Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Жетишев Р.Р.

ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» Федерального медико-биологического агентства России;
ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова (Пироговский Университет)» Минздрава России

Лопатина А.В.

ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» Федерального медико-биологического агентства России;
ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова (Пироговский Университет)» Минздрава России

Свиридова А.А.

ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» ФМБА России

Мельников М.В.

ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» Федерального медико-биологического агентства России;
ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова (Пироговский Университет)» Минздрава России;
ФГБУ «Государственный научный центр «Институт иммунологии» Федерального медико-биологического агентства России

Роль моноцитов в иммунопатогенезе рассеянного склероза

Авторы:

Жетишев Р.Р., Лопатина А.В., Свиридова А.А., Мельников М.В.

Подробнее об авторах

Прочитано: 1466 раз


Как цитировать:

Жетишев Р.Р., Лопатина А.В., Свиридова А.А., Мельников М.В. Роль моноцитов в иммунопатогенезе рассеянного склероза. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. Спецвыпуски. 2025;125(7‑2):23‑27.
Zhetishev RR, Lopatina AV, Sviridova AA, Melnikov MV. The role of monocytes in the immunopathogenesis of multiple sclerosis. S.S. Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry. 2025;125(7‑2):23‑27. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/jnevro202512507223

Рекомендуем статьи по данной теме:
Мо­ле­ку­ляр­ные ме­ха­низ­мы раз­ви­тия ос­тро­го рас­се­ян­но­го эн­це­фа­ло­ми­ели­та. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2025;(7-2):7-11
Осо­бен­нос­ти кли­ни­чес­ко­го те­че­ния рас­се­ян­но­го скле­ро­за как фак­тор стой­кой ут­ра­ты тру­дос­по­соб­нос­ти. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2025;(7-2):39-44
Ре­зуль­та­ты 4-лет­ней те­ра­пии пре­па­ра­том ди­во­зи­ли­маб па­ци­ен­тов с рас­се­ян­ным скле­ро­зом с обос­тре­ни­ями. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2025;(7-2):51-59

Рассеянный склероз (РС) — это хроническое аутоиммунное воспалительное демиелинизирующее и нейродегенеративное заболевание центральной нервной системы (ЦНС), поражающее преимущественно лиц молодого возраста.

Основной гипотезой иммунопатогенеза РС является проникновение из периферии в ЦНС мононуклеарных клеток, специфичных к антигенам миелиновой оболочки. Показано критическое патогенетическое значение T- и B-лимфоцитов как при экспериментальном аутоиммунном энцефаломиелите (животная модель РС [ЭАЭ]), так и при РС. Вместе с этим клетки врожденного иммунного ответа, в частности мононуклеарные фагоциты, включающие моноциты, макрофаги, дендритные клетки и резидентную микроглию, также играют значительную роль как в развитии, так и поддержании аутоиммунного нейровоспаления при РС [1, 2].

В ЦНС мононуклеарные фагоциты способны продуцировать провоспалительные цитокины, презентировать антигены, активировать CD4+ T-клетки, а также направлять их развитие в различные субпопуляции. Согласно данным литературы, мононуклеарные фагоциты могут играть решающее значение как в запуске / обострении аутоиммунного нейровоспаления, так и в его дальнейшей хронизации. В частности, было установлено, что активация клеток микроглии предшествует развитию клинической симптоматики при ЭАЭ [3, 4]. Также обсуждается потенциальная роль дендритных клеток и макрофагов в индукции нейровоспаления при ЭАЭ и РС [5, 6]. Практически все препараты, изменяющие течение РС (ПИТРС), прямо или опосредованно влияют на функции мононуклеарных фагоцитов [7]. Более того, в настоящее время исследуется клиническая эффективность при демиелинизирующих заболеваниях ЦНС вакцин, основанных на аутологичных толерогенных дендритных клетках [8].

В то же время обострения при ЭАЭ, напротив, связывают с мигрирующими из периферии в ЦНС моноцитами, которые играют важную роль в функционировании врожденного иммунного ответа. Показано, что при ЭАЭ моноциты способны повышать проницаемость гематоэнцефалического барьера, проникать в ЦНС, дифференцироваться в макрофаги или дендритные клетки и опосредовать нейровоспаление, что подтверждается профилактическим и терапевтическим эффектом деплеции моноцитов при ЭАЭ [9, 3]. В коротком сообщении проанализированы результаты исследований количественных и функциональных характеристик моноцитов при ЭАЭ и РС. Обсуждаются основные механизмы участия моноцитов в патогенезе нейровоспаления.

