
Лечение заболеваний человека методом клизменной трансплантации фекальной микробиоты. Методические рекомендации
Журнал: Профилактическая медицина. 2024;27(6):79-87.
DOI: 10.17116/profmed20242706179
Прочитано: 5305 раз
Резюме
Методические рекомендации разработаны на основе собственного опыта, а также углубленного анализа данных современной отечественной и зарубежной литературы. Подробно изложены этапы реализации медицинской технологии — трансплантации фекальной микробиоты клизменным методом с целью восстановления состава микробиоты кишечника. Представлены конкретные рекомендации по отбору и обследованию доноров, биобанкированию донорского материала, определению показаний и противопоказаний, обследованию и подготовке пациентов с заболеваниями желудочно-кишечного тракта, порядку проведения процедур трансплантации фекальной микробиоты. Методические рекомендации предназначены для профильных специалистов в области гастроэнтерологии, эндокринологии, терапии, трансплантологии.
Ключевые слова
- фекальная микробиота
- гастроэнтерология
- трансплантация
- терапия
- биобанкирование
Дата поступления: 30.01.2024
Дата принятия в печать: 31.01.2024
Дата публикации: 24.06.2024
Список сокращений
ВЗК — воспалительные заболевания кишечника
ЖКТ — желудочно-кишечный тракт
ИМТ — индекс массы тела
КМ — кишечная микробиота
ЛС — лекарственные средства
ТФМ — трансплантация фекальной микробиоты
ХНИЗ — хронические неинфекционные заболевания
C. difficile — Clostridioides difficile
Введение
Настоящие рекомендации являются согласованным мнением группы авторов, которое выработано на основе собственного опыта, а также тщательного анализа данных отечественной и зарубежной литературы.
Кишечная микробиота (КМ) человека представляет собой совокупность микроорганизмов (бактерий, вирусов, простейших, грибов), находящихся в симбиотической связи между собой и организмом хозяина. Количество, тип и функция микроорганизмов варьируют в зависимости от протяженности желудочно-кишечного тракта (ЖКТ), достигая максимальной концентрации в толстой кишке. В феврале 2021 г. Международным комитетом по систематике прокариот пересмотрены классификация и наименование филотипов бактерий [1]. В норме состав КМ представлен 6 филотипами, из которых 90% составляют Bacillota (ранее Firmicutes) и Bacteroidota, далее в порядке убывания располагаются Actinobacteriota, Verrucomicrobiota, Alphaproteobacteriota (ранее Proteobacteria) и Methanobacteriota (ранее Euryarchaeota) [2].
В течение многих лет микробиота кишечника считалась лишь частью пищеварительной системы. Однако в настоящее время она широко признана интегрированной эндокринной системой, производящей большое количество метаболически зависимых и метаболически независимых сигналов, оказывающих огромное влияние на организм хозяина. Следует различать просветную и пристеночную популяции микробов в кишечнике: пристеночная микробиота на поверхности эпителия кишечника может оказывать влияние на иммунную систему, тогда как просветная КМ в большей степени вовлечена в энергетические и метаболические взаимодействия с организмом хозяина. Взаимодействие бактерий с организмом хозяина напоминает кооперацию обычных клеток и может осуществляться за счет рецепторного контакта, паракринных и гуморальных механизмов, а также благодаря фагоцитозу и эндоцитозу. Микроорганизмы продуцируют гормоноподобные вещества, аналоги факторов роста и нейромедиаторов, что определяет двустороннее взаимодействие микробиоты с центральной нервной системой и ее активную роль в метаболизме организма-хозяина.
На текущий момент накоплен солидный фактический материал, свидетельствующий о несомненном влиянии КМ на иммунитет и барьерные функции кишечника, пищеварение, обмен веществ, системное воспаление. Функциональные возможности КМ сопоставимы с деятельностью целого органа. Так, например, только по своей метаболической активности микробиота вполне может конкурировать с печенью [3]. Этот факт дал основание говорить о КМ как о полноправном, хоть и «невидимом» метаболическом органе.
Трансплантация фекальной микробиоты (ТФМ) представляет собой введение фекального материала, содержащего дистальную кишечную микробиоту, от здорового человека (донора) пациенту с заболеванием или болезненным состоянием (показания приведены в п. 7.1. настоящих рекомендаций).
Целью ТФМ является лечение заболеваний путем восстановления филогенетического разнообразия и состава микробиоты кишечника, характерной для здоровых людей. На сегодняшний день ТФМ активно изучается как один из методов лечения заболеваний ЖКТ, печени и некоторых видов внекишечной патологии. Исследуемыми потенциальными показаниями для ТФМ являются воспалительные заболевания кишечника (ВЗК), например, язвенный колит и болезнь Крона, функциональные нарушения ЖКТ (синдром раздраженного кишечника, запоры). На данный момент опубликованы результаты 7 систематических обзоров и 4 метаанализов, в которых оценивалась эффективность ТФМ при ВЗК, причем клинический ответ на процедуру был выражен в большей степени при язвенном колите (66%) по сравнению с болезнью Крона (54%) [4—7]. Ремиссия после ТФМ достигалась чаще при язвенном колите (41%), чем при болезни Крона (37%). В Китае перечень показаний к проведению ТФМ включает в себя такие заболевания, как ВЗК, хронические запоры, синдром раздраженного кишечника, ожирение, сахарный диабет 2-го типа [7].
