Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Самарцев И.Н.

ФГБВОУ ВПО «Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова» Минобороны России

Живолупов С.А.

ФГБВОУ ВО «Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова» Минобороны России

Горбатенкова О.В.

ФГБВОУ ВО «Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова» Минобороны России

Пономарев В.В.

УО «Белорусский государственный медицинский университет»

Бутакова Ю.С.

ГБУЗ «Новодвинская центральная городская больница»

Динамика концентрации биомаркеров нейровоспаления в крови у пациентов с хронической ишемией головного мозга на фоне терапии винпоцетином: результаты исследования ИНФЛАМАРК

Авторы:

Самарцев И.Н., Живолупов С.А., Горбатенкова О.В., Пономарев В.В., Бутакова Ю.С.

Подробнее об авторах

Прочитано: 2056 раз


Как цитировать:

Самарцев И.Н., Живолупов С.А., Горбатенкова О.В., Пономарев В.В., Бутакова Ю.С. Динамика концентрации биомаркеров нейровоспаления в крови у пациентов с хронической ишемией головного мозга на фоне терапии винпоцетином: результаты исследования ИНФЛАМАРК. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2023;123(12):50‑58.
Samartcev IN, Zhivolupov SA, Gorbatenkova OV, Ponomarev VV, Butakova JS. Biomarkers of neuroinflammation in patients with chronic cerebral ischemia during the therapy with vinpocetine (study INFLAMARK). S.S. Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry. 2023;123(12):50‑58. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/jnevro202312312150

Рекомендуем статьи по данной теме:
Сов­ре­мен­ные ас­пек­ты па­то­ге­не­ти­чес­кой те­ра­пии хро­ни­чес­кой ише­мии моз­га. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(12):106-113

Хроническая ишемия головного мозга (ХИМ) является одним из наиболее распространенных неврологических заболеваний у пациентов пожилого возраста, ее патофизиологические механизмы интенсивно изучаются. Предполагается, что при данной патологии вследствие воздействия факторов риска и генетической предрасположенности возникает прогрессирующее многоочаговое поражение вещества головного мозга с формированием триады основных синдромов — когнитивных нарушений, постуральной неустойчивости и аффективных расстройств.

Одним из ведущих патогенетических процессов, ответственных за развитие ранних клинических проявлений при нейродегенеративных заболеваниях [1], а также ХИМ, является воспалительный процесс в ЦНС — нейровоспаление. Как правило, воспаление действует как естественная физиологическая защита от инфекций и травм, тем самым играя нейропротективную роль. Классический иммунный ответ в этом случае включает фазу активации, во время которой микроглия вступает в борьбу с инфекционными агентами, и фазу разрешения — процесс возвращения клеток микроглии в состояние покоя. Однако в ряде случаев нейровоспаление может стать дисфункциональным, фаза разрешения не достигается, что приводит к хроническому воспалению, характеризующемуся устойчивой активацией микроглии и избыточной нерегулируемой выработкой цитокинов, что может оказывать деструктивное воздействие на нейроны и сосуды головного мозга [2]. В ранних работах, посвященных данной проблеме, высказывалось предположение о том, что нейровоспаление реализуется через цитотоксический ответ клеток микроглии и окислительный стресс, однако в настоящее время фокус исследований сместился на изучение активации астроглии, проявляющейся локальной гиперпродукцией цитокинов и формированием внутриклеточных комплексов (инфламмасом), запускающих особый тип клеточной гибели — пироптоз [3].

К сожалению, простые методики прижизненной количественной оценки выраженности нейровоспаления при той или иной неврологической патологии до сегодняшнего дня не разработаны. Применение позитронно-эмиссионной томографии с использованием ряда сложных лигандов возможно лишь с исследовательской целью в ограниченных группах пациентов в крупных научно-исследовательских центрах, и не удовлетворяет потребности в изучении этого патофизиологического феномена [4]. В то же время такие работы крайне востребованы, главным образом для поиска и анализа эффективности применения фармакологических средств с целью уменьшения выраженности нейровоспаления на ранних этапах неврологических заболеваний — в том момент, когда еще есть возможность сохранить способность нейрональных связей к интеграции. Такой эффект предполагается для некоторых лекарственных препаратов, так, in vitro было продемонстрировано, что применение винпоцетина ингибирует NF-κB-зависимый воспалительный ответ в культуре клеток микроглии головного мозга, что может препятствовать формированию инфламмасом NLRP3 [5].