Роль моноцитов в иммунопатогенезе ЭАЭ

Несмотря на то что основной гипотезой иммунопатогенеза ЭАЭ и РС является миграция в ЦНС аутореактивных T- и B-клеток, установлено, что как в острых, так и хронических очагах демиелинизации при ЭАЭ и РС мононуклеарные фагоциты превышают количество T- и B-лимфоцитов вместе взятых [3, 10]. При этом в очагах демиелинизации мононуклеарные фагоциты представлены как резидентными макрофагами ЦНС (микроглиальными клетками), так и клетками моноцитарного происхождения, которые мигрируют через ГЭБ из периферии в ЦНС [3].

По-видимому, резидентные и инфильтрирующие клетки принимают участие на разных стадиях нейровоспаления. Согласно данным литературы, резидентные макрофаги могут иметь ключевое значение в срыве иммунологической толерантности в ЦНС и запуске нейровоспаления, тогда как инфильтрирующие моноциты могут играть решающую роль в эффекторной фазе нейровоспаления и опосредовать развитие неврологического дефицита [3]. Так, B. Ajami и соавт. показали, что активация резидентной микроглии опережает проникновение в ЦНС моноцитов при ЭАЭ [11]. Однако эта активация не сопровождается развитием симптоматики. Напротив, инфильтрация моноцитов в ЦНС вызывала выраженный неврологический дефицит у мышей с ЭАЭ. Важно отметить, что инфильтрация моноцитов в ЦНС наблюдалась у мышей с тяжелым течением ЭАЭ, тогда как мягкое течение ЭАЭ характеризовалось преобладанием в ЦНС T-клеток. В дальнейших экспериментах с блокадой хемокинового CC-2 рецептора (CCR2), необходимого для миграции моноцитов, авторы подтвердили критическую патогенетическую роль моноцитов при ЭАЭ [11]. Схожие данные об участии моноцитов в патогенезе ЭАЭ были получены A. Mildner и соавт. [12].

Полученные данные о роли CCR2 в эффекторной фазе ЭАЭ также согласуются с результатами более ранних исследований, в которых было установлено, что мыши с нокаутом CCR2 устойчивы к развитию ЭАЭ [13—15]. Примечательно, что у мышей с дефицитом CCR2 снижается количество не только мигрирующих в ЦНС моноцитов, но и лимфоцитов [13, 14]. Более того, спленоциты таких мышей характеризуются сниженной продукцией ИЛ-6 и интерферона-γ (ИФН-γ), а также снижением пролиферации в ответ на стимуляцию миелин-олигодендроцитарным гликопротеином, но не конканавалином A или анти-CD3 моноклональным антителом, что указывает на роль CCR2 в индукции МОГ-специфического Th1-иммунного ответа, что также согласуется с данными других исследований и позволяет предположить дополнительный механизм, опосредующий участие CCR2 в патогенезе ЭАЭ.

В недавнем исследовании A. Montilla и соавт. также показали участие микроглии и инфильтрирующих моноцитов / макрофагов на разных этапах патогенеза ЭАЭ [16]. В частности, было установлено, что деплеция микроглии, а также менингеальных макрофагов отсрочивает начало ЭАЭ, но не влияет на последующее течение заболевания, что позволяет предположить участие резидентных клеток микроглии в индукции ЭАЭ [16].

Роль моноцитов в иммунопатогенезе РС

Данные о патогенетической роли моноцитов при РС согласуются с их участием в патогенезе ЭАЭ. Показано присутствие моноцитов и макрофагов в демиелинизирующих поражениях при РС [17—23]. При этом установлено, что наиболее массивная миграция моноцитов в ЦНС происходит во время острой фазы заболевания [17, 18].

