Влияние длительной ретинопротекторной терапии на прогрессирование глаукомы по данным структурно-функциональных исследований

Закрыть метаданные

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ

Оценить влияние длительной ретинопротекторной терапии на прогрессирование первичной открытоугольной глаукомы (ПОУГ) при компенсированном внутриглазном давлении (ВГД).

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

147 пациентов (249 глаз) с ПОУГ I—II стадий, рандомизированы в основную (69 больных, 119 глаз) и контрольную (78 больных, 130 глаз) группы. В основной группе каждые 6 мес проводили курс терапии ретиналамином. Пациентов обследовали перед исследованием и каждые 3 мес на протяжении 24 мес. Проводили оптическую когерентную томографию (ОКТ; СНВС — слой нервных волокон сетчатки, НРП — нейроретинальный поясок, ГКС — ганглиозные клетки сетчатки) и статическую периметрию (MD — среднее отклонение; PSD — среднеквадратическое отклонение).

РЕЗУЛЬТАТЫ

Острота зрения и рефракция в исследуемых группах не изменились (p>0,05). Уровень ВГД в группе контроля повысился (p=0,033). К 24 мес исследования межгрупповой разницы не отмечалось (p=0,87). MD не изменилось ни в основной (p=0,45), ни в контрольной группе (p=0,27). PSD изменилось в основной (4,84±3,21 и 6,01±2,584 дБ в начале и в конце исследования; p=0,0004) и контрольной (3,46±2,23 и 5,86±2,26 дБ; p<0,0001) группах. Различавшиеся по MD и PSD группы (p=0,15; p=0,02) к концу исследования сравнялись (p=0,59; p=0,53). СНВС в основной группе не изменился (p=0,078), в контрольной группе он уменьшился с 83,5±22,47 до 76,7±20,7 мкм (p=0,001). Межгрупповых различий в начале и в конце наблюдения не выявлено (p=0,276; p=0,524). В основной группе НРП увеличился с 222±88,94 до 231±99,3 (p=0,012), в контрольной — уменьшился с 248±87,09 до 234±96,2 (p=0,0006). Межгрупповых различий не выявлено (p=0,109; p=0,909). ГКС не различались в основной и контрольной группах (p=0,211; p=0,16), межгрупповых различий не выявлено (p=0,44; p=0,51).

Заключение. Регулярное курсовое применение ретиналамина останавливает развитие глаукомной оптиконейропатии. Необходимы исследования долгосрочного влияния на зрительные функции и качество жизни.

Ключевые слова:

Авторы:

Страхов В.В.

ФГБОУ ВО «Ярославский государственный медицинский университет» Минздрава России

Егоров Е.А.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова»

Еричев В.П.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней»

Ярцев А.В.

ФГБОУ ВО «Ярославский государственный медицинский университет» Минздрава России

Петров С.Ю.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней»

Дорофеев Д.А.

ГБУЗ «Областная клиническая больница №3»

Даты поступления:

08.06.2020

Даты принятия в печать:

24.06.2020

Список литературы:

