Пестова Р.М.

ФГБОУ ВО «Башкирский государственный медицинский университет» Минздрава России

Азнабаева Л.Ф.

ФГБОУ ВО «Башкирский государственный медицинский университет» Минздрава России;
ГБУЗ «Республиканская клиническая больница им. Г.Г. Куватова»

Савельева Е.Е.

ФГБОУ ВО «Башкирский государственный медицинский университет» Минздрава России

Самородов А.В.

ФГБОУ ВО «Башкирский государственный медицинский университет» Минздрава России

Противогрибковый иммунитет у пациентов с полипозным риносинуситом

Авторы:

Пестова Р.М., Азнабаева Л.Ф., Савельева Е.Е., Самородов А.В.

Подробнее об авторах

Прочитано: 1470 раз


Как цитировать:

Пестова Р.М., Азнабаева Л.Ф., Савельева Е.Е., Самородов А.В. Противогрибковый иммунитет у пациентов с полипозным риносинуситом. Вестник оториноларингологии. 2024;89(6):40‑45.
Pestova RM, Aznabaeva LF, Savelieva EE, Samorodov AV. Antifungal immunity in patients with chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Russian Bulletin of Otorhinolaryngology. 2024;89(6):40‑45. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/otorino20248906140

Рекомендуем статьи по данной теме:
Роль «Ин­фла­си­ну­сан­са» в ле­че­нии ос­тро­го ри­но­си­ну­си­та. Вес­тник ото­ри­но­ла­рин­го­ло­гии. 2025;(4):64-71
Оцен­ка обо­ня­ния при ос­тром си­ну­си­те. Рос­сий­ская ри­но­ло­гия. 2025;(1):6-11
Те­ра­пев­ти­чес­кий по­тен­ци­ал квер­це­ти­на и его про­из­вод­ных про­тив COVID-19. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(5):44-50
Си­нер­ге­ти­чес­кая эф­фек­тив­ность ис­поль­зо­ва­ния пре­фор­ми­ро­ван­ных фи­зи­чес­ких фак­то­ров и ду­пи­лу­ма­ба в те­ра­пии по­ли­поз­но­го ри­но­си­ну­си­та. Вос­ста­но­ви­тель­ные би­отех­но­ло­гии, про­фи­лак­ти­чес­кая, циф­ро­вая и пре­дик­тив­ная ме­ди­ци­на. 2025;(2):16-23

Введение

Актуальность исследования обусловлена высокой частотой заболевания: по данным Европейского общества ринологов, полипозным риносинуситом (ПРС) болеют 76—380 млн человек во всем мире [1]. Показаны полиэтиологичность заболевания и неоднозначность механизмов воспаления [1, 2]. В настоящее время ПРС относится к первичной диффузной форме хронического синусита, развивающегося по гуморальному (Th2) типу иммунного ответа. Установлена важная роль аллергического воспаления в патогенезе ПРС, в том числе инфекционного генеза [1]. Рассмотрено место грибковой сенсибилизации в развитии заболевания [1, 3—7], представлены данные о значении грибов рода Aspergillus. Выявлены клинические особенности ПРС: полиморфность состояния муцина в полости носа и околоносовых пазухах, который может быть жидким, легко растекающимся, и густым, более характерным для особой формы ПРС — аллергического грибкового риносинусита (АГРС). По данным литературы, АГРС характеризуется образованием особенного типа муцина, который обычно более густой и вязкий, чем обычный муцин. Слизь (муцин) при АГРС часто описывают как «арахисовое масло» из-за консистенции и цвета, который может варьировать от зеленого до коричневого [8—11]. Полиморфность состояния муцина отражается на течении заболевания в виде частоты рецидивов, возможных орбитальных и внутричерепных осложнений, сложностей, возникающих при проведении медикаментозного и хирургического лечения и в послеоперационном периоде [12—17]. Поэтому остается открытым вопрос значения грибковой сенсибилизации в развитии полиморфного течения ПРС (состояние муцина) с позиций противогрибкового иммунного ответа.