Проведение подобных исследований in vivo связано с поиском биомаркеров нейровоспаления в периферической крови. К настоящему времени опубликованы результаты ряда исследований, позволяющих предполагать, что из возможных простых и специфичных биомаркеров нейровоспаления предпочтение следует отдать белку S100B и интерлейкину-1β (ИЛ-1β). Экспрессию обоих белков связывают с активацией воспалительного процесса, в том числе в нервной системе, их концентрация увеличивается при черепно-мозговой травме, болезни Альцгеймера, рассеянном склерозе и ряде других нейродегенеративных заболеваний [6, 7]. Белок S100B контролирует полимеризацию тубулина, репарацию ДНК, а также активацию глиального фибриллярного кислого белка — одного из маркеров повреждения мозговой ткани [8]. В нормальном состоянии ИЛ-1β депонируется в цитозоле клети и появляется во внеклеточном пространстве только в момент клеточной гибели или вследствие принудительного высвобождения [9]. ИЛ-1β активирует микроглию, а также астроциты, что приводит к синтезу других провоспалительных и хемотаксических медиаторов в ЦНС [10], обеспечивая персистенцию нейровоспаления (рис. 1).

Рис. 1. Участие белков S100B и Ил-1β в каскаде нейровоспаления.

Эндогенные внеклеточные лиганды (DAMP), в том числе белок S100B, способны связываться с соответствующими рецепторами распознавания (TLR, RAGE, IFN-γR, ИЛ-1R и пр.) на соседних клетках, активируя несколько нижестоящих регуляторных путей (NF-κB, MAPK, P53 и JAK-STAT), что приводит к усилению экспрессии генов, ответственных за синтез компонентов инфламмасомы, а также предшественников ИЛ-1β и ИЛ-18 в цитозоле. В последующем запускается сборка инфламмасомы, по завершении чего каспазы-1 и -8 подвергаются активации, что инициирует выработку цитокинов ИЛ-1β и ИЛ-18, а также запускает воспалительную форму гибели клеток — пироптоз (адаптировано по [44]).

Цель исследования — оценка влияния терапии винпоцетином на клинические проявления ХИМ и концентрацию в сыворотке крови маркеров нейровоспаления (белок S100B и ИЛ-1β).

Материал и методы

В исследовании приняли участие 30 пациентов с ХИМ, соотношение мужчин и женщин 1:1,3, средний возраст 61,6 [56,9; 67,9] года.

Критерии включения: верифицированная ХИМ (код по МКБ I67.9).

Критерии невключения: противопоказания к приему винпоцетина и/или проведению МРТ; невозможность вербального контакта с пациентом, проведения балльной оценки эффективности лечения (вследствие деменции, психических заболеваний и др.); верифицированные нейродегенеративные и аутоиммунные заболевания; перенесенная тяжелая черепно-мозговая травма; злокачественные новообразования, алкогольная или наркотическая зависимость; сахарный диабет; тяжелые или нестабильные сопутствующие заболевания; инфекционное заболевание за 21 день до забора крови для определения S100B и ИЛ-1β; прием ноотропных препаратов, антидепрессантов, противоэпилептических средств.

Всем больным проводилась МРТ головы с использованием томографа Philips Intera («Philips», Бельгия) с силой индукции магнитного поля 1,5 Тл, градиентом 30 мТл/м, и программным обеспечением Scan tools. Анализировали изображение в следующих последовательностях: T1-, T2-взвешенное изображение, fluid-attenuated inversion recovery imaging (FLAIR) и susceptibility-weighted imaging (SWI). Выраженности проявлений ХИМ оценивали согласно протоколу STRIVE [11], включая полуколичественную оценку выраженности гиперинтенсивности перивентрикулярного и глубинного белого вещества по шкале Fazekas (ПВ-F и Г-F соответственно) [12]; выявление лакун в подкорковых областях головного мозга, включая внутреннюю капсулу, лучистый венец и мозолистое тело; выявление микрокровоизлияний; оценку наличия и выраженности расширения периваскулярных пространств (РПП) [13]. Общая выраженность изменений оценивалась полуколичественно от 0 до 4, при этом 1 балл начислялся за каждый из представленных параметров: выраженные изменения ПВ-F=3 или Г-F=2—3, наличие лакун, микрокровоизлияний, умеренного или выраженного расширения периваскулярных пространств в области базальных ганглиев [14].

После анализа нейровизуализационных параметров всем пациентам назначался винпоцетин (Кавинтон Форте) по 30 мг/сут, длительность лечения 3 мес. Обследование пациентов проводилось 4 раза: визит 1 — скрининг, визит 2 — через 30 сут терапии, визит 3 — через 60 сут терапии, визит 4 — через 90 сут (после окончания терапии). Эффективность проведенного лечения оценивали по Монреальской шкале оценки когнитивных функций (Montreal Cognitive Assessment, MoCA) [15]; Госпитальной шкале тревоги и депрессии (Hospital Anxiety and Depression Scale, HADS) [16]; шкалам дневной сонливости Epworth (ESS) [17]; астенического состояния (ШАС) [18]; впечатления от лечения Global Rating of Change Scale (GRC) [19].

