Григолашвили М.А.

НАО «Медицинский Университет Караганды»

Мустафина Р.М.

НАО «Медицинский Университет Караганды»

Роль воспалительного процесса в развитии постинсультных когнитивных нарушений

Авторы:

Григолашвили М.А., Мустафина Р.М.

Подробнее об авторах

Прочитано: 4614 раз


Как цитировать:

Григолашвили М.А., Мустафина Р.М. Роль воспалительного процесса в развитии постинсультных когнитивных нарушений. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. Спецвыпуски. 2021;121(3‑2):16‑21.
Grigolashvili MA, Mustafina RM. The role of the inflammatory process in the development of post-stroke cognitive impairment. S.S. Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry. 2021;121(3‑2):16‑21. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/jnevro202112103216

Рекомендуем статьи по данной теме:
Кон­нек­том у па­ци­ен­тов с ин­суль­том. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2024;(12-2):46-50
Це­реб­раль­ный ин­сульт: сов­ре­мен­ное сос­то­яние проб­ле­мы. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(11):7-18
Диф­фе­рен­ци­ро­ван­ный под­ход к ког­ни­тив­ной ре­аби­ли­та­ции па­ци­ен­тов, пе­ре­нес­ших ин­сульт. Воп­ро­сы ку­рор­то­ло­гии, фи­зи­оте­ра­пии и ле­чеб­ной фи­зи­чес­кой куль­ту­ры. 2024;(6):5-11
Ког­ни­тив­ные на­ру­ше­ния у би­лин­гвис­тов при нев­ро­ло­ги­чес­ких за­бо­ле­ва­ни­ях. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(12):26-29

Постинсультные когнитивные нарушения (ПИКН) являются частым осложнением инсульта. Распространенность ПИКН, которые не достигают степени деменции и развиваются в течение первого года после инсульта, составляет 38% [1]. ПИКН характеризуются нарушением зрительно-пространственных и регуляторных функций, нарушением внимания, памяти, речи, абстрактного мышления, счета и ориентации [2]. Наиболее часто встречаются нарушения памяти, внимания и регуляторных функций [3].

В опубликованных исследованиях время проведения первичной оценки когнитивных функций варьирует от 7 дней до 20 мес с момента возникновения инсульта [4]. Наиболее часто оценка когнитивного статуса осуществляется через 3 мес после инсульта. Проведенное в 10 странах проспективное когортное исследование показало, что у 29,9% больных развиваются ПИКН: по Краткой шкале оценки психического статуса (MMSE) у 22,5% пациентов — в пределах 26—24 баллов, у 7,4% — менее 24 баллов [5]. Результаты исследований имеют различия в зависимости от страны и применяемых нейропсихологических тестов для оценки когнитивных функций. В Великобритании и Швеции частота ПИКН через 3 мес после инсульта составляла от 24 до 39% с использованием MMSE или шкалы Сокращенный результат интеллектуального тестирования (AMTS) [6, 7]. Во Франции, по данным проведенного когортного исследования, распространенность ПИКН через 3 мес после инсульта достигла 47,3% по MMSE и Монреальской шкале когнитивной оценки (МоСА) [8]. Согласно австралийским исследованиям, частота ПИКН также через 3 мес после инсульта варьировала от 50 до 58% по MMSE [9, 10]. Самый высокий показатель распространенности ПИКН продемонстрировало исследование K. Yu [11], проводившееся в 12 больницах Южной Кореи: у 62,6% развились ПИКН спустя 3 мес после ишемического инсульта (ИИ) [11]. По результатам исследования в Китае частота ПИКН через 3 мес составляла 21,8% по шкале MMSE, после удаления из выборки пациентов с повторным инсультом частота ПИКН снизилась до 18,4% [12].

Около 8—15% ПИКН в год прогрессируют до степени деменции [13]. Деменция приводит к утрате самостоятельности, к профессиональной и социально-бытовой дезадаптации, что, в свою очередь, значительно ухудшает качество жизни и снижает реабилитационный потенциал больного [14].

Развитие ПИКН обусловлено структурными и функциональными повреждениями головного мозга [15, 16]. Каскад повреждения клеток при инсульте состоит из ряда сложных и неоднородных реакций, протекающих в течение нескольких минут, дней или недель. Из-за нарушения кровотока возникают энергетическая недостаточность, эксайтотоксичность, окислительный стресс, дисфункция гематоэнцефалического барьера (ГЭБ) и микрососудистое повреждение. Согласно экспериментальным и клиническим исследованиям, важную роль в развитии ПИКН играет воспалительный процесс [17, 18].