Цель исследования — оценить особенности противогрибкового иммунитета у пациентов с двусторонним полипозным риносинуситом в зависимости от состояния муцина (слизи, секрета, густого или жидкого) в околоносовых пазухах.

Материал и методы

В исследование включены 74 больных двусторонним ПРС и 30 практически здоровых лиц (группа контроля). Участники исследования сопоставимы по полу (мужчины: женщины=1: 1) и возрасту: средний возраст больных ПРС составил 48,8±13,0 года, возраст практически здоровых лиц — 44,4±15,1 года. Все пациенты с ПРС перед госпитализацией прошли курс лечения системными и местными гормонами, согласно клиническим рекомендациям «Полипозный риносинусит» (2014 г.), прооперированы и распределены в две группы: I — с жидким муцином (n=39), II — с густым муцином в околоносовых пазухах (n=35), который отличается своей плотной и вязкой консистенцией, прилипает к стенкам околоносовых пазух, слизистой оболочке носа и плохо поддается удалению с помощью электровакуумного отсоса.

Критерии включения пациентов в исследование: установленный диагноз «двусторонний полипозный риносинусит»; возраст старше 18 лет; наличие письменного информированного добровольного согласия на участие в исследовании и на обработку персональных данных.

Критерии невключения: возраст младше 18 лет; беременность; кормление грудью; наличие сопутствующей оториноларингологической патологии: новообразований полости носа и околоносовых пазух, гнойного отделяемого в полости носа и околоносовых пазухах, наличие в анамнезе синдрома Картагенера и муковисцидоза; наличие острой воспалительной патологии, ВИЧ.

Больные ПРС обследованы в соответствии с Приказом Минздрава России от 20 декабря 2012 г. №1203н «Об утверждении стандарта специализированной медицинской помощи при хроническом синусите» и согласно клиническим рекомендациям «Полипозный риносинусит» (2014 г.). Всем участникам проведено микологическое исследование мазков со слизистой оболочки среднего носового хода, согласно Приказу Минздрава СССР от 22 апреля 1985 г. №535 «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений». Результаты учитывались в КОЕ/мл. Дополнительно оценивали уровни специфических противогрибковых антител IgG и IgE в сыворотке крови к наиболее часто выявляемым при микологическом исследовании грибам Aspergillus fumigatus и Candida albicans методом иммуноферментного анализа. Для оценки полученных результатов применяли градацию концентрации аллерген-специфических IgE из инструкции по применению набора реагентов (ООО «Компания Алкор Био», Россия) (табл.1).

Таблица 1. Градация уровня специфического IgE в зависимости от его концентрации

Концентрация IgE, МЕ/мл

Уровень специфического IgE

≤0,35

клинически незначимый

0,36—0,5

очень низкий

0,51—1,0

низкий

1,1—5,0

средний

5,1—25

высокий

25,1—75

очень высокий

>75

исключительно высокий

Уровень специфических IgG оценивали в оптических единицах (о.е.), согласно инструкции производителя набора реагентов (АО «Вектор-Бест», Россия).

Всем пациентам, включенным в исследование, проведено цитологическое исследование мазка-перепечатка со средней носовой раковины. Риноцитограмма считалась эпителиальной или нейтрофильной, если в мазке цилиндрического эпителия нейтрофилов было более 50%, эозинофильной при уровне эозинофилов более 1%. Риноцитограммы, в которых обнаруживались тучные клетки, расценивались как цитограммы с тучными клетками. Если уровень нейтрофилов был более 50% и эозинофилов более 1%, то такой вид цитограммы относился к эозинофильно-нейтрофильному.