В настоящее время единственным официальным показанием к проведению ТФМ в России и за рубежом является рецидивирующая и рефрактерная Clostridioides difficile (C. difficile)-ассоциированная болезнь. После этиотропного лечения первого эпизода C. difficile-ассоциированной болезни в 25—30% случаев регистрируется рецидив, а после второго — в 65% случаев терапия оказывается неэффективной. Эффективность ТФМ в лечении рецидивирующей C. difficile-ассоциированной болезни подтверждена во многих рандомизированных клинических исследованиях. Опубликовано 4 систематических обзора и 3 метаанализа, в которых сравнивалась эффективность терапии псевдомембранозного колита ванкомицином и ТФМ. Согласно полученным данным, эффективность процедуры ТФМ составила 85,0—89,7%.
Согласно методическим рекомендациям «Диагностика и лечение псевдомембранозного колита» 2022 г., вопрос о выполнении ТФМ обсуждается при угрозе третьего рецидива или отсутствии ответа на терапию при тяжелой форме C.difficile-ассоциированной болезни [8]. В 2013 г. в Американских рекомендациях по лечению инфекции, вызванной C. difficile, указано, что пациентам с рецидивом заболевания после двух безуспешных попыток лечения ванкомицином необходимо проведение ТФМ [9]. Согласно Европейскому консенсусу 2017 г., ТФМ рекомендуется для лечения как легкой, так и тяжелой формы рецидивирующей, а также рефрактерной C. difficile-ассоциированной болезни [10]. В декабре 2022 г. Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов (Food and Drug Administration, FDA) впервые одобрило применение ТФМ для лечения рецидивирующей C. difficile-ассоциированной болезни, не поддающейся лечению антибактериальными препаратами (FDA Approves First Fecal Microbiota Product | FDA). Факторами риска неэффективности ТФМ (10—20%) могут выступать неудовлетворительная подготовка кишечника перед процедурой и недостаточное время экспозиции биоматериала. Потенциальной областью применения ТФМ могут также выступать заболевания других органов и систем за пределами ЖКТ, такие как сахарный диабет 2-го типа, неалкогольная жировая болезнь печени, ожирение, различные аутоиммунные заболевания, болезнь Паркинсона, расстройства аутистического спектра, рассеянный склероз, идиопатическая тромбоцитопеническая пурпура, полирезистентные инфекции и полиорганная недостаточность у критических пациентов.
Вопрос о возможностях защиты реципиента от риска трансплантации патогенной микробиоты, включая вирусы, бактерии, грибы, лейкоциты, кишечный эпителий и от донора, остается предметом дискуссии.
Методология
Доказательной базой для настоящих рекомендаций являются:
— публикации, вошедшие в базы Web of Science, SCOPUS. Глубина поиска составила 10 лет;
— Объединенные рекомендации британского общества гастроэнтерологов и общества инфекционистов по применению трансплантации фекальной микробиоты для лечения рецидивирующей или рефрактерной C. difficile-ассоциированной болезни и по другим возможным показаниям [11];
— Международный консенсус по биобанкированию образцов кала для проведения трансплантации фекальной микробиоты в клинической практике [12];
— материалы (лекции, экспертные советы) с сайта Межрегиональной общественной организации «Научное сообщество по содействию клиническому изучению микробиома человека» (НСОИМ)1;
— Протокол заседания Комитета по этике Министерства здравоохранения Российской Федерации (от 05.04.19 №2);
— Протокол заседания Локального этического комитета АО «Научный центр персонализированной медицины» (от 12.02.19 №2).
Для оценки качества и силы доказательств использованы методы:
— консенсус экспертов.
При отборе публикаций как потенциальных источников доказательств использованная в каждом исследовании методология изучается для того, чтобы убедиться в ее валидности.
При формулировании рекомендаций использованы методы:
— консенсус экспертов.
Рекомендуемая доброкачественная практика базируется на клиническом опыте авторов-разработчиков.
При валидизации рекомендаций использованы методы:
— внешняя экспертная оценка;
— внутренняя экспертная оценка.
Лечение заболеваний человека путем трансплантации фекальной микробиоты методом клизменного введения
Описание метода: введение небольшого объема фильтрата кишечной микробиоты через клизму в условиях амбулаторного посещения в клизменной. Пациентам следует удерживать стул в течение 30 минут в положении на спине с приподнятыми ногами. Процедуру повторяют неоднократно.
Предпочтения: легко воспроизводится, амбулаторная манипуляция, хорошо переносится пациентами.
Недостатки: необходимость многократного повторения процедуры, дискомфорт, связанный с вытеканием фильтрата, фильтрат микробиоты не проходит дальше селезеночного угла.
1. Донорство
Цель отбора доноров — уменьшение и предупреждение нежелательных событий, связанных с введением фекальной микробиоты.
Первый шаг — письменный опрос, сфокусированный на анамнезе заболеваний и привычках потенциального донора, с целью выявления факторов риска.
Доноры, прошедшие скрининг, также должны проходить дополнительное собеседование в день сдачи материала, чтобы исключить любую недавно возникшую и потенциально опасную проблему.
Согласно требованиям Национального института здоровья США донором кишечной микробиоты может быть супруг(а)/партнер, родственник 1-й степени родства, человек, находящийся в контакте с реципиентом и «универсальный» донор.
