Орлов Ю.П.

ФГБОУ ВО «Омский государственный медицинский университет» Минздрава России

Бутров А.В.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»

Свиридов С.В.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Афанасьев В.В.

ФГБОУ ВО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова» Минздрава России

Сукцинаты в решении «кислородного парадокса» реперфузии

Авторы:

Орлов Ю.П., Бутров А.В., Свиридов С.В., Афанасьев В.В.

Подробнее об авторах

Прочитано: 2861 раз


Как цитировать:

Орлов Ю.П., Бутров А.В., Свиридов С.В., Афанасьев В.В. Сукцинаты в решении «кислородного парадокса» реперфузии. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2022;122(9):63‑69.
Orlov YP, Butrov AV, Sviridov SV, Afanasyev VV. Succinate salts in solving the «oxygen paradox» of reperfusion. S.S. Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry. 2022;122(9):63‑69. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/jnevro202212209163

Рекомендуем статьи по данной теме:
Ана­лиз при­чин поз­дней ди­аг­нос­ти­ки со­су­дис­той ми­ело­па­тии. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(9):117-123
Ста­ре­ние моз­га: мо­ле­ку­ляр­ные ми­ше­ни ге­роп­ро­тек­ции и стра­те­гии про­фи­лак­ти­ки. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(11):132-139
Про­фи­лак­ти­ка ре­пер­фу­зи­он­ных пов­реж­де­ний при опе­ра­ци­ях на сер­дце. Кар­ди­оло­гия и сер­деч­но-со­су­дис­тая хи­рур­гия. 2025;(4):471-477

Действующим стандартом лечения любого критического состояния является своевременное восстановление притока крови к ишемизированной области различных органов, что особенно актуально для расстройств мозгового кровообращения. В то время как реперфузия необходима для спасения зоны ишемии, восстановление кровотока парадоксальным образом повреждает популяцию ранее ишемизированных клеток — явление, которое получило название «смертельное повреждение ишемии-реперфузии».

Реперфузия — парадоксальная реакция тканей, которая проявляется в органах, лишенных кровотока в условиях дефицита кислорода, а после восстановления кровотока и реоксигенации тканей приобретает повреждающий характер и поэтому остается в центре внимания фундаментальных и клинических исследований на протяжении более 40 лет. Сегодня реперфузия рассматривается в контексте концепции трех сочетанных парадоксов: кислородного, кальциевого и водного. Впервые предположение о повреждающем действии реперфузии, в частности на сердечную мышцу, было высказано в середине прошлого века, и в течение продолжительного периода времени являлось предметом споров, главным образом из-за отсутствия обоснованных доказательств, свидетельствующих о прогрессировании повреждения тканей при восстановлении кровотока [1]. Задолго до появления тромболитической терапии было обнаружено, что восстановление кровоснабжения, которое требуется для спасения ранее ишемизированной ткани, может парадоксальным образом усугубить ее повреждение. Впервые такое предложение было озвучено R. Jennings и соавт. [2], но еще долго существование реперфузионного повреждения было предметом интенсивного обсуждения, причем некоторые исследователи предполагали, что реперфузия действует, усугубляя повреждение, уже полученное клетками, подвергшимися ишемии и гипоксии. В этом знаковом исследовании было отмечено, что реперфузия ускоряет развитие некроза миокарда, что, вероятно, в виде общебиологического феномена характерно для любой клеточной ткани и особенно опасно для головного мозга. Это привело к формированию точки зрения о том, что реперфузия не может рассматриваться исключительно как полезное событие, но сама по себе способна вызывать травму за счет включения цепи патофизиологических событий, прямо связанных с восстановлением кровоснабжения, которое не происходит в течение предыдущего ишемического периода. Как показали последующие исследования, гибель клеток может продолжаться до 3 сут после восстановления кровотока в ишемизированных тканях [3].