Результаты исследования обработаны с применением статистического пакета Statistica 10,0. Проверку на нормальность распределения фактических данных выполняли с помощью критерия Шапиро—Уилка. Для описания групп использовали медиану и межквартильный интервал. Дисперсионный анализ проводили с помощью критериев Манна—Уитни и Краскела—Уоллиса (для независимых наблюдений). Взаимосвязь признаков оценивали с расчетом коэффициента корреляции Спирмена (r). Оценку частоты признаков в общей структуре выборки провели методом сопряженных таблиц с использованием χ2 Пирсона с поправкой Йейтса. Критический уровень значимости p для статистических критериев принимали равным 0,05.

Результаты и обсуждение

Оценка результатов микологического исследования показала, что рост грибов рода Candida и Aspergillus встречался как у больных ПРС, так и у лиц группы контроля и находился в пределах допустимых значений (<105 КОЕ/мл), что может быть расценено как носительство. Грибы обнаружены у 83,3% (n=25) практически здоровых лиц, у 71,8% (n=28) пациентов группы I и у 77,1% (n=27) пациентов группы II. Показатели частоты выявления и грибковая нагрузка были сопоставимы во всех группах (p>0,05). Однако исследование спектра выявляемых грибов показало наличие особенностей. Грибы рода Candida обнаружены как у больных ПРС, так и у лиц группы контроля: у 30,8% (n=12) пациентов группы I, у 65,7% (n=23) пациентов группы II, у 76,7% (n=23) лиц группы контроля. Но у пациентов с жидким муцином данный род грибов встречался значительно реже, чем у лиц группы контроля (p=0,0011), а грибы рода Aspergillus — значительно чаще, чем у лиц группы контроля: 46,2% (n=18) и 6,6% (n=2, p=0,0017) соответственно, и у пациентов группы II, где их выявляемость была 20,0% (n=7, p=0,0335). Следовательно, в группах пациентов с ПРС выявлены различия. У пациентов с жидким муцином значительно чаще выявлялись грибы рода Aspergillus, а у больных с вязким муцином — грибы рода Candida (p=0,0064).

С учетом выявленного микологического пейзажа проведена оценка специфического противогрибкового иммунного ответа. Проведено исследование уровня антител классов G и E к грибам Candida albicans и Aspergillus fumigatus в сыворотке крови тех участников исследования, у кого были высеяны грибы. Показано, что, несмотря на низкую грибковую нагрузку, специфические антитела IgG к грибам рода Candida обнаруживались у участников исследования всех групп, но чаще у больных ПРС с густым муцином — 60,9% (n=14), 41,7% (n=5) у больных ПРС с жидким муцином (p>0,05) и 30,4% (n=7) у лиц группы контроля (p=0,0757 при χ2=3,15).

Уровень антител (степень напряженности) был сопоставим у всех носителей грибов рода Candida: у лиц группы контроля — 0,481 (0,458—1,560) о.е., у пациентов группы I — 0,807 (0,567—1,284) о.е. и у пациентов группы II — 0,644 (0,407—1,100) о.е. (p>0,05).

Оценка реагиновых антител IgE показала, что носительство грибов рода Candida всегда сопровождалось выработкой IgE как у лиц группы контроля, так и у больных ПРС. Однако напряженность гуморального иммунитета имела различия. Так, у лиц группы контроля концентрация специфических IgE соответствовала очень низкому уровню и составила 0,492 (0,439—0,521) МЕ/мл, у больных с жидким и густым муцином значения были выше и соответствовали низкому уровню — 0,539 (0,423—0,646) МЕ/мл и 0,527 (0,478—0,72) МЕ/мл по сравнению со значениями у лиц группы контроля (p=0,0182). У пациентов с густым муцином чаще отмечались более высокие значения и IgE, и/или IgG.

В ряде случаев, несмотря на рост содержания грибов рода Candida, специфические IgG не выявлены, но обнаружен аллерген-специфический IgE: у пациентов с густым муцином — на низком уровне 0,528 (0,512—0,539) МЕ/мл, а у лиц группы контроля и больных ПРС с жидким муцином — на очень низком уровне: 0,450 (0,426—0,516) МЕ/мл и 0,455 (0,387—0,551) МЕ/мл соответственно.

