Семенова Н.В.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр им. В.М. Бехтерева» Минздрава России

Мадаева И.М.

ФГБНУ «Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека»

Баирова Т.А.

ФБГНУ «Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека»

Колесникова Л.И.

ФГБНУ «Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека»

Делеционный полиморфизм GSTT1 и гиперактивация процессов липопероксидации при инсомнии климактерического периода

Авторы:

Семенова Н.В., Мадаева И.М., Баирова Т.А., Колесникова Л.И.

Подробнее об авторах

Прочитано: 1518 раз


Как цитировать:

Семенова Н.В., Мадаева И.М., Баирова Т.А., Колесникова Л.И. Делеционный полиморфизм GSTT1 и гиперактивация процессов липопероксидации при инсомнии климактерического периода. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2021;121(3):93‑97.
Semenova NV, Madaeva IM, Bairova TA, Kolesnikova LI. Deletion polymorphism of GSTT1 gene and lipid peroxidation hyperactivation in menopausal insomnia. S.S. Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry. 2021;121(3):93‑97. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/jnevro202112103193

Рекомендуем статьи по данной теме:
Ней­роп­ро­тек­тор­ная те­ра­пия гла­уко­мы. Вес­тник оф­таль­мо­ло­гии. 2025;(1):83-90
Деп­ри­ва­ция сна и раз­ви­тие ок­си­да­тив­но­го стрес­са в эк­спе­ри­мен­те. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(3):124-129
Ин­сом­нии дет­ско­го воз­рас­та. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2025;(5-2):46-51
При­ме­не­ние зол­пи­де­ма в ле­че­нии ос­трой и хро­ни­чес­кой ин­сом­нии. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2025;(5-2):52-56
По­тен­ци­ал ней­ро­биоуп­рав­ле­ния в те­ра­пии ин­сом­нии и улуч­ше­нии ка­чес­тва сна (сис­те­ма­ти­чес­кий об­зор). Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2025;(5-2):57-63
Эф­фек­ты рит­ми­чес­кой транскра­ни­аль­ной маг­нит­ной сти­му­ля­ции в ле­че­нии ин­сом­нии. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2025;(5-2):64-69
Расстройства сна при бо­лез­нях им­прин­тин­га. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2025;(5-2):75-80
На­ру­ше­ния сна при де­мен­ции с тель­ца­ми Ле­ви и бо­лез­ни Пар­кин­со­на. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2025;(4-2):81-87

Научная и практическая значимость исследований, посвященных изучению различных аспектов нарушений сна, определяется их широкой распространенностью среди населения, особенно у женщин при наступлении климактерия, достигая >60% в данном возрастном периоде [1, 2]. Наиболее частыми нарушениями сна у лиц женского пола являются инсомнические расстройства, коморбидность которых с другими патологическими состояниями, такими как сердечно-сосудистые заболевания [3], сахарный диабет [4], онкология [5], ожирение [6], депрессия [7], значительно снижает качество жизни женщин. В настоящее время многочисленные исследования направлены на изучение клеточных и молекулярных механизмов регуляции процессов сна [8]. При этом пристальное внимание уделяется изучению процессов свободнорадикального окисления при сомнологической патологии. Результаты таких исследований демонстрируют аккумуляцию активных продуктов тиобарбитуровой кислоты у женщин с инсомнией в постменопаузе [9—11], но не в перименопаузальном периоде [9]. Более того, активность системы перекисное окисление липидов—антиоксидантная защита (ПОЛ—АОЗ) у таких пациенток ассоциирована с полиморфизмом 3111Т/С гена Clock [12]. В то же время данные о работе системы АОЗ представляются неоднозначными. Известно, что наиболее мощным путем детоксикации альдегидов является их ферментативное связывание с глутатионом в глутатионтрансферазной реакции. В свою очередь активность глутатионтрансферазы зависит от полиморфизма генов системы детоксикации, одним из которых является ген GSTT1, кодирующий аминокислотную последовательность фермента тета-1 глутатион S-трансферазы [13].

Целью данной работы явилось исследование по изучению ассоциации активности системы липопероксидация—антиоксиданты с полиморфизмом гена GSTT1 при инсомнических расстройствах.

Материал и методы

В исследовании приняла участие 181 женщина климактерического периода в возрасте от 45 до 60 лет (европеоидная раса, русские). Группы климактерического периода формировались согласно клиническим рекомендациям российского общества акушеров-гинекологов и российской ассоциации по менопаузе [14].

