Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Рыбакова М.Г.

ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова» Минздрава России

Мюрзеп А.Э.

ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова» Минздрава России

Патогенез фиброза легких

Авторы:

Рыбакова М.Г., Мюрзеп А.Э.

Подробнее об авторах

Журнал: Архив патологии. 2024;86(4): 58‑63

Прочитано: 2141 раз


Как цитировать:

Рыбакова М.Г., Мюрзеп А.Э. Патогенез фиброза легких. Архив патологии. 2024;86(4):58‑63.
Rybakova MG, Myurzep AE. Pathogenesis of pulmonary fibrosis. Russian Journal of Archive of Pathology. 2024;86(4):58‑63. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/patol20248604158

Рекомендуем статьи по данной теме:
Па­то­ло­гия пе­че­ни при COVID-19. Ар­хив па­то­ло­гии. 2025;(1):53-59

Постковидный синдром внесен в Классификацию болезней МКБ-10 в формулировке «Post covid-19 condition». В декабре 2020 г. Национальным институтом здоровья Великобритании (NICE) выделены:

— острый COVID-19 — симптомы продолжительностью до 4 нед;

— продолжающийся симптоматический COVID-19 — симптомы, длящиеся от 4 до 12 нед;

— постковидный синдром — симптомы более 12 нед, не объяснимые альтернативным диагнозом.

Клинические проявления новой коронавирусной инфекции (COVID-19) могут варьировать от легкой симптоматики до тяжелых осложнений, которые приводят к необратимому повреждению легочной ткани. Большинство пациентов с легкой и средней степенями тяжести полностью выздоравливают, но у части больных с тяжелой формой и проявлениями острого респираторного дистресс-синдрома (ОРДС) остаются признаки гипоксемии, несмотря на адекватное лечение [1].

Использованные методы визуализации органов грудной клетки пациентов с тяжелой формой COVID-19 выявили в остром периоде двусторонние затемнения по типу «матового стекла» с или без уплотнения в задних и периферических отделах легких с последующим развитием фиброзных изменений. Ремоделирование легких проявляется в виде бронхоэктазов, массивного пневмофиброза, утолщения межальвеолярных перегородок и нарушения архитектуры ткани, что также характерно и для других фиброзирующих заболеваний легких, как правило, не связанных с вирусной инфекцией [2, 3].

У 40% пациентов с COVID-19 развивается ОРДС, который является одним из важнейших факторов развития легочного фиброза, при этом в 20% случаев отмечается его тяжелое течение [4]. Морфологической основой ОРДС при COVID-19, как и при других вирусных респираторных инфекциях, является диффузное альвеолярное повреждение [3, 4—6]. Как правило, для вирусных поражений легких не характерно развитие фиброза, [4, 7], тогда как при новой коронавирусной инфекции более чем в 40% случаев уже на ранних сроках фиброзный компонент обнаруживается как при компьютерной томографии, так и при гистологическом исследовании [3], что является значимой особенностью этого заболевания. Известно, что более чем у трети пациентов с COVID-19, выписанных из больницы после выздоровления, развились фиброзные изменения в легких, и этот процент увеличивался в зависимости от тяжести и продолжительности заболевания [8—11]. Согласно ряду исследований [5], легочный фиброз возникает у 78,9% пациентов с COVID-19 средней тяжести и у 100% с тяжелой или крайне тяжелой формой COVID-19.

