Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Елисеева Д.Д.

ФГБНУ «Научный центр неврологии»

Захарова М.Н.

ФГБНУ «Научный центр неврологии»

Механизмы нейродегенерации при рассеянном склерозе

Авторы:

Елисеева Д.Д., Захарова М.Н.

Подробнее об авторах

Прочитано: 8186 раз


Как цитировать:

Елисеева Д.Д., Захарова М.Н. Механизмы нейродегенерации при рассеянном склерозе. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. Спецвыпуски. 2022;122(7‑2):5‑13.
Eliseeva DD, Zakharova MN. Mechanisms of Neurodegeneration in Multiple Sclerosis. S.S. Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry. 2022;122(7‑2):5‑13. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/jnevro20221220725

Рекомендуем статьи по данной теме:
Ла­зер­ная те­ра­пия при рас­се­ян­ном скле­ро­зе: обос­но­ва­ние и оп­ти­ми­за­ция ме­то­дик при­ме­не­ния. (Об­зор ли­те­ра­ту­ры). Воп­ро­сы ку­рор­то­ло­гии, фи­зи­оте­ра­пии и ле­чеб­ной фи­зи­чес­кой куль­ту­ры. 2024;(5):45-56
Хи­рур­ги­чес­кое ле­че­ние вто­рич­ной три­ге­ми­наль­ной нев­рал­гии. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(11):203-209
Ка­чес­тво жиз­ни па­ци­ен­тов с рас­се­ян­ным скле­ро­зом в Смо­лен­ской об­лас­ти. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(12):36-40
Гор­мо­наль­ные ме­то­ды кон­тра­цеп­ции и рас­се­ян­ный скле­роз. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(1):24-30
Эпи­де­ми­оло­гия рас­се­ян­но­го скле­ро­за в Но­во­си­бир­ске. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(1):119-127

Рассеянный склероз (РС) — хроническое воспалительное заболевание центральной нервной системы, которое приводит к формированию очагов демиелинизации в белом и сером веществе и диффузному поражению аксонов и нейронов [1]. РС является одной из основных причин неврологической инвалидизации у лиц молодого возраста. Результаты обсервационных исследований позволили расширить наши представления о естественном течении РС. В большинстве случаев течение РС представлено развитием острой ремиттирующей фазы, во время которой происходят проникновение эффекторных иммунных клеток через гематоэнцефалический барьер (ГЭБ), инфильтрация ткани ЦНС и развитие воспаления с образованием острых активных очагов демиелинизации, а также постепенным прогрессированием нейродегенеративных изменений, характеризующихся истончением и разрывом аксонов, гибелью нейронов и ускоренным нарастанием атрофии головного мозга, что приводит к накоплению тяжелого неврологического дефицита. Воспаление и нейродегенерация протекают относительно зависимо друг от друга [2].

В 85% случаев РС начинается на третьем десятилетии жизни с ремиттирующего типа течения (РРС). По прошествии 15—20 лет от появления первых симптомов РС большинство пациентов вступают в фазу медленного прогрессирования с постепенным нарастанием неврологического и когнитивного дефицита. Такое течение заболевания принято определять как вторично-прогрессирующий РС (ВПРС), при котором может еще сохраняться незначительная воспалительная активность [3]. У небольшого (приблизительно 10%) числа пациентов заболевание с самого начала имеет прогрессирующее течение без четко очерченных периодов обострений (первично-прогрессирующий РС — ППРС). Средний возраст начала ППРС примерно на 10 лет позже, чем РРС [4]. Несмотря на различия в начальных этапах РРС и ППРС, механизмы прогрессирующей нейродегенерации при этих типах течения заболевания очень схожи. Также выделяют агрессивные и атипичные формы РС (Марбурга, псевдотуморозный вариант РС), которые протекают с массивным поражением ЦНС. Причина, по которой встречаются такие разные типы поражения ЦНС при РС, остается до конца не ясной. В связи с этим возникает вопрос: различные по интенсивности воспалительные паттерны — это проявления одного и того же заболевания или принципиально другие нозологические формы [5]. До сих пор не идентифицирован аутоантиген, запускающий выработку специфических антител и активацию эффекторных лимфоцитов при РС. Многие исследователи предполагают, что РС имеет первичную аутоиммунную этиологию. Большое количество научных работ, проведенных за последние несколько десятилетий, было сосредоточено на раскрытии иммунологических причин и молекулярных мишеней, благодаря чему обнаружены прочные генетические ассоциации с механизмами иммунной регуляции, выяснены механизмы иммунной атаки на ЦНС. Наблюдение за естественным течением РС выявило ряд несоответствий, которые ставят под сомнение предположение об исключительно аутоиммунной теории развития РС. Другая точка зрения предполагает, что РС является нейродегенеративным заболеванием, а первоначальный сбой происходит внутри ЦНС. Эта альтернативная модель утверждает, что первичная нейродегенерация, возможно, сфокусированная на комплексе олигодендроцит—миелин, является начальным событием и, высвобождая высокоантигенные компоненты, вторично способствует запуску каскада иммунопатологических процессов [6]. В этом случае возможно объяснить существование ППРС и диффузной потери миелина, олигодендроцитов, аксонов и нейронов в неизмененном белом и сером веществе, выявляемых уже на ранних этапах РС, но преобладающих на более поздних стадиях РС [7].

Остается спорным вопрос о влиянии обострений на долгосрочную инвалидизацию. Известно, что прогрессирование РС и достижение выраженной нетрудоспособности как при ВПРС, так и при ППРС происходят с одинаковой скоростью. С учетом того, что при ППРС отсутствуют эпизоды обострений, данное обстоятельство подчеркивает низкую степень влияния рецидивов заболевания на окончательное накопление инвалидизации [8]. Изучение естественного течения РС позволяет предполагать, что частые обострения в начале заболевания, короткий интервал между первыми двумя атаками РС, ранний остаточный неврологический дефицит с вовлечением пирамидных и мозжечковых путей связаны с большей выраженностью инвалидизации в последующем [9]. Напротив, рецидивы, возникающие на более позднем этапе болезни, не оказывают заметного влияния в прогрессирование нетрудоспособности. Таким образом, высокая частота рецидивов на ранних стадиях заболевания является предиктором тяжелой инвалидизации [10].

По мере перехода РС во вторичное прогрессирование аутоиммунные реакции на периферии угасают и воспаление распространяется в ЦНС за сохранный ГЭБ. Скопления макрофагов, B- и T-лимфоцитов преобладают в лептоменингеальных оболочках, в большинстве случаев с формированием фолликулоподобных структур, которые вырабатывают множество растворимых медиаторов, способствующих поражению нейронов головного мозга и антеградной дегенерации аксонов. В процесс хронического воспаления вовлекается резидентная микроглия, секретирующая активные формы кислорода и оксид азота. Развивающийся окислительный стресс приводит к прямому повреждению клеток, дисфункции митохондрий и гипоксии. Активированная микроглия и немногочисленные периваскулярные инфильтраты диффузно распространяются по белому и серому веществу, которое выглядит неизмененным, но содержит поврежденные аксоны и нейроны. При прогрессировании РС и старении организма становится заметным накопление токсического железа в глубоком сером веществе и вокруг хронических очагов. Ионы железа оказывают нейротоксическое действие и усиливают окислительные процессы. Блок дифференцировки миелинобразующих олигодендроцитов ведет к недостаточной ремиелинизации. В совокупности эти механизмы приводят к распространенному нейроаксональному повреждению и атрофии головного мозга [11].

