов [47]. В некоторых случаях имеется сильное преобладание какого-либо одного рода бактерий, чаще всего патологического, таких как Escherichia/Shigella, Salmonella, Enterococcus, Clostridium difficile или Staphylococcus [34, 48, 49].

Важное клиническое значение имеют данные о взаимосвязи выраженности органной дисфункции и частоты смертности с сильным сокращением разнообразия состава микробиоты и увеличением присутствия в ней энтерококков [38]. В исследовании K. Shimizu и соавт. смертность от полиорганной недостаточности была значительно выше при преобладании в анализе каловой флоры 1—2 видов бактерий (52%) либо равномерно сниженного количества представительной бактериальной флоры (64%), чем при наличии множества видов бактерий (6%) [49]. Кроме того, избыточное преобладание бактерий семейств Christensenellacea и Erysipelotrichaceae значительно отражалось на выживаемости пациентов; риск 180-дневной смертности у больных с преобладанием Enterobacteriales и Enterobacteriaceae в течение первой недели пребывания в отделении нейрореанимации увеличивался до 92% [50].

В рамках клинической практики выявлено, что при остром нарушении мозгового кровообращения и иной этиологии критического состояния (ожоговая травма, инфаркт миокарда) микробиом кишечника также изменяется в сторону чрезмерного роста ранее менее распространенных таксонов бактерий одновременно со снижением его разнообразия, что проявляется преобладанием грамотрицательной аэробной флоры (табл. 2) [51, 52].

Таблица 2. Изменение состава ключевых представителей микробного пейзажа желудочно-кишечного тракта на фоне критического состояния

Снижение

Рост

Faecalibacterium

Blautia

Ruminococcus

Collinsella aerofaciens

Escherichia

Shigella

Salmonella

Clostridium difficile

Staphylococcus

Enterococcaceae

Christensenellacea

Enterobacteriales

Влияние антибактериальной терапии на микробиоценоз кишечника

Не следует забывать, что кишечная микробиота крайне уязвима для антибиотикотерапии. Проводимая эрадикация специфического спектра микроорганизмов косвенно приводит к сокращению численности представителей микробиома, ответственных за утилизацию токсических продуктов ферментации других микроорганизмов [22]. Микробиоценоз здорового человека защищает организм от инвазии таких патогенных микроорганизмов, как Enterococcus faecium, E. coli и C. difficile, поэтому неудивительно, что тяжелые инфекции, вызванные этими патогенами, часто встречаются у пациентов, получавших антибиотики; это способствует росту антибиотикорезистентной и оппортунистической флоры, встречающейся в стационаре [36]. Проведено исследование микробных популяций методами денатурирующего градиентного гель-электрофореза и ПЦР из образцов кала пациентов ОРИТ, получающих антибактериальную терапию. Анализ продемонстрировал снижение числа полос образцов кала у большинства пациентов, что свидетельствовало о значительных изменениях состава микробиоты, а также появление новых полос с составом, крайне схожим с последовательностями в генах Enterococcus, которым отводится центральная роль в развитии нарушений организации белков плотных контактов в кишечном эпителиальном барьере [53, 54].