Критериями невключения были заболевания эндокринного генеза, ожирение, обострение хронических заболеваний, применение заместительной гормональной терапии, преждевременная ранняя менопауза, хирургическая менопауза, наличие хронических нарушений сна в анамнезе, применение гипнотиков в течение последних 2 нед, «вечерний» хронотип, работа по сменам, синдром обструктивного апноэ сна.

Результаты клинико-анамнестического обследования позволили разделить обследуемых на две группы: основную (с инсомнией, n=120, средний возраст 53,68±4,61 года, индекс массы тела 26,47±3,73 кг/м2) и контрольную (без инсомнии, n=61, средний возраст 52,64±4,91 года, индекс массы тела 27,69±3,11 кг/м2). Основная группа (с инсомнией) была сформирована согласно клиническим рекомендациям по диагностике и лечению хронической инсомнии у взрослых [15], а также на основе анкетирования [16].

Программа обследования женщин включала следующие методы: клинико-анамнестический (анкетирование, общеклиническое обследование, гинекологическое обследование), молекулярно-генетические, статистические.

Наличие нарушений сна определяли с помощью анкетирования с использованием теста для оценки субъективной тяжести инсомнии (Insomnia Severity Index, ISI) [16]. Для определения хронотипа использовали Мюнхенский тест (Munich Chronotype Questionnaire, MCTQ) [17]. Для верификации диагноза синдрома обструктивного апноэ сна у женщин с жалобами на храп проводилось полисомнографическое исследование по стандартной методике с использованием системы GRASS-TELEFACTOR Twin PSG (Comet) с усилителем As 40 с интегрированным модулем для сна SPM-1 (USA).

Участникам исследования проведено генотипирование гена GSTT1 с определением наличия («0/0» — полная делеция) или отсутствия («+/+» — нормальная аллель гена) делеции. Материалом для исследования служили образцы цельной венозной крови, забор которой производился из локтевой вены в пробирки с антикоагулянтом ЭДТА-К3. В дальнейшем из образцов крови осуществляли экстракцию геномной ДНК с использованием комплекта реагентов АмплиПрайм ДНК-сорб-В (ООО «НекстБио», Россия). Исследование I/D (инсерция/делеция) полиморфного маркера проводили с помощью метода полимеразной цепной реакции в автоматическом термоциклере Терцик наборами реагентов, производитель ФГУН «ЦНИИ эпидемиологии» Роспотребнадзора (Россия). Детекцию продуктов амплификации осуществляли в 3% агарозном геле, результаты электрофореза регистрировали и документировали с помощью системы компьютерного гельдокументирования GelDoc.

Забор крови для определения биохимических параметров осуществляли из локтевой вены в раннее утреннее время натощак. Субстратное обеспечение процессов ПОЛ и содержание их продуктов, а также компонентов системы АОЗ определяли согласно стандартным методикам [9]. Измерительными приборами служили спектрофотометр Shimadzu RF-1650 (Япония) и спектрофлюорофотометр Shimadzu RF-1501 (Япония).

Исследование соответствует этическим нормам Хельсинкской декларации Всемирной медицинской ассоциации (1964 г., последний пересмотр Форталеза, Бразилия, 2013 г.). Каждая женщина подписала информированное согласие на участие в проводимом исследовании, протокол которого был одобрен Комитетом по биомедицинской этике ФГБНУ НЦ ПЗСРЧ (протокол №8 от 15.12.16).

Полученные данные обрабатывали в программе Statistica 6.1 («Stat-Soft Inc.», США). Распределение показателей в группах не соответствовало нормальному. Данные представлены в виде среднего арифметического (стандартное отклонение) (M (SD)) и медианы (первый квартиль; третий квартиль) (Me (Q1; Q3)). Статистически значимыми (p<0,05) различия между группами считались при наличии различий не менее 2 из 3 критериев — тест Манна—Уитни, тест Уалда—Вольфовица и тест Колмогорова—Смирнова.

Результаты

Результаты сравнительного анализа частот генотипов гена GSTT1 у женщин с инсомническими расстройствами и без таковых представлены в табл. 1. В обеих исследуемых группах частота делеционного генотипа значимо ниже по сравнению с нормальным генотипом. Полученные данные согласуются с результатами исследований по распространенности генотипов гена GSTT1 в общей популяции [18]. При сравнении контроля и основной группы выявлена меньшая частота делеционного генотипа у пациенток с инсомнией (p=0,026).