Патогенез легочного фиброза

Альвеолярный эпителий и реэпителизация

Эпителий легких представляет собой сложную и динамичную ткань, нарушение структуры и функции которой является отличительным признаком многих заболеваний легких [12]. В настоящее время общепризнано, что легочная ткань обладает значительным регенераторным потенциалом, обусловленным наличием популяций факультативных клеток-предшественников, которые активируются, пролиферируют в ответ на повреждение и способны дифференцироваться в один или несколько типов клеток. В респираторной системе идентифицированы тканеспецифичные мультипотентные стволовые клетки, способные к долгосрочному самообновлению и дифференцировке в другие клеточные клоны. В нормальных условиях эти клетки пребывают в состоянии покоя и пролиферируют в случае повреждения органа. Определены подгруппы легочных эпителиальных клеток, обладающих потенциалом самообновления и дифференцировки: базальные клетки, булавовидные клетки проксимальных и дистальных дыхательных путей, нейроэндокринные клетки и альвеолоциты (АЦ) II типа [13]. Базальные клетки считаются наиболее важными стволовыми/прогениторными клетками верхних дыхательных путей, экспрессирующими транскрипционный фактор p63, кератин 5 (Krt5), кератин 14 (Krt14), рецептор фактора роста нервов (NFGR) и маркер клеточной поверхности Pdpn. Популяция базальных клеток обладает мощным пролиферативным потенциалом и способностью дифференцироваться в булавовидные и реснитчатые клетки. Булавовидные клетки экспрессируют противовоспалительный и иммуномодулирующий фактор секретоглобин 1a (Scgb1a1). После повреждения булавовидные клетки (Scgb1a1+) могут давать начало бокаловидным клеткам, экспрессирующим ген SPDEF, необходимый для конечной дифференцировки этих клеток, и муцин MUC5AC. В случае повреждения легких секреторные клетки самообновляются и дают начало новым реснитчатым клеткам, а нейроэндокринные клетки могут трансформироваться в булавовидные и реснитчатые клетки.

Участие булавовидных клеток в регенеративном процессе во многом определяется степенью тяжести повреждения. Легкая травма инициирует пролиферацию булавовидных клеток, которые преобразуются в реснитчатый эпителий. Тяжелое повреждение вызывает активацию вариантных булавовидных клеток, расположенных вокруг нейроэндокринных телец и в зонах бронхоальвеолярных соединений [13]. Для активации и регенерации этого варианта клеток необходима секреция парабронхиальными гладкомышечными клетками ростового фактора фибробластов 10 (FGF-10).

Поверхность альвеол на 95% выстлана АЦ I типа, через которые происходит газообмен; АЦ II типа секретируют сурфактантные протеины, предотвращающие коллапс альвеол. Многими исследованиями доказано, что повреждение альвеол инициирует пролиферацию АЦ II типа и их дифференцировку в АЦ I типа. На основании исследований с использованием технологии трассировки и клонального анализа постулируется, что повреждение альвеол индуцирует сигнальную передачу, опосредованную рецептором эпидермального фактора роста (EGFR) и сигнальным белком KRAS, который контролирует самообновление АЦ II типа, а пока неизвестный сигнальный путь контролирует их дифференцировку в АЦ I типа [14].

Повреждение альвеолярных эпителиальных клеток является ранним и постоянным признаком легочного фиброза [15—17]. Нормальная регенерация альвеолярных эпителиальных клеток и реэпителизация альвеолярной стенки имеют решающее значение для процесса репарации без фиброза. Нарушенная или отсроченная реэпителизация может быть результатом потери способности к пролиферации, повышенного апоптоза или неэффективной миграции АЦ. Снижение пролиферативной способности АЦ II типа и/или неспособность дифференцироваться в АЦ I типа также наблюдаются при легочном фиброзе [17]. В то же время факторы роста, продуцируемые эпителием при альтерации, играют значительную роль в фиброгенезе. В частности, фактор роста соединительной ткани (CTGF) значительно усиливает пролиферацию фибробластов [18], сходным образом работает и фактор роста тромбоцитов (PDGF) [19], также способствующий миграции тромбоцитов и построению коллагена [19, 20].

Фибробласты, ключевые эффекторные клетки в развитии легочного фиброза, in vitro, дифференцируются в миофибробласты и расцениваются как ключевой клеточный пусковой фактор фиброзирующих заболеваний [21]. В так называемой фибротической болезни регулирующим фактором является трансформирующий фактор роста (TGF-β). Чрезмерная экспрессия TGF-β в измененном легком ведет к тяжелому, необратимому легочному фиброзу, в то время как его ингибирование in vivo подавляет развитие и прогрессирование легочного фиброза [22]. TGF-β стимулирует дифференцировку фибробластов в миофибробласты, а также излишнюю продукцию экстрацеллюлярного матрикса. Активируемый пероксисомными пролифераторами рецептор γ (PPAR γ) — транскрипционный фактор, который регулирует адипогенез, сенситизацию тканей к инсулину, а также воспаление. Лиганд PPARγ (2-cyano-3,12-dioxoolean-1,9-dien-28-oic acid — CDDO), ингибирует стимулированную TGF-β дифференцировку человеческих легочных фибробластов в миофибробласты, а также выработку α-актина, фибронектина, коллагена и маркера миофибробластов калпонина [23]. Наряду с CDDO такими же функциями обладает 15-деокси-Δ12,13-простагландин J2 (15-d-PGJ2). CDDO и 15 d-PGJ2 содержат ненасыщенный α/β-кетон — электрофильный центр, который может формировать ковалентные связи с клеточными белками.