Поражение белого вещества ЦНС при РС

Миелин является основной мишенью иммунной атаки. Первым повреждается и подвергается деградации миелинолигодендроцитарный гликопротеин (МОГ), имеющий самую низкую молекулярную массу и экспрессирующийся на самой внешней поверхности миелиновой оболочки. Несколько позже происходит повреждение других белков с более высокой молекулярной массой, в частности основного белка миелина (ОБМ) и миелин-ассоциированного гликопротеина (МАГ) — структурного белка, входящего в состав мембраны олигодендроцитов [12]. Возникновение острых очагов РС характеризуется обширной инфильтрацией макрофагами (CD68+), которые содержат продукты распада миелина (ОБМ, МОГ и МАГ). С течением времени участки острого поражения претерпевают ряд морфологических изменений. Более поздние острые очаги демиелинизации характеризуются уже многочисленным скоплением макрофагов, содержащих неспецифические липидные остатки, в них отсутствуют МОГ и МАГ. T- и B-клетки в этих очагах не только периваскулярно локализуются, но и диффузно распространяются по всей области поражения. Далее острые поражения преобразуются в хронические активные очаги («тлеющие бляшки»), характеризующиеся зонами как активного, так и неактивного воспаления. Лимфоцитарные и макрофагально-микроглиальные инфильтраты перемещаются к периферии очага, формируют воспалительный ободок, при этом центральная часть такого очага характеризуется менее выраженной клеточной инфильтрацией, но выраженной демиелинизацией с признаками дегенерации аксонов и гипертрофии астроцитов. В краевых зонах «тлеющих бляшек» можно наблюдать начинающиеся процессы неполной ремиелинизации. Хронические активные очаги («выгорающие бляшки») резко отграничены от окружающей ткани. В них уже практически существует активное разрушение миелина и имеется лишь незначительное количество T-клеток и микроглии/макрофагов. «Выгорающие бляшки» практически лишены олигодендроглии, и плотность аксонов резко снижена, что говорит об их дегенерации. Также отмечается крайне низкое количество клеток-предшественников олигодендроцитов, что препятствует ремиелинизации. Интенсивный астроглиоз в итоге превращает бляшку в астроглиальный рубец [13]. При РРС преобладает классическое активное очаговое поражение белого вещества. С течением времени у пациентов при переходе заболевания в прогрессирующую стадию активные бляшки встречаются реже, преобладают «тлеющие» и «выгорающие» очаги [14].

Помимо очаговых повреждений белого вещества ЦНС, у пациентов с РС обнаруживается диффузно измененное белое вещество, представляющее области периваскулярной и интерстициальной воспалительной инфильтрации с нечеткими границами, окружающие бляшки. Во внешне неизмененном белом веществе при микроскопическом исследовании выявляются диффузная активация микроглии и немногочисленные скопления лимфоцитов. Типичными для этих зон являются диффузная потеря миелина, истончение аксонов и пролиферация астроглии [15].

Очаги РС характеризуются значительным гистопатологическим разнообразием — от разной степени воспалительного демиелинизирующего поражения, при котором еще сохранены миелин, аксоны, олигодендроциты и имеется возможность ремиелинизации, до формирования хронических глиальных рубцов. Нейроаксональное поражение не ограничивается только бляшками РС, а распространяется далеко за их пределы.

Иммуногистопатологические изменения при РС

На первых этапах развития РС аутореактивные CD4+ и CD8+ T-лимфоциты, B-клетки (CD20+) и макрофаги (CD68+) с разными кластерами дифференцировки (Cluster of differentiation, CD), праймированные антигеном на периферии, преодолевают поврежденный ГЭБ за счет взаимодействия между интегринами лимфоцитов и молекулами адгезии на поверхности эндотелиальных клеток в условиях повышенной продукции провоспалительных цитокинов [16]. Далее различные субпопуляции лимфоцитов скапливаются вокруг сосудов, образуя плотные инфильтраты, которые инициируют демиелинизирующее поражение. На ранних стадиях высока роль CD4+ T-лимфоцитов, особенно подтипа Th17, образование которых опосредовано трансформирующим фактором роста бета и интерлейкином-6 (ИЛ-6). Во время развития аутоиммунной атаки наблюдается дихотомия наивных CD4+ T-лимфоцитов, они начинают экспрессировать маркеры, присущие Th17, в свою очередь снижается образование индуцированных регуляторных T-клеток с фенотипом CD4+CD25+FoxP3+, которые обеспечивают баланс между про- и противовоспалительной активностью иммунных клеток. Th17 являются высокоэнцефалитогенными за счет секреции большого количества ИЛ-17, который участвует в повреждении ГЭБ и стимуляции продукции медиаторов воспаления резидентными клетками ЦНС [17]. На самых ранних этапах развития РС CD4+ T-лимфоциты отвечают за рекрутирование макрофагов, осуществляющих антигенпрезентирующую функцию. CD4+ T-клетки участвуют в инициации иммуноопосредованной демиелинизации, но в последующем даже в острых очагах воспаления выявляются лишь их единичные представители [18].

Вне зависимости от типа течения РС в острых и хронических очагах демиелинизации в зонах компартментализированного воспаления, связанного с мозговыми оболочками, и в диффузно измененном или неизмененном белом и сером веществе преобладает инфильтрация цитотоксическими лимфоцитами (ЦТЛ) CD8+ T-лимфоцитами. Активированные CD8+ T-клетки могут участвовать в разрушении ГЭБ посредством перфорин-опосредованной активации астроцитов, изменения плотных контактов и индукции фактора роста эндотелия сосудов. ЦТЛ имеют сродство к главному комплексу гистосовместимости I, который высоко экспрессируют такие антигенпредставляющие клетки ЦНС, как олигодендроциты, астроциты, нейроны, эндотелиоциты. За счет формирования контактов с клетками CD8+ T-лимфоциты вызывают их апоптоз, опосредованный Fas-лигандом фактора некроза опухоли (ФНО) [19]. Прямое цитотоксическое действие CD8+ T-лимфоцитов на олигодендроглию и аксоны обусловлено также секрецией гранзима B и перфоринов [20]. Степень повреждения аксонов в активных очагах РС коррелирует со степенью инфильтрации ЦТЛ [21]. Значительный процент ЦТЛ в процессе развития аутоиммунного воспаления, особенно в прогрессирующей стадии, приобретает способность к продукции ИЛ-17 и в сочетании с секрецией интерферона гамма обусловливает апоптоз в хронических неактивных бляшках и неизмененном белом веществе [22]. Именно ЦТЛ отводится одна из ведущих патогенетических ролей в развитии как острых очагов демиелинизации, так и последующей компартментализации воспаления и поражения белого вещества ЦНС.