Оценка показателей клеточного иммунитета слизистой оболочки у носителей грибов Candida, по данным риноцитограмм, свидетельствовала об особенностях у больных ПРС в виде повышения количества эозинофилов в слизистой оболочке среднего носового хода, снижения содержания фагоцитарного звена — нейтрофилов в относительном и абсолютном значениях (табл. 2) и редкого выявления нейтрофильного типа риноцитограмм, особенно у пациентов с вязким муцином: практически здоровые лица — 47,8% (n=11), группа I — 0,0%, группа II — 8,7% (n=2) (p<0,05).

Таблица 2. Напряженность иммунитета у больных полипозным риносинуситом и у обследованных лиц группы контроля, у которых выявлены грибы рода Candida

Показатель

Группа контроля (n=23)

Пациенты с полипозным риносинуситом

группа I, с жидким муцином (n=12)

группа II, с густым муцином (n=23)

+IgG (n=7)

–IgG (n=16)

+IgE (n=23)

–IgE (n=0)

+IgG (n=5)

–IgG (n=7)

+IgE (n=12)

–IgE (n=0)

+IgG (n=14)

–IgG (n=9)

+IgE (n=23)

–IgE (n=0)

Нейтрофилы, абс.

10,0 (4,0—1160,0)

63,0 (22,0—301,0)

47,0 (10,0—315,0)

0,0* (0,0—0,0)

0,0* (0,0—12,0)

0,0* (0,0—6,5)

0,0* (0,0—30,0)

8,0* (3,0—63,0)

3,0* (0,0—35,0)

Нейтрофилы, %

34,0 (7,0—58,0)

46,0 (31,5—75,0)

36,0 (28,0—67,0)

0,0* (0,0—0,0)

0,0* (0,0—6,0)

0,0* (0,0—4,0)

0,0* (0,0—20,0)

7,5* (2,0—25,0)

2,0* (0,0—25,0)

Эозинофилы, абс.

0,0 (0,0—0,0)

0,0 (0,0—0,0)

0,0 (0,0—0,0)

0,0 (0,0—0,0)

0,0 (0,0—0,0)

0,0 (0,0—0,0)

0,0 (0,0—1,0)

0,0 (0,0—3,0)

0,0* (0,0—2,0)

Эозинофилы, %

0,0 (0,0—0,0)

0,0 (0,0—0,0)

0,0 (0,0—0,0)

0,0 (0,0—0,0)

0,0 (0,0—0,0)

0,0 (0,0—0,0)

0,0 (0,0—1,0)

0,0 (0,0—2,0)

0,0* (0,0—1,0)

Примечание. Данные представлены в виде Me [25—75]. * — p<0,05 при сравнении показателей основной группы с контролем.

Следовательно, у больных с густым муцином выявлены более выраженная напряженность гуморального специфического иммунного ответа на носительство грибов рода Candida (IgG и IgE), повышение уровня эозинофилов и дефицит содержания фагоцитов по сравнению с показателями у лиц группы контроля.

Оценка иммунного реагирования у носителей грибов Aspergillus fumigatus во всех исследуемых группах не выявила клинически значимого уровня образования специфических антител (IgG и IgE). Риноцитограммы, так же как и у носителей грибов рода Candida, характеризовались низким содержанием фагоцитов (нейтрофилов).

Таким образом, у всех участников исследования обнаружен рост грибов в пределах клинически незначимого уровня, что совпадает с данными литературы [11, 18], и это можно расценить как носительство. Однако спектр грибковой флоры значительно различался: грибы рода Candida преобладали у лиц контрольной группы и у пациентов с густым муцином, тогда как грибы рода Aspergillus были более распространены у пациентов с жидким муцином, что может свидетельствовать об участии грибов рода Candida в патогенезе ПРС с густым муцином. По данным литературы, у пациентов с ПРС преобладали грибы рода Aspergillus [19].