1.1. Критерии включения для донора [12]:
— возраст 18—60 лет;
— регулярный стул (периодичность дефекаций от 3 раз в неделю до 3 раз в день; форма — тип 3—4 по Бристольской шкале форм кала);
— отсутствие хронических заболеваний ЖКТ в анамнезе (гастроэзофагеальная рефлюксная болезнь, хронический гастрит, дуоденит, язвенная болезнь желудка и двенадцатиперстной кишки в стадии обострения, целиакия, желчнокаменная болезнь, хронические заболевания печени, хронический панкреатит, воспалительные заболевания кишечника, хронический запор, микроскопический колит, функциональные заболевания кишечника, хронический геморрой, хронические системные заболевания с вовлечением органов пищеварения);
— отрицательный статус в отношении ВИЧ-1,2, вирусных гепатитов A, B, C, сифилиса, туберкулеза, гонореи, малярии, трипаносомоза, бруцеллеза, сыпного тифа, эхинококкоза, токсоплазмоза, COVID-19;
— отсутствие ожирения (индекс массы тела (ИМТ) >30 кг/м2, окружность талии >80 см у женщин и >92 см у мужчин), артериальной гипертензии, дислипидемии, нарушений углеводного обмена;
— минимальное использование лекарственных средств (ЛС) с полным отказом от приема ЛС, способных влиять на состав кишечной микробиоты, включая антибактериальные, противогрибковые, противовирусные препараты, в течение 3 месяцев до сдачи кала;
— не выполнялись татуировки, пирсинг, проколы ушей за последние 6 месяцев;
— отсутствие переливания крови за последние 6 месяцев;
— отказ от приема продуктов питания, часто ассоциированных с развитием пищевой аллергии (орехи, яйца, арахис, рыба), и алкоголя за 5 дней до сдачи материала без принципиального изменения диеты и режима питания;
— отсутствие поездок в тропические страны, страны с высоким риском развития инфекционных заболеваний или диареи путешественника в течение последних 6 месяцев;
— отсутствие рисков, связанных с передачей заболеваний, вызванных прионами.
1.2. Критерии исключения для донора:
— несоответствие любому критерию включения;
— положительный результат анализа кала на возбудителей кишечных инфекций (Salmonella, Shigella, Campylobacter, Yersinia, энтеровирусы) или токсины C. difficile A и B, или простейшие и яйца глист методом PARASEP;
— поведение высокого риска (беспорядочные половые контакты; употребление наркотических веществ; венерические заболевания в анамнезе);
— работники здравоохранения, сотрудники медицинских организаций (с целью исключения передачи резистентных к антибиотикам микроорганизмов);
— владельцы животных, заводчики домашних животных, дрессировщики с целью исключения передачи зоонозов;
— наличие родственников 1-й линии родства с онкологическими заболеваниями ЖКТ/ полипозом ЖКТ
— перенесенные паразитарные/бактериальные/вирусные инфекции ЖКТ в течение последних 3 мес;
— наличие неврологических, нейродегенеративных, психических заболеваний;
— длительный (>6 мес) прием ингибиторов протонной помпы или блокаторов H2-гистаминовых рецепторов.
1.3. Обследование донора до забора материала [12]
Перед забором кала донор должен пройти первичное обследование, включающее в себя проведение следующих анализов:
— общий анализ крови (оценка следующих показателей: количество эритроцитов, содержание гемоглобина, скорость оседания эритроцитов, количество тромбоцитов, количество лейкоцитов и лейкоцитарная формула);
— биохимический анализ крови (определение следующих показателей: аланинаминотрансфераза (АлАТ), аспартатаминотрансфераза (АсАТ), щелочная фосфатаза, панкреатическая амилаза, фракции билирубина, уровень глюкозы, С-реактивный белок, холестерин, мочевина, креатинин);
— анализ крови для исключения инфекции ВИЧ-1,2 методом ИФА, вирусом гепатита A (anti-HAV IgM), гепатита B (HBsAg, anti-HBcor Ab суммарные) и гепатита C (anti-HCV Ab);
— анализ крови на антитела к цитомегаловирусу IgM и IgG.
— анализ крови на антитела к вирусу Эпштейна—Барр IgM и IgG.
— анализ крови на антитела класса IgG к Entamoeba histolytica.
— анализ крови на антитела к Strongyloides stercoralis.
— анализ крови на наличие возбудителя сифилиса.
— анализ мочи общий (оценка следующих показателей: физические свойства мочи (цвет, прозрачность, удельный вес, pH — реакция мочи); химическое исследование мочи (белок, глюкоза, кетоновые тела); микроскопическое исследование мочи (эритроциты, лейкоциты, эпителиальные клетки, цилиндры);
— общий анализ кала (включая макро- и микроскопическую оценку; для исключения нарушений переваривания, всасывания питательных веществ, воспалительных изменений);
— анализ кала методом PARASEP для исключения паразитарной и глистной инвазии;
— анализ кала на токсины A и B C. difficile;
— анализ кала на возбудителей кишечных инфекций бактериологическим методом и методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) (Shigella spp./Escherichia coli (Enteroinvasive Escherichia coli — EIEC), Salmonella spp., Campilobacter spp., Adenovirus F, Rotavirus A, Norovirus GII, Astrovirus);
— анализ кала на антиген Helicobacter pylori;
— анализ кала на антиген лямблий.