Исследование маркеров нейровоспаления проводилось в сыворотке крови дважды: на визитах 1 и 4. Определение белка S100B осуществлялось электрохемилюминесцентным иммуноанализом (Cobas e60, «Roche»), ИЛ-1β — иммуноферментным методом («Вектор Бест», Россия).

Статистический анализ проводился в базе полученных в ходе исследования данных (Excel) с применением программного пакета Statistica 7.0 («StatSoft Inc.», США). Значимость различий между количественными показателями оценивали по критерию Стьюдента t при нормальном распределении или Манна—Уитни для непараметрических данных. Для анализа взаимосвязи между общей выраженностью МРТ и ее отдельными параметрами (ПВ-F, Г-F, РПП, лакуны, микрокровоизлияния) и концентрацией биомаркеров нейровоспаления в периферической крови использовали построение модели множественной линейной регрессии с расчетом β-коэффициентов. Для оценки взаимосвязи между показателями клинических шкал и содержанием S100B, ИЛ-1β в крови проводили корреляционный анализ Пирсона. Значимое статистическое различие регистрировали при p<0,05 [20].

Результаты

Общая характеристика больных на момент визита 1 представлена в табл. 1 и 2. Среди пациентов преобладали женщины пожилого возраста, страдающие артериальной гипертензией, у которых наблюдались умеренные когнитивные нарушения (результаты выполнения теста MoCA 25,1±2,1 балла), субклинически выраженная тревога/депрессия (значения по шкале HADS 8,4±1,4 балла), астения (значения по шкале ШАС 72,2±18,1 балла) и повышенный уровень дневной сонливости (значения по шкале ESS 8,4±2,1 балла). Общая выраженность изменений, по данным МРТ головного мозга, составила 1,4±0,2 балла, преимущественно за счет поражения перивентрикулярного белого вещества (ПВ-F 1,7±0,4 балла).

Таблица 1. Общая характеристика пациентов

Параметр

Значения

Средний возраст, годы

61,6 [56,9; 67,9]

мужчин, n/%

13/43,3

женщин, n/%

17/56,7

ИМТ

24,3 [20,6—27,2]

Курение в настоящее время или в прошлом, n/%

7/23,3

Основные жалобы, n/%

нарушение памяти

30/100

общая слабость

28/93,3

неустойчивость

13/43,3

нарушение сна

18/54,5

снижение настроения

23/69,7

нарушение памяти

Сопутствующие заболевания и состояния, n/%

артериальная гипертензия

30/100

ИБС

10/33,3

гиперхолестеринемия

12/40

Нейровизуализационные маркеры ХИМ

ОВЦИ, баллы

1,4±0,2

шкала Fazekas, баллы

ПВ-F

1,7±0,4

Г-F

1,2±0,3

лакуны, n/%

5/16,7

микрокровоизлияния, n/%

1/3,3

РПП, баллы

1,6±0,4

Примечание. ИМТ — индекс массы тела; ОВЦИ — общая выраженность цереброваскулярных изменений.

Таблица 2. Результаты лечения пациентов с ХИМ

Параметр

Визит 1

Визит 2

Визит 3

Визит 4

HADS, баллы, M±SD

8,4±1,4

8,1±2,1

7,2±2,0*

7,1±1,8*

ESS, баллы, M±SD

8,4±2,1

6,5±2,5*

6,4±1,6*

6,2±2,3*

ШАС, баллы, M±SD

72,2±18,1

60,2±9,8*

57,6±10,3*

52,3±9,3*

MoCA, баллы, M±SD

25,1±2,1

25,8±2,9

26,5±2,7*

26,6±1,4*

Улучшение по шкале GROC, n/%

незначительное

13/43,3

11/36,7

9/30

умеренное

16/53,3

15/50

16/53,3

выраженное

1/3,4

4/13,3

6/20

Примечание. Здесь и в табл. 3: * — p<0,05 по сравнению с исходным значением.

На фоне лечения наблюдалась отчетливая положительная динамика клинических проявлений ХИМ (см. табл. 2): выраженность аффективных нарушений достоверно снизилась на визите 3 (HADS — 7,2±2,0 балла, p<0,05) и на визите 9 составила 7,1±1,8 балла — отсутствие тревоги и/или депрессии. Показатели дневной сонливости также претерпели значимые изменения — уже на визите 2 имела место нормализация параметров дневного сна (ESS — 6,5±2,5 балла, p<0,05), с еще более выраженной положительной динамикой к визиту 4 (6,2±2,3 балла). Выраженность астенического синдрома, который выявлялся у пациентов в начале исследования (ШАС — 72,2±18,1 балла), достоверно уменьшился на визите 2 (60,2±9,8 балла, p<0,05) и сохранил тенденцию к снижению выраженности вплоть до визита 4. Следует также отметить значимое улучшение когнитивных функций, которое было зарегистрировано уже на визите 2 (MoCA, 26,5±2,7 балла, p<0,05), с сохранением положительной динамики на визите 4 (MoCA, 26,6±1,4 балла, p<0,05).