Фибробластические очаги (ФО), часто наблюдаемые при фиброзе легочной ткани, представляют собой отличительную черту гистопатологии интерстициальной пневмонии (ИП) [24, 25]. Наличие и степень выраженности ФО является одним из наиболее надежных маркеров плохого прогноза и снижения выживаемости у пациентов с ИП и идиопатическим легочном фиброзом (ИЛФ) [26]. Исследования показали наличие фенотипически различных фибробластов, названных миофибробластами, в ФО при ИП/ИЛФ [24]. Миофибробласты обладают ультраструктурными особенностями, промежуточными между фибробластами и гладкомышечными клетками. Они характеризуются экспрессией сократительных белков и представляют собой синтетически активный и сократительный фенотип, который отвечает за синтез соединительной ткани и ремоделирование, характерные для фиброзных заболеваний [27].

На ранних стадиях регенерации основная функция миофибробластов заключается в секреции внеклеточного матрикса, который обеспечивает тканевый каркас для восстановления структуры с последующей миграцией эпителиальных клеток. На более поздних стадиях миофибробласты благодаря своей сократительной функции способствуют сокращению дефекта и реэпителизации. Окончательное рассасывание грануляционной ткани и апоптоз фибробластов/миофибробластов имеют решающее значение для восстановления нормальной архитектуры ткани [28]. Сохранение миофибробластов в зонах активного фиброза является типичной находкой при фиброзных заболеваниях в различных органах, включая легкие [27]. При патологическом фиброзе разрешение репаративных реакций не наблюдается и миофибробласты продолжают откладывать матриксные белки в интерстиций легких.

Регуляция дифференцировки миофибробластов происходит посредством действия растворимых факторов роста и сигналов, производимых внеклеточным матриксом. Одним из основных регуляторов дифференцировки миофибробластов in vitro и in vivo является TGF-β1 [27]. Аналогичное воздействие могут оказывать другие факторы, такие как эндотелин [29] и тромбин [30], поэтому оценка состояния сосудистого русла как при фиброзирующих заболеваниях, так и при новой коронавирусной инфекции очень важна.

Ангиогенез

Образование новых кровеносных сосудов (неоваскуляризация) является ранней реакцией на повреждение ткани и запускается выработкой растворимых ангиогенных факторов роста или хемокинов, изменением молекул внеклеточного матрикса или интегринов, а также локализованной тканевой гипоксией. Неоваскуляризация необходима для поддержания формирования грануляционной ткани в местах повреждения [31]. Повышенная ангиогенная активность была обнаружена в легких пациентов с ИЛФ. Выявляемая ангиогенная активность обусловлена повышением уровня проангиогенных факторов, а именно IL-8 и нейтрофил-активирующим пептидом 78 (ENA-78). Одновременно отмечено снижение уровня антиангиогенного хемокина, IFN-индуцированного белка 10 кДа (IP-10). При этом другие проангиогенные факторы, такие как фактор роста эндотелия сосудов (VEGF), снижались в БАЛ жидкости пациентов с ИЛФ по сравнению с нормальным уровнем [32]. Более того, в фибромиксоидных поражениях при облитерирующем бронхиолите отмечается более выраженная васкуляризация, чем при ИП/ИЛФ [33, 34], и этот эффект коррелирует с повышенной экспрессией VEGF и фактора роста фибробластов 2 [35]. Сосудистая дисфункция является ключевым компонентом перехода от ОРДС к фиброзу, в котором участвуют VEGF и цитокины, такие как IL-6 и фактор некроза опухоли-α (tumor necrosis factor-α, TNF-α). Краткий обзор по механизмам неоангиогенеза показывает, что в настоящий момент этот вопрос в отношении COVID-19 мало освещен.

