Шилин С.С.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»

Емец Я.И.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»

Спирин Е.А.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»

Гусев К.С.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»

Антонян А.А.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»

Долгоновская А.С.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»

Пискарев Д.В.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»

Попадюк В.И.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов» Минобрнауки России

Кастыро И.В.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов» Минобрнауки России

Ганьшин И.Б.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»

Васякова С.М.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»

Роль полиморфизма G-1082A IL-10 в гипертрофии глоточной миндалины

Авторы:

Шилин С.С., Емец Я.И., Спирин Е.А., Гусев К.С., Антонян А.А., Долгоновская А.С., Пискарев Д.В., Попадюк В.И., Кастыро И.В., Ганьшин И.Б., Васякова С.М.

Подробнее об авторах

Прочитано: 2223 раза


Как цитировать:

Шилин С.С., Емец Я.И., Спирин Е.А., и др. Роль полиморфизма G-1082A IL-10 в гипертрофии глоточной миндалины. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2023;41(3):43‑49.
Shilin SS, Emets YI, Spirin EA, et al. The role of G1082A IL-10 polymorphism in pharyngeal tonsil hypertrophy. Molecular Genetics, Microbiology and Virology. 2023;41(3):43‑49. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/molgen20234103143

Рекомендуем статьи по данной теме:
Эпи­де­ми­оло­гия су­ици­даль­но­го по­ве­де­ния у де­тей и под­рос­тков во всем ми­ре. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2024;(11-2):16-26
Диаг­нос­ти­ка ней­ро­ин­фек­ций у де­тей. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2024;(11-2):51-59
Сов­ре­мен­ные под­хо­ды к ди­аг­нос­ти­ке и ле­че­нию син­дро­ма ве­ге­та­тив­ной дис­фун­кции у де­тей. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2024;(11-2):66-75
Изу­че­ние воз­мож­нос­ти при­ме­не­ния ме­то­дик для оцен­ки расстройств раз­ви­тия экспрес­сив­ной ре­чи у де­тей 3—6 лет. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2024;(11-2):103-109
Проб­ле­мы ока­за­ния сто­ма­то­ло­ги­чес­кий по­мо­щи дет­ско­му на­се­ле­нию на при­ме­ре г. Ча­па­евск Са­мар­ской об­лас­ти. Опе­ра­тив­ная хи­рур­гия и кли­ни­чес­кая ана­то­мия (Пи­ро­гов­ский на­уч­ный жур­нал). 2024;(4):35-42
Сов­ре­мен­ный взгляд на эти­оло­гию жел­чно­ка­мен­ной бо­лез­ни у де­тей. До­ка­за­тель­ная гас­тро­эн­те­ро­ло­гия. 2024;(4):59-68

Введение

Гипертрофически измененные глоточные миндалины (носоглоточные миндалины) входят в состав кольца лимфоидной ткани (кольца Пирогова—Вальдейера). Эта патология может возникать у детей в возрасте от 2 до 12 лет, нередки различные коморбидные состояния, когда размер ткани становится чрезмерным для занимаемого ею пространства носоглотки [1]. Как правило, гипертрофия глоточной миндалины (ГГМ) исчезает к 16 годам [2]. ГГМ может приводить к обструкции верхних дыхательных путей и, как следствие, затруднению носового дыхания, что может быть связано с нарушениями сна, гипоназальной речью, храпом [1]. Пациентов с ГГМ можно лечить как хирургическим способом (аденотомия), так и консервативно (топические назальные глюкокортикостероиды) [3—6]. Правильная и своевременная диагностика патогенеза развития ГГМ необходима для верного выбора тактики лечения этого заболевания, так как хирургический метод не всегда необходим и, в случае аллергической природы ГГМ, может привести не только к викарной гипертрофии трубных миндалин, но и к развитию хирургического стресса, что было показано в ряде экспериментальных [7—10] и клинических исследований [11—15].

В силу анатомического расположения ткань глоточной миндалины связана с различными патогенными факторами. Ткань глоточной миндалины участвует в работе иммунной системы слизистой оболочки глотки [16] и связана с гуморальным и клеточным ответом [17]. Секретируя антитела, B-лимфоциты играют важную роль. В то же время различные субпопуляции B-лимфоцитов способны подавлять иммунный ответ [18]. Цитокины обладают способностью контролировать стимуляцию, активацию, пролиферацию и дифференцировку лимфоцитов [19]. Предыдущие исследования показали, что интерферон-γ (IFNγ), интерлейкины (IL-2, IL-4, IL-10 и IL-12) и кахектин-α (TNFα) могут контролировать и усиливать локальный иммунный ответ в глоточной миндалине [20]. Активируя CD8+ T-лимфоциты, IL-10 может оказывать иммуностимулирующее действие на B-лимфоциты [21]. Есть данные, что IL-10 оказывает прямое влияние на B-лимфоциты, включая предотвращение апоптоза, усиление пролиферации и дифференцировки плазматических клеток [22]. Кроме того, у детей с хроническим тонзиллитом и ГГМ выявлено повышение уровня провоспалительных цитокинов, в том числе IL-10 [23]. Цитокин IL-10 играет важную иммунорегуляторную и противовоспалительную роль. Цитокин IL-10 кодируется геном интерлейкина 10 (IL-10), который является высокополиморфным. Генетический полиморфизм IL-10 находится в проксимальной области, включая rs1800896, rs1800871 и rs1800872, образуя различные гаплотипы, связанные с продукцией IL-10 [24].

