Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Носуля Е.В.

ГБУЗ города Москвы «Научно-исследовательский клинический институт оториноларингологии им. Л.И. Свержевского» ДЗМ

Ким И.А.

ГБОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России;
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр оториноларингологии Федерального медико-биологического агентства»

Лучшева Ю.В.

ГБУЗ «Научно-исследовательский клинический институт оториноларингологии им. Л.И. Свержевского» Департамента здравоохранения города Москвы

Огородников Д.С.

ГБУЗ Москвы «Научно-исследовательский клинический институт оториноларингологии им. Л.И. Свержевского» ДЗМ;
ФГБОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России;
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр оториноларингологии Федерального медико-биологического агентства»

Острый риносинусит: терапия с акцентом на ключевые звенья патогенеза

Авторы:

Носуля Е.В., Ким И.А., Лучшева Ю.В., Огородников Д.С.

Подробнее об авторах

Журнал: Российская ринология. 2023;31(3): 212‑218

Прочитано: 1365 раз


Как цитировать:

Носуля Е.В., Ким И.А., Лучшева Ю.В., Огородников Д.С. Острый риносинусит: терапия с акцентом на ключевые звенья патогенеза. Российская ринология. 2023;31(3):212‑218.
Nosulya EV, Kim IA, Luchsheva YuV, Ogorodnikov DS. Acute rhinosinusitis: treatment with a focus on key elements of pathogenesis. Russian Rhinology. 2023;31(3):212‑218. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/rosrino202331031212

Рекомендуем статьи по данной теме:

Сокращения:

ВДП — верхние дыхательные пути

НВЛ — нейтрофильные внеклеточные ловушки

ОРВИ — острая респираторная вирусная инфекция

Введение

Одним из наиболее часто встречающихся в повседневной оториноларингологической практике заболеваний является острый ринит/синусит. Как правило, речь идет о состоянии, сопровождающемся наличием гнойных выделений из носа в течение до 4 нед, заложенностью носа, болью (ощущением полноты, давления), снижением обоняния.

Основной причиной острого ринита/синусита является острая респираторная вирусная инфекция (ОРВИ), так называемая простуда — обобщающий термин, который применяется для обозначения целого ряда патологических состояний, таких как ринит, назофарингит, фарингит, ларингит и др. Однако на практике зачастую невозможно определить четкие анатомические границы поражения верхних дыхательных путей (ВДП) при ОРВИ, а субъективные и объективные признаки простуды могут проявляться как изолированной болью в горле, насморком, кашлем, так и различными сочетаниями перечисленных и других симптомов ОРВИ [1, 2].

На распространенность ОРВИ в популяции и клинические проявления заболевания — от бессимптомного, легкого, часто спонтанно купирующегося течения, до тяжелых, порой летальных осложнений — существенное влияние оказывают специфические свойства возбудителя (продолжительность жизни, скорость репликации и др,) и устойчивость иммунной системы организма хозяина. В Российской Федерации, по состоянию на 2022 г., было зарегистрировано 42,4 млн случаев ОРВИ (29 059,21 на 100 тыс. населения). Согласно результатам рейтингового анализа, ОРВИ традиционно занимают лидирующие позиции в перечне основных причин экономического ущерба, который в 2021 г., по оценкам экспертов, достигал 750 млрд руб. [3].

Таким образом, речь идет о значительной распространенности острой респираторной инфекции, играющей активную роль в патогенезе острого синусита, профилактика и лечение которого является серьезной проблемой современного здравоохранения.

Цель исследования — обобщение данных об эффективности и перспективах применения в комплексном лечении острого риносинусита комбинированного препарата «Демефецил» и азоксимера бромида (Полиоксидоний).

Материал и методы

Анализировали публикации (статьи и соответствующие рефераты), представленные в базе данных PubMed, а также в российских базах данных: elibrary.ru и Электронной библиотеки ДВГМУ. Выбор материала осуществляли по ключевым словам: острый ринит, острый синусит, воспаление, фенилэфрин и диметинден, азоксимера бромид.

Результаты

По данным литературы, к наиболее часто встречающимся возбудителям ОРВИ относятся риновирусы, вирусы гриппа, парагриппа, респираторно-синцитиального вируса, коронавирусы, метапневмовирусы, бокавирусы и аденовирусы [4]. При этом более чем у 2/3 больных ОРВИ воспалительный процесс в ВДП вызван одновременно несколькими видами вирусов [5].

Чрезвычайно распространенным в популяции является респираторно-синцитиальный вирус: считается, что к 2 годам им инфицированы 95% всех детей [6]. Подчеркивается, что естественный иммунитет к респираторно-синцитиальному вирусу неполный и реинфекция — частое явление. Около 10% всех простудных заболеваний у детей вызваны аденовирусами [7]. В 5—15% случаев причиной острой респираторной инфекции является вирус гриппа [8]. На долю риновируса приходится 80% всех острых инфекций ВДП [9—11].