За последние 40 лет была проведена серия исследований с применением современных сложных экспериментальных методик. Полученные результаты продемонстрировали, что ишемия ухудшает АТФаз-зависимый (энергозависимый) транспорт ионов и нарушает регуляторные механизмы клеточного обмена, что может привести к лизису органелл и плазматических мембран. Кроме того, ряд работ показал множество модальностей клеточной смерти, которое обусловливает ишемия/реперфузия-индуцированную гибель клеток вследствие запрограммированных последовательных событий и может поддаваться фармакологическому вмешательству. Кроме того, реперфузия вызывает парадоксальные тканевые реакции, которые подпитывают синтез активных форм кислорода (АФК), что способствует связыванию провоспалительных иммуноцитов в ишемизированных тканях, эндоплазматическому напряжению ретикулума и развитию постишемического капиллярного стаза, что в свою очередь усиливает повреждение тканей. Существование реперфузионного повреждения тканей было подтверждено большим количеством исследований, и сегодня уже общепризнано, что многие осложнения в течение различных заболеваний неразрывно связаны с реперфузией.

Что же влияет на реперфузионное повреждение?

Во-первых, длительность фазы ишемии, так как результат реперфузии будет различен в зависимости от продолжительности ишемии. Так, продемонстрировано, что в начале длительной ишемии повреждение тканей вызвано ею как таковой, но с течением времени все бо`льшую роль играет именно реперфузионное повреждение, обусловленное нарушением порозности сосудистой стенки и формированием периваскулярного отека, вторично вызывающего ишемию тканей [4]. Также показано, что короткий период ишемии (около 5 мин) и реперфузия не только не проходят бесследно, но и оказывают протективное, или тренирующее действие, что подтверждает факт защитного и адаптационного эффектов гипоксии в развитии ишемии. В настоящее время этот феномен известен как ишемическое прекондиционирование [5]. Итак, ответ ткани на реперфузию бимодален и зависит от длительности ишемии, что необходимо учитывать при выборе методов и средств патогенетического лечения.

Во-вторых, особенности реперфузионного повреждения зависят от ткани, подвергшейся ишемии/реперфузии. В связи с наиболее активным метаболизмом, отсутствием запасов глюкозы и низким уровнем ферментов антиоксидантной системы наиболее чувствительным к ишемии/реперфузии является головной мозг [6]. Сердце — второй наиболее чувствительный к ишемии/реперфузии орган [7]. Третьим по чувствительности органом является почка, в которой изменения, обусловленные ишемией/реперфузией, могут отсутствовать даже после 30-минутной ишемии [8]. Сложнее ситуация с ишемией кишечника, так как верифицировать начало нарушения кровообращения трудно из-за стертой клинической картины. В экспериментах на животных было установлено, что изменения в стенке кишечника начинают регистрировать примерно с 30-й минуты ишемии [9]. Важно отметить, что интестинальная ишемия протекает на фоне активного участия микроорганизмов в воспалительном ответе на реперфузию (транслокация бактерий), в то время как в других органах, например в головном мозге, реперфузия связана с асептическим воспалением. Экспериментальные исследования показали, что деконтаминация кишечника уменьшает тяжесть реперфузионного повреждения [10].

В-третьих, на исход ишемии/реперфузии влияет состояние пациента. Например, возраст напрямую коррелирует с частотой возникновения заболеваний, сопряженных с ишемией/реперфузией (инфаркт миокарда, инсульт, остановка сердца и др.) [7].

Другие факторы (сопутствующие заболевания, употребление алкоголя, метаболический синдром и др.) также оказывают влияние на степень выраженности реперфузионного ответа, который зависит от резерва защитных механизмов, прежде всего адаптации организма к гипоксии и активности антиоксидантных систем. Следует отметить, что в эксперименте ишемию/реперфузию, как правило, изучают на молодых здоровых животных, что зачастую ведет к недооценке влияния образа жизни пациента и сопутствующих заболеваний на тяжесть реперфузионного повреждения. Именно поэтому так велик разрыв между многообещающими результатами фундаментальных исследований и неудачами в клинических испытаниях, которые объясняются парадоксами реперфузии.

Парадоксы реперфузии с позиций причинно-следственной связи

Результаты экспериментальных исследований показали, что митохондрии синтезируют большую часть АТФ-клетки путем окислительного фосфорилирования. Катаболизм углеводов (гликолиз), липидов (β-окисление жирных кислот) и белков (глюкогенные и кетогенные пути) дают продукты, которые поступают в цикл Кребса в митохондриальном матриксе. Промежуточные продукты, образующиеся в ходе реакций окисления в цикле Кребса, как бы «жертвуют» свои восстановительные эквиваленты (протоны H+ и электроны e) NAD и FADH для образования NADH и FADH2+. Как видно на рис. 1, в строме (внутреннее пространство) митохондрии постоянно функционирует цикл Кребса. Образующийся при этом восстановленный никотинамидадениндинуклеотид (NADH) взаимодействует с мембранным первым (I) дыхательным комплексом и окисляется до NAD+. Электроны с NADH передаются на плавающий в мембране липидорастворимый переносчик электронов (кофермент Q — убихинон). В ходе реакции из стромы в межмембранное пространство перекачиваются четыре протона H+ [11].