Профили цитокинов типов I и II

Глубокие нарушения в иммунной системе считаются одними из основных факторов патогенеза при COVID-19. Гипервоспалительный ответ, вызванный вирусом SARS-CoV-2, играет ключевую роль в течении инфекции, развитии острого повреждения органов и неблагоприятных исходов. Во время инфекции COVID-19 чрезмерная секреция циркулирующих цитокинов и хемокинов, таких как IL-6, IL-1β, IL17, TNF-α, CCL-2/3/5, хемоаттрактантов моноцитов MCP-1 и MCP-3, MIP1-α (macrophage inflammatory protein 1-α) и их рецепторов, коррелирующих с тяжестью COVID-19, приводит к цитокиновому шторму — неконтролируемой генерализованной системной воспалительной реакции.

Переход от цитокинового профиля типа I (IFN-γ, IL-2, IL-12, IL-18) к цитокиновому профилю типа II (IL-4, IL-5, IL-10, IL-13) является ключевым событием прогрессирования воспаления в фиброз [36]. Цитокины II типа обычно являются активаторами фибробластов и могут способствовать отложению и ремоделированию внеклеточного матрикса [37]. Цитокины типа I, особенно IFN-γ, оказывают антифибротическое действие путем ингибирования активации миофибробластов. Относительный сдвиг в сторону преобладания цитокинового профиля II типа наблюдался у пациентов с ИЛФ [38], что позволяет предположить, что этот дисбаланс может способствовать фиброгенезу.

Воспалительные цитокины оказывают значительное влияние на профибротические реакции фибробластов. Доказано, что сверхэкспрессия IL-1 in vivo инициирует острое повреждение легких, которое приводит к прогрессирующему легочному фиброзу [39]. IL-6 способствует пролиферации фибробластов [40], которая индуцируется Wnt1-сигнальным белком 1 (WISP1), напрямую активизирующимся TGF-β1 и TNF-α [41]. Кроме того, IL-6 может снижать апоптоз фибробластов при фиброзе легких [42]. IL-11 способствует трансдифференцировке фибробластов в миофибробласты и выработке коллагена через сигнальный путь митогенактивируемой протеинкиназы ERK [43]. IL-25 усиливает пролиферацию фибробластов и продукцию коллагена, а также увеличивает высвобождение CTGF из клеток альвеолярного эпителия [44]. IL-17 также увеличивает пролиферацию фибробластов и выработку коллагена [45].

Роль COVID-19 в патогенезе легочного фиброза

Морфология легочного фиброза, ассоциированного с новой коронавирусной инфекцией, до конца не изучена. Посредством биоинформационного анализа доказано связывание SARS-CoV-2 с клеточным рецептором ангиотензинпревращающего фермента 2 (АПФ 2), которому способствует расщепление АПФ 2 посредством мембранно-связанной сериновой протеазы (TMPRSS2) и металлопротеазы (ADAM17). Несмотря на то, что исходный уровень экспрессии мРНК ACE2 в легочной ткани ниже, чем в других органах, он увеличивается в альвеолярных эпителиальных клетках после инфицирования SARS-CoV-2, однако признаков увеличения мРНК АПФ 2 в эпителии бронхов не выявлялось [46].

Предполагается связь развития фиброза легких при COVID-19 с аномальной активацией ренин-ангиотензин-альдестероновой системы (РАС). В рамках РАС осуществляется деятельность ангиотензинпревращающего фермента (АПФ), отвечающего за превращение ангиотензина I в ангиотензин II, мощный вазоконстрикторный пептид, непосредственно участвующий в воспалении и развитии фиброза. Наличие ангиотензина II в плазме может запускать выработку TGF-β1 и отложение коллагена [47], а также стимулировать воспаление (выработку IL-6, IL-8), продукцию активных форм кислорода среди инфицированных АЦ с последующим их апоптозом, пролиферацию, миграцию и дифференцировку фибробластов в миофибробласты, способные синтезировать альфа-актин гладких мышц (α-SMA), продуцировать коллаген и фибронектин [48].

В свою очередь ангиотензин II гидролизуется АПФ 2 с образованием гектопептида ангиотензина 1—7 [49], способного ингибировать проапоптозную передачу сигналов в АЦ, запускать аутофагию и вместе с рецептором АПФ 2 противодействовать профибротическим эффектам, снижая как TGF-β, так и опосредованную экспрессию коллагена, а также переход от фибробластов к миофибробластам [50].

Поскольку АПФ 2 связывается с SARS-Cov-2, активность АПФ 2 уменьшается, не происходит гидролиза ангиотензина II, а его активность резко возрастает.