Таблица 1. Частота генотипов гена GSTT1 в исследуемых группах

Группа

Генотипы гена GSTT1

норма

делеция

Контроль (n=61)

0,75

0,25

Инсомния (n=120)

0,88

0,12

χ2=5,020, df=1, p=0,026

Результаты исследования активности системы липопероксидация — антиоксиданты представлены в табл. 2. У женщин контрольной группы — носителей делеционного генотипа — выявлено более низкое содержание субстратов для процессов ПОЛ (p=0,031) и их первичных продуктов (p=0,042) в сыворотке крови. При сравнении данных пациенток с инсомническими расстройствами обнаружено более высокое содержание вторичных продуктов ПОЛ (p=0,044) и активных продуктов тиобарбитуровой кислоты (p=0,003), а также более низкое содержание ретинола (p=0,027) и α-токоферола (p=0,040) у носителей делеционного генотипа.

Таблица 2. Параметры системы ПОЛ—АОЗ у женщин климактерического периода в зависимости от генотипа GSTT1

Показатель

Контрольная группа (n=61)

Основная группа (n=120)

Критерий значимости различий

норма

делеция

норма

делеция

1

2

3

4

M (SD)

Me (Q1; Q2)

Субстраты с сопряженными двойными связями, усл.ед.

2,28 (0,72)

2,12 (1,72; 2,70)

1,87 (0,80)

1,82 (1,56; 2,07)

2,38 (1,09)

2,36 (1,88; 2,78)

2,57 (1,04)

2,42 (1,98; 2,86)

p1—2=0,031

p2—4=0,022

Диеновые конъюгаты, мкмоль/л

1,25 (0,49)

1,20 (0,94; 1,70)

0,99 (0,64)

0,76 (0,69; 0,92)

1,57 (0,74)

1,63 (1,04; 2,10)

1,65 (0,92)

1,50 (1,38; 1,74)

p1—2=0,042

p1—3=0,039

p2—4=0,008

Кетодиены и сопряженные триены, усл.ед.

0,43 (0,33)

0,46 (0,36; 0,61)

0,39 (0,28)

0,26 (0,21; 0,47)

0,52 (0,28)

0,46 (0,34; 0,66)

0,73 (0,33)

0,66 (0,52; 0,72)

p3—4=0,044

p2—4=0,002

Активные продукты тиобарбитуровой кислоты, мкмоль/л

1,14 (0,63)

0,88 (0,71; 1,37)

1,19 (1,13)

0,96 (0,49; 1,19)

1,20 (0,59)

1,16 (0,87; 1,70)

2,02 (1,44)

1,72 (1,32; 2,57)

p3—4=0,003

p2—4=0,006

Общая антиокислительная активность крови, усл.ед.

14,03 (5,47)

12,62 (11,25; 16,68)

13,90 (6,32)

12,18 (10,7; 15,84)

15,93 (6,28)

14,79 (10,72; 19,87)

16,84 (2,65)

15,1 (14,07; 17,06)

Супероксиддисмутаза, усл.ед.

1,76 (0,14)

1,78 (1,66; 1,88)

1,75 (0,16)

1,79 (1,64; 1,87)

1,76 (0,11)

1,75 (1,68; 1,85)

1,80 (0,17)

1,84 (1,74; 1,88)

Восстановленный глутатион, ммоль/л

2,45 (0,39)

2,35(2,22; 2,60)

2,39 (0,56)

2,22 (2,14; 2,47)

2,23 (0,36)

2,28 (2,11; 2,47)

2,02 (0,66)

2,05 (2,02; 2,09)

p2—4=0,042

Окисленный глутатион, ммоль/л

1,99 (0,38)

1,94 (1,81; 2,04)

1,77 (0,37)

1,69 (1,53; 1,93)

1,85 (0,35)

1,96 (1,68; 2,11)

2,18 (0,36)

2,19 (2,01; 2,22)

p2—4=0,039

Глутатионпероксидаза, усл.ед.

2779,46 (1524,53)

2166,11 (1985,01; 2606,31)

2606,01 (1089,48)

2383,98 (1977,31; 2923,51)

2314,7 (501,13)

2197,32 (2026,54; 2593,25)

2621,3 (875,4)

2415,21 (2387,5; 2713,82)

p1—3=0,045

Глутатионредуктаза, усл.ед.