Обнаружено статистически значимое снижение концентрации в сыворотке крови маркеров нейровоспаления к визиту 4 по сравнению исходным уровнем (рис. 2, табл. 3). После построения множественной линейной регрессии было установлено, что показатель общей выраженности изменений головного мозга, по данным МРТ, оказался ассоциирован с уровнем содержания в крови S100B, но не ИЛ-1β (β=0,504, p=0,026, 95% ДИ 0,149—0,901. Также было установлено, что среди всех МРТ-маркеров ХИМ выраженность ПВ-F оказалось наиболее тесно связана с концентрацией в сыворотке крови S100B (β=0,562, p=0,035, 95% ДИ –0,024——0,820; табл. 4). Уровень содержания в сыворотке крови S100B тесно коррелировал с результатами тестирования по шкале MoCA, а ИЛ-1β — со значением по шкале ESS на визите 4 (рис. 3).

Рис. 2. Динамика изменения содержания белка S100B (а) и ИЛ-1β (б) в крови наблюдавшихся пациентов.

Таблица 3. Динамика концентрации белка S100B и ИЛ-1β в крови обследованных пациентов, M±SD

Параметр

Визит 1

Визит 4

p

S100B, мкг/л

0,223±0,076

0,207±0,075*

0,0001

ИЛ-1β, пг/мл

10,4±1,8

9,5±1,2*

0,0013

Таблица 4. Результаты анализа множественной линейной регрессии для оценки связи между нейровизуализационными маркерами ХИМ и биомаркерами нейровоспаления (S100B, ИЛ-1β)

Результат анализа МРТ

p

β-коэффициент (95% ДИ)

Связь с концентрацией S100B в крови

ПВ-F, диапазон значений 0—3

0,035

0,562 (–0,024—0,820)

Г-F, диапазон значений 0—3

0,623

0,107 (–0,520—0,696)

лакуны (1 — наличие, 0 — отсутствие)

0,833

0,051 (–0,444—0,576)

микрокровоизлияния (1 — наличие, 0 — отсутствие)

0,384

0,235 (–0,797—0,278)

РПП, диапазон значений 0—4

0,326

–0,211 (–0,744—0,282)

Связь с концентрацией Ил-1β в крови

ПВ-F, диапазон значений 0—3

0,095

0,382 (–0,071—0,675)

Г-F, диапазон значений 0—3

0,125

0,101 (–0,382—0,591)

лакуны (1 — наличие, 0 — отсутствие)

0,372

–0,241 (–0,619—0,321)

микрокровоизлияния (1 — наличие, 0 — отсутствие)

0,702

0,091 (–0,347—0,551)

Рис. 3. Результаты корреляционного анализа взаимосвязи между содержанием S100B в крови и значениями по опроснику MoCA (а), а также содержанием ИЛ-1β в плазме крови и значениями по опроснику ESS (б) у наблюдавшихся пациентов.

Анализ результатов оценки по шкале GRC продемонстрировал, что на момент завершения исследования значимо большая часть пациентов расценили улучшение от проведенной терапии как «умеренное» и «выраженное» (n=22, 73,3%). Применение Кавинтона Форте не сопровождалось развитием каких-либо нежелательных явлений, которые бы явились причиной отказа от дальнейшего лечения, что свидетельствует о благоприятном профиле безопасности препарата.

Обсуждение

В настоящем исследовании приняли участие 30 пациентов с верифицированным, в том числе по данным МРТ, диагнозом ХИМ, у которых наблюдалась типичная клиническая картина заболевания — сочетание когнитивных и аффективных расстройств с астеническим синдромом и нарушением сна. Все пациенты в течение 3 мес получали винпоцетин по 30 мг/сут, а оценка эффективности проводимой терапии производилась с учетом анализа динамики результатов нейропсихологического тестирования и концентрации биомаркеров нейровоспаления (S100B, Ил-1β) в сыворотке крови. Исследование продемонстрировало благоприятный профиль безопасности препарата, что подтверждает данные, опубликованные еще в 2003 г. в Кохрановском обзоре [21].

На фоне проводимого лечения состояние пациентов прогрессирующе улучшалось, в то время как содержание S100B и ИЛ-1β в плазме крови значимо снизилось по прошествии 3 мес терапии. Была обнаружена связь между уровнем белка S100B в сыворотке крови и общей выраженностью цереброваскулярных изменений по данным МРТ, особенно с поражением ПВ-F. Концентрация в сыворотке крови белка S100B к моменту завершения исследования коррелировала с результатом выполнения теста MoCA, а ИЛ-1β — с результатами оценки по шкале ESS.