B-лимфоциты являются еще одной популяцией лимфоцитов, принимающих активное участие в развитии РС. B-лимфоциты обеспечивают гуморальный иммунный ответ на всех стадиях заболевания. В острой фазе развития аутоиммунного процесса при РС стимулированные антигеном и эффекторными T-клетками B-лимфоциты трансформируются в плазматические клетки, которые продуцируют иммуноглобулины (IgG). Попадая в ЦНС, плазматические клетки реализуют антителозависимую клеточную цитотоксичность, направленную в основном против нейронов и астроцитов, и в меньшей степени участвуют в повреждении миелина. Значение гуморального иммунного ответа подтверждается интратекальным синтезом олигоклональных IgG у пациентов с РС и является в большинстве случаев патогномоничным признаком заболевания. Другим направлением дифференцировки B-лимфоцитов как на периферии, так и за ГЭБ является образование долгоживущих B-клеток памяти, которые способны быстро активироваться при повторной встрече с антигеном и начать продуцировать большое количество IgG [23].

B-лимфоциты и плазматические клетки также являются частью воспалительных периваскулярных инфильтратов. B-лимфоциты экспрессируют главный комплекс гистосовместимости II, за счет чего способны презентировать антигены и привлекать T-лимфоциты в очаги воспаления. Клональная экспансия B-клеток и продукция провоспалительных цитокинов в основном за счет секреции высоких уровней ФНО-α и экзосом обусловливают апоптоз глиальных клеток. Следует отметить, что при прогрессировании РС наблюдается тенденция к увеличению инфильтрации мягкой мозговой оболочки B-лимфоцитами с образованием фолликулярных структур, которые приводят к демиелинизации прилежащего серого вещества и за счет продукции антител способствуют гибели нейронов, вызывая нарастание нейродегенеративных изменений. Предполагается, что B-клетки продуцируют цитотоксический растворимый фактор, который может вызывать как прямое поражение клеток глии и нейронов, так и опосредованное — через активацию микроглии, его действие может наблюдаться в отдалении от очагов демиелинизации, что объясняет диффузное поражение белого и серого вещества [24].

Компартментализация воспаления. Демиелинизация коркового и глубокого серого вещества

При прогрессирующих формах РС на периферии уже отсутствует активный аутоиммунный процесс, сопровождающийся повышением проницаемости ГЭБ и проникновением аутореактивных иммунных клеток, при этом воспаление продолжается и локализуется непосредственно в ЦНС. Воспалительные инфильтраты, состоящие из CD8+ T-клеток и B-клеток, в основном располагаются в лептоменингеальных оболочках и могут образовывать сложные агрегаты, имеющие черты третичных лимфатических фолликулов [25, 26]. Лептоменингеальное воспаление вносит вклад в демиелинизацию коры головного мозга и нейроаксональное повреждение и ассоциировано с менее благоприятным прогнозом [27].

Эктопические лимфоидные фолликулы (Ectopic Lymphoid Follicules, ELF), напоминающие герминативные узловые структуры, образуются при различных инфекционных, аутоиммунных и опухолевых заболеваниях. В мозговых оболочках глубоких борозд, полученных при исследовании аутопсийного материала пациентов с ВПРС, в 40% случаев выявляются ELF, которые имеют связь с тяжестью корковой дегенерации и прогрессированием инвалидизации [28, 29]. В источниках литературы определение ELF варьирует от «менингеальных очагов» (например, более 10 воспалительных клеток) до структур, схожих с лимфоидными узелками периферической лимфоидный ткани. Чтобы провести четкое разграничение между ELF и менингеальным воспалением, включающим диффузные B-клеточные инфильтраты, наиболее правильно определять ELF как крупные агрегаты B-клеток, локализованные в субарахноидальном пространстве внутри мозговых борозд, демонстрирующие некоторые признаки герминативных центров периферических лимфоидных фолликулов с наличием в их структуре фолликулярных (стромальных) дендритных клеток, фолликулярных T-хелперов, антиген-активированных пролиферирующих B-клеток, B-клеток памяти и плазматических клеток, но лишенных мантийной и маргинальной зон [30].

В процессе развития иммунного ответа, на начальном этапе образования фолликула, CD4+ и CD8+ T-клетки распознают антигенный пептид, представленный на молекуле главного комплекса гистосовместимости II, экспрессируемого дендритными клетками. Часть активированных T-хелперов за счет секреции определенных хемокинов преобразуется в фолликулярные T-хелперы и начинает контактировать с компартментализированными зонами B-клеток, стимулируя их дифференцировку и пролиферацию. Дендритные клетки посредством секреции хемокинов привлекают наивные и активированные B-лимфоциты, начиная формировать герминативный центр. Активно делящиеся антигенспецифичные B-клетки вытесняют покоящиеся B-лимфоциты на периферию, а сами трансформируются в B-клетки памяти или плазматические клетки [31]. Последние обладают способностью продуцировать антитела, напрямую повреждающие нейроны и астроциты, особенно в областях мозга рядом с крупными субпиальными поражениями, обусловливая демиелинизацию серого вещества и микроглиальную активацию в корковых структурах. Наличие ELF в мозговых оболочках связывают с ранним дебютом РС, более быстрым прогрессированием и смертью в молодом возрасте [32].

Интерес представляют результаты исследования, в котором, используя гибридизацию in situ, было обнаружено, что ELF в мозговых оболочках ряда пациентов с ВПРС являются основными зонами расположения B-клеток, экспрессирующих поздний литический антиген gp350 вируса Эпштейна—Барр (ВЭБ) и привлекающих CD8+ T-лимфоциты, перекрестно реагирующие на латентный антиген ВЭБ [33]. На основании крупномасштабных эпидемиологичских исследований, было показано, что пациенты с РС имеют более высокие титры антител к ВЭБ по сравнению со здоровыми. ВЭБ рассматривается как фактор риска развития РС [34].

Кроме того, у пациентов с ВПРС, имеющих ELF в оболочках переднего мозга, подобные структуры в небольшом количестве иногда выявляются и в менингеальных оболочках спинного мозга. Предполагается, что низкий процент выявления спинальных ELF связан с трудностью их идентификации, так как требуется обширный скрининговый поиск по всей протяженности спинного мозга, и наличие только одной борозды в его передней срединной щели может анатомически препятствовать накоплению крупных и организованных иммунных клеточных инфильтратов. Тем не менее наличие менингеальных ELF в головном мозге пациентов с ВПРС связано с бо́льшим инфильтративным B-клеточным поражением спинальных оболочек, что ассоциировано с непрерывно текущей дегенерацией нейронов и аксонов в спинном мозге [35]. ELF — это гистопатологическая отличительная особенность именно ВПРС, при ППРС подобные структуры не выявляются. У пациентов с ППРС обнаруживаются диффузные менингеальные и периваскулярные инфильтраты T- и B-клеток, коррелирующие с тяжестью заболевания [36].