Следует почеркнуть, что в большинстве случаев простудные (гриппоподобные) заболевания, независимо от этиологии, характеризуются общими закономерностями развития воспалительного процесса, которые обусловлены адгезией вируса к поверхности респираторного эпителия, внедрением и репродукцией в эпителиальных клетках дыхательного тракта; возникновением вирусемии и системной воспалительной реакции с преимущественной для данного патогена локализацией патологических изменений процесса [12, 13].

Респираторные вирусы играют доминирующую роль в инициировании и поддержании воспаления слизистой оболочки носа и околоносовых пазух, которое характеризуется эозинофильной и нейтрофильной инфильтрацией, экспрессией провоспалительных цитокинов, усилением бактериально-индуцированного воспалительного ответа с манифестацией клинических симптомов острого ринита и/или синусита [14].

Вирусы часто обнаруживаются в образцах лаважа и слизистой оболочки околоносовых пазух пациентов с хроническим риносинуситом, вызывают обострения хронического воспалительного процесса в параназальных синусах [15].

К сожалению, отсутствие четких клинических критериев, позволяющих дифференцировать острый бактериальный синусит и ОРВИ не позволяет обоснованно судить о распространенности бактериальной инфекции, однако, как полагают, реальная частота встречаемости острого бактериального синусита превышает 0,5—2%, о которых упоминается в современных согласительных документах [16, 17].

В связи с этим лечение острого или обострение хронического синусита часто связано с повсеместным нерациональным и избыточным назначением системных антибиотиков [18]. Это не только стимулирует развитие резистентности бактериальных патогенов к антибиотикам, но и приводит к существенным изменениям состава микробиома и модели колонизации ВДП, что, в свою очередь, отрицательно сказывается на антиинфекционной устойчивости слизистой оболочки полости носа и околоносовых пазух. Антибактериальная терапия сопровождается уменьшением разнообразия видов синоназальной микробиоты, более высокой степенью контаминации слизистой оболочки среднего носового хода Staphylococcus aureus [19].

На фоне применения антибиотиков возрастает обсемененность слизистой оболочки носа и околоносовых пазух такими патогенами, как Haemophilus influenza, Chlamydia pneumoniae, S. pneumoniae, а частота обнаружения комменсалов (Dolosigranulum и Corynebacterium) снижается, что увеличивает риск неблагоприятного течения инфекции ВДП [20, 21].

Последствия такого развития событий обусловлены отрицательным влиянием нерациональной антибиотерапии на микробиом начальных отделов респираторного тракта и его роль в обеспечении колонизационной резистентности слизистой оболочки органов дыхания, формировании эффективного иммунного ответа макроорганизма на респираторную вирусную инфекцию [22, 23].

В настоящее время хорошо известно, что ослабление иммунной защиты на фоне вирусной инфекции сопровождается изменением состава микробиома различных отделов ВДП, увеличением удельного веса патогенов, играющих активную роль в возникновении бактериальной суперинфекции [24, 25]. При этом клинические проявления и тенденции развития инфекционного процесса в значительной степени опосредованы врожденными иммунными реакциями, благодаря которым происходит распознавание вирусов, миграция в очаг воспаления нейтрофилов, моноцитов, экспрессия цитокинов, вызывающих повреждение и гибель инфицированных клеток [26—29].

Одним из недавно открытых эффекторных механизмов нейтрофилов является образование в очаге воспаления нейтрофильных внеклеточных ловушек (НВЛ) (neutrophil extracellular traps — NET), состоящих из внеклеточной сети гранулярных белков и хроматина, что обеспечивает высокую локальную концентрацию противомикробных агентов, деградацию факторов вирулентности и уничтожение патогенов, позволяя нейтрофилам выполнять свою антимикробную функцию даже после окончания их жизни. В целом НВЛ рассматриваются в качестве формы врожденного иммунного ответа, однако морфофункциональные последствия их влияния при риносинусите окончательно не выяснены [30—32].

Вместе с тем накопленные к настоящему времени результаты экспериментальных и клинических исследований свидетельствуют о том, что НВЛ оказывают не только защитное, но и прямое цитотоксическое действие, играя важную роль в патогенезе респираторных заболеваний [33—35].

В частности, показано, что количество НВЛ и нейтрофилов, образующих НВЛ, увеличивается в назальном секрете пациентов с обострением хронического синусита, под влиянием НВЛ происходят дестабилизация синоназального эпителиального барьера; повышение трансэндотелиальной миграции лейкоцитов, связанной с активацией ICAM-1 [36, 37]. Кроме того, выявлено значительное увеличение содержания НВЛ в полипах носа, что свидетельствует о возможной роли НВЛ в патогенезе нейтрофильного воспаления при полипозном риносинусите [38].