Одними из первых клеток, реагирующих в ответ на повреждение головного мозга и участвующих в постинсультном воспалительном ответе, являются клетки микроглии. Микроглия — это тип резидентной миелоидной клетки в ЦНС, на ее долю приходится 16,6% всей глиальной популяции [19—20]. Микроглия происходит из примитивных эритромиелоидных клеток-предшественников внезародышевого желточного мешка, которые появляются в головном мозге на ранней стадии эмбриогенеза плода и имеют способность к пролиферации во время постнатального развития [21, 22]. После развития нервной системы клетки микроглии служат регуляторами гомеостаза в ЦНС и играют роль как в восстановлении, так и в повреждении нейронов [23]. Первичные воспалительные реакции клеток микроглии заключаются в фагоцитозе клеточно-тканевого детрита. Также клетки микроглии способствуют вторичному повреждению, поскольку микроглия усиливает проницаемость и нервно-сосудистое разрушение, активируя факторы, происходящие из тромбоцитов, повышает экспрессию матричных металлопротеиназ (ММР), таких как ММР-9, на ранних стадиях инсульта [24—26].

Существует два основных вида макрофагов, проникающих в очаг поражения головного мозга после инсульта: полученные из микроглии (MiDM), и из моноцитов (MoDM). После активации MiDM и MoDM участвуют в восстанавлении гомеостаза, удаляют клеточный детрит, ослабляют местное воспаление, выделяют трофические факторы, которые способствуют образованию миелина и регулируют церебральный ангиогенез [27]. Как только происходят такие патофизиологические изменения, как инсульт, MoDM и MiDM могут трансформироваться в макрофаги с особыми функциями. На фенотип микроглии влияют иммуностимуляция, патогенность и степень повреждения. В целом активированные MoDM и MiDM делятся на два фенотипа: классический провоспалительный (M1) и альтернативный противовоспалительный (M2). Классическая M1-активация клеток микроглии, стимулируя интерферон-γ (IFN-γ), потенцирует секрецию провоспалительных цитокинов, таких как фактор некроза опухоли (TNF-α), интерлейкин-1β (IL-1β) и интерлейкин-6 (IL-6) [28]. В свою очередь, высокие концентрации провоспалительных цитокинов ведут к разрыву шапочки бляшки и окклюзионному тромбозу. Фенотип M2, индуцированный стимуляцией интерлейкина-4 (IL-4), интерлейкина-10 (IL-10) и трансформирующего фактора роста-β (TGF-β), выделяет защитные противоспалительные цитокины, ингибируя воспалительную реакцию, способствуя ангиогенезу и восстановлению тканей [29]. Фенотипические маркеры для M1 включают CD16, CD32, CD86, главный комплекс гистосовместимости II (MHC II) и индуцибельную синтазу оксида азота (iNOS), тогда как CD206, аргиназа-1 (Arg1) и Ym1 идентифицируются маркерами для фенотипа M2 [30]. Недавние исследования выявили, что выделение M1 и M2 является упрощенным понятием и представляет только две крайние формы активации. Статус MoDM и MiDM in vivo намного сложнее, чем in vitro, он включает целый ряд различных фенотипов с перекрывающимися функциями. Например, существует разнообразие в подгруппе M2, происходит подразделение на M2a, M2b, M2c и M2d, при этом каждый тип имеет свои уникальные физиологические характеристики и биологическую функцию [31]. Также М1-микроглия имеет свойство переключаться на М2 фенотип [32]. Патологические стимулы могут инициировать изменение функции микроглии [33].

Во время инсульта разветвленная форма микроглии подвергается морфологическим изменениям. Начало гипоперфузии служит преобразованию микроглии в активированную, или реактивную, форму, что является ранней стадией нейровоспалительного процесса [34]. Реактивные клетки микроглии фагоцитируют поврежденные клетки головного мозга, в том числе эндотелиальные клетки, вследствие чего проникновение компонентов сыворотки крови становится возможным [35]. Нарушение ГЭБ после инсульта способствует проникновению в ткань головного мозга иммунных клеток, циркулирующих в сыворотке крови, что в последующем усугубляет отек, кровоизлияние и ведет к увеличению зоны некроза.

В ответ на повреждение помимо клеток микроглии реагируют и другие периферические иммунные клетки: моноциты, нейтрофилы, лимфоциты. Эти клетки попадают в ЦНС и вызывают воспалительный ответ [36, 37]. Инфильтрация лейкоцитами ткани головного мозга происходит после активации эндотелия и повышенной экспрессии молекул клеточной адгезии на поверхности эндотелия и лейкоцитов. Проникновение лейкоцитов в головной мозг после инсульта происходит в определенной последовательности. Первыми иммунными клетками, которые достигают зоны инсульта из крови, являются нейтрофилы.