Сообщается об изменениях функциональных характеристик моноцитов у больных РС. Так, согласно M. Kouwenhoven и соавт., количество циркулирующих в периферической крови моноцитов, секретирующих интерлейкин-6 (ИЛ-6) и ИЛ-12, выше у больных РС по сравнению со здоровыми донорами. Также авторы обнаружили, что экспрессия костимулирующей молекулы CD86 выше в моноцитах больных РС [24]. Схожие результаты были получены в исследовании V. Chiurchiù и соавт., в котором было установлено, что продукция провоспалительных цитокинов фактора некроза опухоли-α (ФНО-α), ИЛ-6 и ИЛ-12p40 моноцитами, стимулированными липополисахаридом (ЛПС [агонист TLR-4]), флагеллином (агонист TLR-5) или R848 (агонист TLR-7/8), выше у больных РС по сравнению со здоровыми донорами [25]. Эти данные также согласуются с результатами наших исследований, согласно которым продукция ИЛ-12p70 ИФН-γ / ЛПС-стимулированными CD14+ моноцитами выше у больных РС по сравнению со здоровыми донорами, тогда как продукция противовоспалительного цитокина ИЛ-10, напротив, ниже в группе больных РС [26]. Важно отметить, что в схожем эксперименте на культуре мононуклеарных клеток периферической крови (МНКПК), так же стимулированных ИФН-γ и ЛПС, разницы в продукции как про-, так и противовоспалительных цитокинов не было [26].

Наряду с повышением провоспалительных функций моноцитов при РС также отмечается увеличение их относительного числа. В частности, D. Chuluundorj и соавт. показали, что процент CD14+ моноцитов среди МНКПК значительно ниже у больных РС по сравнению со здоровыми донорами. Соотношение классических CD14++CD16 и неклассических CD14+CD16+ моноцитов также изменено в группе больных РС: процент CD14++CD16 моноцитов ниже у больных РС, в то время как процент CD14+CD16+ промежуточных моноцитов в 5 раз выше, чем у здоровых доноров, что особенно значимо, учитывая повышенную способность промежуточных моноцитов мигрировать через гематоэнцефалический барьер [27, 28]. Авторы также обнаружили, что общая популяция CD14+ моноцитов больных РС обладает повышенной экспрессией молекул CD40, CD86, HLA-DR, CD64 и CCR2 с наиболее высокой экспрессией HLA-DR и CCR2 [27]. В последующем исследовании авторы подтвердили эти данные [29]. M.C. Gjelstrup и соавт. также показали, что процент неклассических моноцитов (CD14+CD16++) среди МНКПК был выше у больных РС по сравнению со здоровыми донорами [30]. Увеличение числа классических и неклассических моноцитов при РС было показано в недавнем исследовании, проведенном D. Haschka и соавт. [31]. В то же время в другом исследовании не было выявлено каких-либо различий в соотношении субпопуляций моноцитов в культуре МНКПК пациентов с ранним РС и здоровых доноров [32].

Важно отметить, что экспрессия молекул антигенпредставления (HLA-DR), а также костимуляции (CD80 и CD86) указывает на потенциальную способность моноцитов активировать CD4+ T-клетки, что было подтверждено в одном из наших исследований [26]. В частности, было показано, что CD14+ моноциты, стимулированные ИФН-γ и ЛПС не только продуцируют цитокины, необходимые для дифференцирования T-хелперов, но и способны индуцировать выработку ИФН-γ, ИЛ-17 и ИЛ-10 аутологичными CD4+ T-клетками больных РС и здоровых доноров [26].

Примечательно, что повышенное содержание неклассических моноцитов показано и при заболеваниях спектра оптиконевромиелита (ЗСОНМ) [33]. Кроме того, процент неклассических моноцитов, продуцирующих ИЛ-6 (относительно количества всех CD14+ моноцитов), также выше у больных с ЗСОНМ, что подтверждает роль моноцитов в аутоиммунных заболеваниях ЦНС [33].

Дополнительным подтверждением участия моноцитов в аутоиммунном нейровоспалении является клиническая эффективность деплеции моноцитов при ЭАЭ, а также влияние ПИТРС на функции моноцитов [34—36].

Как уже было отмечено, участие моноцитов в патогенезе нейровоспаления может быть опосредовано несколькими механизмами. Во-первых, моноциты способны продуцировать широкий спектр цитокинов, обладающих плейотропным эффектом. В частности, согласно нашим данным, ИФН-γ / ЛПС-стимулированные цитокины продуцируют ИЛ-12p70, необходимый для индукции Th1-клеток, ИЛ-6, ИЛ-1β и ИЛ-23 — факторы дифференцирования Th17-клеток, а также ИЛ-10, необходимый для развития противовоспалительных регуляторных T-клеток [26]. При этом важно отметить, что участие этих цитокинов в патогенезе ЭАЭ и РС не ограничивается их эффектом на T-клетки. Под влияние этих цитокинов попадают эндотелиальные клетки, молекулы межклеточной адгезии, хемокиновые рецепторы, что в совокупности приводит к повышению проницаемости гематоэнцефалического барьера и массивной инфильтрации в ЦНС иммунных клеток, сенсибилизированых к антигенам миелина. Кроме того, ИЛ-6 является важным регулятором гуморального звена иммунного ответа. Было многократно показано, что нейтрализация ИЛ-6, ИЛ-12p70, ИЛ-1β и ИЛ-23 с использованием моноклональных антител оказывает как профилактический, так и терапевтический эффект на течение ЭАЭ. Более того, моноклональные антитела к рецептору ИЛ-6 уже одобрены в качестве патогенетического лечения демиелинизирующих заболеваний ЦНС (ЗСОНМ).