Как известно, неспецифические иммунные факторы в определенной степени обеспечивают защиту от вирусной инфекции, но наиболее важным является наличие специфических антител против конкретного вируса [39]. Недостаточность специфического иммунного ответа, который играет ключевую роль в реализации противовирусной защиты, сопровождается усилением воспалительной реакции, избыточным повреждением тканей [40].

В связи с этим одним из перспективных направлений снижения выраженности клинических проявлений вирусной респираторной инфекции, предотвращения развития и хронизации вторичных бактериальных осложнений, в частности риносинусита, является разработка терапевтических стратегий, направленных на повышение эффективности неспецифических иммунных реакций, обеспечивающих нейтрализацию вируса.

Анализ результатов клинических исследований и систематизированных материалов свидетельствует о целесообразности использования с этой целью азоксимера бромида (Полиоксидония) — иммуномодулирующего препарата, опыт применения которого насчитывает более двух десятилетий. Одним из ключевых механизмов терапевтической эффективности азоксимера бромида на разных этапах патогенеза респираторной вирусной инфекции является его способность повышать фагоцитарную активность макрофагов и нейтрофилов, стимулировать созревание дендритных клеток, играющих важную роль в антиген-специфической активации наивных T-клеток, и синтез антител [41—43].

В качестве одной из актуальных характеристик азоксимера бромида рассматривается его модулирующее влияние на состояние мукозального иммунитета ВДП. Являясь мишенью для многочисленных возбудителей ОРВИ, слизистая оболочка носа играет уникальную роль в формировании устойчивости органов дыхания, и в первую очередь ВДП, к респираторным вирусам [44]. Показано, что местное (сублингвальное и интраназальное) применение азоксимера бромида способствует стимуляции фагоцитоза, повышению активности лизоцима, увеличению содержания sIgA в назальном секрете [45].

В другом сравнительном клиническом исследовании было отмечено, что интраназальное применение азоксимера бромида (1—3 капли раствора препарата в каждую половину носа в течение 10 сут) оказывает модулирующее действие на экспрессию генов антимикробных пептидов HBD-1 и HBD-2 в слизистой оболочке ВДП [46]. При этом у детей с низким уровнем HBD-1 и HBD-2 авторы наблюдали статистически подтвержденное увеличение этого показателя до его нормативных значений и отсутствие избыточной экспрессии генов антимикробных пептидов у обследованных с исходно повышенными значениями этих маркеров, что обеспечивает сбалансированную антиинфекционную защиту слизистой оболочки ВДП.

В целом иммуногенные свойства азоксимера бромида детально изучены и подтверждены результатами более ранних клинических исследований. Показана, в частности, его способность повышать бактерицидную активность лейкоцитов [47], стимулировать продукцию интерлейкина-6 [48], подавлять образование НВЛ и минимизировать их цитотоксическое действие [49].

Азоксимера бромид отличается хорошим профилем безопасности. В многоцентровом пострегистрационном исследовании не было выявлено признаков неблагоприятного влияния или побочных реакций при курсовом применении лиофилизата азоксимера бромида (6 мг) в виде раствора для инъекций у больных с хроническими рецидивирующими бактериальными или вирусными инфекциями [50].

Таким образом, с учетом накопленных результатов клинических и экспериментальных исследований, имеются определенные перспективы, связанные с рациональным использованием азоксимера бромида в существующих схемах лечения острого вирусного и бактериального синусита.

Наряду с этим следует учитывать и тот факт, что одной из вероятных причин возникновения и неблагоприятного развития этих заболеваний является уже имеющееся хроническое, часто аллергическое, воспаление слизистой оболочки носа. Полагают, что вызванное аллергеном воспаление у пациентов с аллергическим ринитом делает их более восприимчивыми к вирусным или бактериальным инфекциям [51].

Потенциальные направления взаимодействия аллергического воспаления слизистой оболочки дыхательных путей и вирусной инфекции могут быть обусловлены повышением уровня экспрессии рецепторов риновируса и вируса гриппа на клетках респираторного эпителия при аллергии, что, с одной стороны, увеличивает риск возникновения и более тяжелого течения ОРВИ, а с другой — активирует и поддерживает аллергическое воспаление в полости носа [52]. В этих случаях почти всегда развивается обструкция естественных соустий околоносовых пазух, происходит нарушение их нормальной вентиляции и дренажа, снижение парциального давления кислорода в синусах, угнетение мукоцилиарной активности, застой секрета в околоносовых пазухах и, как следствие, создаются предпосылки к развитию вторичной бактериальной инфекции [53].

Одним из наиболее сильных провоспалительных медиаторов, участвующих в патогенезе аллергического воспаления, является гистамин, который инициирует сосудистые реакции (вазодилатацию, транссудацию), тканевые изменения, рекрутирование эффекторных клеток в очаг воспаления, участвует в регуляции ряда механизмов иммунного ответа [54—56]. По-видимому, именно эти обстоятельства определяют целесообразность назначения антигистаминных препаратов на ранних этапах развития ОРВИ (острого вирусного ринита, синусита), когда блокада H1-рецепторов предупреждает выброс гистамина, выделяемого базофилами под воздействием различных вирусов [16].