Рис. 1. Митохондриальная дыхательная цепь.

Адаптировано по D. Granger и соавт. [11]. Пояснения в тексте.

Второй (II) дыхательный комплекс, который имеет в своей структуре фермент сукцинатдегидрогеназу, окисляет образовавшийся в цикле Кребса сукцинат до фумарата и тоже переносит электроны на убихинон [12]. Третий (III) комплекс переносит электроны с убихинона на водорастворимый переносчик цитохром C (Cyt C), который плавает в межмембранном пространстве и при этом перекачивает из стромы в межмембранное пространство шесть протонов H+. Четвертый (IV) комплекс переносит электроны с цитохрома C на кислород. Кислород восстанавливается до воды и в процессе реакции из стромы в межмембранное пространство переносит еще четыре протона H+. В результате в строме оказывается мало протонов, а в межмембранном пространстве, наоборот, их оказывается много, т.е. возникает протонный градиент (мембранный потенциал, ΔΨ). Белковый комплекс АТФ-синтаза (часто его рассматривают в качестве пятого дыхательного комплекса) использует энергию этого градиента для синтеза АТФ. В связи с этим потеря ΔΨ имеет серьезные биоэнергетические последствия [12].

Точка зрения о том, что ишемия представляет собой пусковой механизм, приводящий к гипоксии, на сегодняшний день общепризнана, поэтому последующие события должны рассматриваться с учетом гипоксии и расстройств, происходящих в дыхательной цепи митохондрий. В ишемической фазе, по мнению ряда исследователей, аноксическое повреждение начинается с уменьшения митохондриальной продукции энергии в виде АТФ [13]. Гипоксия имеет свои временные рамки, и, безусловно, позволяет клетке включить механизмы адаптации, позволяющие обеспечить энергетический баланс в определенный период времени, т.е. выживать в условиях гипоксии. Однако мозг не обладает энергетическим резервом, его хватит на 80 с [14, 15]. В этой ситуации синтез HIF-1 начинается по сигналу от сукцинат-зависимого рецептора GPR91 [16]. Когда клетки находятся в состоянии гипоксии и активируется HIF-1, он распознает специальную последовательность в регуляторном домене генов-мишеней и связывается с ней. HIF-1 активирует набор генов, кодирующих ферменты, ответственные за гликолиз (9 из 12 гликолитических ферментов), и, наоборот, другой набор генов, который подавляет окислительное фосфорилирование для облегчения метаболического перепрограммирования. При этом происходит торможение I участка (НАД+) дыхательной цепи митохондрий, активируется ряд шунтов окисления, сопряженных с образованием в цикле Кребса сукцината (из малата, фумарата и α-кетоглутарата), так как более эффективный синтез сукцинатзависимой энергии включается на II участке дыхательной цепи митохондрий и происходит стабилизация HIF-1 [17]. Таким образом, суть «кислородного парадокса» заключается в активной продукции токсичных АФК в период реперфузии и реоксигенации, так как дыхательная цепь митохондрий, обеспечивающая потребление кислорода и синтез АТФ, не может адекватно утилизировать кислород вследствие потери электронов. Поэтому реперфузионное повреждение является комбинацией ишемического и собственно реперфузионного повреждения, проявляющегося митохондриальной дисфункцией [18].

Гипоксия, как и любой стрессогенный фактор, приводит к выбросу адренергических гормонов-медиаторов, которые вызывают мощную активацию дыхательной цепи, но при значительно меньшей потребности в кислороде (это происходит в условиях гипоксии!). Таким образом возникает своеобразная цепная реакция, при которой нейрональный и экстранейрональный выбросы катехоламинов в органы и ткани стимулируют процесс образования янтарной кислоты, которая в свою очередь активирует синтез адреналина и норадреналина [19, 20].