Клинико-радиологические находки демонстрируют, что когнитивные нарушения и прогрессирование инвалидизации у пациентов с РС ассоциированы не только с вовлечением белого вещества, но в большей степени обусловлены поражением коркового и глубокого серого вещества головного мозга [37]. Очаги демиелинизации в сером веществе при прогрессирующем РС подразделяют на четыре типа. Очаги первого типа являются смешанными, распространяясь через толщу белого вещества, они частично вовлекают серое вещество (14%). Другие типы очагов являются внутрикорковыми и отличаются по локализации и объему поражения серого вещества. Очаги второго типа локализуются исключительно внутри серого вещества и не переходят на поверхность коры (2,1%). Третий, наиболее частый тип, — очаги, прилежащие к мягкой мозговой оболочке и распространяющиеся вдоль субпиальных участков коры (67%). Именно этот тип очагов является причиной диффузной и компартментализованной инфильтрации менингеальных оболочек лимфоцитами. Наконец, очаги четвертого типа, не затрагивая белое вещество, поражают всю толщу коры головного мозга (17%) [38, 39]. Принято считать, что демиелинизация коркового вещества является отличительным признаком прогрессирующего РС [40]. Однако, согласно гистологическим исследованиям биоптатов мозговой ткани, в 38% случаев вовлечение серого вещества в патологический процесс наблюдается при клинически изолированном синдроме и на ранних стадиях РС, но в большей степени данные наблюдения характерны для высокоактивных и агрессивных форм заболевания с наличием крупных субкортикальных поражений, что может объяснить распространение воспалительного процесса на прилежащее к зонам поражения серое вещество [41]. Помимо этого, часто встречающиеся при РС субпиальные распространенные очаги (3-й тип), захватывающие обширные области коры и проникающие в глубокие слои по ходу инвагинаций поверхности мозга, способны вызывать менингеальное воспаление. Лимфоциты и макрофаги в оболочках мозга могут диффундировать из субарахноидального пространства в подлежащую кору и за счет синтеза цитокинов, медиаторов воспаления и специфических антител усиливать воспалительный процесс в этой области, вызывая распространенную демиелинизацию и гибель нейронов [42].

Патологоанатомические исследования с использованием посмертных образцов мозговой ткани свидетельствуют и о патологии глубокого серого вещества у пациентов с РС. Наиболее часто встречаются поражения таламуса, гипоталамуса и хвостатых ядер, реже — гиппокампа и коры мозжечка [43]. Причинами атрофии глубокого серого вещества являются как очаговая демиелинизация, так и окислительное повреждение, обусловливающее снижение плотности синапсов и нарушение гомеостаза глутамата [44].

Ремиелинизация, астроглиоз и активация микроглии

Миелиновая оболочка состоит из высокоорганизованных богатых липидами слоев мембран, окружающих аксоны. Ее наличие способствует тому, что аксоны обладают высоким сопротивлением, обеспечивая эффективное и быстрое скачкообразное распространение нервных импульсов с оптимальным использованием пространства и энергии. Миелиновая оболочка играет важную роль в поддержании и защите аксонов, а также обеспечивает трофическую функцию [45]. Регенерация миелина ЦНС в основном опосредована мультипотентной паренхиматозной популяцией стволовых клеток — клеток-предшественников олигодендроцитов (Oligodendrocyte Precursor Cells, OPC). При поражении миелина OPC быстро амплифицируются в областях демиелинизации, где впоследствии дают начало миелинизирующим олигодендроцитам [46]. OPC представляют высокопролиферативные, подвижные биполярные клетки, экспрессирующие большое количество ганглиозидов, распознаваемых антителом A2B5, рецептором PDGF-альфа (PDGFαR) и протеогликаном NG2. Специализация и дифференцировка OPC регулируются транскрипционными факторами олигодендроцитов 1 и 2 [47]. OPC составляют 5—8% всех клеток ЦНС и диффузно распределены во взрослом мозге, с наибольшим скоплением в субвентрикулярной зоне, зрительном нерве, моторной коре, мозолистом теле и мозжечке. Указанные зоны являются резервуаром новых олигодендроцитов [48]. Олигодендроциты постоянно пролиферируют в здоровом мозге для поддержания своей клеточной плотности, но значительно медленнее, чем это происходит в детском возрасте или при повреждении [49]. Предполагается, что образование новых миелинизирующих олигодендроцитов является важным механизмом нейропластичности, что обусловлено их участием в регуляции гомеостаза ЦНС посредством влияния на глутаматергическую нейротрансмиссию [50]. Вновь образованные олигодендроциты принимают важное участие в формировании и преобразовании глиальных рубцов [51]. После повреждения миелина зрелые OPC, экспрессирующие NG2/PDGFαR, дифференцируются в олигодендроциты, способные к ремиелинизации аксонов и восстановлению нервной проводимости [52].

Считается, что для обеспечения ремиелинизации необходима активация OPC. Подобно другим регенеративным реакциям, ремиелинизация наиболее эффективно протекает на ранних активных стадиях развития очагов РС, которые характеризуются обилием воспалительных и липидсодержащих клеток, и где часто выявляются OPC, участвующие в формировании новой миелиновой оболочки, и их плотность в этих зонах сопоставима с таковой в окружающем белом веществе. Напротив, зрелые миелинизирующие олигодендроциты чрезвычайно редко встречаются в хронических участках поражения при РС, что, как предполагается, обусловлено блоком дифференцировки и остановки развития OPC на ранних стадиях [53]. Причины, по которым OPC не могут пройти курс полной дифференцировки в зрелые олигодендроциты, вероятно, определяются внутренними изменениями в популяции OPC или специфическим изменением очагов при прогрессирующем РС. Так, экспериментальное истощение макрофагов, T- и B-лимфоцитов отрицательно влияет на процессы ремиелинизации, сигналы, поступающие от этих клеток, являются движущей силой, стимулирующей активацию, рекрутинг и регуляцию дифференцировки OPC [54].

При хроническом поражении РС OPC могут присутствовать в достаточном количестве, но не активируются и не участвуют в ремиелинизации. Существует понятие «временное окно возможностей ремиелинизации», в течение которого может успешно проходить дифференцировка OPC. Открывается это окно после достаточной экспансии OPC и закрывается конверсией острого воспаления в хроническое [55]. В результате полностью ремиелинизированные очаги сравнительно редко встречаются на поздних стадиях РС. Однако во многих участках поражения восстановление миелина не прекращается полностью, а остается ограниченным небольшим ободком новообразованных миелиновых оболочек на границе области поражения, которые представляют из себя так называемые теневые бляшки [56].

В процессах прогрессирующей нейроаксональной гибели при РС важная роль отводится активированным по разным причинам макрофагам и микроглии. Активированная микроглия выявляется как в очагах поражения белого и серого вещества, так и в неизмененном белом и сером веществе на ранних и поздних стадиях РС. Микроглия представлена резидентными иммунными клетками ЦНС, которые происходят от миелоидных предшественников, и играет важную роль в развитии ЦНС, иммунном надзоре и восстановлении за счет экспрессии основных антигенов гистосовместимости, секреции множества провоспалительных и противовоспалительных цитокинов, таких как ИЛ-1, ФНО-α и ИЛ-10 [57]. Микроглия способна реализовывать как антителозависимую, так и комплиментзависимую клеточную цитотоксичность за счет экспрессии Fc-рецепторов и рецепторов комплемента. В экспериментальных моделях показано, что микроглия имеет различную морфологию во время демиелинизации и ремиелинизации [58]. Микроглия способствует ремиелинизации посредством экспрессии противовоспалительных молекул, фагоцитоза продуктов деградации миелина и восстановления тканей [59, 60]. Также микроглия представляет антигены и секретирует провоспалительные молекулы, которые могут разрушить миелиновую оболочку и/или олигодендроциты. В качестве антигенпрезентирующих клеток микроглия участвует в перекрестных взаимодействиях с другими иммунными клетками, такие взаимодействия приводят к активации T-клеток в ходе демиелинизации и ремиелинизации при РС [61]. Окислительный стресс в активированной микроглии и макрофагах считается основным источником активных форм кислорода, перекисей, свободных радикалов и оксида азота при РС [62].