В этом плане определенные перспективы связывают с применением фиксированных комбинаций топических деконгестантов и антогонистов гистаминовых H1-рецепторов, включение которых в схемы лечения острой респираторной инфекции обладает доказанной эффективностью [57]. Результаты клинических исследований продемонстрировали эффективность и безопасность одной из таких комбинаций (фенилэфрин и блокатор H1-гистаминовых рецепторов) при лечении пациентов с острыми респираторными инфекциями (острый ринит, острый вирусный риносинусит) [58, 59].

К препаратам этой группы относится, в частности, препарат «Демефецил», представляющий собой фиксированную комбинацию фенилэфрина (2,5 мг) и диметиндена малеата (250 мкг) в форме назального спрея. Сосудосуживающее действие фенилэфрина, являющегося представителем симпатомиметических аминов, широко используется в клинической практике при назальной обструкции различного генеза и сопровождается уменьшением отека слизистой оболочки, снижением носового сопротивления и увеличением объемных потоков воздуха, проходящих через полость носа, улучшением носового дыхания. Фенилэфрин оказывает мягкое вазоконстрикторное действие за счет высокоселективного агонизма к α1-адренорецепторам сосудистой стенки, кавернозных тел и не вызывает значительного снижения кровотока в слизистой оболочке носа, следовательно, в меньшей степени нарушает ее функции [60]. Помимо этого было показано, что у большинства детей первого года жизни наблюдается недоразвитие кавернозных тел носовых раковин, где располагаются α2-адренорецепторы, в связи с этим эффект стимуляции α1-адренорецепторов сопоставим с воздействием на α2-адренорецепторы.

Наличие в составе демефецила блокатора гистаминовых H1-рецепторов диметиндена малеата обусловливает мембраностабилизирующее действие препарата, снижение проницаемости капилляров и транссудации, ингибирует экспрессию гистамина и других биологически активных веществ. Интраназальное применение диметиндена малеата не оказывает отрицательного влияния на активность мерцательного эпителия полости носа.

На фоне применения фенилэфрина (2,5 мг) и диметиндена малеата (250 мкг) в форме назального спрея наблюдается отчетливая положительная динамика симптомов ОРВИ (острого ринита) и аллергического ринита, что подтверждено результатами анализа субъективных проявлений заболевания и данными объективного тестирования носового дыхания. Подчеркивается отсутствие каких-либо побочных эффектов, связанных с курсовым (в течение 10 сут) применением препарата [61].

Таким образом, применение фиксированной комбинации деконгестанта и антигистаминного препарата в форме назального спрея позволяет воздействовать на ключевые патогенетические механизмы воспалительного процесса в полости носа, сопровождается улучшением субъективных проявлений болезни, улучшением качества жизни пациентов.

Заключение

Респираторные вирусы — наиболее распространенные патогены, вызывающие острые инфекции дыхательных путей, оказывая в большинстве случаев цитопатическое действие, нарушают барьерную функцию респираторного эпителия, способствуют транслокации бактерий, ингаляционных аллергенов, активации иммунных (воспалительных) реакций, что, в свою очередь, повышает восприимчивость организма к инфекции, создает предпосылки к затяжному течению, хронизации и осложненному течению патологических процессов в ВДП [62, 63]. Все это свидетельствует об актуальности терапевтических стратегий, направленных на модуляцию иммунного ответа и коррекцию морфофункциональных нарушений в слизистой оболочке полости носа при остром рините (синусите). Как показал анализ результатов клинических исследований, существующие схемы лечения этих состояний могут быть дополнены комплексным применением комбинированного препарата «Демефецил» и азоксимера бромида (Полиоксидония), что позволяет успешно контролировать у таких пациентов не только симптомы назальной обструкции за счет ингибирования экспрессии гистамина, снижения проницаемости капилляров и транссудации, но и выраженность воспалительного процесса путем коррекции иммунного ответа.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования — Е.В. Носуля, И.А. Ким