У носителей грибов рода Candida из группы больных с густым муцином выявлен более высокий уровень напряженности гуморального иммунного ответа к грибам рода Candida. Это отражалось в повышенной концентрации специфических IgG и IgE в сыворотке крови и большем количестве эозинофилов в слизистой оболочке полости носа, указывая на формирование противогрибкового иммунного ответа на системном и местном уровнях. Полученные результаты соответствуют данным исследований, указывающим на повышение уровня специфических противогрибковых IgE, повышенное количество эозинофилов в риноцитограммах у пациентов с ПРС [19—23].

Носительство грибов Aspergillus fumigatus как у лиц группы контроля, так и у пациентов с ПРС не сопровождалось активацией иммунного ответа. Полученные нами данные сопоставимы с данными N. Goplen и соавт. и K. Iijima и соавт. [24, 25].

Заключение

Исследование противогрибкового иммунитета у пациентов с полипозным риносинуситом выявило формирование иммунного ответа преимущественно к грибам рода Candida, более выраженного у больных с густым муцином. Специфические иммуноглобулины классов G и E формировались даже у лиц с низкой грибковой обсемененностью и сопровождались эозинофилией в мазках-перепечатках со слизистой оболочки полости носа. Носительство грибов рода Aspergillus не сопровождалось активацией специфического антительного ответа.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования — Пестова Р.М., Азнабаева Л.Ф., Самородов А.В., Савельева Е.Е.

Сбор и обработка материала — Пестова Р.М., Азнабаева Л.Ф.

Статистический анализ данных — Пестова Р.М., Азнабаева Л.Ф.

Написание текста — Пестова Р.М.