Flaxman SR, Bourne RRA, Resnikoff S, Ackland P, Braithwaite T, Cicinelli MV, Das A, Jonas JB, Keeffe J, Kempen JH, Leasher J, Limburg H, Naidoo K, Pesudovs K, Silvester A, Stevens GA, Tahhan N, Wong TY, Taylor HR, Vision Loss Expert Group of the Global Burden of Disease S. Global causes of blindness and distance vision impairment 1990—2020: a systematic review and meta-analysis. Lancet Glob Health. 2017;5(12):1221-1234. https://doi.org/10.1016/S2214-109X(17)30393-5
Tham YC, Li X, Wong TY, Quigley HA, Aung T, Cheng CY. Global prevalence of glaucoma and projections of glaucoma burden through 2040: a systematic review and meta-analysis. Ophthalmology. 2014;121(11):2081-2090. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2014.05.013
Национальное руководство по глаукоме для практикующих врачей. 3-е изд., испр. и доп. Под ред. Егорова Е.А., Астахова Ю.С., Еричева В.П. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2015.
Terminology and guidelines for glaucoma. 4th ed. Savona: Italy PubliComm; 2014.
Drance S, Anderson DR, Schulzer M; Collaborative Normal-Tension Glaucoma Study Group. Risk factors for progression of visual field abnormalities in normal-tension glaucoma. Am J Ophthalmol. 2001;131(6):699-708. https://doi.org/10.1016/s0002-9394(01)00964-3
Rumelt S, Schreiber S. Why do patients with controlled glaucoma continue to lose their vision? In: Rumelt S, editor. Causes and Coping with Visual Impairment and Blindness. London: IntechOpen; 2018.
Krupin T, Liebmann JM, Greenfield DS, Ritch R, Gardiner S, Low-Pressure Glaucoma Study Group. A randomized trial of brimonidine versus timolol in preserving visual function: results from the Low-Pressure Glaucoma Treatment Study. Am J Ophthalmol. 2011;151(4):671-681. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2010.09.026
Ko ML, Peng PH, Ma MC, Ritch R, Chen CF. Dynamic changes in reactive oxygen species and antioxidant levels in retinas in experimental glaucoma. Free Radic Biol Med. 2005;39(3):365-373. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2005.03.025
Casson RJ. Possible role of excitotoxicity in the pathogenesis of glaucoma. Clin Exp Ophthalmol. 2006;34(1):54-63. https://doi.org/10.1111/j.1442-9071.2006.01146.x
Fahy ET, Chrysostomou V, Crowston JG. Impaired axonal transport and glaucoma. Curr Eye Res. 2016;41(3):273-283. https://doi.org/10.3109/02713683.2015.1037924
Mozaffarieh M, Grieshaber MC, Flammer J. Oxygen and blood flow: players in the pathogenesis of glaucoma. Mol Vis. 2008;14:224-233.
Lee S, van Bergen NJ, Kong GY, Chrysostomou V, Waugh HS, O’Neill EC, Crowston JG, Trounce IA. Mitochondrial dysfunction in glaucoma and emerging bioenergetic therapies. Exp Eye Res. 2011;93(2):204-212. https://doi.org/10.1016/j.exer.2010.07.015
Aydemir O, Naziroglu M, Celebi S, Yilmaz T, Kukner AS. Antioxidant effects of alpha-, gamma- and succinate-tocopherols in guinea pig retina during ischemia-reperfusion injury. Pathophysiology. 2004;11(3):167-171. https://doi.org/10.1016/j.pathophys.2004.08.001
Song W, Huang P, Zhang C. Neuroprotective therapies for glaucoma. Drug Des Devel Ther. 2015;9:1469-1479. https://doi.org/10.2147/DDDT.S80594
Lee J, Sohn SW, Kee C. Effect of Ginkgo biloba extract on visual field progression in normal tension glaucoma. J Glaucoma. 2013;22(9):780-784. https://doi.org/10.1097/IJG.0b013e3182595075
Silva CG, Porciuncula LO, Canas PM, Oliveira CR, Cunha RA. Blockade of adenosine A(2A) receptors prevents staurosporine-induced apoptosis of rat hippocampal neurons. Neurobiol Dis. 2007;27(2):182-189. https://doi.org/10.1016/j.nbd.2007.04.018
Madeira MH, Elvas F, Boia R, Goncalves FQ, Cunha RA, Ambrosio AF, Santiago AR. Adenosine A2AR blockade prevents neuroinflammation-induced death of retinal ganglion cells caused by elevated pressure. J Neuroinflammation. 2015;12:115. https://doi.org/10.1186/s12974-015-0333-5