Позитивное влияние терапии винпоцетином на состояние пациентов с ХИМ было доказано ранее в серии клинических исследований, проведенных как в нашей стране [22—24], так и за рубежом [25, 26]. Большинство авторов связывали позитивный эффект винпоцетина с его влиянием на микроциркуляцию за счет специфического подавления активности фосфодиэстеразы 1A или фосфодиэстеразы 1C [27]. Результаты исследований последних лет свидетельствуют о том, что еще одной мишенью действия винпоцетина является нейровоспаление. Эффект винпоцетина в этом отношении реализуется через ингибирование NF-κB-зависимого воспалительного ответа, что было доказано в исследованиях in vitro, проведенных на культуре эндотелиоцитов, гладкомышечных клеток сосудистой стенки, макрофагов и моноцитов, [28], нейтрофилов [29], эпителиальных клеток [30], клеток микроглии головного мозга [31], а также плазмоцитоидных дендритных клеток [32]. Изучение влияния винпоцетина на экспрессию белка S100B и ИЛ-1β in vivo ранее не проводилось.

Снижение концентрации S100B в крови пациентов с ХИМ на фоне приема винпоцетина, выявленное в нашем исследовании, подтверждает способность препарата подавлять нейровоспаление в ЦНС у больных с ХИМ. Представляется вероятным, что этот механизм также связан с ингибированием транскрипционной активности NF-kB. В ряде исследований было показано, что высокая внеклеточная концентрация белка S100B через NF-kB-зависимый путь стимулирует образование в астроцитах индуцибильной синтетазы оксида азота (NO). Последняя индуцирует NO-зависимую гибель нейронов и глии, способствуя глутамат-опосредованной гибели нейронов, усилению экспрессии ЦОГ-2 в микроглии, увеличению продукции активных форм кислорода в клетках головного мозга и остановке клеточного цикла (см. рис. 1) [33, 34]. Следует отметить, что увеличение продукции белка S100B при ХИМ отмечалось и ранее [35, 36]. Также было показано, что концентрация S100B в сыворотке крови коррелировала со снижением когнитивных функций, которые оценивались по опроснику MoCA у пациентов с гиперинтенсивностью перивентрикулярного белого вещества [35].

Влияние экспрессии ИЛ-1β на течение цереброваскулярной патологии также изучалось ранее [37—40]. Было показано, что повышение концентрации ИЛ-1β в крови является независимым фактором риска развития ХИМ [41]. Известно, что активация ИЛ-1β в клетках микроглии происходит после завершения формирования инфламмасомы NLRP3 через каспаза-1-опосредованный путь, т.е. на более поздних стадиях нейровоспаления по сравнению с белком S100B. Показана роль ИЛ-1β в увеличении размера зоны инфаркта головного мозга за счет усиления аттракции нейтрофилов и их инфильтрации очага некроза [37], а также в повышении проницаемости сосудов микроциркуляторного русла головного мозга [42]. Кроме того, экспрессия ИЛ-1β может способствовать эскалации нейровоспаления в головном мозге, поскольку внеклеточный эффект белка связан с активацией NF-κB, что впоследствии повышает экспрессию гена NLRP3, т.е. наблюдается замыкание порочного круга нейровоспаления [43]. В нашем исследовании не выявлено значимой корреляции уровня ИЛ-1β в сыворотке крови и выраженности поражения головного мозга по данным МРТ, в то время как ряд исследователей утверждают, что такая связь существует, однако наблюдается лишь при оценке прогрессирования ХИМ с помощью МРТ головы в динамике (по прошествии 10 последовательных месяцев наблюдения) [44].

Другим интересным результатом нашей работы стало обнаружение корреляционной связи между уровнем экспрессии ИЛ-1β и выраженностью дневной сонливости у пациентов с ХИМ. На самом деле это не удивительно, поскольку влияние ИЛ-1β на нормальный сон было известно ранее. Введение ИЛ-1β в кровь здоровым добровольцам вызывает у них сонливость, а также ряд симптомов, обычно связанных с плохим ночным сном: раздражительность, повышенную чувствительность к внешним сенсорным стимулам, астению и расстройство внимания [45, 46]. Предполагается, что особо важную роль ИЛ-1β играет в фазе медленного сна [47]. Применение винпоцетина достоверно снижает уровень дневной сонливости у пациентов с ХИМ, что было продемонстрировано и в предыдущих исследованиях [48]. Можно предположить, что механизм действия препарата связан в том числе с ингибированием экспрессии ИЛ-1β.

Подводя итог анализу связи уровней маркеров нейровоспаления в периферической крови и выраженности клинических проявлений заболевания у пациентов с ХИМ, следует отметить, что определение концентрации белка S100B и ИЛ-1β показано для мониторирования эффективности лечения у данной категории больных.