Функционирование механизма метаболического перепрограммирования ограничено во времени. Он представляет собой способ выживания в определенный период в условиях гипоксии при критических состояниях. Переход от обратимого к необратимому повреждению ткани во время ишемии является следствием клеточных событий, инициированных вызванным ишемией несоответствием между поступлением кислорода в клетку и потребностью в нем. Эти вредоносные последствия включают (но не ограничиваются ими) результирующий переход от аэробного метаболизма к анаэробному гликолизу и последующую неспособность генерировать достаточное количество АТФ для поддержания ионного гомеостаза и целостности митохондриальных мембран.

Активацию сукцинатного окисления в этих условиях следует рассматривать как эволюционно сформировавшийся срочный компенсаторный механизм, который встречается во всех тканях (и в головном мозге, в частности), при любой форме недостатка кислорода и обеспечивает сохранение аэробного производства энергии во время ранних нарушений кислородного гомеостаза и в период реперфузии [21, 22]. Накопление сукцината в период ишемии зависит от ее длительности, но окисление сукцината в период реперфузии более быстротечно и обусловлено гипероксией и ускорением работы дыхательной цепи за счет возрастающей активности комплекса II, в котором участвует сукцинатдегидрогеназа [12, 13].

Повышение активности функционирования цикла Кребса с усиленной продукцией α-кетоглутарата, малата и фумарата обеспечивает накопление сукцината, что обеспечивает улучшение энергетического обмена в период после гипоксии [23]. Таким образом, в период ишемии сукцинат как не востребованный в условиях гипоксии субстрат накапливается в тканях (в клетке и внутри митохондрий), запас его может быть использован в период реперфузии и реоксигенации, и в этой ситуации работа цикла Кребса направлена на синтез сукцината (рис. 2).

Рис. 2. Разворот цикла Кребса, или «монополизация» дыхательной цепи митохондрий в период ишемии.

Пояснения в тексте.

По некоторым данным, сукцинат образуется во время катаболизма аспартата и глутамата, и этот путь может продуцировать некоторое количество АТФ через сукцинаттиокиназу, обеспечивая фосфорилирование субстрата [24]. Восстановление фумарата до сукцината, опосредованное окислением NADH через комплекс I, убихинон и комплекс II, может помочь поддерживать ΔΨ во время ишемии. Следует также отметить резкое снижение уровня сукцината, наблюдаемое во время ранней реперфузии [22], что связано с его быстрым вымыванием из тканей в течение 1—2 мин реперфузии.

Таким образом, клетки реагируют и на снижение уровня кислорода путем активации стресс-ответного сигнала от сукцинатзависимого рецептора GPR91, который активирует HIF-1 для адаптации и последующего выживания в условиях гипоксии. Клетки, находящиеся в условиях отсутствия кислорода, в отличие от пребывающих в состоянии гипоксии, характеризуются значительным снижением потребления кислорода и синтеза АТФ и погибают в течение 48 ч, в то время как в условиях гипоксии клетки продолжают выживать и делиться, так как дисфункция митохондриального комплекса I снижает поток электронов через дыхательную цепь, смещает метаболизм в сторону гликолиза, вызывает накопление лактата и ограничивает выработку АТФ. Показано, что 2/3 накопленного в период ишемии сукцината локализуются внеклеточно, а оставшаяся 1/3 — метаболизируется во время ранней реперфузии, что и является защитным эффектом в период реоксигенации [23].

Детали реперфузии

Что же происходит при реперфузии и в бо`льшей степени при реоксигенации и в чем суть происходящих событий? Митохондрии являются как источниками, так и мишенями для АФК. Они участвуют в инициации и прогрессировании ишемии и последующего реперфузионного повреждения, связывающего окислительный стресс, воспаление и гибель клеток. Генерация АФК начинается еще во время ишемии, и в этих условиях HIF-1 опосредует переход от окислительного метаболизма к гликолизу, уменьшая тем самым выработку митохондриальных окислителей. При этом ослабляется митохондриальный путь синтеза АФК, что позволяет избежать гибели клеток. Нарушение переноса электронов и энергетического обмена, а также изменение клеточного окислительно-восстановительного потенциала вследствие образования АФК инициируют события, приводящие к апоптозу [12, 13, 22].