Сбор и систематизация данных — Ю.В. Лучшева, Д.С. Огородников

Написание текста — Е.В. Носуля

Редактирование — И.А. Ким

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Rohilla A, Sharma V, Kumar S. Upper respiratory tract infections: an overview. Int J Curr Pharm Res. 2013;5:1-3. 
  2. Arroll B. Common cold. BMJ Clin Evid. 2011;3:1510.
  3. Акимкин В.Г., Коротченко С.И., Шевцов В.А. Волгин А.Р., Салмина Т.А., Калабухова Л.Ю., Малиновская В.В., Гатич Р.З., Семененко Т.А., Гусева Т.С., Паршина О.В., Дмитриева Е.В. Эпидемиологическая и иммунологическая эффективность использования препарата «ВИФЕРОН-гель» для профилактики гриппа и других острых респираторных инфекций в организованных воинских коллективах. Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы. 2011; 1:28-36. 
  4. Mahony JB. Detection of respiratory viruses by molecular methods. Clin Microbiol Rev. 2008;21(4):716-747.  https://doi.org/10.1128/CMR.00037-07
  5. Hoffmann J, Rabezanahary H, Randriamarotia M, Ratsimbasoa A, Najjar J, Vernet G, Contamin B, Paranhos-Baccalà G. Viral and atypical bacterial etiology of acute respiratory infections in children under 5 years old living in a rural tropical area of Madagascar. PLoS ONE. 2012;7(8):e43666. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0043666
  6. Parrott RH, Kim HW, Brandt CD, Chanock RM. Respiratory syncytial virus in infants and children. Prev Med. 1974;3(4):473-480.  https://doi.org/10.1016/0091-7435(74)90010-3
  7. Rowe WP, Huebner RJ, Gilmore LK, Parrot RH, Ward TG. Isolation of a cytopathogenic agent from human adenoids undergoing spontaneous degeneration in tissue culture. Proc Soc Exp Biol Med. 1953;84(3):570-573.  https://doi.org/10.3181/00379727-84-20714
  8. Moser MR, Bender TR, Margolis HS, Noble GR, Kendal AP, Ritter DG. An outbreak of influenza aboard a commercial airliner. Am J Epidemiol. 1979;110(1):1-6.  https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.aje.a112781
  9. Arruda E, Pitkäranta A, Witek TJ Jr, Doyle CA, Hayden FG. Frequency and natural history of rhinovirus infections in adults during autumn. J Clin Microbiol. 1997;35(11):2864-2868. https://doi.org/10.1128/jcm.35.11.2864-2868.1997
  10. Johnston SL, Pattemore PK, Sanderson G, Smith S, Lampe F, Josephs L, Symington P, O’Toole S, Myint SH, Tyrrell DA, et al. Community study of role of viral infections in exacerbations of asthma in 9-11 year old children. BMJ. 1995;310(6989):1225-1229. https://doi.org/10.1136/bmj.310.6989.1225
  11. Seemungal T, Harper-Owen R, Bhowmik A, Moric I, Sanderson G, Message S, Maccallum P, Meade TW, Jeffries DJ, Johnston SL, Wedzicha JA. Respiratory viruses, symptoms, and inflammatory markers in acute exacerbations and stable chronic obstructive pulmonary disease. Am J Respir Crit Care Med. 2001;164(9):1618-1623. https://doi.org/10.1164/ajrccm.164.9.2105011
  12. Дидковский Н.А., Малашенкова И.К. Принципы иммунокорригирующей терапии при инфекционно-воспалительных заболеваниях респираторного тракта. Врач. 2005;10:17-24. 
  13. Buchan SA, Hottes TS, Rosella LC, Crowcroft NS, Tran D, Kwong JC. Contribution of influenza viruses to medically attended acute respiratory illnesses in children in high-income countries: a meta-analysis. Influenza Other Respir Viruses. 2016;10(6):444-454.  https://doi.org/10.1111/irv.12400
  14. Rudack C, Bachert C. Zytokine und Chemokine bei Nasennebenhöhlenerkrankungen. Laryngorhinootologie. 1999;78(9):481-90.  https://doi.org/10.1055/s-2007-996913
  15. Lee HS, Volpe SJ, Chang EH. The Role of Viruses in the Inception of Chronic Rhinosinusitis. Clin Exp Otorhinolaryngol. 2022;15(4):310-318.  https://doi.org/10.21053/ceo.2022.01004