В случае если результаты анализов соответствуют нормальным значениям, донор приглашается в медицинское учреждение для сдачи кала. Если донор сдает кал на регулярной основе, то процедуру первичного обследования необходимо повторять 1 раз в 2 мес.
1.4. Забор донорского материала для проведения трансплантации фекальной микробиоты
В день забора донор лично приезжает в медицинское учреждение. Донор сдает фекальный материал в условиях лаборатории.
Материал должен соответствовать следующим требованиям: консистенция плотноватая, форма цилиндрическая (тип 3—4 по Бристольской шкале форм кала), цвет от темно-коричневого до светло-коричневого, запах нерезкий, негнилостный, кал не должен содержать слизь, кровь, гной, остатки пищи.
Далее биоматериал доставляют в биобанк, где проводят пробоподготовку и хранение фильтрата для ТФМ.
2. Биобанкирование
2.1. Условия взятия и транспортировки фекалий
Забранный первичный материал от донора фасуется по 25—30 г в пластиковые емкости с завинчивающейся крышкой, маркируется (анонимизируется) и учитывается в электронных и бумажных журналах. Все манипуляции должны быть проведены не дольше чем за 30 минут с момента дефекации.
Работы проводятся в условиях лаборатории, в вытяжном шкафу, с соблюдением стерильности и использованием одноразовых расходных материалов.
После дефекации и до дальнейшей обработки образец кала может храниться при комнатной температуре не более 30 мин. Если доставка собранных фекалий в биобанк кала занимает более 30 мин, следует поместить образец в сумку-холодильник или холодильник на временное хранение (не более 120 мин) при температуре +4 °C (±2 °C) или более низкой температуре (но не замораживать, так как повторные циклы замораживания и размораживания могут повлиять на качество материала) [13, 14]. Хранение фекалий без стабилизирующего буферного раствора дольше 30 минут может способствовать значительному изменению состава КМ [15—18]. Если в первичный образец добавить стабилизатор/криопротектор (медицинский глицерин, в конечной концентрации 10—15%), то его можно заморозить и хранить при –80 °C до момента приготовления фильтрата для ТФМ.
Чтобы минимизировать риск гибели микроорганизмов и изменения микробного состава образца, донорский материал следует обрабатывать в кратчайшие сроки, так как большинство бактерий в образцах кала являются анаэробами [19].
Для подготовки препаратов фекалий, применяющихся для лечения инфекции, вызванной C. difficile, не требуется соблюдать анаэробные условия, так как это не способствует повышению эффективности лечения [20—22]. Возможность осуществления пробоподготовки в аэробных условиях объясняется тем, что значительная часть родов бактерий может находиться в аэробных условиях в течение ограниченного времени или производить устойчивые споры, которые позволяют пересадить реципиенту, по крайней мере, часть анаэробных бактерий, населяющих кишечник [23].
Смешивание материала от нескольких доноров в процессе обработки и подготовки пробы не рекомендуется, потому что: а) затрудняет процесс отслеживания исходов ТФМ с применением препаратов от отдельных доноров; б) повышает риск заражения трансмиссивными заболеваниями; в) может нарушать принцип трансфузии сбалансированной по составу суспензии кишечной микробиоты.
2.2. Пробоподготовка
Существуют различные варианты пробоподготовки фильтрата КМ, которые в разной степени стандартизованы и применяются на практике2 [22].
2.2.1. Для приготовления фильтрата КМ для ТФМ используют одну порцию первичного материала от одного донора — 25—30 г, полученную в течение 30 минут после взятия фекалий. Первичный материал гомогенизируют со 150 мл физиологического раствора комнатной температуры в стерильном блендере. Затем суспензию фильтруют через стерильный марлевый фильтр (6—7 слоев медицинской марли) самотеком в стерильную емкость — стеклянную герметично закрываемую или пластиковую с закручивающейся крышкой3. Полученный фильтрат фекалий может быть либо использован для процедуры ТФМ после приготовления, либо заморожен до применения по назначению. Для замораживания в фильтрат для ТФМ добавляют медицинский глицерин в качестве криопротектора в конечной концентрации 10—15% (рис. 1).

Рис. 1. Применение полученного фильтрата кишечной микробиоты для трансплантации фекальной микробиоты.
2.2.2. Замороженный первичный фекальный материал с медицинским глицерином в качестве криопротектора в конечной концентрации 10—15% следует разморозить перед приготовлением фильтрата КМ для ТФМ. Первичный фекальный препарат за 4—5 ч до получения фильтрата для ТФМ достают и размораживают при комнатной температуре, либо на водяной бане при +37 °C (можно за меньшее время в этом случае) в условиях, обеспечивающих предотвращение перекрестной контаминации. Далее готовят фильтрат по той же схеме, что и из свежего биоматериала.
Размороженные препараты для ТФМ должны быть введены в тот же день; их нельзя подвергать повторной заморозке, поскольку циклы замораживания и размораживания неблагоприятно влияют на жизнеспособность микробных сообществ в суспензии [24].
Возможен вариант пробоподготовки с проведением центрифугирования после первичной очистки от крупных частиц с последующим ресуспендированием [22].
До получения всех результатов обследования донора подготовленные к трансплантации фекальные препараты необходимо хранить изолированно от других образцов и отдельно друг от друга (в изолированных секциях) — зона карантина. Перемещение препарата из зоны «карантина» необходимо документировать. После этого препарат может быть помещен в другую отдельную секцию для хранения. Процесс приготовления препарата фильтрата кишечной микробиоты представлен на рис. 2 [25].