Некоторые данные свидетельствуют о том, что ткань глоточной миндалины может быть резервуаром бактерий и вирусов из-за специфического расположения глоточной миндалины [3, 16]. Так, в небных и глоточной миндалинах детей были обнаружены ЦМВ, герпесвирус 6 типа и вирус Эпштейна—Барр (ВЭБ) [25, 26]. Члены семейства Herpesviridae подразделяются на подсемейства Alphaherpesvirinae (α), Betaherpesvirinae (β) и Gammaherpesvirinae (γ) [27]. Вирусы простого герпеса 1, 2 и ветряной оспы относятся к подсемейству Alphaherpesvirinae, тогда как цитомегаловирус (ЦМВ), вирусы герпеса человека 6 и 7 относятся к подсемейству Betaherpesvirinae [28]. В то же время к подсемейству Gammaherpesvirinae относятся ВЭБ и вирус герпеса человека 8 типа. В течение жизни каждый человек может быть инфицирован одним или несколькими герпесвирусами [29]. Характерно, что вирусы герпеса сохраняются в организме хозяина в виде пожизненной инфекции после первичной инфекции. В то же время тяжелое течение заболевания и смертность, вызванные подсемействами Alphaherpesvirinae (α) и Betaherpesvirinae (β), отмечаются редко [29].

До сих пор исследования в основном были сосредоточены на генетических полиморфизмах IL-10 и их связи с опухолевыми заболеваниями [30—33]. Поэтому в некоторых исследованиях поднимается вопрос о возможности использования полиморфизма IL-10 rs1800872 и IL-10 rs1800896 в качестве генетических биомаркеров рака желудка [30]. Другое исследование предполагает, что аллель IL-10-1082 G может коррелировать с наличием плоскоклеточного рака [31]. По данным других авторов, полиморфизм IL-10 может играть существенную роль в развитии рака предстательной железы [32]. Сообщается о роли генетического полиморфизма IL-10 (rs1800896-1082G/A) в устойчивости к герпесвирусным инфекциям [34]. Кроме того, предполагалось, что восприимчивость к опоясывающему герпесу определяется генетически [35]. Была проведена ограниченная и предварительная работа для оценки роли генетического полиморфизма IL-10 и инфекции HHV6, CMV и вируса Эпштейна—Барр в ГГМ у детей. Поэтому основной целью настоящего исследования была оценка роли полиморфизма гена IL-10 rs1800896 и инфекций HHV6, CMV и EBV у детей с АГ.

Пациенты и методы

В исследование были включены 144 пациента в возрасте от 2 до 11 лет, 80 (55,5%) мальчиков и 64 (45,5%) девочки, находившиеся на обследовании в оториноларингологическом отделении клиники Витерра с предварительным диагнозом ГГМ в период с декабря 2019 по апрель 2020 г. По результатам эндоскопического исследования носа и боковых рентгенограмм дети были разделены на три группы. В основную группу вошли пациенты с ГГМ (n=106), в группу сравнения — пациенты без ГГМ (n=38).

Основная группа с ГГМ была разделена на три подгруппы в зависимости от размеров глоточной миндалины. Размер глоточной миндалины определяли по расстоянию между сошником и тканью глоточной миндалины [36]. В первую подгруппу (n=28) вошли пациенты с ГГМ 1-й степени, у которых глоточные миндалины занимали только верхний сегмент в носоглоточной полости. Во вторую подгруппу (n=39) вошли пациенты с ГГМ 2-й степени, у которой глоточные миндалины занимали верхнюю половину носоглоточной полости. В третью подгруппу (n=32) вошли пациенты с ГГМ 3-й степени (максимальная гипертрофия глоточной миндалины), у которых ГГМ распространялась на носоглоточную полость с обструкцией хоан [36]. Диагноз ГГМ устанавливали на основании эндоскопии полости носа и носоглотки и/или результатов рентгенографии носоглотки в боковой проекции, а также характерного анамнеза (храп, хроническое дыхание через рот, апноэ во сне, средний отит). В общей сложности 104 пациентам была выполнена фиброназофарингоскопия, а 40 пациентам была проведена рентгенография носоглотки в боковой проекции. Из исследования были исключены пациенты с острой инфекцией в полости носа и/или в носоглотке. Оценка каждого пациента включала анамнез заболевания и результаты опроса по симптомам. Были получены информированные согласия родителей до проведения исследования.