83,46 (16,49)

78,9 (75,5; 90,4)

76,62 (22,45)

69,75 (59,9; 91,95)

80,6 (17,23)

79,7 (75,5; 87,5)

83,47 (28,99)

77,6 (73,5; 86,55)

Глутатион-S-трансфераза, нг/мл

2168,65 (901,24)

1859,65 (1418,21; 2970,76)

2092,01 (751,11)

2002,53 (1823,97)

2286,86 (1106,54)

1931,19 (1521,08; 2876,35)

2527,33(1459,51)

2202,34 (1681,55; 3668,61)

p2—4=0,044

α-токоферол, мкмоль/л

6,81 (2,23)

6,37 (5,54; 7,39)

6,79 (1,71)

5,98 (5,61; 7,73)

7,73 (3,29)

6,33 (5,66; 8,26)

5,67 (0,29)

5,74 (5,55; 6,67)

p3—4=0,027

Ретинол, мкмоль/л

0,71 (0,15)

0,68 (0,62; 0,76)

0,67 (0,22)

0,61 (0,54; 0,82)

0,77 (0,26)

0,69 (0,59; 0,84)

0,50 (0,22)

0,53 (0,44; 0,60)

p3—4=0,040

p2—4=0,038

Примечание. p — статистически значимые различия между группами (при наличии различий не менее 2 из 3 критериев — тест Манна—Уитни, тест Уалда—Вольфовица и тест Колмогорова—Смирнова.

Note. p — statistically significant differences between groups (if there are differences of at least 2 of 3 criteria — Mann—Whitney test, Wald's test — Wolfowitz and Kolmogorov—Smirnov.

Сравнительный анализ параметров системы ПОЛ—АОЗ у женщин основной и контрольной групп показал у женщин с инсомнией — носителей нормального генотипа — более высокие показатели диеновых конъюгатов (p=0,039) при более низкой активности глутатионпероксидазы (p=0,045) по сравнению с женщинами группы контроля. При сравнении групп женщин — носителей делеционного генотипа отмечено статистически значимое повышение содержания субстратов и продуктов ПОЛ на всех этапах липопероксидации, окисленного глутатиона (p=0,039), активности глутатион-S-трансферазы (p=0,044) при снижении содержания восстановленного глутатиона (p=0,042) и ретинола (p=0,038) в группе женщин с инсомнией.

Обсуждение

Предположение об аккумуляции в организме свободных радикалов во время бодрствования и их инактивации во время сна было впервые высказано E. Reimund [19] в 1994 г. Согласно данной гипотезе, сон способствует снижению скорости образования свободных радикалов с одновременным повышением эффективности работы системы АОЗ. С тех пор исследователями из разных стран были предприняты многочисленные попытки для подтверждения или опровержения данной гипотезы. К настоящему времени как в эксперименте, так и в исследованиях на человеке получены неоднозначные результаты. Так, результаты некоторых исследований на животных моделях демонстрируют зависимость интенсивности свободнорадикального окисления от времени депривации сна [20—22], однако встречаются работы, не подтверждающие это [23].