Рис. 2. Процесс приготовления препарата фильтрата кишечной микробиоты (адаптировано из [24]).
2.3. Транспортировка и возможные сроки хранения
Транспортировка замороженных первичных препаратов и фильтрата для ТФМ должна осуществляться с помощью сертифицированной курьерской службы на сухом льду. Для транспортировки свежеприготовленного фильтрата для ТФМ необходимо использовать температуру 4 °C или комнатную и ограничить время до 120 мин. Отправленные препараты для ТФМ следует регистрировать в информационной системе биобанка с внесением информации об организации-получателе и запросившем лице. Это необходимо для отслеживания происхождения препарата в случае возникновения нежелательных реакций. В медицинском центре, в котором планируется применение фильтрата для ТФМ, не рекомендуется длительное хранение размороженных первичных препаратов для ТФМ и фильтратов для ТФМ [12].
В условиях –80 °C замороженный фильтрат КМ для ТФМ может храниться в течение 12 мес до использования. По истечении срока хранения неиспользованный материал утилизируется по правилам утилизации биологического материала. Для ведения документации, присвоения кодов, регистрации и отслеживания проб требуется использовать информационную систему биобанка и систему управления данными [12]. Замороженные образцы должны быть приготовлены в дозах, необходимых для каждой процедуры ТФМ.
Для обеспечения максимальной безопасности и качества препарата ТФМ требуется указывать максимальный срок и условия хранения с указанием даты истечения срока годности. В настоящее время отсутствуют исследования, посвященные изучению взаимосвязи между условиями хранения и клинической эффективностью препаратов. Предпочтительно хранение препаратов при температуре –80 °C, однако допустимо хранение при температуре –20 °C в течение одного месяца (30 дней) [26]. После того как препараты забраны из биобанка и переданы в замороженном виде в медицинский центр для введения пациенту, допустимо поместить их на временное хранение при температуре –20°C в морозильную камеру. Диапазон температур и продолжительность любых периодов, когда температура находилась вне допустимых пределов, должны быть зафиксированы. Препараты, которые подвергнуты действию температурных перепадов, способны повлиять на качество конечного продукта, поэтому должны быть утилизированы в соответствии с местными, национальными и международными процедурами управления медицинскими отходами.
В настоящее время в литературе приводятся данные о высокой эффективности ТФМ при хранении препаратов в течение 10 месяцев при температуре –80 °C [27—29]. OpenBiome и The Netherlands Donor Feces Bank имеют опыт хранения препаратов ТФМ в течение 1 и 2 лет соответственно [28, 31]. После этого срока неиспользованный запас материала должен быть утилизирован в соответствии с местными, национальными и международными процедурами управления медицинскими отходами.
Образец донорского кала и/или прошедший соответствующую обработку препарат ТФМ должны храниться не менее 10 лет после проведения ТФМ для проведения ретроспективной оценки качества в случае возникновения нежелательных реакций [19].
Биобанки кала должны иметь материально-техническую базу и функционировать согласно стандартным операционным процедурам (СОПам), которые позволяют осуществлять безопасную обработку и хранение человеческих образцов в соответствии с национальными или международными нормами и требованиями.
3.1. Показания (в рамках клинических испытаний):
— C. difficile-ассоциированная болезнь;
— язвенный колит;
— антибиотик-ассоциированная диарея;
— синдром раздраженного кишечника;
— неалкогольная жировая болезнь печени;
— ожирение.
3.2. Противопоказания:
— хронические заболевания сердечно-сосудистой системы, почек, печени в стадии декомпенсации (наличие периферических отеков, асцита, выпота в плевральной полости; например, хроническая сердечная недостаточность в стадии декомпенсации, цирроз печени любой этиологии в стадии декомпенсации, хроническая болезнь почек, скорость клубочковой фильтрации <30 мл/мин/1,73м2, хроническая венозная недостаточность и т.д.);
— онкологические заболевания;
— беременность и период лактации;
— воспалительные изменения стенки прямой кишки по данным эндоскопического исследования;
— иммунодепрессивные и иммуносупрессивные состояния, включая прием препаратов, оказывающих иммуносупрессивное действие;
— шизофрения и другие острые психические расстройства.
4. Обследование пациента до процедуры трансплантации фекальной микробиоты
— общий анализ крови (оценка следующих показателей: количество эритроцитов, содержание гемоглобина, СОЭ, количество тромбоцитов, количество лейкоцитов и лейкоцитарная формула);
— биохимический анализ крови (определение следующих показателей — АлАТ, АсАТ, щелочная фосфатаза, панкреатическая амилаза, фракции билирубина, уровень глюкозы, C-реактивный белок, холестерин, мочевина, креатинин);
— анализ крови для исключения инфекции ВИЧ-1,2 методом ИФА, вируса гепатита A (anti-HAV IgM), гепатита B (HBsAg, anti-HBcor Ab суммарные) и гепатита C (anti-HCV Ab);
— анализ крови на антитела к цитомегаловирусу IgM и IgG;
— анализ крови на антитела к вирусу Эпштейна—Барр IgM и IgG;
— анализ крови на антитела класса IgG к Entamoeba histolytica;
— анализ крови на антитела к Strongyloides stercoralis;
— анализ крови на наличие возбудителя сифилиса;
— анализ мочи общий (оценка следующих показателей: физические свойства мочи (цвет, прозрачность, удельный вес, pH (реакция мочи), химическое исследование мочи (белок, глюкоза, кетоновые тела), микроскопическое исследование мочи (эритроциты, лейкоциты, эпителиальные клетки, цилиндры);
— общий анализ кала (включая макро- и микроскопическую оценку, для исключения нарушений переваривания, всасывания питательных веществ, воспалительных изменений);
— анализ кала методом PARASEP для исключения паразитарной и глистной инвазии;
— анализ кала на токсины A и B C. difficile (по показаниям);
— анализ кала на возбудителей кишечных инфекций бактериологическим методом и методом ПЦР (Shigella spp./E. coli (Enteroinvasive E. coli — EIEC), Salmonella spp., Campylobacter spp., Adenovirus F, Rotavirus A, Norovirus GII, Astrovirus);
— анализ кала на антиген лямблий;
— анализ кала на кальпротектин;
— консультация колопроктолога, проведение эндоскопических исследований (по показаниям).