Потенциальные направления лечебной тактики

Несмотря на то что причины и механизмы развития энтеропатии критических состояний широко известны, методов их коррекции в клинической практике существует немного. Восстановление нормального состава кишечной микробиоты может скорректировать нарушения в оси «мозг—кишечник», улучшая клинические исходы и качество жизни в долгосрочной перспективе [4, 47]. Есть данные об эффективности трансплантации фекальной микробиоты в нормализации дисбиоза, вызванного повреждением мозга, и улучшении исходов инсульта, а также у больных с системным воспалением без явного этиологического фактора [34, 55]. Несмотря на все преимущества и кажущуюся безопасность метода, описаны случаи развития тяжелых системных бактериальных инфекций, в том числе с летальным исходом, у иммунологически скомпрометированных пациентов, которым проводилась трансплантация фекальной микробиоты, что доказано определением идентичных по виду и практически одинаковых по паттерну резистентности возбудителей, выделенных из крови реципиентов и стула донора [14]. Продолжаются экспериментальное применение и оценка клинических исходов энтеральной оксигенотерапии у больных, находящихся в критическом состоянии, особенно у пациентов с анаэробной клостридиальной инфекцией [56]. В исследованиях доказано, что метод улучшает моторику кишечника и повышает системную оксигенацию, а морфологические изменения стенки кишки и анатомической структуры ворсин происходят в меньшей степени [19]. В эксперименте на мышах изучалось положительное влияние бета-блокаторов (в частности, Лабеталола) на исход травматического поражения головного мозга, при применении которых наблюдались меньшее повышение проницаемости кишечника и менее выраженный рост уровня катехоламинов, что может использоваться в рамках терапии для улучшения клинических исходов [6]. Получены данные о том, что пролонгированное ограничение нутритивной поддержки вызывает гистологические изменения слизистой ЖКТ как у людей, так и у животных [57]; это в очередной раз доказывает необходимость разработки схем питания для больных в ОРИТ, в особенности пациентов нейрохирургического профиля, ввиду частой хронизации критического состояния.

Заключение

Доказанная взаимосвязь критического состояния и изменения морфологии и микробиоценоза кишечника у нейрохирургических пациентов является обоснованием необходимости продолжения исследований, направленных на разработку стратегии их лечения, включающей профилактику вторичного поражения головного мозга и других систем организма.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Комментарий

Скажу сразу, — обсуждаемая работа мне показалась заслуживающей внимания и, прежде всего, за счет своей темы. Так уж сложилось в современной литературе, что желудочно-кишечный тракт (ЖКТ) долгое время рассматривался как орган второстепенный, что, без сомнения, не соответствует действительности. Нормальная работа ЖКТ — это необходимое условие для выздоровления пациента с любой патологией, а нарушение функции ЖКТ, прежде всего нутритивной и барьерной, может стать причиной неблагоприятного исхода.

По стилю работа является обзором литературы. Авторы использовали современные базы данных, но, на мой взгляд, при отборе работ для более детального анализа излишне увлеклись экспериментальными исследованиями на животных, ценность которых, по большому счету, не так уж и велика.

В остальном все хорошо. Рубрики в тексте обзора логично отражают все основные аспекты проблемы нарушения функции ЖКТ у пациентов, находящихся в критических состояниях. Последнее понятие для широкого круга читателей, наверное, следовало бы точно определить. Например, так: «Критическое состояние — это крайняя степень любой, в том числе ятрогенной, патологии организма, для которой характерны тяжелые расстройства жизненно важных функций (в первую очередь сердечно-сосудистой и дыхательной), требующие экстренной поддержки или искусственного замещения» [1]. Действительно, имеющиеся в тексте работы рубрики четко соответствуют основным ключевым аспектам проблемы. Они рассмотрены кратко и вполне убедительно. Хуже обстоит ситуация в отношении достаточно важного для нас вопроса — взаимосвязи повреждений различных отделов центральной нервной системы (ЦНС) и нарушения функции ЖКТ. Здесь авторы ограничились цитированием немногих, главным образом экспериментальных работ последнего времени, а ведь вопрос этот имеет давнюю и интересную историю. Пациенты с поражением различных отделов ЦНС являются группой особо высокого риска по поражениям верхних отделов ЖКТ — речь идет о формировании острых эрозий, стрессовых язв желудка и двенадцатиперстной кишки, ну и, конечно, кровотечений из них. К. Рокитанский еще в 1841 г. опубликовал свою серию наблюдений повреждений ЖКТ у новорожденных с опухолями ЦНС, у детей и взрослых с различной патологией ЦНС и больных с кахексией, при этом он настаивал на нейрогенном генезе повреждений ЖКТ. Позднее Г. Кушинг описал серию из 11 наблюдений, в которой пациенты, оперированные по поводу опухолей диэнцефальной области, имели три основных типа повреждения ЖКТ в послеоперационном периоде: язвы, геморрагические эрозии и перфорации. Он полагал, что в основе обнаруженных повреждений ЖКТ лежит активация парасимпатических центров гипоталамуса, связанных с ядрами вагуса, что ведет к его выраженной активации. Это даже послужило основанием для выделения отдельной нозологической формы — язв Кушинга—Рокитанского. Я писал об этом ранее в одной из работ, в которой наряду с описанием клинического наблюдения приведены обзор литературы и краткий анализ патофизиологии процесса повреждения ЖКТ при острой нейрохирургической патологии [2]. Однако вернемся к обсуждаемой работе.