Редактирование — Азнабаева Л.Ф., Самородов А.В., Савельева Е.Е.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Fokkens WJ, Lund VJ, Hopkins C, Hellings PW, Kern R, Reitsma S, Toppila-Salmi S, Bernal-Sprekelsen M, Mullol J, Alobid I, Terezinha Anselmo-Lima W, Bachert C, Baroody F, von Buchwald C, Cervin A, Cohen N, Constantinidis J, De Gabory L, Desrosiers M, Diamant Z, Douglas RG, Gevaert PH, Hafner A, Harvey RJ, Joos GF, Kalogjera L, Knill A, Kocks JH, Landis BN, Limpens J, Lebeer S, Lourenco O, Meco C, Matricardi PM, O’Mahony L, Philpott CM, Ryan D, Schlosser R, Senior B, Smith TL, Teeling T, Tomazic PV, Wang DY, Wang D, Zhang L, Agius AM, Ahlstrom-Emanuelsson C, Alabri R, Albu S, Alhabash S, Aleksic A, Aloulah M, Al-Qudah M, Alsaleh S, Baban MA, Baudoin T, Balvers T, Battaglia P, Bedoya JD, Beule A, Bofares KM, Braverman I, Brozek-Madry E, Richard B, Callejas C, Carrie S, Caulley L, Chussi D, de Corso E, Coste A, El Hadi U, Elfarouk A, Eloy PH, Farrokhi S, Felisati G, Ferrari MD, Fishchuk R, Grayson W, Goncalves PM, Grdinic B, Grgic V, Hamizan AW, Heinichen JV, Husain S, Ping TI, Ivaska J, Jakimovska F, Jovancevic L, Kakande E, Kamel R, Karpischenko S, Kariyawasam HH, Kawauchi H, Kjeldsen A, Klimek L, Krzeski A, Kopacheva Barsova G, Kim SW, Lal D, Letort JJ, Lopatin A, Mahdjoubi A, Mesbahi A, Netkovski J, Nyenbue Tshipukane D, Obando-Valverde A, Okano M, Onerci M, Ong YK, Orlandi R, Otori N, Ouennoughy K, Ozkan M, Peric A, Plzak J, Prokopakis E, Prepageran N, Psaltis A, Pugin B, Raftopulos M, Rombaux P, Riechelmann H, Sahtout S, Sarafoleanu CC, Searyoh K, Rhee CS, Shi J, Shkoukani M, Shukuryan AK, Sicak M, Smyth D, Sindvongs K, Soklic Kosak T, Stjarne P, Sutikno B, Steinsvag S, Tantilipikorn P, Thanaviratananich S, Tran T, Urbancic J, Valiulius A, Vasquez de Aparicio C, Vicheva D, Virkkula PM, Vicente G, Voegels R, Wagenmann MM, Wardani RS, Welge-Lussen A, Witterick I, Wright E, Zabolotniy D, Zsolt B, Zwetsloot CP. European Position Paper on Rhinosinusitis and Nasal Polyps 2020. Rhinology Journal. 2020;58(Suppl S29):1-464.  https://doi.org/10.4193/rhin20.600
  2. Шиленкова В.В., Шиленков К.А. EPOS-2020. Что нового? Российская ринология. 2020;28(2):94-100.  https://doi.org/10.17116/rosrino20202802194
  3. Chakrabarti A, Kaur H. Allergic Aspergillus Rhinosinusitis. Journal of Fungi. 2016;2(4):32.  https://doi.org/10.3390/jof2040032
  4. Schubert MS. Medical treatment of allergic fungal sinusitis. Annals of Allergy, Asthma and Immunology. 2000;85(2):90-98.  https://doi.org/10.1016/s1081-1206(10)62445-3
  5. Safirstein BH. Allergic Bronchopulmonary Aspergillosis with Obstruction of the Upper Respiratory Tract. Chest. 1976;70(6):788-790.  https://doi.org/10.1378/chest.70.6.788
  6. Katzenstein ALA, Sale SR, Greenberger PA. Allergic Aspergillus sinusitis: a newly recognized form of sinusitis. Journal of Allergy and Clinical Immunology. 1983;72(1):89-93.  https://doi.org/10.1016/0091-6749(83)90057-X
  7. Bent JP, Kuhn FA. Diagnosis of Allergic Fungal Sinusitis. Otolaryngology — Head and Neck Surgery. 1994;111(5):580-588.  https://doi.org/10.1177/019459989411100508
  8. Ponikau JU, Sherris DA, Kern EB, Homburger HA, Frigas E, Gaffey TA, Roberts GD. The diagnosis and incidence of allergic fungal sinusitis. Mayo Clinic Proceedings. 1999;74(9):877-884.  https://doi.org/10.4065/74.9.877
  9. Schubert MS. Allergic fungal sinusitis: pathophysiology, diagnosis and management. Medical Mycology. 2009;47(s1):S324-S330. https://doi.org/10.1080/13693780802314809
  10. Correll DP, Luzi SA, Nelson BL. Allergic Fungal Sinusitis. Head and Neck Pathology. 2014;9(4):488-491.  https://doi.org/10.1007/s12105-014-0598-5