По показаниям, определяемым лечащим врачом, профильным специалистом, обследование пациентов перед ТФМ может быть расширено.
5.1. Подготовка пациента к процедуре
За 24—48 ч до процедуры ТФМ отменяются антибактериальные препараты. Накануне процедуры пациенту проводится подготовка ЖКТ, аналогичная подготовке к колоноскопии (очищение от «контаминированного биоматериала») естественным способом или с использованием известных фармакологических слабительных средств (предпочтителен Макрогол), соблюдая инструкцию для применяемых средств, зарегистрированных на фармацевтическом рынке России.
За 1 ч до ТФМ реципиенту необходимо назначить Лоперамид (НСОИМ1). Непосредственно перед процедурой необходимо опорожнить мочевой пузырь. Экспозиция биоматериала должна составлять минимум 4 ч (НСОИМ).
5.2. Проведение трансплантации фекальной микробиоты
Для минимизации дискомфортных ощущений в животе при введении в организм фильтрат для ТФМ должен иметь комнатную температуру. При удовлетворительном состоянии пациента ТФМ обычно проводится в амбулаторных условиях. Введение фильтрата КМ осуществляется в условиях клизменной. Используются кружка Эсмарха градуированная объемом до 400 мл и катетер Фолея. Клизмление осуществляется по общепринятым правилам. Катетер вводится максимально высоко в прямую кишку. Переливание фильтрата осуществляется самотеком.
5.3. Рекомендации пациентам после проведения процедуры
Попытаться удержать препарат внутри максимально долго, рекомендуется 1—2 ч. При ощущении необходимости опорожнения пациенту рекомендуется лечь в положение, при котором нижняя часть тела будет расположена вверх (например, на подушке или валике). Это помогает быстро уменьшить давление жидкости на анальный сфинктер и минимизировать желание к опорожнению кишечника.
Избегать приема антибиотиков. В случае необходимости приема обязательно проконсультироваться с врачом.
Избегать приема любых других ЛС с эффектом, близким к антибиотикам (высокие дозы витамина C, растительные биодобавки).
Соблюдать диету по состоянию на момент заболевания.
Необходимо предупредить пациента о возможности вздутия и метеоризма в течение нескольких дней после проведения процедуры.
Регулировать диарею и частоту стула сорбентами. Регулировать запоры безрецептурными слабительными препаратами. Если прием псиллиума оказывается неэффективным, с целью нормализации стула в качестве препаратов первой линии рекомендуется назначение Макрогола (полиэтиленгликоль), лактулозы и лактитола, способствующих размягчению кишечного содержимого и увеличению его объема. На короткий период времени (не более 2 нед) возможно назначение стимулирующих слабительных (Бисакодил, Натрия пикосульфат, антрахиноны (сеннозиды A и B).
6. Известные и потенциальные риски применения метода
Известные осложнения: дискомфорт в животе, вздутие, диарея/запоры, борборигмы, транзиторная лихорадка.
Возможные осложнения: инфицирование агентами с отсроченной манифестацией (ВИЧ, вирусы гепатитов B и C|, прионы); перенос антибиотикорезистентной флоры.
Заключение. Ценность технологии
Накопленный отечественными и зарубежными исследователями опыт показывает, что клизменный метод трансплантации фекальной микробиоты является минимально инвазивным, практически не уступает по эффективности эндоскопическому пути введения, не требует седации, экономически более выгоден и имеет меньший риск появления побочных эффектов по сравнению с проведением эзофагогастродуоденоскопии и колоноскопии. Следование данным методическим рекомендациям в части отбора материала, хранения и приготовления перед трансплантацией фекальной микробиоты обеспечивает использование биоматериала с минимальными потерями активности сохранившейся живой флоры. Применение описанного выше алгоритма отбора доноров обеспечивает получение безопасного для пациента донорского материала. Такой метод выполнения трансплантации фекальной микробиоты характеризуется минимальным набором побочных эффектов и хорошо переносится пациентами. Полученные результаты соответствуют европейскому уровню эффективности трансплантации фекальной микробиоты.
Точное воспроизведение технологии по данным методическим разработкам обеспечит достижение высоких положительных результатов, сведение к минимуму рисков развития осложнений и нежелательных эффектов.
По мере накопления научных и клинических знаний о трансплантации фекальной микробиоты показания к такой процедуре будут расширяться.