Во-вторых, активированные CD14+ моноциты также способны индуцировать Th1- и Th17- или Treg-иммунный ответ, оказывая, соответственно, про- или противовоспалительный эффект [26].

В-третьих, под действием гранулоцитарно-макрофагального колониестимулирующего фактора, который продуцируется Th17-клетками, моноциты способны дифференцироваться в макрофаги или дендритные клетки, которые, в свою очередь, также участвуют в регуляции адаптивного иммунного ответа [37—39]. Более того, согласно некоторым исследованиям, моноциты способны пополнять пул микроглиальных клеток ЦНС [40]. Также показана повышенная способность моноцитов больных РС продуцировать матриксные металлопротеиназы, повышающие проницаемость гематоэнцефалического барьера [41, 42].

Заключение

Таким образом, значимая роль моноцитов в патогенезе ЭАЭ и РС не вызывает сомнений. Механизмы участия моноцитов в нейровоспалении разнообразны и участвуют на разных этапах иммунопатогенеза РС. При этом особое внимание привлекает взаимодействие моноцитов и CD4+ T-клеток, которое в значительной степени опосредует аутоиммунное нейровоспаление и может рассматриваться как потенциальная патогенетическая мишень при РС.

Исследование выполнено при поддержке Российского научного фонда (проект №22-75-10119).

The study was supported by the Russian Science Foundation (project No. 22-75-10119).