  16. Fokkens WJ, Lund VJ, Hopkins C, Hellings PW, Kern R, Reitsma S, Toppila-Salmi S, Bernal-Sprekelsen M, Mullol J, Alobid I, Terezinha Anselmo-Lima W, Bachert C, Baroody F, von Buchwald C, Cervin A, Cohen N, Constantinidis J, De Gabory L, Desrosiers M, Diamant Z, Douglas RG, Gevaert PH, Hafner A, Harvey RJ, Joos GF, Kalogjera L, Knill A, Kocks JH, Landis BN, Limpens J, Lebeer S, Lourenco O, Meco C, Matricardi PM, O’Mahony L, Philpott CM, Ryan D, Schlosser R, Senior B, Smith TL, Teeling T, Tomazic PV, Wang DY, Wang D, Zhang L, Agius AM, Ahlstrom-Emanuelsson C, Alabri R, Albu S, Alhabash S, Aleksic A, Aloulah M, Al-Qudah M, Alsaleh S, Baban MA, Baudoin T, Balvers T, Battaglia P, Bedoya JD, Beule A, Bofares KM, Braverman I, Brozek-Madry E, Richard B, Callejas C, Carrie S, Caulley L, Chussi D, de Corso E, Coste A, El Hadi U, Elfarouk A, Eloy PH, Farrokhi S, Felisati G, Ferrari MD, Fishchuk R, Grayson W, Goncalves PM, Grdinic B, Grgic V, Hamizan AW, Heinichen JV, Husain S, Ping TI, Ivaska J, Jakimovska F, Jovancevic L, Kakande E, Kamel R, Karpischenko S, Kariyawasam HH, Kawauchi H, Kjeldsen A, Klimek L, Krzeski A, Kopacheva Barsova G, Kim SW, Lal D, Letort JJ, Lopatin A, Mahdjoubi A, Mesbahi A, Netkovski J, Nyenbue Tshipukane D, Obando-Valverde A, Okano M, Onerci M, Ong YK, Orlandi R, Otori N, Ouennoughy K, Ozkan M, Peric A, Plzak J, Prokopakis E, Prepageran N, Psaltis A, Pugin B, Raftopulos M, Rombaux P, Riechelmann H, Sahtout S, Sarafoleanu CC, Searyoh K, Rhee CS, Shi J, Shkoukani M, Shukuryan AK, Sicak M, Smyth D, Sindvongs K, Soklic Kosak T, Stjarne P, Sutikno B, Steinsvag S, Tantilipikorn P, Thanaviratananich S, Tran T, Urbancic J, Valiulius A, Vasquez de Aparicio C, Vicheva D, Virkkula PM, Vicente G, Voegels R, Wagenmann MM, Wardani RS, Welge-Lussen A, Witterick I, Wright E, Zabolotniy D, Zsolt B, Zwetsloot CP. European Position Paper on Rhinosinusitis and Nasal Polyps 2020. Rhinology. 2020;58(Suppl S29):1-464.  https://doi.org/10.4193/Rhin20.600
  17. Носуля Е.В., Крюков А.И., Кунельская Н.Л., Ким И.А. Острый синусит: актуальные вопросы терминологии и диагностики. Вестник оториноларингологии. 2021;86(3):72-77.  https://doi.org/10.17116/otorino20218603172
  18. Fleming-Dutra KE, Hersh AL, Shapiro DJ, Bartoces M, Enns EA, File TM Jr, Finkelstein JA, Gerber JS, Hyun DY, Linder JA, Lynfield R, Margolis DJ, May LS, Merenstein D, Metlay JP, Newland JG, Piccirillo JF, Roberts RM, Sanchez GV, Suda KJ, Thomas A, Woo TM, Zetts RM, Hicks LA. Prevalence of Inappropriate Antibiotic Prescriptions Among US Ambulatory Care Visits, 2010-2011. JAMA. 2016;315(17):1864-1873. https://doi.org/10.1001/jama.2016.4151
  19. Feazel LM, Robertson CE, Ramakrishnan VR, Frank DN. Microbiome complexity and Staphylococcus aureus in chronic rhinosinusitis. Laryngoscope. 2012;122(2):467-472.  https://doi.org/10.1002/lary.22398
  20. Biesbroek G, Bosch AA, Wang X, Keijser BJ, Veenhoven RH, Sanders EA, Bogaert D. The impact of breastfeeding on nasopharyngeal microbial communities in infants. Am J Respir Crit Care Med. 2014;190(3):298-308.  https://doi.org/10.1164/rccm.201401-0073OC
  21. Rogers GB, Shaw D, Marsh RL, Carroll MP, Serisier DJ, Bruce KD. Respiratory microbiota: addressing clinical questions, informing clinical practice. Thorax. 2015;70(1):74-81.  https://doi.org/10.1136/thoraxjnl-2014-205826
  22. Zyoud SH, Shakhshir M, Abushanab AS, Koni A, Shahwan M, Jairoun AA, Al-Jabi SW. Mapping the output of the global literature on the links between gut microbiota and COVID-19. J Health Popul Nutr. 2023;42(1):3.  https://doi.org/10.1186/s41043-023-00346-w
  23. Ichinohe T, Pang IK, Kumamoto Y, Peaper DR, Ho JH, Murray TS, Iwasaki A. Microbiota regulates immune defense against respiratory tract influenza A virus infection. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011;108(13):5354-5359. https://doi.org/10.1073/pnas.1019378108
  24. Round JL, Mazmanian SK. The gut microbiota shapes intestinal immune responses during health and disease. Nat Rev Immunol. 2009;9(5):313-23.  https://doi.org/10.1038/nri2515
  25. Lynch SV. Viruses and microbiome alterations. Ann Am Thorac Soc. 2014; 11(Suppl 1):S57-60.  https://doi.org/10.1513/AnnalsATS.201306-158MG
  26. Pichlmair A, Pollak M, Bergthaler A. Die erste Antwort auf virale Infektionen: Typ I Interferone. Berl Munch Tierarztl Wochenschr. 2004;117(7-8): 252-265. 