Под влиянием SARS-CoV-2 наблюдается значительное увеличение транскрипции мРНК трансформирующего фактора роста β1 (TGF-β1) и фактора роста соединительной ткани (CTGF) в АЦ. TGF-β регулирует уровень белков внеклеточного матрикса, которые являются основными факторами, участвующими в ремоделировании ткани легких и фиброзе. Кроме того, доказано, что инфекция SARS-Cov-2 индуцирует экспрессию гена фибронектина 1 (FN1) — основного белка внеклеточного матрикса, повышение уровня которого связывают с фиброзом легочной ткани [ 51].

Заключение

Таким образом, при новой коронавирусной инфекции в механизмах фиброза имеет значение несколько факторов. Прежде всего повреждение вирусом SARS-CoV-2 АЦ, нарушенная или отсроченная реэпителизация способствуют образованию различных факторов, влияющих на развитие фиброза. Вовлечение в патологический процесс эндотелия при COVID-19 за счет прямого вирусного и цитокинового повреждения способствует образованию различных ростковых факторов.

Воспалительные цитокины также оказывают значительное влияние на профибротические реакции фибробластов. В результате хрупкое равновесие про- и противофиброгенных факторов, экспрессирующихся при повреждении легких, может приводить к запуску процессов фиброгенеза и к прогрессированию пневмофиброза при преобладании синтеза внеклеточного матрикса над процессами его деградации. Это, в свою очередь, создает условия для искаженного регенераторного процесса в альвеолярном и бронхиолярном эпителии.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Tale S, Ghosh S, Meitei SP, Kolli M, Garbhapu AK, Pudi S. Post-COVID-19 pneumonia pulmonary fibrosis. QJM. 2020;113(11): 837-838.  https://doi.org/10.1093/qjmed/hcaa255
  2. Kalchiem-Dekel O, Galvin JR, Burke AP, Atamas SP, Todd NW. Interstitial lung disease and pulmonary fibrosis: a practical approach for general medicine physicians with focus on the medical history. J Clin Med. 2018;7(12):476.  https://doi.org/10.3390/jcm7120476
  3. Ye Z, Zhang Y, Wang Y, Huang Z, Song B. Chest CT manifestations of new coronavirus disease 2019 (COVID-19): a pictorial review. Eur Radiol. 2020;30(8):4381-4389. https://doi.org/10.1007/s00330-020-06801-0
  4. George PM, Wells AU, Jenkins RG. Pulmonary fibrosis and COVID-19: the potential role for antifibrotic therapy. Lancet Respir Med. 2020;8(8):807-815.  https://doi.org/10.1016/s2213-2600(20)30225-3
  5. Bösmüller H, Matter M, Fend F, Tzankov A. The pulmonary pathology of COVID-19. Virchows Arch. 2021;478(1):137-150.  https://doi.org/10.1007/s00428-021-03053-1
  6. Mauad T, Duarte-Neto A, da Silva LFF, de Oliveira EP, de Brito JM, do Nascimento ECT, de Almeida Monteiro RA, Ferreira JC, de Carvalho CRR, do Nascimento Saldiva PH, et al. Tracking the time course of pathological patterns of lung injury in severe COVID-19. Respir Res. 2021;22(1):32.  https://doi.org/10.1186/s12931-021-01628-9
  7. Cheung OY, Chan JW, Ng CK, Koo CK. The spectrum of pathological changes in severe acute respiratory syndrome (SARS). Histopathology. 2004;45(2):119-124.  https://doi.org/10.1111/j.1365-2559.2004.01926.x
  8. Fu Z, Tang N, Chen Y, Ma L, Wei Y, Lu Y, Ye K, Liu H, Tang F, Huang G, et al. CT features of COVID-19 patients with two consecutive negative RT-PCR tests after treatment. Sci Rep. 2020; 10(1):11548. https://doi.org/10.1038/s41598-020-68509-x
  9. Francone M, Iafrate F, Masci GM, Coco S, Cilia F, Manganaro L, Panebianco V, Andreoli C, Colaiacomo MC, Zingaropoli MA, et al. Chest CT score in COVID-19 patients: correlation with disease severity and short-term prognosis. Eur Radiol. 2020;30(12):6808-6817. https://doi.org/10.1007/s00330-020-07033-y