Участие авторов: разработка концепции методических рекомендаций и дизайн исследования — О.М. Драпкина, В.В. Власов, В.В. Морозов, Е.В. Шрайнер, А.Р. Киселев; сбор научной литературы и анализ данных— А.А. Яфарова, А.Ф. Шептулина, А.Л. Борисова; написание текста — А.А. Яфарова, А.Ф. Шептулина; редактирование — М.С. Покровская, И.А. Ефимова.
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
1Официальный сайт НСОИМ https://mcrbm.com
2 Патент RU 2 659 417 C1/02.07.2018. Апарцин А.А., Кулундуков А.А., Чашкова Е.Ю. Устройство для подготовки донорского фекального материала к трансплантации.
3Патент RU 2 659 417 C1/02.07.2018. Апарцин А.А., Кулундуков А.А., Чашкова Е.Ю. Устройство для подготовки донорского фекального материала к трансплантации.
- Oren A, Garrity GM. Valid publication of the names of forty-two phyla of prokaryotes. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2021;71(10):10.1099/ijsem.0.005056. https://doi.org/10.1099/ijsem.0.005056
- Qin J, Li R, Raes J, et al. A human gut microbial gene catalogue established by metagenomic sequencing. Nature. 2010;464(7285):59-65. https://doi.org/10.1038/nature08821
- Ситкин С.И., Ткаченко Е.И., Вахитов Т.Я. Филометаболическое ядро микробиоты кишечника. Альманах клинической медицины. 2015;40:12-34.
- Caldeira LF, Borba HH, Tonin FS, et al. Fecal microbiota transplantation in inflammatory bowel disease patients: A systematic review and meta-analysis. PLoS One. 2020;15(9):e0238910. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0238910
- Colman RJ, Rubin DT. Fecal microbiota transplantation as therapy for inflammatory bowel disease: a systematic review and meta-analysis. Journal of Crohn’s and Colitis. 2014;8(12):1569-1581. https://doi.org/10.1016/j.crohns.2014.08.006
- Paramsothy S, Paramsothy R, Rubin DT, et al. Faecal Microbiota Transplantation for Inflammatory Bowel Disease: A Systematic Review and Meta-analysis. Journal of Crohn’s and Colitis. 2017;11(10):1180-1199. https://doi.org/10.1093/ecco-jcc/jjx063
- Ren RR, Sun G, Yang YS, et al. Chinese physicians’ perceptions of fecal microbiota transplantation. World Journal of Gastroenterology. 2016;22(19):4757-4765. https://doi.org/10.3748/wjg.v22.i19.4757
- Парфенов А.И., Князев О.В., Ручкина И.Н. и соавт. Диагностика и лечение псевдомембранозного колита: методические рекомендации. М.: «ГБУЗ МКНЦ им. А.С. Логинова ДЗМ»; 2022.
- Surawicz CM, Brandt LJ, Binion DG, et al. Guidelines for diagnosis, treatment, and prevention of Clostridium difficile infections. The American Journal of Gastroenterology. 2013;108(4):478-98;quiz 499. https://doi.org/10.1038/ajg.2013.4
- Cammarota G, Ianiro G, Tilg H, et al; European FMT Working Group. European consensus conference on faecal microbiota transplantation in clinical practice. Gut. 2017;66(4):569-580. https://doi.org/10.1136/gutjnl-2016-313017
- Mullish BH, Quraishi MN, Segal JP, et al. The use of faecal microbiota transplant as treatment for recurrent or refractory Clostridium difficile infection and other potential indications: joint British Society of Gastroenterology (BSG) and Healthcare Infection Society (HIS) guidelines. Gut. 2018;67(11): 1920-1941. https://doi.org/10.1136/gutjnl-2018-316818
- Cammarota G, Ianiro G, Kelly CR, et al. International consensus conference on stool banking for faecal microbiota transplantation in clinical practice. Gut. 2019;68(12):2111-2121. https://doi.org/10.1136/gutjnl-2019-319548
- Sleight SC, Wigginton NS, Lenski RE. Increased susceptibility to repeated freeze thaw cycles in Escherichia coli following long-term evolution in a benign environment. BMC Evolutionary Biology. 2006;6:104. https://doi.org/10.1186/1471-2148-6-104
- Якупова А.А., Абдулхаков С.Р., Сафин А.Г. и др. Трансплантация фекальной микробиоты: критерии выбора донора, подготовки и хранения биоматериала (обзор современных рекомендаций). Терапевтический архив. 2021;93(2):215-221. https://doi.org/10.26442/00403660.2021.02.200615
- Gorzelak MA, Gill SK, Tasnim N, et al. Methods for improving human gut microbiome data by reducing variability through sample processing and storage of stool. PloS One. 2015;10:e0134802. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0134802
- Sinha R, Chen J, Amir A, et al. Collecting fecal samples for microbiome analyses in epidemiology studies. Cancer Epidemiology, Biomarkers and Prevention. 2016;25:407-416. https://doi.org/10.1158/1055-9965.EPI-15-0951
- Guo Y, Li SH, Kuang YS, et al. Effect of short-term room temperature storage on the microbial community in infant fecal samples. Scientific Reports. 2016;6:26648. https://doi.org/10.1038/srep26648
- Shaw AG, Sim K, Powell E, et al. Latitude in sample handling and storage for infant faecal microbiota studies: the elephant in the room? Microbiome. 2016;4(1):40. https://doi.org/10.1186/s40168-016-0186-x
- Keller JJ, Ooijevaar RE, Hvas CL, et al. A standardised model for stool banking for faecal microbiota transplantation: a consensus report from a multidisciplinary UEG working group. United European Gastroenterology Journal. 2021;9(2):229-247. https://doi.org/10.1177/2050640620967898