Значительное количество АФК образуется на I и III комплексах дыхательной цепи именно во время реперфузии, и чрезмерное накопление АФК в клетках является одним из основных повреждающих механизмов, связанных с окислительной модификацией белков, липидов и митохондриальной ДНК. В период поступления большого количества кислорода в дыхательную цепь митохондрий включается новый адаптационный механизм, исключающий активный синтез АФК путем быстрого окисления сукцината на II комплексе дыхательной цепи митохондрий. Таким образом, устранение избыточного АФК из клеток и подавление окислительного стресса могут способствовать выживанию клеток и улучшению исхода реперфузионного периода [12, 13, 22].

В нескольких точках (рис. 3) дыхательной цепи (особенно в комплексах I и III) существует потенциал для утечки электронов и уменьшения потребления O2 из-за синтеза супероксида (O2–), который утилизируется супероксиддисмутазой до перекиси водорода (H2O2), в свою очередь устраняемой каталазой, миелопероксидазой и глутатионпероксидазой. В условиях гипероксии и реоксигенации комплекс II возвращает избыток электронов через комплекс I путем обратного переноса электронов (RET), обеспечивая энергией расщепление продуктов (O2– и H2O2) одноэлектронного окисления O2. RET — энергетический процесс, посредством которого электроны, входящие в комплекс II (путем окисления сукцината), достигают коэнзима Q и могут двигаться вперед к комплексу III обычным путем. Рост концентрации кислорода в период реоксигенации потенцирует активность сукцинатдегидрогеназы, потребляющей сукцинат. При этом накопленный в период ишемии сукцинат быстро, в течение нескольких минут, окисляется в условиях избытка кислорода, но при этом сукцинатдегидрогеназа активно пропускает поток протонов и электронов на дыхательную цепь, минуя NAD-зависимое звено (I комплекс дыхательной цепи митохондрий) (см. рис. 3) [12].

Рис. 3. Производство АФК электронной транспортной цепью митохондрий: роль ∆ψ.

Пунктиром показан реверсный путь электронов при реоксигенации, сплошной линией — привычный путь электронов при нормоксии.

Адаптировано по D. Granger и соавт. [11].

Таким образом, в результате активности сукцинатдегидрогеназы и продукции сукцината за счет разворота цикла Кребса в сторону синтеза сукцината (см. рис. 2) на внутренней мембране оказывается много протонов, а в межмембранном пространстве их, наоборот, мало. Это и позволяет восстановить достаточный уровень ΔΨ, потерянный при гипоксии, но необходимый для ресинтеза АТФ в условиях реоксигенации [25]. В данном случае это природный механизм, заложенный в процессе эволюции для устранения реоксигенации после периода дефицита кислорода. Достижение равновесия, аналогичного таковому в период нормоксии, может быть обеспечено увеличением количества сукцината за счет его дополнительного введения в период реперфузии (рис. 4).

Рис. 4. Разница в соотношении кислорода и сукцината в различные периоды ишемии/реперфузии.

Несомненно, необходимы дальнейшие фундаментальные исследования для выявления потенциальных синергетических подходов и описания основных молекулярных механизмов действия сукцината, но тем не менее всем знакомо выражение «улучшение через ухудшение», что можно отнести к синдрому ишемии/реперфузии.

Подтверждение этой гипотезы можно найти в литературе, из которой можно сделать вывод, что механизм действия сукцината характерен для всех тканей и клеток, и это можно рассматривать как общебиологический феномен. Например, фокальное введение сукцината пациентам с черепно-мозговой травмой улучшило энергетический метаболизм, о чем свидетельствует снижение соотношения лактат/пируват. Авторы отмечают, что сукцинат заслуживает дальнейшего изучения при терапии черепно-мозговой травмы [26]. Недавно впервые было показано, что введение сукцината после ишемии задних конечностей у мышей приводит к более раннему восстановлению перфузии крови и самое главное к лучшему и более раннему функциональному восстановлению предварительно ишемизированной конечности [24]. На фоне введения сукцината ангиогенная активация достигла своего пика уже на 4-й день после острой ишемии у мышей, получавших сукцинат, и не ранее 8-го дня у мышей, не получавших сукцинат. Это привело к более ранней реваскуляризации конечностей, что, как известно, в значительной степени связано с восстановлением сократительной функции мышц [24]. Таким образом, использование сукцината может представлять перспективный новый подход к профилактике реперфузионных повреждений в условиях широкого спектра патологии.