Klassen HJ, Ng TF, Kurimoto Y, Kirov I, Shatos M, Coffey P, Young MJ. Multipotent retinal progenitors express developmental markers, differentiate into retinal neurons, and preserve light-mediated behavior. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2004;45(11):4167-4173. https://doi.org/10.1167/iovs.04-0511
Chen G, Ma J, Shatos MA, Chen H, Cyr D, Lashkari K. Application of human persistent fetal vasculature neural progenitors for transplantation in the inner retina. Cell Transplant. 2012;21(12):2621-2634. https://doi.org/10.3727/096368912X647153
Johnson TV, DeKorver NW, Levasseur VA, Osborne A, Tassoni A, Lorber B, Heller JP, Villasmil R, Bull ND, Martin KR, Tomarev SI. Identification of retinal ganglion cell neuroprotection conferred by platelet-derived growth factor through analysis of the mesenchymal stem cell secretome. Brain. 2014;137(Pt 2):503-519. https://doi.org/10.1093/brain/awt292
Harper MM, Grozdanic SD, Blits B, Kuehn MH, Zamzow D, Buss JE, Kardon RH, Sakaguchi DS. Transplantation of BDNF-secreting mesenchymal stem cells provides neuroprotection in chronically hypertensive rat eyes. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2011;52(7):4506-4515. https://doi.org/10.1167/iovs.11-7346
Gomes CV, Kaster MP, Tome AR, Agostinho PM, Cunha RA. Adenosine receptors and brain diseases: neuroprotection and neurodegeneration. Biochim Biophys Acta. 2011;1808(5):1380-1399. https://doi.org/10.1016/j.bbamem.2010.12.001
Conejero-Goldberg C, Davies P, Ulloa L. Alpha7 nicotinic acetylcholine receptor: a link between inflammation and neurodegeneration. Neurosci Biobehav Rev. 2008;32(4):693-706. https://doi.org/10.1016/j.neubiorev.2007.10.007
White HK, Levin ED. Four-week nicotine skin patch treatment effects on cognitive performance in Alzheimer’s disease. Psychopharmacology (Berl). 1999;143(2):158-165. https://doi.org/10.1007/s002130050931
Hokfelt T, Bartfai T, Bloom F. Neuropeptides: opportunities for drug discovery. Lancet Neurol. 2003;2(8):463-472. https://doi.org/10.1016/s1474-4422(03)00482-4
Bagnoli P, Dal Monte M, Casini G. Expression of neuropeptides and their receptors in the developing retina of mammals. Histol Histopathol. 2003; 18(4):1219-1242. https://doi.org/10.14670/HH-18.1219
Chen XY, Du YF, Chen L. Neuropeptides Exert Neuroprotective Effects in Alzheimer’s Disease. Front Mol Neurosci. 2018;11:493. https://doi.org/10.3389/fnmol.2018.00493
Reglodi D, Renaud J, Tamas A, Tizabi Y, Socias SB, Del-Bel E, Raisman-Vozari R. Novel tactics for neuroprotection in Parkinson’s disease: Role of antibiotics, polyphenols and neuropeptides. Prog Neurobiol. 2017;155:120-148. https://doi.org/10.1016/j.pneurobio.2015.10.004
Антонов А.А., Макарова А.С., Рещикова В.С. Экспериментальные исследования эффективности Ретиналамина. Национальный журнал глаукома. 2017;16(3):98-102.
Егоров Е.А., Егорова Т.Е., Шрамко Ю.Г. Эффективность применения Ретиналамина у пациентов с компенсированной первичной открытоугольной глаукомой. РМЖ Клиническая офтальмология. 2014;15(4):188-193.
Егоров Е.А. Опыт применения Ретиналамина при различных офтальмологических заболеваниях. РМЖ Клиническая офтальмология. 2017; (1):35-38.
Нероев В.В., Зайцева О.В., Охоцимская Т.Д., Цапенко И.В., Лантух Е.П. Эффективность Ретиналамина у пациентов с «сухой» формой возрастной макулярной дегенерации при различной кратности курсов внутримышечных инъекций. Российский офтальмологический журнал. 2016;(1):39-46.
Азнабаев Б.М., Габдрахманова А.Ф., Мухамадеев Т.Р., Галлямова Г.Р., Александров А.А. Офтальмонейропротекция при непролиферативной диабетической ретинопатии и гемодинамика глаза. РМЖ Клиническая офтальмология. 2014;14(2):71-76.
Егоров Е.А., Еричев В.П., Страхов В.В., Петров С.Ю., Романова Т.Б., Васина М.В., Зинина В.С., Макарова А.С., Казанова С.Ю., Ярцев А.В. Структурно-функциональные изменения сетчатки у пациентов с первичной открытоугольной глаукомой при компенсированном внутриглазном давлении на фоне ретинопротекторной терапии. Вестник офтальмологии. 2019;135(3):20-30. https://doi.org/10.17116/oftalma201913503120