Степень окисления липидов и ДНК коррелирует с воспалением и окислительным повреждением олигодендроцитов и нейронов. В очагах демиелинизации обнаружена повышенная экспрессия окислительных молекул и антиоксидантных ферментов, что указывает на их роль в процессах демиелинизации и нейродегенерации при РС [63]. Таким образом, активированная микроглия/макрофаги является важной причиной окислительного стресса, к которому крайне чувствительны нейроны и OPC [64].

Астроглиоз также является одним из патологических признаков РС. Астроциты играют активную роль как в демиелинизации, так и в нарушении ремиелинизации, регулируя перенос периферических иммунных клеток, модулируя целостность ГЭБ, являясь источником ряда хемокинов и цитокинов. Активация астроцитов и потеря их концевых ножек вокруг мелких кровеносных сосудов представляет раннее событие в развитии нарушения ГЭБ [65]. Активация астроцитов усиливает экспрессию васкулоэндотелиального фактора роста-А, что вызывает снижение активности белков, составляющих плотные соединения эндотелиальных клеток, и приводит к повреждению ГЭБ [66]. Экспрессия молекулы сосудистой адгезии-1 астроцитами имеет решающее значение для инвазии T-клеток в паренхиму ЦНС [67]. В очагах демиелинизации астроциты пролиферируют и участвуют в образовании глиальных рубцов, состоящих из густой сети гипертрофированных клеток. Эти реактивные астроциты имеют выраженные изменения уровня экспрессии молекул адгезии, цитокинов, факторов роста, рецепторов ферментов и ингибиторов протеаз, которые влияют на процессы эволюции очагов при РС. Формирование глиального рубца имеет решающее значение для восстановления целостности ГЭБ, однако при демиелинизации он создает физический барьер, препятствующий проникновению OPC в пораженную область [68]. В свою очередь реактивные астроциты на границе активных очагов при РС экспрессируют молекулы хемоаттрактантов для OPC, индуцируя их миграцию к демиелинизированной бляшке, что может быть важно для ремиелинизации [69]. Астроциты имеют многочисленные связи с нейронами и способны регулировать уровень нейротрансмиттеров, в частности глутамата. В очагах поражения и корковом сером веществе при РС выявляются функциональная несостоятельность астроцитов и повышенная концентрация глутамата, что ассоциировано с худшими исходами заболевания [70].

Окислительный стресс и повреждение митохондрий

Окислительное повреждение играет важную роль в патогенезе РС. OPC особенно чувствительны к окислительному стрессу, потому имеют низкий уровень антиоксидантных ферментов и антиапоптотических белков и более высокий — проапоптотических белков [71, 72]. Окислительный стресс в активированной микроглии и макрофагах считается основным источником активных форм кислорода и оксида азота при РС [73, 74]. Активированная микроглия является важной причиной окислительного повреждения, она запускает процесс гистотоксической гипоксии, под которой понимают состояние сниженного потребления кислорода и энергетическую недостаточность вследствие митохондриального повреждения в условиях нормального кровоснабжения и кислородного обеспечения. Развитие гистотоксической гипоксии имеет непосредственную связь с валлеровской дегенерацией аксонов и гибелью нейронов при прогрессирующем РС. Механизм развития повреждения митохондрий при РС объясняется трехступенчатой гипотезой. На первом этапе в ответ на демиелинизацию происходит группировка и скопление нормальных митохондрий. Отмечается увеличение количества, размера, активности и скорости движения митохондрий в демиелинизированном аксоне в качестве защитного механизма. На втором этапе, который наблюдается в предпрогрессирующей стадии РС, продукты воспаления повреждают хромосомы клеток, в том числе нейронов, в очагах поражения, что ведет к дисфункции цитохром-C-оксидазы и развитию дефицита энергии. В ответ на окислительный стресс происходит мутация митохондриальной ДНК и увеличение копий аномальных хромосом. На финальной стадии развивается дефицит ферментов дыхательной цепи в нейронах, их тела становятся резервуаром аномальных митохондрий, которые постепенно подвергаются перемещению в демиелинизированный аксон, вызывают энергетический дисбаланс и повышенную продукцию активных форм кислорода в аксоне. Развиваются хронический клеточный стресс и дисбаланс ионного гомеостаза, что приводит к гибели аксонов и нейронов [75].

Нарушение гомеостаза железа

Железо является важным кофактором многих процессов в ЦНС, включая образование миелина олигодендроцитами [76]. При нормальном гомеостазе обмен железа обеспечивают в ЦНС расположенные на поверхности клеток импортеры и экспортеры ионов железа, ферроксидазы и трансферрин, способствуя транспорту железа во внутриклеточное депо [77]. Воспалительная инфильтрация ЦНС и повышенная секреция таких провоспалительных цитокинов, как ФНО-α и ИЛ-6, индуцируют системный синтез основного регулятора железа гепсидина. Последний в свою очередь снижает экспрессию транспортера двухвалентного металла 1 и ферропортина на нейронах и микроглии, что ведет к повышенному внутриклеточному накоплению токсических ионов железа и усиливает окислительное повреждение клеток [78]. В дополнение к этому нейродегенерацию усиливает накопление железа в интерстициальном пространстве. Железо хранится в виде ферритина в миелиновых пластинах. При дегенерации олигодендроцитов и миелина железо высвобождается во внеклеточное пространство и может фагоцитироваться микроглией и макрофагами [79]. Дегенерация этих миелоидных клеток способствует отложению железа в межклеточном пространстве и усиливает окислительный стресс [80]. С помощью МРТ в режиме SWI (изображений, взвешенных по магнитной восприимчивости, — Susceptibility Weighted Imaging) и гистологических исследований в краевой зоне медленно увеличивающихся хронических очагов демиелинизации и глубоком сером веществе обнаружена повышенная аккумуляция железа [81]. Участки поражения при ВПРС, окруженные ободком железа, имеют более выраженные деструктивные изменения [82]. МРТ-исследования продемонстрировали, что накопление железа в глубоком сером веществе наблюдается уже на ранних стадиях заболевания, его уровень постепенно нарастает по мере прогрессирования РС [83]. Повышенный уровень железа в глубоком сером веществе приводит к нарушению связи серого и белого вещества и обусловливает в итоге утрату целостности ткани ЦНС [84]. Нарушения обмена железа в мозговой ткани, связанные с повышенным накоплением как в клетках, так и в интерстиции, ассоциированы с прогрессированием инвалидизации у пациентов с РС. Продолжительность РС и старение организма вносят дополнительный вклад, обусловленный возрастзависимым отложением железа [85].