  11. Chakrabarti A, Denning DW, Ferguson BJ, Ponikau J, Buzina W, Kita H, Marple B, Panda N, Vlaminck S, Kauffmann-Lacroix C, Das A, Singh P, Taj-Aldeen SJ, Kantarcioglu AS, Handa KK, Gupta A, Thungabathra M, Shivaprakash MR, Bal A, Fothergill A, Radotra BD. Fungal rhinosinusitis. The Laryngoscope. 2009;119(9):1809-1818. https://doi.org/10.1002/lary.20520
  12. Eggesbo HB. Radiological imaging of inflammatory lesions in the nasal cavity and paranasal sinuses. European Radiology. 2006;16(4):872-888.  https://doi.org/10.1007/s00330-005-0068-2
  13. Lund VJ, Lloyd G, Savy L, Howard D. Fungal rhinosinusitis. Journal of Laryngology and Otology. 2000;114(1):76-80.  https://doi.org/10.1258/0022215001903762
  14. Пестова Р.М., Савельева Е.Е., Азнабаева Л.Ф., Дашкин Р.Р. Сложный полипозный риносинусит. Наука молодых (Eruditio Juvenium). 2019;7(3):415-422.  https://doi.org/10.23888/hmj201973415-422
  15. Marple BF. Allergic Fungal Rhinosinusitis: Current Theories and Management Strategies. The Laryngoscope. 2001;111(6):1006-1019. https://doi.org/10.1097/00005537-200106000-00015
  16. Ferguson BJ. Eosinophilic Mucin Rhinosinusitis: A Distinct Clinicopathological Entity. The Laryngoscope. 2000;110(5):799-813.  https://doi.org/10.1097/00005537-200005000-00010
  17. Fokkens WJ, van Drunen C, Georgalas C, Ebbens F. Role of fungi in pathogenesis of chronic rhinosinusitis. Current Opinion in Otolaryngology and Head and Neck Surgery. 2012;20(1):19-23.  https://doi.org/10.1097/moo.0b013e32834e9084
  18. Kim ST, Choi JH, Jeon HG, Cha HE, Hwang YJ, Chung YS. Comparison between polymerase chain reaction and fungal culture for the detection of fungi in patients with chronic sinusitis and normal controls. Acta Oto-Laryngologica. 2005;125(1):72-75.  https://doi.org/10.1080/00016480410018133
  19. Zhao YC, Bassiouni A, Tanjararak K, Vreugde S, Wormald PJ, Psaltis AJ. Role of fungi in chronic rhinosinusitis through ITS sequencing. The Laryngoscope. 2017;128(1):16-22.  https://doi.org/10.1002/lary.26702
  20. Мезенцева О.Ю., Конопля Н.А., Честникова С.Э., Воробьева А.А., Левченко А.С. Корреляция уровня иммуноглобулина Е и цитологического состава секрета слизистой оболочки у больных хроническим бактериальным и полипозным риносинуситом. Российская ринология. 2015;23(3):26-29.  https://doi.org/10.17116/rosrino201523326-29
  21. Shin SH, Ye MK, Lee D, Sang-Yen Geum. Immunopathologic Role of Fungi in Chronic Rhinosinusitis. International Journal of Molecular Sciences. 2023;24(3):2366-2366. https://doi.org/10.3390/ijms24032366
  22. Collins M, Nair S, Smith W, Kette F, Gillis D, Peter John Wormald. Role of Local Immunoglobulin E Production in the Pathophysiology of Noninvasive Fungal Sinusitis. The Laryngoscope. 2004;114(7):1242-1246. https://doi.org/10.1097/00005537-200407000-00019
  23. Chua AJ, Jafar A, Luong AU. Update on allergic fungal rhinosinusitis. Annals of Allergy, Asthma, and Immunology. 2023;131(3):300-306.  https://doi.org/10.1016/j.anai.2023.02.018
  24. Goplen N, Karim MZ, Liang Q, Gorska MM, Rozario S, Guo L, Alam R. Combined sensitization of mice to extracts of dust mite, ragweed, and Aspergillus species breaks through tolerance and establishes chronic features of asthma. Journal of Allergy and Clinical Immunology. 2009;123(4):925-932.e11.  https://doi.org/10.1016/j.jaci.2009.02.009
  25. Iijima K, Kobayashi T, Hara K, Kephart GM, Ziegler SF, McKenzie AN, Kita H. IL-33 and Thymic Stromal Lymphopoietin Mediate Immune Pathology in Response to Chronic Airborne Allergen Exposure. The Journal of Immunology. 2014;193(4):1549-1559. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1302984

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.