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Chu F, Shi M, Zheng C, et al. The roles of macrophages and microglia in multiple sclerosis and experimental autoimmune encephalomyelitis. J Neuroimmunol. 2018;318:1-7.  https://doi.org/10.1016/j.jneuroim.2018.02.015
  2. Amann L, Masuda T, Prinz M. Mechanisms of myeloid cell entry to the healthy and diseased central nervous system. Nat Immunol. 2023;24(3):393-407.  https://doi.org/10.1038/s41590-022-01388-8
  3. Nally FK, De Santi C, McCoy CE. Nanomodulation of Macrophages in Multiple Sclerosis. Cells. 2019;8(6):543.  https://doi.org/10.3390/cells8060543
  4. Distéfano-Gagné F, Bitarafan S, Lacroix S, et al. Roles and regulation of microglia activity in multiple sclerosis: insights from animal models. Nat Rev Neurosci. 2023;24(7):397-415.  https://doi.org/10.1038/s41583-023-00709-6
  5. Giles DA, Duncker PC, Wilkinson NM, et al. CNS-resident classical DCs play a critical role in CNS autoimmune disease. J Clin Invest. 2018;128(12):5322-5334. https://doi.org/10.1172/JCI123708
  6. Piacente F, Bottero M, Benzi A, et al. Neuroprotective Potential of Dendritic Cells and Sirtuins in Multiple Sclerosis. Int J Mol Sci. 2022;23(8):4352. https://doi.org/10.3390/ijms23084352
  7. Liu C, Zhu J, Mi Y, et al. Impact of disease-modifying therapy on dendritic cells and exploring their immunotherapeutic potential in multiple sclerosis. J Neuroinflammation. 2022;19(1):298.  https://doi.org/10.1186/s12974-022-02663-z
  8. Flórez-Grau G, Zubizarreta I, Cabezón R, et al. Tolerogenic Dendritic Cells as a Promising Antigen-Specific Therapy in the Treatment of Multiple Sclerosis and Neuromyelitis Optica From Preclinical to Clinical Trials. Front Immunol. 2018;9:1169. https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.01169
  9. Moreno MA, Burns T, Yao P, et al. Therapeutic depletion of monocyte-derived cells protects from long-term axonal loss in experimental autoimmune encephalomyelitis. J Neuroimmunol. 2016;15;290:36-46.  https://doi.org/10.1016/j.jneuroim.2015.11.004
  10. Kuhlmann T, Ludwin S, Prat A, et al. An updated histological classification system for multiple sclerosis lesions. Acta Neuropathol. 2017;133(1):13-24.  https://doi.org/10.1007/s00401-016-1653-y
  11. Ajami B, Bennett JL, Krieger C, et al. Local self-renewal can sustain CNS microglia maintenance and function throughout adult life. Nat Neurosci. 2007;10(12):1538-43.  https://doi.org/10.1038/nn2014
  12. Mildner A, Mack M, Schmidt H, et al. CCR2+Ly-6Chi monocytes are crucial for the effector phase of autoimmunity in the central nervous system. Brain. 2009;132(Pt 9):2487-500.  https://doi.org/10.1093/brain/awp144
  13. Izikson L, Klein RS, Charo IF, et al. Resistance to experimental autoimmune encephalomyelitis in mice lacking the CC chemokine receptor (CCR)2. J Exp Med. 2000;192(7):1075-1080. https://doi.org/10.1084/jem.192.7.1075
  14. Fife BT, Huffnagle GB, Kuziel WA, et al. CC chemokine receptor 2 is critical for induction of experimental autoimmune encephalomyelitis. J Exp Med. 2000;192(6):899-906.  https://doi.org/10.1084/jem.192.6.899
  15. Mahad DJ, Ransohoff RM. The role of MCP-1 (CCL2) and CCR2 in multiple sclerosis and experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE). Semin Immunol. 2003;15(1):23-32.  https://doi.org/10.1016/s1044-5323(02)00125-2
  16. Montilla A, Zabala A, Er-Lukowiak M, et al. Microglia and meningeal macrophages depletion delays the onset of experimental autoimmune encephalomyelitis. Cell Death Dis. 2023;14(1):16.  https://doi.org/10.1038/s41419-023-05551-3
  17. Brück W, Porada P, Poser S, et al. Monocyte/macrophage differentiation in early multiple sclerosis lesions. Ann Neurol. 1995;38(5):788-796.  https://doi.org/10.1002/ana.410380514
  18. Brück W, Sommermeier N, Bergmann M, et al. Macrophages in multiple sclerosis. Immunobiology. 1996;195(4-5):588-600.  https://doi.org/10.1016/S0171-2985(96)80024-6
  19. Henderson AP, Barnett MH, Parratt JD, et al. Multiple sclerosis: distribution of inflammatory cells in newly forming lesions. Ann Neurol. 2009;66(6):739-753.  https://doi.org/10.1002/ana.21800
  20. Absinta M, Maric D, Gharagozloo M, et al. A lymphocyte-microglia-astrocyte axis in chronic active multiple sclerosis. Nature. 2020;597(7878):709-714.  https://doi.org/10.1038/s41586-021-03892-7
  21. Prineas JW, Parratt JDE. Multiple Sclerosis: Microglia, Monocytes, and Macrophage-Mediated Demyelination. J Neuropathol Exp Neurol. 2021;80(10):975-996.  https://doi.org/10.1093/jnen/nlab083
  22. Klotz L, Antel J, Kuhlmann T. Inflammation in multiple sclerosis: consequences for remyelination and disease progression. Nat Rev Neurol. 2023;19(5):305-320.  https://doi.org/10.1038/s41582-023-00801-6