Финал работы, посвященный методам диагностики, терапии и профилактики, к сожалению, мало оптимистичен. Мы как не имели, так и не имеем в своем распоряжении несложных, клинически доступных методов объективного исследования функции ЖКТ (таких, например, как пальцевая пульсоксиметрия в оценке функции легких), а уж про мониторинг функции ЖКТ у пациентов, находящихся в критических состояниях, пока и говорить не приходится. Из методов коррекции нарушенной функции ЖКТ у пациентов, находящихся в критических состояниях, у нас реально всего три: 1) интестинальная оксигенация; 2) раннее энтеральное питание; 3) трансплантация фекальной микробиоты. Но, как справедливо указывают авторы работы, и эти методы нуждаются в детальном дальнейшем изучении с целью подтверждения их безопасности и клинической эффективности.

Так что спасибо авторам за тематику работы, и будем ожидать дальнейшего прогресса в этом направлении.

А.Ю. Лубнин (Москва)

Литература/References

1. Зильбер А.П. Этюды критической медицины. Петрозаводск: «Издательство ПетрГУ»; 2006.

Zil’ber AP. Etyudy kriticheskoj mediciny. Petrozavodsk: «Izdatel’stvo PetrGU»; 2006. (In Russ.).

2. Лубнин А.Ю., Киричкова О.А., Савин И.А., Троицкий А.В., Хейреддин А.С. Острое повреждение верхних отделов желудочно-кишечного тракта у больного с множественными артериальными аневризмами сосудов мозга. Анестезиология и реаниматология. 2010;4:75-78.

Lubnin AYu, Kirichkova OA, Savin IA, Troitsky AV, Kheyreddin AS. Acute damage to the upper gastrointestinal tract in a patient with multiple arterial aneurysms of the brain vessels. Anesteziologiya i reanimatologiya. 2010;4:75-78. (In Russ.).

Литература / References:

  1. Sertaridou EN, Papaioannou VE, Kolios G, Pneumatikos IA. Gut failure in critical care: old school versus new school. Annals of Gastroenterology. 2015;28(3):309-322. 
  2. McDonald D, Ackermann G, Khailova L, Baird C, Heyland D, Kozar R, Lemieux M, Derenski K, King J, Vis-Kampen C, Knight R, Wischmeyer PE. Extreme Dysbiosis of the Microbiome in Critical Illness. mSphere. 2016;1(4):e00199-16.  https://doi.org/10.1128/mSphere.00199-16
  3. Marik P. Chronic Critical Illness and the Long Term Sequela of Critical Care. In: Marik P, ed. Evidence-Based Critical Care. Third Edition. Switzerland: Springer International Publishing; 2015. https://doi.org/10.1007/978-3-319-11020-2_8
  4. Zhu C, Grandhi R, Patterson T, Nicholson S. A Review of Traumatic Brain Injury and the Gut Microbiome: Insights into Novel Mechanisms of Secondary Brain Injury and Promising Targets for Neuroprotection. Brain Sciences. 2018;8(113):1-8.  https://doi.org/10.3390/brainsci8060113
  5. Olsen AB, Hetz RA, Xue H, Aroom KR, Bhattarai D, Johnson E, Bedi S, Cox CS Jr, Uray K. Effects of traumatic brain injury on intestinal contractility. Neurogastroenterology and Motility. 2013;25(7):593-e463. https://doi.org/10.1111/nmo.12121
  6. Lang Y, Fu F, Sun D, Xi C, Chen F. Labetalol Prevents Intestinal Dysfunction Induced by Traumatic Brain Injury. PLoS ONE. 2015;10(7):1-11.  https://doi.org/10.1371/journal.pone.0133215
  7. Коняева Т.П., Долгих В.Т., Еломенко С.Н. Функционально-морфологические изменения тонкой кишки в раннем постреанимационном периоде. Бюллетень сибирской медицины. 2004;3(2):5-12. 
  8. Liew VY, Chapman MJ, Nguyen NQ, Cousins CE, Plummer MP, Chapple LA, Abdelhamid YA, Manton ND, Swalling A, Sutton-Smith P, Burt AD, Deane AM. A prospective observational study of the effect of critical illness on ultrastructural and microscopic morphology of duodenal mucosa. Critical Care and Resuscitation: Journal of the Australasian Academy of Critical Care Medicine. 2016;18(2):102-107. 
  9. Reintam A, Parm P, Kitus R, Kern H, Starkopf J. Gastrointestinal symptoms in intensive care patients. Acta Anaesthesiologica Scandinavica. 2009;53(3):318-324.  https://doi.org/10.1111/j.1399-6576.2008.01860.x
  10. De-Souza D, Greene L. Intestinal permeability and systemic infections in critically ill patients: effect of glutamine. Critical Care Medicine. 2005;33(5):1125-1133. https://doi.org/10.1097/01.CCM.0000162680.52397.97
  11. Паршин Д.С., Топчиев М.А. Лечение синдрома кишечной недостаточности у больных с разлитым перитонитом. Вестник Тамбовского университета. Серия: Естественные и технические науки. 2013;18(1):296-297. 
  12. Бушуров С.Е. Морфологические изменения в кишечнике при острой кровопотере. Российский медико-биологический вестник им. акад. И.П. Павлова. 2010;18(1):25-29.  https://doi.org/10.17816/PAVLOVJ2010125-29
  13. Ma E, Smith A, Desai N, Cheung L, Faden A. Bidirectional brain-gut interactions and chronic pathological changes after traumatic brain injury in mice. Brain, Behavior, and Immunity. 2017;66:56-59.  https://doi.org/10.1016/j.bbi.2017.06.018
  14. DeFilipp Z, Bloom PP, Torres Soto M, Mansour MK, Sater MRA, Huntley MH, Turbett S, Chung RT, Chen YB, Hohmann EL. Drug-Resistant E. coli Bacteremia Transmitted by Fecal Microbiota Transplant. The New England Journal of Medicine. 2019;381(21):2043-2050. https://doi.org/10.1056/NEJMoa1910437