Неоднозначность имеющихся в литературе результатов научных работ по изучению свободнорадикального окисления у пациентов с инсомнией определяется объединением как мужчин, так и женщин в основную группу, хотя влияние пола на процессы липопероксидации не вызывают сомнений [24]. В связи с этим продемонстрированное при инсомнии понижение общего антиоксидантного статуса и повышение оксидантного звена представляются сомнительными [25]. В то же время в группах женщин с инсомнией показано снижение активности ферментативного звена глутатионовой системы при неизменной активности миелопероксидазы и супероксиддисмутазы с повышением уровня глутатиона и конечных продуктов липопероксидации [10], а в постменопаузе — повышение уровня активных продуктов тиобарбитуровой кислоты при отсутствии изменений активности каталазы и супероксиддисмутазы [11]. В проведенном нами ранее исследовании было показано, что у пациенток в перименопаузе происходит аккумуляция первичных продуктов, а в постменопаузе — первичных и конечных продуктов липопероксидации без изменений параметров системы АОЗ [9]. Отсутствие однонаправленного результата по изучению функционального состояния системы ПОЛ—АОЗ у пациеток с инсомнией свидетельствует о необходимости поиска механизмов, влияющих на течение свободнорадикальных процессов. Одним из таких механизмов может быть полиморфизм гена GSTT1, кодирующий белок глутатион-S-трансферазу тета 1, являющийся членом суперсемейства димерных белков. Глутатион-S-трансфераза катализирует реакции связывания глутатиона с токсинами, в результате чего образуются менее токсичные и легковыводящиеся из организма конъюгаты [13]. Полученные в ходе данного исследования результаты свидетельствуют о влиянии носительства того или иного полиморфизма гена GSTT1 на функциональное состояние системы ПОЛ—АОЗ при инсомнии. Так, у женщин с инсомнией по сравнению с контролем аккумуляция продуктов на всех этапах липопероксидации отмечается при носительстве делеционного полиморфизма гена GSTT1 с одновременным дисбалансом в работе глутатионовой системы. Повышение активности глутатион-S-трансферазы, связанное, вероятно, с другими полиморфизмами генов системы детоксикации, может быть реакцией на высокое содержание образующихся продуктов ПОЛ вследствие нехватки антиоксидантов, таких как ретинол. В данном случае фермент катализирует связывание токсичных продуктов с глутатионом, что приводит к снижению содержания его восстановленной формы и повышению концентрации окисленной. Однако накопление конечных продуктов липопероксидации свидетельствует о недостаточности ресурсов системы АОЗ и в первую очередь содержания глутатиона. Носительство функционального полиморфизма гена GSTT1 у пациенток по сравнению с контролем приводит к накоплению только первичных продуктов липопероксидации, не приводя к развитию окислительного стресса. Наравне с этим результаты настоящего исследования демонстрируют накопление продуктов ПОЛ, в том числе конечных, у пациенток — носителей делеционного полиморфизма гена GSTT1 по сравнению с пациентками — носителями функционального полиморфизма.

Заключение

Полученные в ходе проведенного исследования результаты при сравнении как основной группы с контролем, так и пациенток в зависимости от носительства того или иного полиморфизма гена GSTT1 свидетельствуют об ассоциации делеционного полиморфизма с интенсификацией процессов липопероксидации у женщин климактерического периода с инсомническими расстройствами. Данные результаты свидетельствуют о необходимости персонализированного подхода в назначении антиоксидантной терапии при проведении коррекционных мероприятий по поводу нарушений сна.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

The authors declare no conflicts of interest.

Литература / References:

  1. Xu Q, Lang CP. Examining the relationship between subjective sleep disturbance and menopause: a systematic review and meta-analysis. Menopause. 2014;21(12):1301-1318. https://doi.org/10.1097/GME.0000000000000240
  2. Мадаева И.М., Семенова Н.В., Колесникова Л.И. Этнические особенности нарушений сна у женщин климактерического периода. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2019;119(4-2):44-49.  https://doi.org/10.17116/jnevro201911904244
  3. Rouleau CR, Toivonen K, Aggarwal S, et al. The association between insomnia symptoms and cardiovascular risk factors in patients who complete outpatient cardiac rehabilitation. Sleep Medicine. 2017;32:201-207.  https://doi.org/10.1016/j.sleep.2017.01.005
  4. Hein M, Lanquart J-P, Loas G, et al. Prevalence and risk factors of type 2 diabetes in insomnia sufferers: a study on 1311 individuals referred for sleep examinations. Sleep Medicine. 2018;46:37-45.  https://doi.org/10.1016/j.sleep.2018.02.006
  5. Sen A, Opdahl S, Strand LB, et al. Insomnia and the risk of breast cancer: The HUNT study. Psychosomatic Medicine. 2017;79(4):461-468.  https://doi.org/10.1097/PSY.0000000000000417
  6. Cai GH, Theorell-Haglöw J, Janson C, et al. Insomnia symptoms and sleep duration and their combined effects in relation to associations with obesity and central obesity. Sleep Medicine. 2018;46:81-87.  https://doi.org/10.1016/j.sleep.2018.03.009
  7. Голенков А.В., Полуэктов М.Г., Орлов Ф.В. Связь нарушений сна с депрессией и тревогой у лиц пожилого возраста. Психическое здоровье. 2012;10(8):30-33. 
  8. Полуэктов М.Г., ред. Сомнология и медицина сна: Национальное руководство памяти А.М. Вейна и Я.И. Левина. М.: Медфорум; 2016.
  9. Колесникова Л.И., Семенова Н.В., Солодова Е.И., Мадаева И.М. Окислительный стресс у женщин с инсомнией в разных фазах климактерического периода. Терапевтический архив. 2017;89(8):50-56.  https://doi.org/10.17116/terarkh201789850-56
  10. Gulec M, Ozkol H, Selvi Y, et al. Oxidative stress in patients with primary insomnia. Prog Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry. 2012;37(2):247-251.  https://doi.org/10.1016/j.pnpbp.2012.02.011
  11. Hachul de Campos H, Brandao LC, D’Almeida V, et al. Sleep disturbances, oxidative stress and cardiovascularrisk parameters in postmenopausal women complaining of insomnia. Climacteric. 2006;9(1):312-319.  https://doi.org/10.1080/13697130600871947
  12. Semenova NV, Madaeva IM, Bairova TA, et al. Lipid peroxidation depends on the Clock 3111T/C gene polymorphism in menopausal women with insomnia. Chronobiol Int. 2019;36(10):1399-1408. https://doi.org/10.1080/07420528.2019.1647436
  13. Dasari S, Gonuguntla S, Ganjayi MS, et al. Genetic polymorphism of glutathione S-transferases: Relevance to neurological disorders. Pathophysiology. 2018;25(4):285-292.  https://doi.org/10.1016/j.pathophys.2018.06.001
  14. Сухих Г.Т., Сметник В.П., Юренева С.В., и др. Менопауза и климактерическое состояние у женщин: клинические рекомендации. М. 2016.
  15. Полуэктов М.Г., Бузунов Р.В., Авербух В.М., и др. Проект клинических рекомендаций по диагностике и лечению хронической инсомнии у взрослых. Неврология и ревматология. Приложение к журналу Consilium Medicum. 2016;2:41-51. 
  16. Savard J, Simard S, Morin C. Insomnia. In: Nikcevic A, Kuczmierczyk A, Bruch M, eds. Formulation and treatment in clinical health psychology. London: Routledge; 2006.
  17. Zavada A, Gordijn MC, Beersma DG, et al. Comparison of the Munich Chronotype Questionnaire with the Horne-Ostberg’s Morningness-Eveningness Score. Chronobiol Int. 2005;22(2):267-278.  https://doi.org/10.1081/cbi-200053536
  18. Кочетова О.В., Корытина Г.Ф., Ахмадишина Л.З., и др. Анализ полиморфных локусов генов ферментов антиоксидантной защиты в этнических группах республики Башкортостан. Научные результаты биомедицинских исследований. 2019;5(2):22-33.  https://doi.org/10.18413/2658-6533-2019-5-2-0-3
  19. Reimund E. The free radical flux theory of sleep. Medical Hypotheses. 1994;43(4):231-233.  https://doi.org/10.1016/0306-9877(94)90071-x
  20. Ramanathanl L, Hu S, Frautschy SA, Siegel JM. Short-term total sleep deprivation in the rat increases antioxidant responses in multiple brain regions without impairing spontaneous alternation behavior. Behavioural Brain Research. 2010;207(2):305-309.  https://doi.org/10.1016/j.bbr.2009.10.014
  21. Thamaraiselvi K, Mathangi DC, Subhashini AS. Effect of increase in duration of REM sleep deprivation on lipid peroxidation. Int J Biol Med Res. 2012;3(2):1754-1759.
  22. Ramanathan L, Gulyani CS, Nienhuis R, Siegel JM. Sleep deprivation decreases superoxide dismutase activity in rat hippocampus and brainstem. Neuroreport. 2002;13(11):1387-1390. https://doi.org/10.1097/00001756-200208070-00007
  23. Gopalakrishnan A, Cirelli C. Sleep deprivation and cellular responses to oxidative stress. Sleep. 2004;27(1):27-35.  https://doi.org/10.1093/sleep/27.1.27
  24. Mendoza-Nunez VM, Beristain-Perez A, Perez-Vera SP, Altamirano-Lozano MA. Age-related sex differences in glutathione peroxidase and oxidative DNA damage in a healthy Mexican population. J Womens Health (Larchmt). 2010;19(5):919-926.  https://dx.doi.org/10.1089/jwh.2009.1684
  25. Liang B, Li Y-H, Kong H. Serum paraoxonase, arylesterase activities and oxidative status in patients with insomnia. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2013;17(18):2517-2522.

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.