Инструментальная диагностика. Боковое рентгенографическое исследование шеи. Предыдущее исследование показало, что использование рентгенографии носоглотки в боковой проекции остается очень надежным и достоверным диагностическим тестом для оценки гипертрофия глоточной миндалины [37]. Кроме того, некоторые исследования показали хорошее соответствие между рентгенологическими и эндоскопическими данными [38]. Для оценки проходимости дыхательных путей выполнялась боковая рентгенограмма шеи по стандартной методике. Рентгенограммы получены на цифровом рентгенографическом комплексе Sitec DigiRAD-FP (Япония). Соотношение гипертрофии глоточной миндалины и носоглотки (коэффициент AH) выражает размер глоточной миндалины; эти отношения были получены с помощью простых линейных измерений по боковым рентгенограммам черепа [39]. Коэффициент АН рассчитывали как отношение расстояния между крайней точкой передней выпуклости тени глоточной миндалины и прямой частью переднего края основного затылка к расстоянию между клиновидно-затылочным синхондрозом и задним концом твердого неба [40].

Фиброназофарингоскопия. Волоконно-оптическая эндоскопия чрезвычайно информативна при оценке размеров глоточной миндалины [41]. Однако применение этого метода возможно не у всех пациентов из-за малого возраста ребенка или его сверхвозбудимости. Волоконно-оптическую видеориноскопию (Pentax Europe GmbH, Германия), проводимую одним и тем же оториноларингологом, использовали для получения полного изображения хоан. Перед выполнением назальной гибкой эндоскопии у всех пациентов применяли местную анестезию и вазоконстрикцию, без какой-либо седации.

Данные опроса родителей. В анкете родителям испытуемых задавали вопрос о наличии у детей аллергических заболеваний, лекарственной аллергии, пищевой аллергии, хронических заболеваний, как часто их дети болели в течение года, какова продолжительность заболевания и продолжительность грудного вскармливания.

Молекулярно-генетическое исследование. Исследовали полиморфизм G-1082A (rs1800896) гена IL-10 (местоположение: 1q32.1).

Кроме того, определяли наличие в организме трех вирусов (см. таблицу).

Исследуемые типы вирусов герпеса человека

Типы герпесвируса человека

Эквивалентные названия

Клетки-мишени

HHV-4

Эпштейна—Барр virus (EBV), Lymphocryptovirus

Эпителиоциты, B-лимфоциты

HHV-5

Цитомегаловирус (CMV)

Эпителиоциты, моноциты

HHV-6A and -6B

Roseolovirus

T-лимфоциты

ВЭБ также известен как вирус герпеса человека 4 (HHV-4). Клетки-мишени ВЭБ включают B-лимфоциты и эпителиальные клетки [42]. ЦМВ также называют вирусом герпеса человека 5 (HHV-5). Основными клетками-мишенями ЦМВ являются эпителиальные клетки, моноциты и лимфоциты [43]. Вирус герпеса человека 6 (HHV-6) принадлежит к роду Roseolovirus подсемейства Betaherpesvirinae. Выделяют два варианта HHV-6 — HHV-6A и HHV-6B [44]. И HHV-6A, и HHV-6B проявляют тропизм к CD4+ Т-лимфоцитам [45].

Выделение ДНК. Для генотипирования геномную ДНК из периферической крови детей выделяли с помощью набора для ручного выделения геномной ДНК крови («Синтол», Россия) в соответствии с протоколом. Объем для выделения ДНК составлял 200 мкл, а выход ДНК составлял 10 мкг. Для оценки наличия вирусов были взяты образцы мазков из полости носа. Назальный секрет собирали стерильным стержневым мазком из носа, соблюдая правила асептики.

Полимеразная цепная реакция (ПЦР). Для изучения полиморфизма гена IL-10 G-1082A (rs1800896) использовали метод ПЦР в реальном времени с применением коммерчески доступных наборов («Синтол», Россия). В каждом наборе используют два аллель-специфических зонда, которые позволяют обнаруживать два аллеля полиморфизма. Использование аллель-специфичной ПЦР в одной пробирке уменьшило количество реакций и конкуренцию аллель-специфичных праймеров при отжиге на матрице, а также позволило лучше разделить аллели гомозиготных генотипов. Рост флуоресценции наблюдали в канале красителя FAM для обнаружения «нормального» генотипа G/G образца дикого типа. Рост флуоресценции наблюдался в канале красителя FAM и R6G при выявлении гетерозиготного генотипа G/A. Рост флуоресценции наблюдался в канале красителя R6G при выявлении гомозигот мутантного типа генотипа А/А. Условия количественной ПЦР были следующими: 95 °C, 3 мин; 70 °C, 15 с, 60 °C, 40 с, 40 циклов. Мы использовали термоциклер CFX96 (Bio-Rad, США) с программным обеспечением CFX Manager TM.