Заключение

Несмотря на широкую распространенность ХИМ, многие механизмы развития данной патологии, в значительно степени объясняющие ее течение и клинические проявления, до настоящего времени находятся в стадии изучения. Одним из возможных патогенетических звеньев ХИМ, имеющих особое значение на ранних стадиях заболевания, является нейровоспаление. Среди различных вариантов верификации нейровоспаления in vivo перспективным представляется исследование его биомаркеров в периферической крови. В проведенном исследовании было показано, что определение в крови белков S100B и ИЛ-1β может быть надежным способом оценки нейровоспаления у пациентов с ХИМ, результаты которого соответствуют данным нейровизуализации и нейропсихологического тестирования. Применение винпоцетина для лечения пациентов с ХИМ дает возможность не только значительно уменьшить выраженность клинических проявлений заболевания, таких как когнитивные нарушения и расстройства сна, аффективные расстройства, астения, но и уменьшить экспрессию маркеров нейровоспаления, что позволяет рассматривать его не только как вазоактивный препарат и нейропротектор, но и как ингибитор нейровоспаления с перспективой его применения при широком спектре нейродегенеративных заболеваний, в основе которых лежит данный патофизиологический механизм.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Kinney JW, Bemiller SM, Murtishaw AS, et al. Inflammation as a central mechanism in Alzheimer’s disease. Alzheimers Dement. 2018;4:575-590.  https://doi.org/10.1016/j.trci.2018.06.014
  2. Edison P, Brooks DJ. Role of neuroinflammation in the trajectory of Alzheimer’s disease and in vivo quantification using PET. J Alzheimers Dis. 2018;64:339-351.  https://doi.org/10.3233/JAD-179929
  3. Bergsbaken T, Fink SL, Cookson T. Pyroptosis: host cell death and inflammation. Nat Rev Microbiol. 2009;7:99-109.  https://doi.org/10.1038/nrmicro2070
  4. Kreisl WC, Kim MJ, Coughlin J, et al. PET imaging of neuroinflammation in neurological disorders. Lancet Neurol. 2020;19(11):940-950.  https://doi.org/10.1016/S1474-4422(20)30346-X
  5. Zhao YY, Yu JZ, Li QY, et al. TSPO-specific ligand vinpocetine exerts a neuroprotective effect by suppressing microglial inflammation. Neuron Glia Biol. 2011;7:187-197.  https://doi.org/10.1017/S1740925X12000129
  6. Langeh U, Singh S. Targeting S100B Protein as a Surrogate Biomarker and its Role in Various Neurological Disorders. Curr Neuropharmacol. 2021;19(2):265-277.  https://doi.org/10.2174/1570159X18666200729100427
  7. Lyra e Silva NM, Gonçalves RA, Pascoal TA, et al. Pro-inflammatory interleukin-6 signaling links cognitive impairments and peripheral metabolic alterations in Alzheimer’s disease. Transl Psychiatry. 2021;11:251-255.  https://doi.org/10.1038/s41398-021-01349-z
  8. Baudier J, Mochly-Rosen D, Newton A, et al. Comparison of S100b protein with calmodulin: interactions with melittin and microtubule-associated tau proteins and inhibition of phosphorylation of tau proteins by protein kinase C. Biochemistry. 1987;26(10):2886-2893.
  9. Mendiola AS, Cardona AE. The IL-1β phenomena in neuroinflammatory diseases. J Neural Transm. 2018;125(5):781-795.  https://doi.org/10.1007/s00702-017-1732-9
  10. Bauer S, Kerr BJ, Patterson PH. The neuropoietic cytokine family in development, plasticity, disease and injury. Nat Rev Neurosci. 2007;8:221-232. 
  11. Wardlaw JM, Smith EE, Biessels GJ, et al. nEuroimaging STIRVE. Neuroimaging standards for research into small vessel disease and its contribution to ageing and neurodegeneration. Lancet Neurol. 2013;12(8):822-838.  https://doi.org/10.1016/S1474-4422(13)70124-8
  12. Fazekas F, Kleinert R, Offenbacher H, et al. Pathologic correlates of incidental MRI white matter signal hyperintensities. Neurology. 1993;43(9):1683-1689. https://doi.org/10.1212/wnl.43.9.1683
  13. Doubal FN, MacLullich AM, Ferguson KJ, et al. Enlarged perivascular spaces on MRI are a feature of cerebral small vessel disease. Stroke. 2010;41(3):450-454.  https://doi.org/10.1161/STROKEAHA.109.564914