  15. Takeuchi K, Kumano A, Abe N, Kotani T. Involvement of corticotropin-releasing factor and corticotropin-releasing factor 2 receptors in pathogenesis of ischemia/reperfusion-induced enteritis in rats. Journal of Physiology and Pharmacology. 2016;(67)5:697-707. 
  16. Храмых Т.П. Патогенетические факторы дисфункции щеточной каймы тонкой кишки при геморрагической гипотензии. Омский научный вестник. 2013;1(118):91-95. 
  17. Cheng X, Boza-Serrano A, Turesson MF, Deierborg T, Ekblad E, Voss U. Galectin-3 causes enteric neuronal loss in mice after left sided permanent middle cerebral artery occlusion, a model of stroke. Scientific Reports. 2016;6:32893. https://doi.org/10.1038/srep32893
  18. Yoseph BP, Klingensmith NJ, Liang Z, Breed ER, Burd EM, Mittal R, Dominguez JA, Petrie B, Ford ML, Coopersmith CM. Mechanisms of intestinal barrier dysfunction in sepsis. Shock. 2016;46(1):52-59.  https://doi.org/10.1097/SHK.0000000000000565
  19. Мазурок В.А., Антонова И.В., Головкин А.С., Баутин А.Е., Горелов И.И., Беликов В.Л., Сливин О.А. Энтеропатии критических состояний: клинико-морфологические образы, возможности коррекции. Трансляционная медицина. 2016;3(5):42-52. 
  20. Уголев А.М. Пристеночное (контактное) мембранное пищеварение. Государственный реестр открытий СССР. 1958; №15. Ссылка активна на 13.06.20.  https://ross-nauka.narod.ru/03/03-015.html
  21. Chan C, Leung K, Chan K. Microscopic anatomy of the vasculature of the human intestinal villus — a study with review. European Journal of Anatomy. 2014;18(4):291-301. 
  22. Schuijt T, Poll T, Wiersinga W. Gut Microbiome and Host Defense Interactions during Critical Illness. Annual Update in Intensive Care and Emergency Medicine. 2012:29-36.  https://doi.org/10.1007/978-3-642-25716-2_4
  23. Rogler G, Rosano G. The heart and the gut. European Heart Journal. 2014;35:426-430.  https://doi.org/10.1093/eurheartj/eht271
  24. Greis C, Rasuly Z, Janosi RA, Kordelas L, Beelen DW, Liebregts T. Intestinal T lymphocyte homing is associated with gastric emptying and epithelial barrier function in critically ill: a prospective observational study. Critical Care. 2017;21(1):70.  https://doi.org/10.1186/s13054-017-1654-9
  25. Otani S, Coopersmith C. Gut integrity in critical illness. Journal of Intensive Care. 2019;7:17.  https://doi.org/10.1186/s40560-019-0372-6
  26. Katzenberger R, Ganetzky B, Wassarman D. The gut reaction to traumatic brain injury. Fly. 2015;9(2):68-74.  https://doi.org/10.1080/19336934.2015.1085623
  27. Вербицкая В.С. Влияние аргинина на функциональное состояние тонкой кишки в посттравматическом периоде ушиба сердца. Омский научный вестник. 2013;1(118):53-47. 
  28. Bansal V, Costantini T, Kroll L, Peterson C, Loomis W, Eliceiri B, Baird A, Wolf P, Coimbra R. Traumatic Brain Injury and Intestinal Dysfunction: Uncovering the Neuro-Enteric Axis. Journal of Neurotrauma. 2009;26:1353-1359. https://doi.org/10.1089/neu.2008.0858
  29. Leaphart C, Tepas J. The gut is a motor of organ system dysfunction. Surgery. 2007;141(5):563-569.  https://doi.org/10.1016/j.surg.2007.01.021
  30. Третьяков Е.В., Варганов М.В., Нифонтова Е.Е. Современный взгляд на кишечную транслокацию бактерий как основную причину гнойно-септических осложнений при деструктивном панкреатите. Успехи современного естествознания. 2013;9:78-80. 
  31. Kigerl K, Hall J, Wang L, Mo X, Yu Z, Popovich P. Gut dysbiosis impairs recovery after spinal cord injury. The Journal of Experimental Medicine. 2016;213(12):2603-2620. https://doi.org/10.1084/jem.20151345