Вирусы определяли количественной ПЦР в реальном времени в соответствии с протоколом (artus HHV-6 RG PCR Kit QIAGEN, Германия). Зонды, специфичные для ДНК HHV-6A, были помечены флуорофором FAM™, а зонды, специфичные для ДНК HHV-6B, были помечены флуорофором, имеющим те же характеристики, что и Cy5. Зонд, специфичный для внутреннего контроля, был помечен флуорофором JOE. Вирусную нагрузку ЦМВ определяли в первых положительных образцах плазмы (мультиплексная ПЦР) с использованием набора для ПЦР Artus CMV RG (Qiagen, Германия) и инструментов Rotor-Gene Q (RGQ) в соответствии с рекомендациями производителя. Выявление ДНК ВЭБ проводили с использованием набора для ПЦР Artus EBV RG.

Статистическая обработка. Для анализа полученных данных были использованы R-language и статистическое программное обеспечение SPSS версии 20. Сравнительный анализ частот генотипов и аллелей между группами проводили с помощью критерия χ2 и точного критерия Фишера. Различия считали достоверными при p<0,05. Рассчитывали отношение шансов (ОШ) и 95% доверительный интервал (ДИ).

Результаты и обсуждение

Пациенты. Фиброназофарингоскопия была выполнена 104 пациентам, а 40 пациентов прошли боковую рентгенографию носоглотки. На результатах боковой цефалометрической рентгенографии левая сторона представляет носоглотку пациента без ГГМ, а правая сторона представляет носоглотку с ГГМ.

Из 40 рентгенологических случаев у 10 (25%) больных были обнаружена ГГМ с минимальной степенью, у 16 (40%) — увеличение средней степени, у 12 (30%) — ГГМ в максимальной степени. ГГМ не была обнаружена у 2 (5%) пациентов с предшествующей аденоидэктомией в анамнезе.

Результаты опроса родителей. Мы не обнаружили существенных различий между группами с ГГМ и без нее по лекарственной аллергии, носовым кровотечениям и атопическому дерматиту. Значимые различия выявлены для аллергических заболеваний, включая аллергический ринит и пищевую аллергию, хронический отит и хронический тонзиллит. Аллергические заболевания чаще встречались у больных с ГГМ (основная группа) по сравнению с больными без ГГМ. Аллергическая болезнь преобладала в 1-й и 2-й подгруппах. Среди аллергических заболеваний частота только аллергического ринита была выше у детей с ГГМ (основная группа), чем без ГГМ (группа сравнения). Процент аллергического ринита был больше в первой подгруппе больных ГГМ по сравнению со 2-й и 3-й подгруппами.

Анализ персистенции вирусной инфекции. Всего было собрано и исследовано 144 образца назофарингеального секрета для определения вируса герпеса человека-6, ВЭБ и ЦМВ.

У 81 (56%) из 144 пациентов отмечено инфицирование как минимум одним вирусом. Возраст этих пациентов составил менее 11 лет. Наиболее часто встречался HHV6 (80 пациентов, 55,6%), затем ВЭБ (22 пациента, 15,3%) и ЦМВ (21 пациент, 14,5%).

Rs1800896 полиморфизм гена IL-10. Распределение генотипов IL-10 rs1800896 в контрольной группе и у детей с ГГМ достоверно различалось (χ2=6,71, p=0,03). Частота аллеля А не имела достоверных различий между контрольной группой и детьми с ГГМ (χ2=0,79, p=0,37). Частота генотипа GG имела тенденцию к увеличению в контрольной группе по сравнению с основной группой детей.

Распределение генотипов для полиморфизма rs1800896 гена IL-10 достоверно различалось между тремя подгруппами больных с ГГМ (p≤0,002). Частоты двух аллелей показали достоверное различие между двумя подгруппами: II и III (χ2=6,04, p=0,01) и I и III (χ2=7,87, p=0,005). Достоверно более высокие частоты аллеля G и генотипов GG IL-10 (rs1800896-1082G/A) выявлены в первой подгруппе детей по сравнению с третьей подгруппой. Достоверно более высокие частоты генотипов ГГМ выявлены во 2-й подгруппе по сравнению с 1-й и 3-й подгруппами больных. Частоты генотипов АА были выше в 3-й подгруппе больных по сравнению с 1-й и 2-й подгруппами.

Исследование показало, что частоты HHV6 и ЦМВ в контрольной и основной группах имели существенные различия. HHV6 был наиболее часто выявляемым вирусом у больных ГГМ по сравнению с ЦМВ и ВЭБ. Среди трех подгрупп детей с ГГМ HHV6 и ВЭБ чаще выявлялись в 3-й подгруппе детей. В то же время мы не обнаружили существенных различий в распространении ЦМВ между тремя подгруппами. В некоторых исследованиях изучалось наличие ВПГ, ВЭБ и ЦМВ в тканях глоточной миндалины детей с ГГМ и хроническим аденоидитом [46—48]. Вирус герпеса 8 типа в небных и глоточной миндалинах у детей был обнаружен и показан в исследовании [25]. В то же время другое исследование показало, что ВЭБ обладает тропностью к носоглотке, и у детей старше 25 мес больше шансов стать носителями этого вируса [49]. Вирусы герпеса с высокой частотой обнаруживались в ткани глоточной миндалины детей с ГГМ. Авторы статьи отмечают возможную связь между возникновением ГГМ у больных и наличием герпесвирусов [33]. Наши результаты также предполагают потенциальную связь между наличием HHV6 и CMV и возникновением ГГМ. В проведенном нами исследовании мы показали, что HH6 и EBV могут влиять на развитие у детей максимального размера ГГМ.