  14. Lau KK, Li L, Schulz U, et al. Total small vessel disease score and risk of recurrent stroke: validation in 2 large cohorts. Neurology. 2017;88(24):2260-2267. https://doi.org/10.1212/WNL.0000000000004042
  15. Nasreddine ZS, Phillips NA, Bédirian V, et al. The Montreal Cognitive Assessment, MoCA: A Brief Screening Tool For Mild Cognitive Impairment. J Am Geriatr Soc. 2005;53(4):695-699.  https://doi.org/10.1111/j.1532-5415.2005.53221.x
  16. Морозова М.А., Потанин С.С., Бениашвили А.Г. и др. Валидация русскоязычной версии Госпитальной шкалы тревоги и депрессии в общей популяции. Профилактическая медицина. 2023;26(4):7-14.  https://doi.org/10.17116/profmed2023260417
  17. Johns MW. A new method for measuring daytime sleepiness: the Epworth sleepiness scale. Sleep. 1991;4:540-545. 
  18. Рогов Е.И. Настольная книга практического психолога. Учебное пособие. М.: ВЛАДОС; 1999.
  19. Jaeschke R, Singer J, Guyatt G. Measurement of health status: ascertaining the minimal clinically important difference. Control Clin Trials. 1988;10:407-415.  https://doi.org/10.1016/0197-2456(89)90005-6
  20. Реброва О.Т. Статистический анализ медицинских данных. Применение пакета прикладных программ STATISTICA. М.: МедиаСфера; 2002.
  21. Szatmari S, Whitehouse P. Vinpocetine for cognitive impairment and dementia. Cochrane Database Syst Rev. 2003;(1):CD003119.
  22. Скоромец А.А., Алиев К.Т., Лалаян Т.В. и др. Когнитивные функции и лечение их нарушений при хронической недостаточности кровообращения в вертебрально-базилярной системе у пожилых. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2013;113(4):18-24. 
  23. Живолупов С.А., Самарцев И.Н., Яковлев Е.В. и др. Эффективность винпоцетина (Кавинтона Комфорте) в лечении головокружения у пациентов с дисциркуляторной энцефалопатией и его влияние на концентрацию нейротрофического фактора мозга (BDNF) в плазме. Клиническая фармакология и терапия. 2016;(1):48-53. 
  24. Самарцев И.Н., Живолупов С.А., Бутакова Ю.С. и др. Эффективность длительного приема винпоцетина при лечении головокружения и ассоциированных статодинамических нарушений у пациентов с хронической недостаточностью мозгового кровообращения (исследование ЭДЕЛЬВЕЙС). Неврология, нейропсихиатрия, психосоматика. 2019;11(1):36-47. 
  25. Zhang W, Huang Y, Li Y, et al. Efficacy and Safety of Vinpocetine as Part of Treatment for Acute Cerebral Infarction: A Randomized, Open-Label, Controlled, Multicenter CAVIN (Chinese Assessment for Vinpocetine in Neurology) Trial. Clin Drug Invest. 2016;36:697-704.  https://doi.org/10.1007/s40261-016-0415-x
  26. Vas A, Gulyas B, Szabo Z, et al. Clinical and non-clinical investigations using positron emission tomography, near infrared spectroscopy and transcranial Doppler methods on the neuroprotective drug vinpocetine: a summary of evidences. J Neurol Sci. 2002;203-204:259-262.  https://doi.org/10.1016/s0022-510x(02)00301-5
  27. Nagel DJ, Aizawa T, Jeon KI, et al. Role of nuclear Ca2+/calmodulin-stimulated phosphodiesterase 1A in vascular smooth muscle cell growth and survival. Circ Res. 2006;98(7):777-784.  https://doi.org/10.1161/01.RES.0000215576.27615.fd
  28. Jeon KI, Xu X, Aizawa T, et al. Vinpocetine inhibits NF-kappaB-dependent inflammation via an IKK-dependent but PDE-independent mechanism. Proc Nat Acad Sci. 2010;107(45):9795-9800.
  29. Ruiz-Miyazawa KW, Pinho-Ribeiro FA, Zarpelon AC, et al. Vinpocetine reduces lipopolysaccharide-induced inflammatory pain and neutrophil recruitment in mice by targeting oxidative stress, cytokines and NF-kappaB. Chem Biol Interact. 2015;237(7):9-17.  https://doi.org/10.1016/j.cbi.2015.05.007
  30. Liu RT, Wang A, To E, et al. Vinpocetine inhibits amyloid-beta induced activation of NF-kappaB, NLRP3 inflammasome and cytokine production in retinal pigment epithelial cells. Exp Eye Res. 2014;127(34):49-58.  https://doi.org/10.1016/j.exer.2014.07.003
  31. Zhao YY, Yu JZ, Li QY, et al. TSPO-specific ligand vinpocetine exerts a neuroprotective effect by suppressing microglial inflammation. Neuron Glia Biol. 2011;34(7):187-197.  https://doi.org/10.1017/S1740925X12000129