  32. Тропская Н.С., Кислякова Е.А., Попова Т.С. Механизмы моторных нарушений тонкой кишки при эндотоксемии и патофизиологическое обоснование для использования трибутирина как противовоспалительного и прокинетического фармаконутриента. Анестезиология и реаниматология. 2016;61(1):43-46.  https://doi.org/10.18821/0201-7563-2016-61-1-43-47
  33. Martin C, Osadchiy V, Kalani A, Mayer E. The Brain-Gut-Microbiome Axis. Cellular and Molecular Gastroenterology and Hepatology. 2018;6(2):133-141.  https://doi.org/10.1016/j.jcmgh.2018.04.003
  34. Singh V, Roth S, Llovera G, Sadler R, Garzetti D, Stecher B, Dichgans M, Liesz A. Microbiota Dysbiosis Controls the Neuroinflammatory Response after Stroke. The Journal of Neuroscience. 2016;36(28):7428-7440. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.1114-16.2016
  35. Rauch S, Krueger K, Turan A, Roewer N, Sessler DI. Determining small intestinal transit time and pathomorphology in critically ill patients using video capsule technology. Intensive Care Medicine. 2009;35:1054-1059. https://doi.org/10.1007/s00134-009-1415-6
  36. Wolff N, Hugenholtz F, Wiersinga W. The emerging role of the microbiota in the ICU. Critical Care. 2018;22(78):1-6.  https://doi.org/10.1186/s13054-018-1999-8
  37. Тропская Н.С., Шашкова И.Г., Черненькая Т.В., Попова Т.С., Капанадзе Г.Д. Влияние кислотности желудочного сока на микрофлору кишечника. Биомедицина. 2016;4:92-98. 
  38. Iapichino G, Callegari ML, Marzorati S, Cigada M, Corbella D, Ferrari S, Morelli L. Impact of antibiotics on the gut microbiota of critically ill patients. Journal of Medical Microbiology. 2008;57(Pt 8):1007-1014. https://doi.org/10.1099/jmm.0.47387-0
  39. Богданович А.В., Шиленок В.Н., Кирпиченок Л.Н. Энтеральная дезинтоксикация в раннем послеоперационном периоде у больных острой спаечной кишечной непроходимостью. Медико-биологические проблемы жизнедеятельности. 2011;2(6):47-51. 
  40. Houlden A, Goldrick M, Brough D, Vizi ES, Lénárt N, Martinecz B, Roberts IS, Denes A. Brain injury induces specific changes in the caecal microbiota of mice via altered autonomic activity and mucoprotein production. Brain, Behaviour, and Immunity. 2016;57:10-20.  https://doi.org/10.1016/j.bbi.2016.04.003
  41. Clarke M, Hughes D, Zhu C, Boedeker E, Sperandio V. The QseC sensor kinase: A bacterial adrenergic receptor. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2006;103(27):10420-10425. https://doi.org/10.1073/pnas.0604343103
  42. Соловьев И.А., Колунов А.В. Послеоперационный парез кишечника: проблема абдоминальной хирургии. Вестник Национального медико-хирургического центра им. Н.И. Пирогова. 2013;8(2):112-118. 
  43. Waligora-Dupriet AJ, Lafleur S, Charrueau C, Choisy C, Cynober L, Butel MJ, Moinard C. Head injury profoundly affects gut microbiota homeostasis: Results of a pilot study. Nutrition. 2018;45:104-107.  https://doi.org/10.1016/j.nut.2017.06.026
  44. Howard BM, Kornblith LZ, Christie SA, Conroy AS, Nelson MF, Campion EM, Callcut RA, Calfee CS, Lamere BJ, Fadrosh DW, Lynch S, Cohen MJ. Characterizing the gut microbiome in trauma: significant changes in microbial diversity occur early after severe injury. Trauma Surgery and Acute Care Open. 2017;2(1):1-6.  https://doi.org/10.1136/tsaco-2017-000108
  45. Dickson R. The microbiome and critical illness. The Lancet. Respiratory Medicine. 2016;4(1):59-72.  https://doi.org/10.1016/S2213-2600(15)00427-0