  10. Vasarmidi E, Tsitoura E, Spandidos DA, Tzanakis N, Antoniou KM. Pulmonary fibrosis in the aftermath of the COVID-19 era (Review). Exp Ther Med. 2020;20(3):2557-2560. https://doi.org/10.3892/etm.2020.8980
  11. Bocchino M, Lieto R, Romano F, Sica G, Bocchini G, Muto E, Capitelli L, Sequino D, Valente T, Fiorentino G, et al. Chest CT-based assessment of 1-year outcomes after moderate COVID-19 pneumonia. Radiology. 2022;305(2):479-485.  https://doi.org/10.1148/radiol.220019
  12. Mikhaleva LM, Cherniaev AL, Samsonova MV, Zayratyants OV, Kakturskiy LV, Vasyukova OA, Birukov AE, Kontorshchikov AS, Sorokina AV, Sinelnikov MY. Pathological features in 100 deceased patients with COVID-19 in correlation with clinical and laboratory data. Pathol Oncol Res. 2021;27:1609900. https://doi.org/10.3389/pore.2021.1609900
  13. Забозлаев Ф.Г., Кравченко Э.В., Галлямова А.Р., Летуновский Н.Н. Патологическая анатомия легких при новой коронавирусной инфекции (COVID-19). Предварительный анализ аутопсийных исследований. Клиническая практика. 2020;11(2):21-37.  https://doi.org/10.17816/clinpract34849
  14. Parra-Medina R, Herrera S, Mejía J. Comments to: A systematic review of pathological findings in COVID-19: a pathophysiological timeline and possible mechanisms of disease progression. Mod Pathol. 2021;34(8):1608-1609. https://doi.org/10.1038/s41379-020-0631-z
  15. Shi L, Han Q, Hong Y, Li W, Gong G, Cui J, Mao M, Liang X, Hu B, Li X, et al. Inhibition of miR-199a-5p rejuvenates aged mesenchymal stem cells derived from patients with idiopathic pulmonary fibrosis and improves their therapeutic efficacy in experimental pulmonary fibrosis. Stem Cell Res Ther. 2021;12(1):147.  https://doi.org/10.1186/s13287-021-02215-x
  16. Horowitz A, Moraes C. Live long and prosper: the enterprise of understanding diseased epithelium. Integr Biol (Camb). 2015;7(5): 494-497.  https://doi.org/10.1039/c5ib90013a
  17. Akram KM, Patel N, Spiteri MA, Forsyth NR. Lung regeneration: endogenous and exogenous stem cell mediated therapeutic approaches. Int J Mol Sci. 2016;17(1):128.  https://doi.org/10.3390/ijms17010128
  18. Кузубова И.А., Лебедева Е.С., Титова О.Н. Регенеративные свойства легочного эпителия. Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. 2017;103(5):481-493. 
  19. Coalson JJ. The ultrastructure of human fibrosing alveolitis. Virchows Arch A Pathol Anat Histol. 1982;395(2):181-199.  https://doi.org/10.1007/bf00429611
  20. Corrin B, Jagusch M, Dewar A, Tungekar MF, Davies DR, Warner JO, Turner-Warwick M, Empey D. Fine structural changes in idiopathic pulmonary haemosiderosis. J Pathol. 1987;153(3): 249-256.  https://doi.org/10.1002/path.1711530309
  21. Kasper M, Schöbl R, Haroske G, Fischer R, Neubert F, Dimmer V, Müller M. Distribution of von Willebrand factor in capillary endothelial cells of rat lungs with pulmonary fibrosis. Exp Toxicol Pathol. 1996;48(4):283-288.  https://doi.org/10.1016/s0940-2993(96)80020-0
  22. Bogatkevich GS, Ludwicka-Bradley A, Singleton CB, Bethard JR, Silver RM. Proteomic analysis of CTGF-activated lung fibroblasts: identification of IQGAP1 as a key player in lung fibroblast migration. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2008;295(4):L603-L611. https://doi.org/10.1152/ajplung.00530.2007
  23. Kishi M, Aono Y, Sato S, Koyama K, Azuma M, Abe S, Kawano H, Kishi J, Toyoda Y, Okazaki H, et al. Blockade of platelet-derived growth factor receptor-β, not receptor-α ameliorates bleomycin-induced pulmonary fibrosis in mice. PLoS One. 2018; 13(12):e0209786. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0209786