Заключение

В настоящее время мы не можем с уверенностью сказать, какой процесс запускает каскад иммуноопосредованной гибели нейронов и аксонов при РС. Существует много доказательств как первичной демиелинизации, так и первичной цитодегенерации, в ответ на которую развивается воспаление в ЦНС. Тем не менее, согласно данным многоцентровых рандомизированных клинических исследований, чем в более ранние сроки начата высокоактивная терапия, направленная на различные иммунные мишени, тем лучшие исходы наблюдаются у пациентов [86]. Понимание механизмов, лежащих в основе прогрессирования нейродегенерации при РС, важно для разработки эффективных лекарственных средств, мишенью для которых должно быть не только аутоиммунное воспаление, но и предупреждение/подавление механизмов нейроаксональной гибели.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Lassmann H, Brück W, Lucchinetti C. The immunopathology of multiple sclerosis: an overview. Brain pathology (Zurich, Switzerland). 2007;17(2):210-218.  https://doi.org/10.1111/j.1750-3639.2007.00064.x
  2. Adamczyk-Sowa M, Adamczyk B, Kułakowska A, et al. Secondary progressive multiple sclerosis — from neuropathology to definition and effective treatment. Neurol Neurochirurgia Pol. 2020;54(5):384-398.  https://doi.org/10.5603/PJNNS.a2020.0082
  3. Weinshenker B, Reich D, Lucchinetti C, et al. The natural history of multiple sclerosis: a geographically based study. NEJM. 2018;378;169-180.  https://doi.org/10.1093/brain/112.1.133
  4. Lublin FD, Reingold SC, Cohen JA, et al. Defining the clinical course of multiple sclerosis: the 2013 revisions. Neurology. 2014;83(3):278-286.  https://doi.org/10.1212/WNL.0000000000000560
  5. Hohlfeld R, Dornmair K, Meinl E, et al. The search for the target antigens of multiple sclerosis, part 1: autoreactive CD4+ T lymphocytes as pathogenic effectors and therapeutic targets. Lancet Neurol. 2016;15(2):198-209.  https://doi.org/10.1016/S1474-4422(15)00334-8
  6. Trapp BD, Nave K. Multiple sclerosis: an immune or neurodegenerative disorder? Ann Rev Neurosci. 2008;31:247-269.  https://doi.org/10.1146/annurev.neuro.30.051606.094313
  7. Stys P, Zamponi G, van Minnen J, et al. Will the real multiple sclerosis please stand up? Nat Rev Neurosci. 2012;13(7):507-514.  https://doi.org/10.1038/nrn3275
  8. Confavreux C, Vukusi S. Natural history of multiple sclerosis: a unifying concept. Brain J Neurol. 2006;129(Pt 3):606-616.  https://doi.org/10.1093/brain/awl007
  9. Novotna M, Paz Soldán M, Abou Zeid N, et al. Poor early relapse recovery affects onset of progressive disease course in multiple sclerosis. Neurology. 2015;85(8):722-729.  https://doi.org/10.1212/WNL.0000000000001856
  10. Scalfari A, Neuhaus A, Degenhard A, et al. The natural history of multiple sclerosis: a geographically based study 10. Brain J Neurol. 2010;133(Pt 7):1914-1929. https://doi.org/10.1093/brain/awq118
  11. Yong H, Yong VW. Mechanism-based criteria to improve therapeutic outcomes in progressive multiple sclerosis. Nat Rev Neurol. 2022;18(1):40-55.  https://doi.org/10.1038/s41582-021-00581-x
  12. Sádaba M, Tzartos J, Paíno C, et al. Axonal and oligodendrocyte-localized IgM and IgG deposits in MS lesions. J Neuroimmunol. 2012;247(1-2):86-94.  https://doi.org/10.1016/j.jneuroim.2012.03.020
  13. Kuhlmann T, Ludwin S, Prat A, et al. An updated histological classification system for multiple sclerosis lesions. Acta Neuropathol. 2017;133(1):13-24.  https://doi.org/10.1007/s00401-016-1653-y
  14. Frischer J, Weigand S, Guo Y, et al. Clinical and pathological insights into the dynamic nature of the white matter multiple sclerosis plaque. Ann Neurol. 2015;78(5):710-721.  https://doi.org/10.1002/ana.24497
  15. Mahad DH, Trapp BD, Lassmann H. Pathological mechanisms in progressive multiple sclerosis. The Lance. Neurol. 2015;14(2):183-193.  https://doi.org/10.1016/S1474-4422(14)70256-X
  16. Hauser SL, Oksenberg JR. The neurobiology of multiple sclerosis: genes, inflammation, and neurodegeneration. Neuron. 2006;52(1):61-76.  https://doi.org/10.1016/j.neuron.2006.09.011
  17. Kebir H, Kreymborg K, Ifergan I, et al. Human TH17 lymphocytes promote blood-brain barrier disruption and central nervous system inflammation. Nature Med. 2007;13(10):1173-1175. https://doi.org/10.1038/nm1651
  18. van Nierop GP, van Luijn MM, Michels SS, et al. Phenotypic and functional characterization of T cells in white matter lesions of multiple sclerosis patients. Acta Neuropathol. 2017;134(3):383-401.  https://doi.org/10.1007/s00401-017-1744-4
  19. Mockus T, Munie A, Atkinson J, et al. Encephalitogenic and Regulatory CD8 T Cells in Multiple Sclerosis and Its Animal Models. J Immunol (Baltimore, Md.: 1950). 2021;206(1):3-10.  https://doi.org/10.4049/jimmunol.2000797
  20. Na S, Hermann A, Sanchez-Ruiz M, et al. Oligodendrocytes enforce immune tolerance of the uninfected brain by purging the peripheral repertoire of autoreactive CD8+ T cells. Immunity. 2012;37(1):134-146.  https://doi.org/10.1016/j.immuni.2012.04.009
  21. Neumann H, Medana I, Bauer J, et al. Cytotoxic T lymphocytes in autoimmune and degenerative CNS diseases. Trends Neuroscis. 2002;25(6):313-319.  https://doi.org/10.1016/s0166-2236(02)02154-9
  22. Tzartos J, Friese M, Craner M, et al. Interleukin-17 production in central nervous system-infiltrating T cells and glial cells is associated with active disease in multiple sclerosis. Am J Pathol. 2008;172(1):146-155.  https://doi.org/10.2353/ajpath.2008.070690
  23. Lisak R, Benjamins J, Nedelkoska L, et al. Secretory products of multiple sclerosis B cells cytotoxic to oligodendroglia in vitro. J Neuroimmunol. 2012;246(1-2):85-95.  https://doi.org/10.1016/j.jneuroim.2012.02.015
  24. Machado-Santos J, Saji E, Tröscher A, et al. The compartmentalized inflammatory response in the multiple sclerosis brain is composed of tissue-resident CD8+ T lymphocytes and B cells. Brain J Neurol. 2018;141(7):2066-2082. https://doi.org/10.1093/brain/awy151
  25. Abramova AA, Zakroyshchikova IV, Krotenkova IA, et al. Leptomeningeal B-cell follicles in multiple sclerosis: a role in the pathogenesis and prognostic value. Zhurnal Nevrologii i Psikhiatrii im. S.S. Korsakova. 2019;119(10. Vyp. 2):21-27.  https://doi.org/10.17116/jnevro20191191021
  26. Harrison D, Wang K, Fiol J, et al. Leptomeningeal Enhancement at 7T in Multiple Sclerosis: Frequency, Morphology, and Relationship to Cortical Volume. J Neuroim. 2017;27(5):461-468.  https://doi.org/10.1111/jon.12444