Некротический процесс вследствие инсульта характеризуется высвобождением большого количества ассоциированных с повреждением молекулярных структур (DAMP) [38], митохондриальной ДНК [39], АТФ [40] и др. Поврежденные клетки головного мозга подвергаются воздействию медиаторов воспаления, таких как фактор активации тромбоцитов (PAF), IL-1β, IL-8, TNF-α и хемокины [41, 42]. В последующем индуцируется экспрессия молекул клеточной адгезии (ICAM/МКА) на поверхности эндотелия. МКА связываются с комплементарными рецепторами на поверхности нейтрофилов, что приводит к уменьшению их внутрисосудистого движения, координации переноса и плотной фиксации к эндотелию сосуда. Взаимодействие нейтрофилов происходит посредством разных молекул адгезии: это P-, E- и L-селектины, ICAM-1 и интегрины (CD11a, b и c) [43]. ICAM-1 экспрессируются эндотелием проксимальнее по отношению к некротической ткани мозга через несколько часов после инсульта. Пик экспрессии достигается спустя 12—48 ч [44]. ICAM-1 связываются с β2-интегринами CD11b/CD18, также называемыми MAC-1, которые расположены в нейтрофильных плазматических мембранах, что приводит к диапедезу нейтрофилов через стенку сосудов в очаг инсульта [43, 44]. Пул нейтрофилов зависит в большей мере от селектинов, а миграция и адгезия зависят от интегринов [45]. В последующие 2 ч инсульта в пиальных сосудах мягкой мозговой оболочки появляются адгезированные нейтрофилы [46]. В дальнейшем после первоначальной адгезии нейтрофилы движутся по градиенте хемокинов и цитокинов поврежденной ткани [47].

Точная роль нейтрофилов в патологии инсульта остается неясной. Хотя существуют многочисленные исследования, в которых отмечено, что нейтрофильная инфильтрация области инфаркта мозга оказывает разрушительное действие [48—50]. Также имеются данные, свидетельствующие об участии нейтрофилов в ремоделировании тканей после инсульта. Активированные нейтрофилы, проникающие в паренхиму мозга, выделяют ряд воспалительных факторов, включая ММР, iNOS и активные формы кислорода (ROS), которые усиливают повреждение ГЭБ и гибель клеток [50]. ММР, представляющие собой семейство секретируемых и мембраносвязанных протеаз, влияют на внеклеточный матрикс (ЕСМ) и процессы восстановления тканей [51, 52]. MMP оказывают двойной эффект. Например, MMP-9 способствует разрушению ГЭБ, гибели нейронов и кровоизлиянию на ранней стадии инсульта, а в последующем стимулирует регенерацию ткани головного мозга и ремоделирование сосудов [53]. Нейтрофилы продуцируют и высвобождают такие вещества, как сосудистый эндотелиальный фактор роста (VEGF) и TGF-β, регулируя различные процессы иммунной реакции [54]. Нейтрофилы участвуют в удалении погибших клеток, создавая тем самым более подходящую микросреду для восстановления [54, 55]. Кроме того, накопление нейтрофилов в кровеносных сосудах может привести к остановке кровотока в микроциркуляторном русле, тем самым усугубляя ишемическое повреждение ткани [56]. В свою очередь нейтрофильная инфильтрация ответственна за усиление рекрутирования других иммунных клеток, таким образом, возникает сложная серия воздействий, связанных с повреждением головного мозга [55]. Уровень нейтрофилов достигает максимума на 2—4-е сутки после инсульта, затем постепенно снижается [47]. На протяжении этого периода нейтрофилы, выделяя цитотоксические вещества и провоспалительные цитокины, повреждают ГЭБ, усиливают отек, способствуют расширению зоны инфаркта мозга и геморрагической трансформации, что приводит к усугублению неврологического дефицита.