  27. Wang JP, Kurt-Jones EA, Finberg RW. Innate immunity to respiratory viruses. Cell Microbiol. 2007;9(7):1641-1646. https://doi.org/10.1111/j.1462-5822.2007.00961.x
  28. Koyama S, Ishii KJ, Coban C, Akira S. Innate immune response to viral infection. Cytokine. 2008;43(3):336-341.  https://doi.org/10.1016/j.cyto.2008.07.009
  29. Brass AL, Huang IC, Benita Y, John SP, Krishnan MN, Feeley EM, Ryan BJ, Weyer JL, van der Weyden L, Fikrig E, Adams DJ, Xavier RJ, Farzan M, Elledge SJ. The IFITM proteins mediate cellular resistance to influenza A H1N1 virus, West Nile virus, and dengue virus. Cell. 2009;139(7): 1243-1254. https://doi.org/10.1016/j.cell.2009.12.017
  30. Brinkmann V, Reichard U, Goosmann C, Fauler B, Uhlemann Y, Weiss DS, Weinrauch Y, Zychlinsky A. Neutrophil extracellular traps kill bacteria. Science. 2004;303(5663):1532-1535. https://doi.org/10.1126/science.1092385
  31. Brinkmann V, Zychlinsky A. Beneficial suicide: why neutrophils die to make NETs. Nat Rev Microbiol. 2007;5(8):577-582.  https://doi.org/10.1038/nrmicro1710
  32. Hwang JW, Kim JH, Kim HJ, Choi IH, Han HM, Lee KJ, Kim TH, Lee SH. Neutrophil extracellular traps in nasal secretions of patients with stable and exacerbated chronic rhinosinusitis and their contribution to induce chemokine secretion and strengthen the epithelial barrier. Clin Exp Allergy. 2019; 49(10):1306-1320. https://doi.org/10.1111/cea.13448
  33. Barnes PJ. Inflammatory mechanisms in patients with chronic obstructive pulmonary disease. J Allergy Clin Immunol. 2016;138(1):16-27.  https://doi.org/10.1016/j.jaci.2016.05.011
  34. Cortjens B, van Woensel JB, Bem RA. Neutrophil Extracellular Traps in Respiratory Disease: guided anti-microbial traps or toxic webs? Paediatr Respir Rev. 2017;21:54-61.  https://doi.org/10.1016/j.prrv.2016.03.007
  35. Jo A, Kim DW. Neutrophil Extracellular Traps in Airway Diseases: Pathological Roles and Therapeutic Implications. Int J Mol Sci. 2023;24(5):5034. https://doi.org/10.3390/ijms24055034
  36. Hwang JW, Kim JH, Kim HJ, Choi IH, Han HM, Lee KJ, Kim TH, Lee SH. Neutrophil extracellular traps in nasal secretions of patients with stable and exacerbated chronic rhinosinusitis and their contribution to induce chemokine secretion and strengthen the epithelial barrier. Clin Exp Allergy. 2019; 49(10):1306-1320. https://doi.org/10.1111/cea.13448
  37. Delemarre T, Bachert C. Neutrophilic inflammation in chronic rhinosinusitis. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2023;23(1):14-21.  https://doi.org/10.1097/ACI.0000000000000868
  38. Cao Y, Chen F, Sun Y, Hong H, Wen Y, Lai Y, Xu Z, Luo X, Chen Y, Shi J, Li H. LL-37 promotes neutrophil extracellular trap formation in chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Clin Exp Allergy. 2019;49(7):990-999.  https://doi.org/10.1111/cea.13408
  39. Mygind N, Winther B. Immunological barriers in the nose and paranasal sinuses. Acta Otolaryngol. 1987;103(5-6):363-368. 
  40. Iwasaki A, Medzhitov R. Regulation of adaptive immunity by the innate immune system. Science. 2010;327(5963):291-295.  https://doi.org/10.1126/science.1183021
  41. Вавилова В.П. Применение отечественного иммуномодулятора Полиоксидония в практике лечения детей с патологией лимфоглоточного кольца. Аллергология и иммунология в педиатрии. 2005;1(4):47-53. 
  42. Караулов А.В., Горелов А.В. Применение азоксимера бромида в терапии инфекционно-воспалительных заболеваний органов дыхания у детей: метаанализ контролируемых клинических исследований. Журнал инфектологии. 2019;11(4):31-41.  https://doi.org/10.22625/2072-6732-2019-11-4-31-41
  43. Kleinjan A, Lambrecht BN. Dendritic cells in rhinitis. Handb Exp Pharmacol. 2009;188:115-136.  https://doi.org/10.1007/978-3-540-71029-5_6
  44. Gallo O, Locatello LG, Mazzoni A, Novelli L, Annunziato F. The central role of the nasal microenvironment in the transmission, modulation, and clinical progression of SARS-CoV-2 infection. Mucosal Immunol. 2021; 14:305-316. 