Еще одним примечательным открытием этого исследования стало распределение генотипов IL-10 rs1800896 в контрольной и основной группах. Частота генотипа GG была выше в контрольной группе детей. Достоверно более высокие частоты аллеля G и генотипов GG выявлены в 1-й подгруппе детей по сравнению со 2-й и 3-й подгруппами. Мы обнаружили достоверно более низкие частоты аллеля G и генотипов GG и GA в 3-й подгруппе детей по сравнению со 2-й подгруппой. Предыдущие исследования показали значительно более высокие частоты аллеля А и генотипов АА и AG IL-10 (rs1800896-1082G/A) у пациентов, устойчивых к HHV8- и ЦМВ-инфекциям, по сравнению с инфицированными [34]. Опубликованы данные, что аллель IL-10-1082 G значительно чаще отмечен у пациентов с опоясывающим герпесом [50]. Интересно, что другие исследователи показали, что полиморфизм rs1800896 в гене IL-10 может быть связан с заболеваемостью ВЭБ и ВЭБ, ассоциированным с гемофагоцитарным лимфогистиоцитозом (ВЭБ-ГЛГ) у детей, а генотип АА и аллель А могут быть чувствительными факторами риска для ВЭБ-ГЛГ [51]. Кроме того, в предыдущих работах было показано, что полиморфизм гена MBL2 (SNP 49 C/T rs5030737) [37]; генотипы AG+GG и AG по TLR4-D299G [52]; Ugrp2 [53]; генотипы 2R, 2R, IL-1Ra и T и T IL-1b [54] были связаны с повышенным риском развития гипертрофии глоточной миндалины. Наши результаты позволяют предположить, что генотип GG по IL-10 rs1800896 играет заметную роль в устойчивости к ГГМ и может предотвращать разрастание ткани глоточной миндалины до максимального размера [55].