  32. Feng X, Wang Y, Hao Y, et al. Vinpocetine inhibited the CpG oligodeoxynucleotide-induced immune response in plasmacytoid dendritic cells. Imm Invest. 2013;46(6):263-273.  https://doi.org/10.1080/08820139.2016.1248561
  33. Lam AG, Koppal T, Akama KT, et al. Mechanism of glial activation by S100B: involvement of the transcription factor NFkappaB. Neurobiol Aging. 2001;22(5):765-772.  https://doi.org/10.1016/S0197-4580(01)00233-0
  34. Hu J, Castets F, Guevara J, Van Eldik L. S100 stimulates inducible nitric oxide synthase activity, and mRNA levels in rat cortical astrocytes. J Biol Chem. 1996;271(6):2543-2547. https://doi.org/10.1074/jbc.271.5.2543
  35. Gao Q, Fan Y, Mu LY, et al. S100B and ADMA in cerebral small vessel disease and cognitive dysfunction. J Neurol Sci. 2015;354(1-2):27-32.  https://doi.org/10.1016/j.jns.2015.04.031
  36. Усманова Д.Д., Маджидова Е.Н. Участие нейроспецифического белка S100 и основного белка миелина в патогенезе развития хронической ишемии мозга. Сибирское медицинское обозрение. 2017;8(1):60-63.  https://doi.org/10.20333/2500136-2017-1-60-63
  37. Yamasaki Y, Matsuura N, Shozuhara H, et al. Interleukin-1 as a pathogenetic mediator of ischemic brain damage in rats. Stroke. 1995;26(7):676-681.  https://doi.org/10.1161/01.STR.26.4.676
  38. Wang H, Chen H, Jin J, et al. Inhibition of the NLRP3 inflammasome reduces brain edema and regulates the distribution of aquaporin-4 after cerebral ischaemia-reperfusion. Life Sci. 2020;251:117638. https://doi.org/10.1016/j.lfs.2020.117638
  39. Li J, Liu Z, Wang L, et al. Thousand and one kinase 1 protects MCAO503 induced cerebral ischemic stroke in rats by decreasing apoptosis and pro-inflammatory factors. Biosci Rep. 2019;39:BSR20190749. https://doi.org/10.1042/BSR20190749
  40. Friedlander RM, Gagliardini V, Hara H, et al. Expression of a Dominant Negative Mutant of Interleukin-1β Converting Enzyme in Transgenic Mice Prevents Neuronal Cell Death Induced by Trophic Factor Withdrawal and Ischemic Brain Injury. J Exp Med. 1997;185:933-940.  https://doi.org/10.1084/jem.185.5.933
  41. Ma C, Yang L, Wang L. Correlation of Serum C-Peptide, Soluble Intercellular Adhesion Molecule-1, and NLRP3 Inflammasome-Related Inflammatory Factor Interleukin-1β after Brain Magnetic Resonance Imaging Examination with Cerebral Small Vessel Disease. Contrast Media Mol Imaging. 2022;2022:4379847. https://doi.org/10.1155/2022/4379847
  42. Zhang Y, Li X, Qiao S, et al. Occludin degradation makes brain microvascular endothelial cells more vulnerable to reperfusion injury in vitro. J Neurochem. 2021;156(7):352-366.  https://doi.org/10.1111/jnc.15102
  43. Che Mohd Nassir CMN, Damodaran T, Ismail NI, et al. The NLRP3 Inflammasome in Age-Related Cerebral Small Vessel Disease Manifestations: Untying the Innate Immune Response Connection. Life (Basel). 2023;13(1):216.  https://doi.org/10.3390/life13010216
  44. Noz MP, Ter Telgte A, Wiegertjes K, et al. Pro-inflammatory Monocyte Phenotype During Acute Progression of Cerebral Small Vessel Disease. Front Cardiovasc Med. 2021;8:639361. https://doi.org/10.3389/fcvm.2021.639361
  45. Tringall G, Dello Russo C, Preziosi P, Navarra P. Interleukin-1 in the central nervous system: From physiology to pathology. Therapie. 2000;55:171-175. 
  46. Anisman H, Marali Z. Cytokines, stress and depressive illness: Brain-immune interactions. Ann Med. 2003;35(5):2-11. 
  47. Jewett KA, Krueger JM. Humoral sleep regulation; interleukin-1 and tumor necrosis factor. Vitam Horm. 2012;89(12):241-257.  https://doi.org/10.1016/B978-0-12-394623-2.00013-5
  48. Самарцев И.Н., Живолупов С.А., Ефимцев А.Ю., Пономарев В.В. Связь нейровизуализационных маркеров поражения головного мозга и выраженности постуральной неустойчивости у пациентов с хронической ишемией головного мозга (результаты открытого наблюдательного исследования НЕМАН). Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2022;122(7):66-73.  https://doi.org/10.17116/jnevro202212207166

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.