Quaranta L, Riva I, Gerardi C, Oddone F, Floriani I, Konstas AG. Quality of life in glaucoma: a review of the literature. Adv Ther. 2016;33(6):959-981. https://doi.org/10.1007/s12325-016-0333-6
Ильина С.Н., Ломаник И.Ф., Логош С.М., Шавловская Т.В. Ретиналамин в нейропротекторной терапии больных первичной открытоугольной глаукомой. Офтальмология Восточная Европа. 2012;12(4):96-101.
Астахов Ю.С., Бутин Е.В., Морозова Н.В., Соколов В.О. Результаты применения Ретиналамина у больных с первичной открытоугольной глаукомой. Глаукома. 2006;2:43-47.
Рожко Ю.И., Марченко Л.Н., Ребенок Н.А., Кривун А.О., Дравица Л.В., Белькевич Ю.Л., Бобр Т.В., Ленкова Ж.И., Глушко Д.П. Нейроретинопротекторное действие Кортексина и Ретиналамина в терапии открытоугольной глаукомы. Проблемы здоровья и экологии. 2010; 25(3):50-55.
Налобнова Ю.В., Егоров Е.А., Ставицкая Т.В., Асророва Г.К. Применение цитомединов в офтальмологии. РМЖ Клиническая офтальмология. 2003;4:176-178.
Малишевская Т.Н., Долгова И.Г. Сравнительный анализ эффективности различных методов нейропротекторной терапии больных первичной стабилизированной глаукомой в далекозашедшей стадии. Национальный журнал глаукома. 2016;15(2):84-92.
Lisboa R, Chun YS, Zangwill LM, Weinreb RN, Rosen PN, Liebmann JM, Girkin CA, Medeiros FA. Association between rates of binocular visual field loss and vision-related quality of life in patients with glaucoma. JAMA Ophthalmol. 2013;131(4):486-494. https://doi.org/10.1001/jamaophthalmol.2013.2602
Yu M, Lin C, Weinreb RN, Lai G, Chiu V, Leung CK. Risk of visual field progression in glaucoma patients with progressive retinal nerve fiber layer thinning: A 5-year prospective study. Ophthalmology. 2016;123(6):1201-1210. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2016.02.017
Schrems WA, Schrems-Hoesl LM, Mardin CY, Laemmer R, Kruse FE, Horn FK. Can glaucomatous visual field progression be predicted by structural and functional measures? J Glaucoma. 2017;26(4):373-382. https://doi.org/10.1097/IJG.0000000000000628
Lalezary M, Medeiros FA, Weinreb RN, Bowd C, Sample PA, Tavares IM, Tafreshi A, Zangwill LM. Baseline optical coherence tomography predicts the development of glaucomatous change in glaucoma suspects. Am J Ophthalmol. 2006;142(4):576-582. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2006.05.004
Sehi M, Zhang X, Greenfield DS, Chung Y, Wollstein G, Francis BA, Schuman JS, Varma R, Huang D, Advanced Imaging for Glaucoma Study Group. Retinal nerve fiber layer atrophy is associated with visual field loss over time in glaucoma suspect and glaucomatous eyes. Am J Ophthalmol. 2013;155(1):73-82 e71. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2012.07.005
Zhang X, Dastiridou A, Francis BA, Tan O, Varma R, Greenfield DS, Schuman JS, Sehi M, Chopra V, Huang D, Advanced Imaging for Glaucoma Study Group. Baseline fourier-domain optical coherence tomography structural risk factors for visual field progression in the advanced imaging for glaucoma study. Am J Ophthalmol. 2016;172:94-103. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2016.09.015
Chung HS, Sung KR, Lee JY, Na JH. Lamina cribrosa-related parameters assessed by optical coherence tomography for prediction of future glaucoma progression. Curr Eye Res. 2016;41(6):806-813. https://doi.org/10.3109/02713683.2015.1052519
Wu Z, Lin C, Crowther M, Mak H, Yu M, Leung CK. Impact of rates of change of lamina cribrosa and optic nerve head surface depths on visual field progression in glaucoma. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2017;58(3):1825-1833. https://doi.org/10.1167/iovs.16-20509
Мазунин И.Ю. Результаты применения нейроретинопротектора «Ретиналамин» после лазерной трабекулопластики при лечении компенсированной первичной открытоугольной глаукомы. Медицинский альманах. 2014;31(1):69-73.

Закрыть метаданные