Заключение

Сегодня можно констатировать, что произошел рост интереса к сигнальной способности энергетических метаболитов. Ярким примером является сукцинат, субстрат цикла Кребса, архетипический дыхательный субстрат, функции которого выходят далеко за рамки производства энергии, обладающий свойствами внутриклеточной и внеклеточной сигнальной молекулы. Новые данные подтверждают ключевую роль сукцината в метаболических процессах, связанных с управлением продукции энергии. Сукцинат среди всех метаболитов цикла Кребса выделяется вследствие вовлечения в многочисленные метаболические процессы, резких изменений концентрации и избирательного высвобождения в клетках. Сукцинат эволюционировал как сигнальная молекула, потому что его концентрация отражает окислительно-восстановительный потенциал и состояние внутренней мембраны митохондрий и объединяет три биоэнергетических параметра: митохондриальное поступление электронов, напряжение кислорода и потребность в АТФ. Безусловно, его синтез и потребление играют ведущую роль в кислородном гомеостазе, так как сукцинат обеспечивает кислородное равновесие в условиях гипоксии и гипероксии при реперфузии. Это позволяет рассматривать его в качестве центрального биоэнергетического вектора от митохондрий к остальной части клетки.

Результаты анализа приведенных публикаций позволяют сделать ряд выводов. Реперфузионное повреждение, индуцируемое активацией синтеза АФК, является результатом процесса реоксигенации в условиях снижения эффективности механизма адаптации к гипоксии в раннем периоде ишемии. Реперфузионные повреждения клеточных структур, в первую очередь митохондриальная дисфункция эндотелиоцитов, могут рассматриваться как метаболический энергетический кризис, разрешение которого может быть достигнуто путем использования сукцинатов, позволяющих реализовать восстановление митохондриальных комплексов эндотелиоцитов за счет стимулирования метаболических процессов и ангиогенеза капиллярного русла.