  27. Lassmann H. Pathogenic Mechanisms Associated With Different Clinical Courses of Multiple Sclerosis. Front Immunol. 2019;9:3116-3119. https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.03116
  28. Magliozzi R, Howell O, Vora A, et al. Meningeal B-cell follicles in secondary progressive multiple sclerosis associate with early onset of disease and severe cortical pathology. Brain. 2007;130(Pt 4):1089-1104. https://doi.org/10.1093/brain/awm038
  29. Howell OW, Reeves CA, Nicholas R, et al. Meningeal inflammation is widespread and linked to cortical pathology in multiple sclerosis. Brain. 2011;134(9):2755-2771. https://doi.org/10.1093/brain/awr182
  30. Aloisi F, Serafini B, Magliozzi R, et al. Detection of Epstein- Barr virus and B-cell follicles in the mul-tiple sclerosis brain: what you find depends on how and where you look. Brain. 2010;133(Pt 12):e157. https://doi.org/10.1093/brain/awr221
  31. Serafini B, Rosicarelli B, Magliozzi R, et al. Detection of ectopic B-cell follicles with germinal centers in the meninges of patients with secondary progressive multiple sclerosis. Brain Pathol. 2004;14:164-174.  https://doi.org/10.1111/j.1750-3639.2004.tb00049.x
  32. Mitsdoerffer M, Peters A. Tertiary Lymphoid Organs in Central Nervous System Autoimmunity. Front Immunol. 2016;7:451.  https://doi.org/10.3389/fimmu.2016.00451
  33. Veroni C, Serafini B, Rosicarelli B, et al. Transcriptional profile and Epstein Barr virus infection status of lasercut immune infiltrates from the brain of patients with progressive multiple sclerosis. J Neuroinflammation. 2018;15:18.  https://doi.org/10.1186/s12974-017-1049-5
  34. Ascherio A, Munger K. Epidemiology of Multiple Sclerosis: From Risk Factors to Prevention-An Update. Sem Neurol. 2016;36(2):103-114.  https://doi.org/10.1055/s-0036-1579693
  35. Reali C, Magliozzi R, Roncaroli, F, et al. B cell rich meningeal inflammation associates with increased spinal cord pathology in multiple sclerosis. Brain Pathol. (Zurich, Switzerland). 2020;30(4):779-793.  https://doi.org/10.1111/bpa.12841
  36. Choi S, Howell O, Carassiti D, et al. Meningeal inflammation plays a role in the pathology of primary progressive multiple sclerosis. Brain J Neurol. 2012;135(10):2925-2937. https://doi.org/10.1093/brain/aws189
  37. Calabrese M, Agosta F, Rinaldi F, et al. Cortical lesions and atrophy associated with cognitive impairment in multiple sclerosis. Arch Neurol. 2009;66(9):1144-1150. https://doi.org/10.1001/archneurol.2009.174
  38. Bø L, Vedeler C, Nyland H, et al. Subpial Demyelination in the Cerebral Cortex of Multiple Sclerosis Patients. J Neuropathol Exper Neurol. 2003;62(7):723-732.  https://doi.org/10.1093/jnen/62.7.723
  39. Harrison D, Roy S, Oh J, et al. Association of Cortical Lesion Burden on 7-T Magnetic Resonance Imaging With Cognition and Disability in Multiple Sclerosis. JAMA Neurol. 2015;72(9):1004-1012. https://doi.org/10.1001/jamaneurol.2015.1241
  40. Kutzelnigg A, Lucchinetti C, Stadelmann C, et al. Cortical demyelination and diffuse white matter injury in multiple sclerosis. Brain J Neurol. 2005;128(Pt 11):2705-2712. https://doi.org/10.1093/brain/awh641
  41. Lucchinetti CF, Popescu BF, Bunyan RF, et al. Inflammatory cortical demyelination in early multiple sclerosis. NEJM. 2011;365:2188-2197. https://doi.org/10.1056/NEJMoa1100648
  42. Blauth K, Soltys J, Matschulat A, et al. Antibodies produced by clonally expanded plasma cells in multiple sclerosis cerebrospinal fluid cause demyelination of spinal cord explants. Acta Neuropathol. 2015;130(6):765-781.  https://doi.org/10.1007/s00401-015-1500-6
  43. Chu R, Hurwitz S, Tauhid S, et al. Automated segmentation of cerebral deep gray matter from MRI scans: effect of field strength on sensitivity and reliability. BMC Neurol. 2017;17(1):172.  https://doi.org/10.1186/s12883-017-0949-4
  44. Haider L, Simeonidou C, Steinberger G, et al. Multiple sclerosis deep grey matter: the relation between demyelination, neurodegeneration, inflammation and iron. J Neurol Neurosurg Psych. 2014;85(12):1386-1395. https://doi.org/10.1136/jnnp-2014-307712
  45. Nave K, Werner H. Myelination of the nervous system: mechanisms and functions. Annu Rev Cell Dev Biol. 2014;30:503-533.  https://doi.org/10.1146/annurev-cellbio-100913-013101
  46. Franklin R, Goldman S. Glia Disease and Repair-Remyelination. Cold Spring Harb Persp Biol. 2015;7(7):a020594. https://doi.org/10.1101/cshperspect.a020594
  47. Mitew S, Hay C, Peckham H, et al. Mechanisms regulating the development of oligodendrocytes and central nervous system myelin. Neurosci. 2014;276:29-47.  https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2013.11.029
  48. Clarke L, Young K, Hamilton N, et al. Properties and fate of oligodendrocyte progenitor cells in the corpus callosum, motor cortex, and piriform cortex of the mouse. J Neurosci. 2012;32:8173-8185. https://doi.org/10.1523/jneurosci.0928-12.2012
  49. McTigue D, Wei P, Stokes B. Proliferation of NG2-positive cells and altered oligodendrocyte numbers in the contused rat spinal cord. J Neurosci. 2001;21(10):3392-3400. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.21-10-03392.2001
  50. Birey F, Kloc M, Chavali M, et al. Genetic and Stress-Induced Loss of NG2 Glia Triggers Emergence of Depressive-like Behaviors through Reduced Secretion of FGF2. Neuron. 2015;88(5):941-956.  https://doi.org/10.1016/j.neuron.2015.10.046
  51. Hughes E, Kang S, Fukaya M, et al. Oligodendrocyte progenitors balance growth self-repulsion to achieve homeostasis adult brain. Nat Neurosci. 2013;16(6):668-676.  https://doi.org/10.1038/nn.3390
  52. Zawadzka M, Rivers L, Fancy S, et al. CNS-resident glial progenitor/stem cells produce Schwann cells as well as oligodendrocytes during repair of CNS demyelination. Cell Stem Cell. 2010;6(6):578-590.  https://doi.org/10.1016/j.stem.2010.04.002
  53. Kuhlmann T, Miron V, Cui Q, et al. Differentiation block of oligodendroglial progenitor cells as a cause for remyelination failure in chronic multiple sclerosis. Brain J Neurol. 2008;131(7):1749-1758. https://doi.org/10.1093/brain/awn096
  54. Foote A, Blakemore F. Inflammation stimulates remyelination in areas of chronic demyelination. Brain J Neurol. 2005;128(Pt 3):528-539.  https://doi.org/10.1093/brain/awh417
  55. Mi S, Miller R, Tang W, et al. Promotion of central nervous system remyelination by differentiation of oligodendrocyte precursor cells. Ann Neurol. 2009;65(3):304-315.  https://doi.org/10.1002/ana.21581