Заключение

Носоглоточные миндалины представляют собой лимфоэпителиальную ткань, расположение которой представляет собой первую линию защиты от бактерий и вирусов. Мы предполагаем, что наличие инфекций HHV6 и CMV влияет на развивающуюся ГГМ, а инфицирование вирусами HHV6 и EBV может влиять на размер глоточной миндалины. Генотип GG по гену IL-10 G-1082A может играть роль в устойчивости к ГГМ и расширении ткани глоточной миндалины до максимальных размеров. Необходимы дальнейшие исследования для подтверждения наших данных и выявления возможной роли других полиморфизмов генов интерлейкинов в ГГМ. Поиск предикторов ГГМ продолжается. Необходимы также дополнительные исследования для оценки роли герпесвирусов в патогенезе ГГМ и оценки полиморфизма IL-10 rs1800896 как прогностического предиктора ГГМ. Кроме того, патофизиология этого заболевания не до конца ясна. Выявление факторов, влияющих на иммунологический ответ, позволит получить важные данные для объяснения патогенеза ГГМ. Дальнейшие исследования также должны подтвердить наши выводы и выяснить роль полиморфизмов других генов интерлейкинов в ГГМ. Необходимо продолжить поиск предикторов ГГМ, провести дополнительные исследования для оценки роли герпес вирусов в патогенезе ГГМ. Кроме того, патофизиология заболевания неясна. Выявление факторов, влияющих на иммунологический ответ, позволит получить важные данные для объяснения патогенеза ГГМ.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Scott SR, Darrow DH. Pediatric Otolaryngology; American Academy of Pediatrics: Washington, DC, USA, 2012. https://doi.org/10.1542/9781581107272
  2. Козлов В.С., Шиленкова В.В., Карпов В.А. Аденоиды. Консервативное и хирургическое лечение. М.: Полиграфист и издатель; 2010. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=19552117
  3. Ким И.А., Носуля Е.В., Рагимова Д.Р. Особенности приверженности лечению больных хроническим риносинуситом с полипами носа. Вестник оториноларингологии. 2022;87(1):81-86.  https://doi.org/10.17116/otorino20228701181
  4. Носуля Е.В., Ким И.А., Максимов В.А., Черных Н.М., Кравчук А.П. Частота и варианты пневматизации внутриносовых структур и их связь с хроническим синуситом. Российская ринология. 2021;29(3):155-160.  https://doi.org/10.17116/rosrino202129031155
  5. Носуля Е.В., Кунельская В.Я., Ким И.А., Лучшева Ю.В., Козулина И.Е. Эффективность и перспективы применения комбинированного назального спрея олопатадина и мометазона для лечения аллергического ринита. Российская ринология. 2021;29(3):167-172.  https://doi.org/10.17116/rosrino202129031167
  6. Егоров В.И., Голубева О.Б., Василенко И.А. Особенности динамики параметров носового дыхания у детей с аденоидитом. Head and neck. Russian Journal. 2022;10(2, Прил. 2):87-90.  https://doi.org/10.25792/HN.2022.10.2.S2.87-90
  7. Кастыро И.В., Решетов И.В., Попадюк В.И., Торшин В.И., Ермакова Н.В., Карпухина О.В. и др. Изучение физиологических эффектов новой модели септопластики у крыс. Head and neck. Russian Journal 2020;8(2):33-38.  https://doi.org/10.25792/HN.2020.8.2.33-38
  8. Кастыро И.В., Решетов И.В., Хамидулин Г.В., Шилин С.С., Торшин В.И., Костяева М.Г. и др. Влияние хирургической травматизации в полости носа на экспрессию белка p53 в гиппокампе крыс. Доклады Российской академии наук. Науки о жизни. 2021;497(1):194-198.  https://doi.org/10.1134/S160767292102006X
  9. Драгунова С.Г., Решетов И.В., Костяева М.Г., Северин А.Е., Хамидулин Г.В., Шмаевский П.Е. и др. Сравнение эффектов моделирования септопластики и синус-лифтинга у крыс на изменение вариабельности сердечного ритма. Доклады Российской академии наук. Науки о жизни. 2021;498(1):165-169.  https://doi.org/10.1134/S1607672921030029
  10. Торшин В.И., Кастыро И.В., Решетов И.В., Костяева М.Г., Попадюк В.И. Взаимосвязь между p53-позитивными нейронами и темными нейронами в гиппокампе крыс после хирургических вмешательств на перегородке носа. Доклады Российской академии наук. Науки о жизни. 2022;502(1):37-42.  https://doi.org/10.1134/S1607672922010094
  11. Демяшкин Г.А., Кастыро И.В., Сидорин А.В., Борисов Я.С. Иммунофенотипические особенности назофарингеальной карциномы. Вестник оториноларингологии. 2018;83(5):40-44.  https://doi.org/10.17116/otorino20188305140
  12. Кастыро И.В., Романко Ю.С., Мурадов Г.М., Попадюк В.И., Калмыков И.К., Костяева М.Г. и др. Фотобиомодуляция острого болевого синдрома после септопластики. Biomedical Photonics. 2021;10(2):34-41.  https://doi.org/10.24931/2413-9432-2021-10-2-34-41
  13. Kastyro IV, Torshin VI, Drozdova GA, Popadyuk VI. Acute pain intensity in men and women after septoplasty. Russian Open Medical Journal. 2017;6(3):1-6.  https://doi.org/10.15275/rusomj.2017.0305