  24. Ponticos M, Holmes AM, Shi-wen X, Leoni P, Khan K, Rajkumar VS, Hoyles RK, Bou-Gharios G, Black CM, Denton CP, et al. Pivotal role of connective tissue growth factor in lung fibrosis: MAPK-dependent transcriptional activation of type I collagen. Arthritis Rheum. 2009;60(7):2142-2155. https://doi.org/10.1002/art.24620
  25. Phan SH. The myofibroblast in pulmonary fibrosis. Chest. 2002; 122(6 suppl):286S-289S. https://doi.org/10.1378/chest.122.6_suppl.286s
  26. MacDuff A, Arnold A, Harvey J.; BTS Pleural Disease Guideline Group. Management of spontaneous pneumothorax: British Thoracic Society Pleural Disease Guideline 2010. Thorax. 2010;65(suppl 2):ii18-ii31. https://doi.org/10.1136/thx.2010.136986
  27. Ferguson HE, Kulkarni A, Lehmann GM, Garcia-Bates TM, Thatcher TH, Huxlin KR, Phipps RP, Sime PJ. Electrophilic peroxisome proliferator-activated receptor-γ ligands have potent antifibrotic effects in human lung fibroblasts. Am J Respir Cell Mol Biol. 2009;41(6):722-730.  https://doi.org/10.1165/rcmb.2009-0006oc
  28. Kuhn C, McDonald JA. The roles of the myofibroblast in idiopathic pulmonary fibrosis. Ultrastructural and immunohistochemical features of sites of active extracellular matrix synthesis. Am J Pathol. 1991;138(5):1257-1265.
  29. Katzenstein AL, Myers JL. Idiopathic pulmonary fibrosis: clinical relevance of pathologic classification. Am J Respir Crit Care Med. 1998;157(4 Pt. 1):1301-1315. https://doi.org/10.1164/ajrccm.157.4.9707039
  30. Nicholson AG, Fulford LG, Colby TG, du Bois RM, Hansell DM, Wells AU. The relationship between individual histologic features and disease progression in idiopathic pulmonary fibrosis. Am J Respir Crit Care Med. 2002;166(2):173-177.  https://doi.org/10.1164/rccm.2109039
  31. Tomasek JJ, Gabbiani G, Hinz B, Chaponnier C, Brown RA. Myofibroblasts and mechano-regulation of connective tissue remodelling. Nat Rev Mol Cell Biol. 2002;3(5):349-363.  https://doi.org/10.1038/nrm809
  32. Lorena D, Uchio K, Alto Costa AM, Desmoulière A. Normal scarring: importance of myofibroblasts. Wound Repair Regen. 2002;10(2):86-92.  https://doi.org/10.1046/j.1524-475x.2002.00201.x
  33. Shahar I, Fireman E, Topilsky M, Grief J, Schwarz Y, Kivity S, Ben-Efraim S, Spirer Z. Effect of endothelin-1 on α-smooth muscle actin expression and on alveolar fibroblasts proliferation in interstitial lung diseases. Int J Immunopharmacol. 1999;21(11):759-775.  https://doi.org/10.1016/s0192-0561(99)00056-9
  34. Bogatkevich GS, Tourkina E, Silver RM, Ludwicka-Bradley A. Thrombin differentiates normal lung fibroblasts to a myofibroblast phenotype via the proteolytically activated receptor-1 and a protein kinase C-dependent pathway. J Biol Chem. 2001;276(48):45184-45192. https://doi.org/10.1074/jbc.m106441200
  35. Folkman J, D’Amore PA. Blood vessel formation: what is its molecular basis? Cell. 1996;87(7):1153-1155. https://doi.org/10.1016/s0092-8674(00)81810-3
  36. Keane MP, Belperio JA, Burdick MD, Lynch JP, Fishbein MC, Strieter RM. ENA-78 is an important angiogenic factor in idiopathic pulmonary fibrosis. Am J Respir Crit Care Med. 2001; 164(12):2239-2242. https://doi.org/10.1164/ajrccm.164.12.2104106
  37. Tatsuguchi A, Fukuda Y, Ishizaki M, Yamanaka N. Localization of matrix metalloproteinases and tissue inhibitor of metalloproteinases-2 in normal human and rabbit stomachs. Digestion. 1999;60(3):246-254.  https://doi.org/10.1159/000007665