  56. Patrikios P, Stadelmann C, Kutzelnigg A, et al. Remyelination is extensive in a subset of multiple sclerosis patients. Brain J Neurol. 2006;129(Pt 12):3165-3172. https://doi.org/10.1093/brain/awl217
  57. Ponomarev ED, Shriver LP, Maresz K, et al. Microglial cell activation and proliferation precedes the onset of CNS autoimmunity. J Neuroscie Res. 2005;81(3):374-389.  https://doi.org/10.1002/jnr.20488
  58. Xue J, Schmidt S, Sander J, et al. Transcriptome-based network analysis reveals a spectrum model of human macrophage activation. Immunity. 2014;40(2):274-288.  https://doi.org/10.1016/j.immuni.2014.01.006
  59. Benveniste E. Role of macrophages/microglia in multiple sclerosis and experimental allergic encephalomyelitis. J Mol Med (Berlin, Germany). 1997;75(3):165-173.  https://doi.org/10.1007/s001090050101
  60. Frohman E, Racke M, Raine C. Multiple sclerosis — the plaque and its pathogenesis. NEJM. 2006;354(9):942-955.  https://doi.org/10.1056/NEJMra052130
  61. Prinz M, Priller J. Microglia and brain macrophages in the molecular age: from origin to neuropsychiatric disease. Nat Rev Neurosci. 2014;15(5):300-312.  https://doi.org/10.1038/nrn3722
  62. Miller E, Wachowicz B, Majsterek I. Advances in antioxidative therapy of multiple sclerosis. Curr Med Chem. 2013;20(37):4720-4730. https://doi.org/10.2174/09298673113209990156
  63. Fischer M, Sharma R, Lim J, et al. NADPH oxidase expression in active multiple sclerosis lesions in relation to oxidative tissue damage. Brain J Neurol. 2012;135(3):886-899.  https://doi.org/10.1093/brain/aws012
  64. Haider L, Fischer M, Frischer J, et al. Oxidative damage in multiple sclerosis lesions. Brain J Neurol. 2011;134(Pt 7):1914-1924. https://doi.org/10.1093/brain/awr128
  65. Correale J, Farez M. The Role of Astrocytes in Multiple Sclerosis Progression. Front Neurol. 2015;6:180.  https://doi.org/10.3389/fneur.2015.00180
  66. Argaw A, Asp L, Zhang J, et al. Astrocyte-derived VEGF-A drives blood-brain barrier disruption in CNS inflammatory disease. J Clin Invest. 2012;122(7):2454-2468. https://doi.org/10.1172/JCI60842
  67. Gimenez M, Sim J, Russell J. TNFR1-dependent VCAM-1 expression by astrocytes exposes the CNS to inflammation. J Neuroimmunol. 2004;151(1-2):116-125.  https://doi.org/10.1016/j.jneuroim.2004.02.012
  68. Wang Y, Cheng X, He Q, et al. Astrocytes from the contused spinal cord inhibit oligodendrocyte differentiation of adult oligodendrocyte precursor cells by increasing the expression of bone morphogenetic proteins. J Neurosc. 2011;31(16):6053-6058. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.5524-09.2011
  69. Omari K, John G, Sealfon S, et al. CXC chemokine receptors on human oligodendrocytes: implications for multiple sclerosis. Brain J Neurol. 2005;128(5):1003-1015. https://doi.org/10.1093/brain/awh479
  70. Luo C, Jian C, Liao Y, et al. The role of microglia in multiple sclerosis. Neuropsychiatr Dis Treat. 2017;13:1661-1667. https://doi.org/10.2147/NDT.S140634
  71. Smith K, Kapoor R, Felts P. Demyelination: the role of reactive oxygen and nitrogen species. Brain Path. (Zurich, Switzerland). 1999;9(1):69-92.  https://doi.org/10.1111/j.1750-3639.1999.tb00212.x
  72. Bizzozero O, DeJesus G, Callahan K, et al. Elevated protein carbonylation in brain white and gray matter patients multiple sclerosis. J Neurosc Res. 2005;81(5):687-695.  https://doi.org/10.1002/jnr.20587
  73. Butts B, Houde C, Mehmet H. Maturation-dependent sensitivity of oligodendrocyte lineage cells to apoptosis: implications for normal development and disease. Cell Death Diff. 2008;15(7):1178-1186. https://doi.org/10.1038/cdd.2008.70
  74. Blomgren K, Hagberg H. Free radicals, mitochondria, and hypoxia-ischemia in the developing brain. Free Rad Biol Med. 2006;40(3):388-397.  https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2005.08.040
  75. Trapp B, Stys P. Virtual hypoxia and chronic necrosis of demyelinated axons in multiple sclerosis. Lancet Neurol. 2009;8(3):280-291.  https://doi.org/10.1016/S1474-4422(09)70043-2
  76. Lee N, Ha S, Sati P, et al. Potential role of iron in repair of inflammatory demyelinating lesions. J Clin Invest. 2019;129(10):4365-4376. https://doi.org/10.1172/JCI126809
  77. Cronin S, Woolf C, Weiss G, et al. The Role of Iron Regulation in Immunometabolism and Immune-Related Disease. Front Mol Biosci. 2019;6:116-120.  https://doi.org/10.3389/fmolb.2019.00116
  78. Urrutia P, Aguirre P, Esparza A, et al. Inflammation alters the expression of DMT1, FPN1 and hepcidin, and it causes iron accumulation in central nervous system cells. J Neurochem. 2013;126(4):541-549.  https://doi.org/10.1111/jnc.12244
  79. Hametner S, Wimmer I, Haider L, et al. Iron and neurodegeneration in the multiple sclerosis brain. Ann Neurol. 2013;74(6):848-861.  https://doi.org/10.1002/ana.23974
  80. Bagnato F, Hametner S, Yao B, et al. Tracking iron in multiple sclerosis: a combined study at 7 Tesla. Brain J Neurol. 2011;134(Pt 12):3602-3615. https://doi.org/10.1093/brain/awr278
  81. Filippi M, Brück W, Chard D, et al. & Attendees of the Correlation between Pathological and MRI findings in MS workshop (2019). Association between pathological and MRI findings in multiple sclerosis. Lancet Neurol. 2019;18(2):198-210.  https://doi.org/10.1016/S1474-4422(18)30451-4
  82. Dal-Bianco A, Grabner G, Kronnerwetter C, et al. Long-term evolution of multiple sclerosis iron rim lesions in 7 T MRI. Brain J Neurol. 2021;144(3):833-847.  https://doi.org/10.1093/brain/awaa436
  83. Elkady A, Cobzas D, Sun H, et al. Progressive iron accumulation across multiple sclerosis phenotypes classification of deep gray matter. JMRI. 2017;46(5):1464-1473. https://doi.org/10.1002/jmri.25682
  84. Bergsland N, Tavazzi E, Laganà M, et al. White Matter Tract Injury is Associated with Deep Gray Matter Iron Deposition in Multiple Sclerosis. J Neuroim. 2017;27(1):107-113.  https://doi.org/10.1111/jon.12364
  85. Zivadinov R, Tavazzi E, Bergsland N, et al. Brain Iron at Quantitative MRI Is Associated with Disability in Multiple Sclerosis. Radiology. 2018;289(2):487-496.  https://doi.org/10.1148/radiol.2018180136
  86. Wiendl H, Gold R, Berger T, et al. Multiple Sclerosis Therapy Consensus Group’ (MSTCG) (2021). Multiple Sclerosis Therapy Consensus Group (MSTCG): position statement on disease-modifying therapies for multiple sclerosis (white paper). Ther Adv Neurol Dis. 2021;14:17562864211039648. https://doi.org/10.1177/17562864211039648

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.