  14. Кастыро И.В., Попадюк В.И., Мурадов Г.М., Решетов И.В., Низкоинтенсивная лазерная терапия как метод снижения стрессовых реакций после септопластики. Доклады Российской академии наук. Науки о жизни. 2021;500(1):300-303.  https://doi.org/10.1134/S1607672921050112
  15. Попадюк В.И., Кастыро И.В., Ермакова Н.В., Торшин В.И., Септопластика и тонзиллэктомия: сравнение эффективности местных анестетиков с позиций острого стресс-ответа. Вестник оториноларингологии. 2016;81(3):7-11.  https://doi.org/10.17116/otorino20168137-11
  16. Marseglia G, Caimmi D, Pagella F, Matti E, Labò E, Licari A, et al. Adenoids during Childhood: The Facts. Int. J Immunopathol Pharmacol. 2011;24(suppl 4):1-5.  https://doi.org/10.1177/03946320110240S401
  17. Boyaka PN, Wright PF, Marinaro M, Kiyono H, Johnson JE, Gonzales RA, et al. Human Nasopharyngeal-Associated Lymphoreticular Tissues: Functional Analysis of Subepithelial and Intraepithelial B and T Cells from Adenoids and Tonsils. Am J Pathol 2000;157:2023-2035. https://doi.org/10.1016/S0002-9440(10)64841-9
  18. Valsecchi C, Tagliacarne SC, Brambilla I, Klersy C, Benazzo M, Montagna L, et al. Detection of IL10-producing B cell (B10) in adenoids of atopic children with adenoidal hypertrophy. Ital J Pediatr. 2018;44:30.  https://doi.org/10.1186/s13052-018-0471-3
  19. Diehl S, Rincón M. The two faces of IL-6 on Th1/Th2 differentiation. Mol Immunol. 2002;39:531-536.  https://doi.org/10.1016/S0161-5890(02)00210-9
  20. Komorowska A, Komorowski J, Banasik M, Lewkowicz P, Tchórzewski H. Cytokines locally produced by lymphocytes removed from the hypertrophic nasopharyngeal and palatine tonsils. Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 2005;69:937-941.  https://doi.org/10.1016/j.ijporl.2005.01.035
  21. Groux H, Cottrez F. The complex role of interleukin-10 in autoimmunity. J Autoimmun. 2004;20:281-285.  https://doi.org/10.1016/S0896-8411(03)00044-1
  22. Lévy Y, Brouet JC. Interleukin-10 prevents spontaneous death of germinal center B cells by induction of the bcl-2 protein. J Clin Investig. 1994;93:424-428.  https://doi.org/10.1172/JCI116977
  23. Marcano-Acuña ME, Carrasco-Llatas M, Tortajada-Girbés M, Dalmau-Galofre J, Codoñer-Franch P. Impact of adenotonsillectomy on the evolution of inflammatory markers. Clin Otolaryngol. 2019;44:983-988.  https://doi.org/10.1111/coa.13423
  24. Turner DM, Williams DM, Sankaran D, Lazarus M, Sinnott PJ, Hutchinson IV. An Investigation of Polymorphism in the Interleukin-10 Gene Promoter. Eur J Immunogenet. 1997;24:1-8.  https://doi.org/10.1111/j.1365-2370.1997.tb00001.x
  25. Chagas CA, Endo LH, Sakano E, Pinto GA, Brousset P, Vassallo J. Detection of herpesvirus type 8 (HHV8) in children’s tonsils and adenoids by immunohistochemistry and in situ hybridization. Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 2006;70:65-72.  https://doi.org/10.1016/j.ijporl.2005.04.030
  26. Silvoniemi A, Mikola E, Ivaska L, Jeskanen M, Löyttyniemi E, Puhakka T, et al. Intratonsillar detection of 27 distinct viruses: A cross-sectional study. J Med Virol. 2020;92:3830-3838. https://doi.org/10.1002/jmv.26245
  27. Davison AJ. Comparative analysis of the genomes. In Human Herpesviruses: Biology, Therapy, and Immunoprophylaxis; Cambridge University Press: Cambridge, UK; 2007. https://doi.org/10.1017/CBO9780511545313.003
  28. Riaz A, Murtaz-ul-Hasan K, Akhtar N. Recent understanding of the classification and life cycle of herpesviruses: A review. Sci Lett. 2017;5:195-207. 
  29. Sehrawat S, Kumar D, Rouse BT, Sehrawat S, Kumar D, Rouse BT. Herpesviruses: Harmonious Pathogens but Relevant Cofactors in Other Diseases? Front Cell Infect Microbiol. 2018;8:177.  https://doi.org/10.3389/fcimb.2018.00177
  30. Wang X, Yang F, Xu G, Zhong S. The roles of IL-6, IL-8 and IL-10 gene polymorphisms in gastric cancer: A meta-analysis. Cytokine. 2018;111:230-236.  https://doi.org/10.1016/j.cyto.2018.08.024
  31. Seifart C, Plagens A, Dempfle A, Clostermann U, Vogelmeier C, Von Wichert P, Seifart U. TNF-α, TNF-β, IL-6, and IL-10 Polymorphisms in Patients with Lung Cancer. Dis Markers. 2005;21:157-165.  https://doi.org/10.1111/j.1399-0039.2005.00343.x
  32. Bandil K, Singhal P, Dogra A, Bharadwaj M, Rawal SK, Doval DC, Varshney AK. Association of SNPs/haplotypes in promoter of TNF A and IL-10 gene together with life style factors in prostate cancer progression in Indian population. Agents Actions. 2017;66:1085-1097. https://doi.org/10.1007/s00011-017-1088-5
  33. Hong P, Feng W-Y, Fu L-H, Jin J, Fu J-P. Associations between genetic polymorphisms in interleukin-10 and hematological oncology: Evidence from a meta-analysis. Cancer Biol Ther. 2020;21:372-378.  https://doi.org/10.1080/15384047.2019.1702404
  34. Yaghobi R, Alizadeh F, Khodavandi A. Interaction between Herpes Virus Infections and IL10 and Risk of Bone Marrow Suppression. Int J Organ Transplant Med. 2018;9:119-125. 