  46. Sokol H, Pigneur B, Watterlot L, Lakhdari O, Bermúdez-Humarán LG, Gratadoux JJ, Blugeon S, Bridonneau C, Furet JP, Corthier G, Grangette C, Vasquez N, Pochart P, Trugnan G, Thomas G, Blottière HM, Doré J, Marteau P, Seksik P, Langella P. Faecalibacterium prausnitzii is an anti-inflammatory commensal bacterium identified by gut microbiota analysis of Crohn disease patients. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2008;105(43):16731-16736. https://doi.org/10.1073/pnas.0804812105
  47. Ruppé E, Martin-Loeches I, Rouzé A, Levast B, Ferry T, Timsit JF. What’s new in restoring the gut microbiota in ICU patients? Potential role of faecal microbiota transplantation. Clinical Microbiology and Infection. 2018;24:803-805.  https://doi.org/10.1016/j.cmi.2018.05.020
  48. Lankelma JM, van Vught LA, Belzer C, Schultz MJ, van der Poll T, de Vos WM, Wiersinga WJ. Critically ill patients demonstrate large interpersonal variation in intestinal microbiota dysregulation: a pilot study. Intensive Care Medicine. 2017;43(1):59-67.  https://doi.org/10.1007/s00134-016-4613-z
  49. Shimizu K, Ogura H, Tomono K, Tasaki O, Asahara T, Nomoto K, Morotomi M, Matsushima A, Nakahori Y, Yamano S, Osuka A, Kuwagata Y, Sugimoto H. Patterns of Gram-Stained Fecal Flora as a Quick Diagnostic Marker in Patients with Severe SIRS. Digestive Diseases and Sciences. 2011;56(6):1782-1788. https://doi.org/10.1007/s10620-010-1486-9
  50. Xu R, Tan C, Zhu J, Zeng X, Gao X, Wu Q, Chen Q, Wang H, Zhou H, He Y, Pan S, Yin J. Dysbiosis of the intestinal microbiota in neurocritically ill patients and the risk for death. Critical Care. 2019;23(195):1-13.  https://doi.org/10.1186/s13054-019-2488-4
  51. Earley ZM, Akhtar S, Green SJ, Naqib A, Khan O, Cannon AR, Hammer AM, Morris NL, Li X, Eberhardt JM, Gamelli RL, Kennedy RH, Choudhry MA. Burn Injury Alters the Intestinal Microbiome and Increases Gut Permeability and Bacterial Translocation. PLoS ONE. 2015;10(7):1-14.  https://doi.org/10.1371/journal.pone.0129996
  52. Hayakawa M, Asahara T, Henzan N, Murakami H, Yamamoto H, Mukai N, Minami Y, Sugano M, Kubota N, Uegaki S, Kamoshida H, Sawamura A, Nomoto K, Gando S. Dramatic changes of the gut flora immediately after severe and sudden insults. Digestive Diseases and Sciences. 2011;56(8):2361-2365. https://doi.org/10.1007/s10620-011-1649-3
  53. Wang F, Li Q, Wang C, Tang C, Li J. Dynamic Alteration of the Colonic Microbiota in Intestinal Ischemia-Reperfusion Injury. PLoS ONE. 2012;7(7):1-9.  https://doi.org/10.1371/journal.pone.0042027
  54. Muza-Moons M, Schneeberger E, Hecht G. Enteropathogenic Escherichia coli infection leads to appearance of aberrant tight junctions strands in the lateral membrane of intestinal epithelial cells. Cellular Microbiology. 2004;6(8):783-793.  https://doi.org/10.1111/j.1462-5822.2004.00404.x
  55. Limketkai B, Hendler S, Ting P, Parian A. Fecal Microbiota Transplantation for the Critically Ill Patient. Nutrition in Clinical Practice, ASPEN. 2019;34(1):73-79.  https://doi.org/10.1002/ncp.10228
  56. Мазурок В.А., Головкин А.С., Горелов И.И., Баутин А.Е., Меньшугин И.Н., Сливин О.А., Тарновская Д.С., Иванов В.В., Никифоров В.Г., Морозов К.А., Маричев А.О. Интестинальная оксигенотерапия критических состояний. Общая реаниматология. 2017;13(6):74-88.  https://doi.org/10.15360/1813-9779-2017-6-74-91
  57. Ralls M, Demehri F, Feng Y, Ignatoski K, Teitelbaum D. Enteral nutrient deprivation in patients leads to a loss of intestinal epithelial barrier function. Surgery. 2015;157:732-742.  https://doi.org/10.1016/j.surg.2014.12.004

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.