  23. Kong BS, Kim Y, Kim GY, et al. Increased frequency of IL-6-producing non-classical monocytes in neuromyelitis optica spectrum disorder. J Neuroinflammation. 2017;14(1):191.  https://doi.org/10.1186/s12974-017-0961-z
  24. Kouwenhoven M, Teleshova N, Ozenci V, et al. Monocytes in multiple sclerosis: phenotype and cytokine profile. J Neuroimmunol. 2001;112(1-2):197-205.  https://doi.org/10.1016/s0165-5728(00)00396-9
  25. Chiurchiù V, Leuti A, Cencioni MT, et al. Modulation of monocytes by bioactive lipid anandamide in multiple sclerosis involves distinct Toll-like receptors. Pharmacol Res. 2016;113(Pt A):313-319.  https://doi.org/10.1016/j.phrs.2016.09.003
  26. Белоусова О.В., Лопатина А.В., Мельников М.В. Роль дофамина в модуляции Th17- и Th1-иммунного ответа, индуцированного моноцитами при рассеянном склероз Международная иммунофармакология. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2024.112540
  27. Chuluundorj D, Harding SA, Abernethy D, et al. Expansion and preferential activation of the CD14(+)CD16(+) monocyte subset during multiple sclerosis. Immunol Cell Biol. 2014;92(6):509-17.  https://doi.org/10.1038/icb.2014.15
  28. Coley JS, Calderon TM, Gaskill PJ, et al. Dopamine increases CD14+CD16+ monocyte migration and adhesion in the context of substance abuse and HIV neuropathogenesis. PLoS One. 2015;10(2):e0117450. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0117450
  29. Chuluundorj D, Harding SA, Abernethy D, et al. Glatiramer acetate treatment normalized the monocyte activation profile in MS patients to that of healthy controls. Immunol Cell Biol. 2017;95(3):297-305.  https://doi.org/10.1038/icb.2016.99
  30. Gjelstrup MC, Stilund M, Petersen T, et al. Subsets of activated monocytes and markers of inflammation in incipient and progressed multiple sclerosis. Immunol Cell Biol. 2018;96(2):160-174.  https://doi.org/10.1111/imcb.1025
  31. Haschka D, Tymoszuk P, Bsteh G, et al. Expansion of Neutrophils and Classical and Nonclassical Monocytes as a Hallmark in Relapsing-Remitting Multiple Sclerosis. Front Immunol. 2020;11:594.  https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.00594
  32. Böttcher C, Schlickeiser S, Sneeboer MAM, et al. Human microglia regional heterogeneity and phenotypes determined by multiplexed single-cell mass cytometry. Nat Neurosci. 2019;22(1):78-90.  https://doi.org/10.1038/s41593-018-0290-2
  33. Kong BS, Kim Y, Kim GY, et al. Increased frequency of IL-6-producing non-classical monocytes in neuromyelitis optica spectrum disorder. J Neuroinflammation. 2017;14(1):191.  https://doi.org/10.1186/s12974-017-0961-z
  34. Huitinga I, van Rooijen N, de Groot CJ, et al. Suppression of experimental allergic encephalomyelitis in Lewis rats after elimination of macrophages. J Exp Med. 1990;172(4):1025-1033. https://doi.org/10.1084/jem.172.4.1025
  35. Weber MS, Starck M, Wagenpfeil S, et al. Multiple sclerosis: glatiramer acetate inhibits monocyte reactivity in vitro and in vivo. Brain. 2004;127(Pt 6):1370-1378. https://doi.org/10.1093/brain/awh163
  36. Mishra MK, Yong VW. Myeloid cells — targets of medication in multiple sclerosis. Nat Rev Neurol. 2016;12(9):539-551.  https://doi.org/10.1038/nrneurol.2016.110
  37. Rasouli J, Casella G, Ishikawa LLW, et al. IFN-β Acts on Monocytes to Ameliorate CNS Autoimmunity by Inhibiting Proinflammatory Cross-Talk Between Monocytes and Th Cells. Front Immunol. 2021;12:679498. https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.679498
  38. Walter GJ, Evans HG, Menon B, et al. Interaction with activated monocytes enhances cytokine expression and suppressive activity of human CD4+CD45ro+CD25+CD127(low) regulatory T cells. Arthritis Rheum. 2013;65(3):627-638.  https://doi.org/10.1002/art.37832
  39. Ushigome Y, Mizukawa Y, Kimishima M, et al. Monocytes are involved in the balance between regulatory T cells and Th17 cells in severe drug eruptions. Clin Exp Allergy. 2018;48(11):1453-1463. https://doi.org/10.1111/cea.13252
  40. Ginhoux F, Greter M, Leboeuf M, et al. Fate mapping analysis reveals that adult microglia derive from primitive macrophages. Science. 2010;330(6005):841-845.  https://doi.org/10.1126/science.1194637
  41. Bar-Or A, Nuttall RK, Duddy M, et al. Analyses of all matrix metalloproteinase members in leukocytes emphasize monocytes as major inflammatory mediators in multiple sclerosis. Brain. 2003;126(Pt 12):2738-2749. https://doi.org/10.1093/brain/awg285
  42. Rempe RG, Hartz AMS, Bauer B. Matrix metalloproteinases in the brain and blood-brain barrier: Versatile breakers and makers. J Cereb Blood Flow Metab. 2016;36(9):1481-1507. https://doi.org/10.1177/0271678X16655551

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.