  45. Вавилова В.П., Вавилов А.М., Перевощикова Н.К. Опыт профилактики новой коронавирусной инфекции (COVID-19) у медицинских работников. Терапия. 2020;6:93-102. 
  46. Карпова Е.П., Ганковская Л.В., Возгомент О.В. Гипертрофия нёбных миндалин – возможные подходы в лечении. Вестник оториноларингологии. 2020;3:57-63. 
  47. Dambaeva SV, Mazurov DV, Golubeva NM, D’yakonova VA, Pinegin BV, Khaitov RM. Effect of polyoxidonium on the phagocytic activity of human peripheral blood leukocytes. Russ J Immunol. 2003;8(1):53-60. 
  48. Dyakonova VA, Dambaeva SV, Pinegin BV, Khaitov RM. Study of interaction between the polyoxidonium immunomodulator and the human immune system cells. Int Immunopharmacol. 2004;4(13):1615-1623. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2004.07.015
  49. Пинегин Б.В., Дагиль Ю.А., Воробьева Н.В., Пащенков М.В. Влияние азоксимера бромида на формирование внеклеточных нейтрофильных ловушек. РМЖ. 2019;1(II):42-46. 
  50. Pružinec P, Chirun N, Sveikata A. The safety profile of Polyoxidonium in daily practice: results from postauthorization safety study in Slovakia. Immunotherapy. 2018;10(2):131-137.  https://doi.org/10.2217/imt-2017-0116
  51. Kim JH, Moon BJ, Gong CH, Kim NH, Jang YJ. Detection of respiratory viruses in adult patients with perennial allergic rhinitis. Ann Allergy Asthma Immunol. 2013;111(6):508-511.  https://doi.org/10.1016/j.anai.2013.08.024
  52. Tantilipikorn P, Auewarakul P. Airway allergy and viral infection. Asian Pac J Allergy Immunol. 2011;29(2):113-119. 
  53. Calhoun K. Diagnosis and management of sinusitis in the allergic patient. Otolaryngol Head Neck Surg. 1992;107(6 Pt 2):850-854.  https://doi.org/10.1177/019459989210700607.2
  54. Akdis CA, Simons FE. Histamine receptors are hot in immunopharmacology. Eur J Pharmacol. 2006;533(1-3):69-76.  https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2005.12.044
  55. Branco ACCC, Yoshikawa FSY, Pietrobon AJ, Sato MN. Role of Histamine in Modulating the Immune Response and Inflammation. Mediators Inflamm. 2018;2018:9524075. https://doi.org/10.1155/2018/9524075
  56. Носуля Е.В., Ким И.А., Кунельская В.Я., Лучшева Ю.В. Современная терапия аллергического ринита: возможности, ограничения и перспективы. Российская ринология. 2023;31(1):54-59.  https://doi.org/10.17116/rosrino20233101154
  57. DeGeorge KC, Ring DJ, Dalrymple SN. Treatment of the Common Cold. Am Fam Physician. 2019;100(5):281-289. 
  58. Карпищенко С.А., Ушакова С.Е., Фридман И.Л., Гринев И.А., Писарев В.В., Меркулов М.Е. Результаты открытого рандомизированного активно-контролируемого исследования эффективности и безопасности нового лекарственного препарата Фринозол спрей назальный (Фенилэфрин + Цетиризин) у пациентов с острой респираторной инфекцией. Вестник оториноларингологии. 2019;84(5):61-67. 
  59. Шахова Е.Г. Сравнительное исследование эффективности комбинированных назальных топических препаратов и топических деконгестантов в лечении острых риносинуситов. Вестник оториноларингологии. 2020;85(4):46-50. 
  60. Карпова Е.П., Соколова М.В. Эффективность лечения острого ринита при острых респираторных инфекциях (ОРИ) у детей с аллергическим ринитом. РМЖ. 2010;18(24):1468-1472.
  61. Геппе Н.А., Фарбер И.А. Подбор рациональных методов терапии острых инфекционных и персистирующих аллергических ринитов легкой и средней степени тяжести у детей с использованием метода компьютерной бронхофонографии. Лечащий врач. 2010;61. 
  62. Sajjan U, Wang Q, Zhao Y, Gruenert DC, Hershenson MB. Rhinovirus Disrupts the Barrier Function of Polarized Airway Epithelial Cells. Am J Respir Crit Care Med. 2008;178(12):1271-1281. https://doi.org/10.1164/rccm.200801-136OC
  63. Hellings PW, Steelant B. Epithelial Barriers in Allergy and Asthma. J Allergy Clin Immunol. 2020;145(6):1499-1509. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2020.04.010
  64. Получена 08.08.2023 

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.