  38. Koyama S, Sato E, Haniuda M, Numanami H, Nagai S, Izumi T. Decreased level of vascular endothelial growth factor in bronchoalveolar lavage fluid of normal smokers and patients with pulmonary fibrosis. Am J Respir Crit Care Med. 2002;166(3):382-385.  https://doi.org/10.1164/rccm.2103112
  39. Lappi-Blanco E, Soini Y, Kinnula V, Pääkkö P. VEGF and bFGF are highly expressed in intraluminal fibromyxoid lesions in bronchiolitis obliterans organizing pneumonia. J Pathol. 2001;196(2): 220-227.  https://doi.org/10.1002/path.1038
  40. Kunkel SL. Th1- and Th2-type cytokines regulate chemokine expression. Biol Signals. 1996;5(4):197-202.  https://doi.org/10.1159/000109190
  41. Lee CG, Homer RJ, Zhu Z, Lanone S, Wang X, Koteliansky V, Shipley JM, Gotwals P, Noble P, Chen Q, et al. Interleukin-13 induces tissue fibrosis by selectively stimulating and activating transforming growth factor β(1). J Exp Med. 2001;194(6):809-821.  https://doi.org/10.1084/jem.194.6.809
  42. Ando M, Miyazaki E, Fukami T, Kumamoto T, Tsuda T. Interleukin-4-producing cells in idiopathic pulmonary fibrosis: an immunohistochemical study. Respirology. 1999;4(4):383-391.  https://doi.org/10.1046/j.1440-1843.1999.00209.x
  43. Iwata M, Cowling RT, Gurantz D, Moore C, Zhang S, Yuan JX, Greenberg BH. Angiotensin-(1-7) binds to specific receptors on cardiac fibroblasts to initiate antifibrotic and antitrophic effects. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2005;289(6):H2356-H2363. https://doi.org/10.1152/ajpheart.00317.2005
  44. Kolb M, Margetts PJ, Anthony DC, Pitossi F, Gauldie J. Transient expression of IL-1β induces acute lung injury and chronic repair leading to pulmonary fibrosis. J Clin Invest. 2001;107(12):1529-1536. https://doi.org/10.1172/jci12568
  45. Moodley YP, Scaffidi AK, Misso NL, Keerthisingam C, McAnulty RJ, Laurent GJ, Mutsaers SE, Thompson PJ, Knight DA. Fibroblasts isolated from normal lungs and those with idiopathic pulmonary fibrosis differ in interleukin-6/gp130-mediated cell signaling and proliferation. Am J Pathol. 2003;163(1):345-354.  https://doi.org/10.1016/s0002-9440(10)63658-9
  46. Moodley YP, Misso NL, Scaffidi AK, Fogel-Petrovic M, McAnulty RJ, Laurent GJ, Thompson PJ, Knight DA. Inverse effects of interleukin-6 on apoptosis of fibroblasts from pulmonary fibrosis and normal lungs. Am J Respir Cell Mol Biol. 2003;29(4):490-498.  https://doi.org/10.1165/rcmb.2002-0262oc
  47. Ng B, Dong J, D’Agostino G, Viswanathan S, Widjaja AA, Lim WW, Ko NSJ, Tan J, Chothani SP, Huang B, et al. Interleukin-11 is a therapeutic target in idiopathic pulmonary fibrosis. Sci Transl Med. 2019;11(511):eaaw1237. https://doi.org/10.1126/scitranslmed.aaw1237
  48. Xu X, Luo S, Li B, Dai H, Zhang J. IL-25 contributes to lung fibrosis by directly acting on alveolar epithelial cells and fibroblasts. Exp Biol Med (Maywood). 2019;244(9):770-780.  https://doi.org/10.1177/1535370219843827
  49. Xu J, Xu X, Jiang L, Dua K, Hansbro PM, Liu G. SARS-CoV-2 induces transcriptional signatures in human lung epithelial cells that promote lung fibrosis. Respir Res. 2020;21(1):182.  https://doi.org/10.1186/s12931-020-01445-6
  50. Ziesche R, Hofbauer E, Wittmann K, Petkov V, Block LH. A preliminary study of long-term treatment with interferon gamma-1b and low-dose prednisolone in patients with idiopathic pulmonary fibrosis. New Engl J Med. 1999;341(17):1264-1269. https://doi.org/10.1056/nejm199910213411703
  51. Klee S, Lehmann M, Wagner DE, Baarsma HA, Königshoff M. WISP1 mediates IL-6-dependent proliferation in primary human lung fibroblasts. Sci Rep. 2016;6:20547. https://doi.org/10.1038/srep20547

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.