  35. Haanpää M, Nurmikko T, Hurme M. Polymorphism of the IL-10 gene is associated with susceptibility to herpes zoster. Scand J Infect Dis. 2002;34:112-114.  https://doi.org/10.1080/00365540110077218
  36. Josephson GD, Duckworth L, Hossain J. Proposed definitive grading system tool for the assessment of adenoid hyperplasia. Laryngoscope. 2011;121:-187-193.  https://doi.org/10.1002/lary.21215
  37. Saedi B, Sadeghi M, Mojtahed M, Mahboubi H. Diagnostic efficacy of different methods in the assessment of adenoid hypertrophy. Am J Otolaryngol. 2011;32:147-151.  https://doi.org/10.1016/j.amjoto.2009.11.003
  38. Pathak K, Ankale NR, Harugop AS. Comparison between Radiological versus Endoscopic Assessment of Adenoid Tissue in Patients of Chronic Adenoiditis. Indian J Otolaryngol Head Neck Surg Off Publ Assoc Otolaryngol India. 2019;71(suppl 1):981-985.  https://doi.org/10.1007/s12070-019-01669-z
  39. Fujioka M, Young LW, Girdany BR. Radiographic evaluation of adenoidal size in children: Adenoidal-nasopharyngeal ratio. Am J Roentgenol. 1979;133:401-404.  https://doi.org/10.2214/ajr.133.3.401
  40. Huang C-C, Wu P-W, Chen C-L, Wang C-H, Lee T-J, Tsai C-N, Chiu C-H. IL-17A expression in the adenoid tissue from children with sleep disordered breathing and its association with pneumococcal carriage. Sci Rep. 2018;8:16770. https://doi.org/10.1056/nejmoa1911303
  41. Mlynarek A, Tewfik MA, Hagr A, Manoukian JJ, Schloss MD, Tewfik TL, Choi-Rosen J. Lateral Neck Radiography versus Direct Video Rhinoscopy in Assessing Adenoid Size. J Otolaryngol. 2004;33:360-365.  https://doi.org/10.2310/7070.2004.03074
  42. Chen J, Longnecker R. Epithelial cell infection by Epstein—Barr virus. FEMS Microbiol Rev. 2019;43:674-683.  https://doi.org/10.1093/femsre/fuz023
  43. Chen S-J, Wang S-C, Chen Y-C. Antiviral Agents as Therapeutic Strategies Against Cytomegalovirus Infections. Viruses. 2019;12:21.  https://doi.org/10.3390/v12010021
  44. Kondo K, Yamanishi K. HHV-6A, 6B, and 7: Molecular basis of latency and reactivation. In Human Herpesviruses: Biology, Therapy, and Immunoprophylaxis; Cambridge University Press: Cambridge, UK; 2007.
  45. Mori Y. Recent topics related to human herpesvirus 6 cell tropism. Cell Microbiol. 2009;11:1001-1006. https://doi.org/10.1111/j.1462-5822.2009.01312.x
  46. Karlidağ T, Bulut Y, Keleş E, Alpay HC, Seyrek A, Orhan İ, et al. Presence of herpesviruses in adenoid tissues of children with adenoid hypertrophy and chronic adenoiditis. Turk J Ear Nose Throat. 2012;22:32-37. 
  47. Pokrovskaya EM, Khaliullina SV, Anokhin VA, Khaliullina KR, Khaertinov KS, Krasnozhen VN, Viktorova KS. Optimization of treatment of lymphopharyngeal ring organ hypertrophy in children infected with herpes viruses. Pract Med. 2020;18:6.  https://doi.org/10.32000/2072-1757-2020-6-133-137
  48. Sato M, Li H, Ikizler MR, Werkhaven JA, Williams JV, Chappell JD, et al. Detection of Viruses in Human Adenoid Tissues by Use of Multiplex PCR. J Clin Microbiol. 2009;47:771-773.  https://doi.org/10.1128/JCM.02331-08
  49. Endo LH, Sakano E, Camargo LA, Ferreira DR, Pinto GA, Vassallo J. Detection of Epstein—Barr virus in children’s adenoids by in situ hybridization. Int Congr Series. 2003;1257:157-160.  https://doi.org/10.1016/S0531-5131(03)01160-9
  50. Park SJ, Cho JW, Lee KS. Single nucleotide polymorphisms of interleukin-10 promoter gene in Korean herpes zoster patients. Korean J Dermatol. 2006;44:1325-1331.
  51. Jiang L, Wu XJ, Huang JB, Chen C, Xu HG, Xue HM. Relationship between Single Nucleotide Polymorphisms of IL2RA, IL-10 Gene and Epstein-Barr Virus Associated Hemophagocytic Lymphohistiocytosisin in children. Zhongguo Shi Yan Xue Ye Xue Za Zhi. 2020;28:646-651. 
  52. Mehmet Ali B, Özdaş T, Özdaş S. The common genetic variants of toll-like receptor and susceptibility to adenoid hypertrophy: A hospital-based cohort study. Turk J Med Sci. 2016;46:1449-1458. https://doi.org/10.3906/sag-1511-16
  53. Atilla MH, Özdaş S, Özdaş T, Baştimur S, Muz SE, Öz I, et al. Association of Ugrp2 gene polymorphisms with adenoid hypertrophy in the pediatric population. Braz J Otorhinolaryngol. 2018;84:599-607.  https://doi.org/10.1016/j.bjorl.2017.07.004
  54. Shabaldina EV, Shabaldin AV, Riazantsev SV, Simbirtsev SV. The role of cytokine gene polymorphisms in the development of hypertrophy of the tonsils of the lymphoid pharyngeal ring and atopic march in the children. Vestn Otorinolaringol. 2013;6:18-23. 
  55. Lomaeva I, Aghajanyan A, Dzhaparidze L, Gigani OB, Tskhovrebova LV, Gigani OO, Popadyuk VI. Adenoid Hypertrophy Risk in Children Carriers of G-1082A Polymorphism of IL-10 Infected with Human Herpes Virus (HHV6, EBV, CMV). Life (Basel). 2022;12(2):266.  https://doi.org/10.3390/life12020266

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.