- Costello SP, Conlon MA, Vuaran MS, et al. Faecal microbiota transplant for recurrent Clostridium difficile infection using long-term frozen stool is effective: clinical efficacy and bacterial viability data. Alimentary Pharmacology and Therapeutics. 2015;42:1011-1018. https://doi.org/10.1111/apt.13366
- Emanuelsson F, Claesson BE, Ljungstrom L, et al. Faecal microbiota transplantation and bacteriotherapy for recurrent Clostridium difficile infection: a retrospective evaluation of 31 patients. Scandinavian Journal of Infectious Diseases. 2014;46:89-97. https://doi.org/10.3109/00365548.2013.858181
- Hamilton MJ, Weingarden AR, Sadowsky MJ, et al. Standardized frozen preparation for transplantation of fecal microbiota for recurrent Clostridium difficile infection. The American Journal of Gastroenterology. 2012;107:761-767. https://doi.org/10.1038/ajg.2011.482
- Browne HP, Forster SC, Anonye BO, et al. Culturing of ‘unculturable’ human microbiota reveals novel taxa and extensive sporulation. Nature. 2016; 533:543-546. https://doi.org/10.1038/nature17645
- Weingarden AR, Hamilton MJ, Sadowsky MJ, et al. Resolution of severe Clostridium difficile infection following sequential fecal microbiota transplantation. Journal of Clinical Gastroenterology. 2013;47:735-737 https://doi.org/10.1097/MCG.0b013e31829004ae
- Satokari R, Mattila E, Kainulainen V, Arkkila PET. Simple faecal preparation and efficacy of frozen inoculum in faecal microbiota transplantation for recurrent Clostridium difficile infection — an observational cohort study. Alimentary Pharmacology and Therapeutics. 2015;41:46-53. https://doi.org/10.1111/apt.13009
- Fischer M, Sipe B, Cheng Y-W, et al. Fecal microbiota transplant in severe and severe complicated Clostridium difficile: a promising treatment approach. Gut Microbes. 2017;8:289-302. https://doi.org/10.1080/19490976.2016.1273998
- Lahtinen P, Mattila E, Anttila VJ, et al. Faecal microbiota transplantation in patients with Clostridium difficile and significant comorbidities as well as in patients with new indications: A case series. World Journal of Gastroenterology. 2017;23(39):7174-7184. https://doi.org/10.3748/wjg.v23.i39.7174
- Kao D, Roach B, Silva M, et al. Effect of oral capsule- vs colonoscopy-delivered fecal microbiota transplantation on recurrent Clostridium difficile infection: a randomized clinical trial. Journal of the American Medical Association. 2017;318:1985-1993. https://doi.org/10.1001/jama.2017.17077
- Costello SP, Bryant RV. Faecal microbiota transplantation in Australia: bogged down in regulatory uncertainty. Internal Medicine Journal. 2019;49: 148-151. https://doi.org/10.1111/imj.14212
- Chu ND, Smith MB, Perrotta AR, et al. Profiling living bacteria informs preparation of fecal microbiota transplantations. PLoS One. 2017;12:e0170922. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0170922
- Fischer M, Sipe BW, Rogers NA, et al. Faecal microbiota transplantation plus selected use of vancomycin for severe-complicated Clostridium difficile infection: description of a protocol with high success rate. Alimentary Pharmacology and Therapeutics. 2015;42:470-476. https://doi.org/10.1111/apt.13290
Рекомендуем статьи по данной теме:
Оценка диспансерного наблюдения взрослых пациентов после перенесенного острого повреждения почек.Профилактическая медицина. 2026;29(6):26-32
Коррекция расстройств вегетативной нервной системы: результаты наблюдательной программы.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(5):57-62
Анализ терапии шизотипического расстройства с началом в детском и подростковом возрасте на купирующем и поддерживающем этапах (результаты ретроспективного обсервационного исследования).Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(4):81-88
Опыт ведения беременности и родов у женщин с трансплантированными органами.Российский вестник акушера-гинеколога. 2026;26(2):20-28
Стратегии компенсации тиннитуса на основе современных представлений о нейропластичности (систематический обзор).Вестник оториноларингологии. 2026;91(2):72-77
Современные подходы к терапии NCMT-инфекций, передаваемых половым путем (N. gonorrhoeae, C. trachomatis, M. genitalium, T. vaginalis). Часть I. N. gonorrhoeae, C. trachomatis.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(2):243-253
Существуют ли различия в частоте рецидивов после хирургического лечения пилонидальной болезни у мужчин и женщин?Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2026;(4):110-124
Согласованное мнение экспертов Российского кардиологического общества, Российской ассоциации эндокринологов и Ассоциации флебологов России в отношении приверженности к терапии хронических заболеваний*.Флебология. 2026;20(1):6-14
Клинический случай неэффективности терапии инфекции, вызванной Mycoplasma genitalium.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(1):31-35
Хроническая обструктивная болезнь легких (ХОБЛ 2024). Клинические рекомендации (краткая версия).Респираторная медицина. 2025;1(2):5-16