Использование сукцинатов в раннем периоде реперфузии свидетельствует о перспективе их широкого применения практически при всех критических состояниях, протекающих в условиях ишемии и последующего восстановления микроциркуляции. Реперфузия и реоксигенация могут быть рассмотрены как общебиологический феномен, характеризующий единый механизм поддержания кислородного гомеостаза в различных клеточных структурах и тканях в период восстановления кровотока в микроциркуляторном русле.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Jennings RB. Historical perspective on the pathology of myocardial ischemia/reperfusion injury. Circ Res. 2013;113:428-438. 
  2. Jennings RB, Sommers HM, Smyth GA, et al. Myocardial necrosis induced by temporary occlusion of a coronary artery in the dog. Arch Pathol. 1960;70:68-78. 
  3. Kalogeris T, Baines ChP, Krenz M, et al. Ischemia/Reperfusion. Compr Physiol. 2016;7(1):113-170. 
  4. Grangera DN, Kvietys PR. Reperfusion Injury and Reactive Oxygen Species: The Evolution of a Concept. Redox Biol. 2015;6:524-551. 
  5. Billah M, Ridiandries A, Allahwala U, et al. Circulating Mediators of Remote Ischemic Preconditioning: Search for the Missing Link Between Non-Lethal Ischemia and Cardioprotection. Oncotarget. 2019;10(2):216-244. 
  6. Lee JC, Park JH, Kim IH, et al. Neuroprotection of Ischemic Preconditioning is Mediated by Thioredoxin 2 in the Hippocampal CA1 Region Following a Subsequent Transient Cerebral Ischemia. Brain Pathol. 2017;27(3):276-291. 
  7. Shaha VK, Shalia KK. Reperfusing the Myocardium — a Damocles Sword. Indian Heart J. 2018;70(3):433-438. 
  8. Bagetti-Filho HJ, Sampaio FJ, Marques RG, et al. Different from Renal Artery only Clamping, Artery and Vein Clamping Causes a Significant Reduction in Number of Rat Glomeruli during Warm Ischemia. J Endourol. 2012;26(10):1335-1339.
  9. Victoni T, Coelho FR, Soares AL, et al. Local and Remote Tissue Injury upon Intestinal Ischemia and Reperfusion Depends on the TLR/MyD88 Signaling Pathway. Med Microbiol Immunol. 2010;199(1):35-42. 
  10. Yoshiya K, Lapchak PH, Thai TH, et al. Depletion of Gut Commensal Bacteria Attenuates Intestinal Ischemia/Reperfusion Injury. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2011;301(6):1020-1030.
  11. Granger DN, Kvietys PR. Reperfusion Injury and Reactive Oxygen Species: The Evolution of a Concept. Redox Biol. 2015;6:524-551. 
  12. Лукьянова Л.Д., Кирова Ю.И., Германова Е.Л. Роль сукцината в регуляции экспрессии немедленного HIF-1α при гипоксии. Бюлл. Эксп. Биол. Мед. 2018;164(3):298-303.  https://doi.org/10.1007/s10517-018-3976-2
  13. Лукьянова Л.Д. Актуальные вопросы адаптации к гипоксии. Механизмы сигнала и их роль в системе регулирования. Патолог. физиология и эксперимент. терапия. 2011;1:3-19. 
  14. Иванов К.П. Гипоксия мозга и гибель нейронов вследствие нарушения микроциркуляции в мозге и регионального мозгового кровообращения. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2010;2(34):5-17. 
  15. Rink C, Gnyawali S, Stewart R, et al. Glutamate oxaloacetate transaminase enables anaplerotic refilling of TCA cycle intermediates in stroke-affected brain. FASEB J. 2017 Apr;31(4):1709-1718. https://doi.org/10.1096/fj.201601033R
  16. He W, Miao FJ, Lin DC, et al. Citric acid cycle intermediates as ligands for orphan G-protein-coupled receptors. Nature. 2004;429(6988):188-193.  https://doi.org/10.1038/nature02488
  17. Hirota K. Basic Biology of Hypoxic Responses Mediated by the Transcription Factor HIFs and its Implication for Medicine. Biomedicines. 2020;8(2):32-39.  https://doi.org/10.3390/biomedicines8020032
  18. Zhang H, Yan Q, Wang X, et al. The Role of Mitochondria in Liver Ischemia-Reperfusion Injury: From Aspects of Mitochondrial Oxidative Stress, Mitochondrial Fission, Mitochondrial Membrane Permeable Transport Pore Formation, Mitophagy, and Mitochondria-Related Protective Measures. Oxid Med Cell Longev. 2021;2021:6670579. https://doi.org/10.1155/2021/6670579
  19. Chance B, Williams GR. A Method for the Localization of Sites for Oxidative Phosphorylation. Nature. 1955;176(4475):250-254. 
  20. Chance B, Williams GR. Respiratory Enzymes in Oxidative Phosphorylation. VI. The Effects of Adenosine Diphosphate on Azide Treated Mitochondria. J Biol Chem. 1956;221(1):477-489. 
  21. Chouchani ET, Pell VR, Gaude E, et al. Ischaemic accumulation of succinate controls reperfusion injury through mitochondrial ROS. Nature. 2014;515(7527):431-435.  https://doi.org/10.1038/nature13909
  22. Andrienko TN, Pasdois P, Pereira GC, et al. The role of succinate and RO of ischemia/reperfusion. in reperfusion injury — A critical appraisal. J Mol Cell Cardiol. 2017;110:1-14.  https://doi.org/10.1016/j.yjmcc.2017.06.016
  23. Zhang J, Wang YT, Miller JH, et al. Accumulation of Succinate in Cardiac Ischemia Primarily Occurs via Canonical Krebs Cycle Activity. Cell Rep. 2018;23(9):2617-2628.
  24. Moyon A, Garrigue P, Balasse L, et al. Succinate Injection Rescues Vasculature and Improves Functional Recovery Following Acute Peripheral Ischemia in Rodents: A Multimodal Imaging Study. Cells. 2021;10(4):795-798.  https://doi.org/10.3390/cells10040795
  25. Hawkins BJ, Levin MD, Doonan PJ, et al. Mitochondrial Complex II Prevents Hypoxic but Not Calcium- and Proapoptotic Bcl-2 Protein-induced Mitochondrial Membrane Potential Loss. J Biol Chem. 2010;285(34):26494-26505.
  26. Khellaf A, Garcia NM, Tajsic T, et al. Focally administered succinate improves cerebral metabolism in traumatic brain injury patients with mitochondrial dysfunction. J Cereb Blood Flow Metab. 2022 Jan;42(1):39-55.  https://doi.org/10.1177/0271678X211042112

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.