Лимфоциты, как и нейтрофилы, выделяют цитотоксические вещества и провоспалительные цитокины, участвуя в расширении зоны повреждения. Т-лимфоциты играют бóльшую роль в воспалительном процессе после инсульта, чем В-лимфоциты. Это подтверждают экспериментальные исследования: у мышей с дефицитом Т-клеток размер очага инсульта был меньше в сравнении с контрольной группой [57]. Однако в другом исследовании у мышей с дефицитом Т- и В-лимфоцитов существенных отличий между Т- и В-лимфоцитами в изменении размера инфаркта головного мозга не выявилось [58, 59]. Более того, имеются данные, что естественные киллеры (NK) и Т-лимфоциты могут не влиять на повреждение ткани головного мозга после инсульта [60]. Механизм функции лимфоцитов после инсульта в настоящее время является спорным. В дополнение еще одно исследование выявило, что циркулирующие Т-клетки выделяют в 7—15 раз больше NADPH-оксидазы после инсульта, это позволяет предположить, что периферические Т-лимфоциты могут усугубить повреждение ткани при поражении головного мозга дистанционно, продуцируя в крови супероксид [45, 57]. Регуляторные В-клетки составляют только 0,5—0,7% CD19+ В-клеток [60] и связаны с положительным воздействием при инсульте. У мышей с дефицитом В-клеток, получавших IL-10 в модели окклюзии средней мозговой артерии, наблюдались больший объем инфаркта, более выраженный функциональный дефицит, более высокая смертность и повышенное количество макрофагов, нейтрофилов, активированных Т-клеток, микроглиальных клеток в пораженном мозге через 48 ч после индукции инсульта [61]. У мышей с дефицитом В-клеток, получавших В-клетки IL-10+, наблюдалось уменьшение зоны инфаркта, инфильтрирующих клеток и значительное увеличение регуляторных Т-клеток [62]. Введение интрастриатально клеток, содержащих все подгруппы B-клеток CD19+, мышам с дефицитом В-клеток уменьшало объем инфаркта через 48 ч после инсульта. Это свидетельствует о том, что В-лимфоциты играют важную роль в обеспечении иммунорегуляции, оказывая защитное воздействие при инсульте [60]. В том же исследовании была обнаружена отсроченная роль В-лимфоцитов в качестве одной из причин развития постинсультной деменции. В подтверждение этому исследование K. Doyle и соавт. выявило снижение когнитивных функций у мышей с дефицитом В-клеток и мышей дикого типа с истощением В-клеток через 5 дней после инсульта [63].

В когорте из 58 пациентов с повышенными титрами сывороточных антител к основному белку миелина (МВР) выявлено нарастание когнитивных нарушений через год после инсульта [64]. Пролиферация периферических лимфоцитов при адаптивном иммунитете остается подавленной в течение 24 ч и может быть сниженной более 4—7 дней после внутримозгового кровоизлияния [65]. Развившаяся асептическая воспалительная реакция способствует отеку и расширению области повреждения ткани головного мозга [66, 67].

Воспалительный процесс, индуцированный инсультом, оказывает как положительное, так и отрицательное воздействие. В ранее опубликованных исследованиях изучалась взаимосвязь между маркерами воспаления и ПИКН, в отношении определенных биомаркеров результаты оказались противоречивыми. Так, воспалительные маркеры, такие как IL-8, IL-12 и СОЭ, имели тесную связь с развитием ПИКН. При этом повышение показателя СОЭ было сопряжено с более выраженными ПИКН, особенно с нарушением памяти [68, 69]. Наличие связи между маркерами IFN-γ, TNF-α и ПИКН не подтвердилось [68, 70]. В отношении IL-1β, IL-6, IL-10 и С-реактивного белка были получены неоднозначные результаты [68—72]. В исследовании K. Narasimhalu и соавт. у пациентов после ишемического инсульта СРБ, IL-1β, IL-6, IL-10 не подтвердили связь с ПИКН [68]. Однако результаты были иными в отношении СРБ в исследовании L. Rothenburg и соавт. Результаты показали, что высокий уровень СРБ связан с ухудшением когнитивных функций через 1 мес после инсульта, в отношении IL-6 и IFN-γ связь не выявлена [70]. В других исследованиях взаимосвязь между СРБ и ПИКН также была обнаружена [69, 72]. Касательно IL-1β, IL-6, IL-10, по данным исследования В.Г. Черкасовой и соавт., пациенты с ПИКН имели высокую концентрацию IL-1β и IL-10 в цербероспинальной жидкости и IL-6 в сыворотке крови в сравнении с пациентами с нормальной познавательной способностью [71]. Следовательно, в отношении связи воспалительных маркеров и ПИКН необходимы более крупные популяционные исследования.

Таким образом, воспалительный процесс играет важную роль в развитии ПИКН. Активация микроглии и периферических иммунных клеток приводит к выработке провоспалительных факторов. Эти провоспалительные факторы усиливают регуляцию молекул клеточной адгезии и селектинов, вызывая рекрутирование воспалительных клеток из крови в область инсульта, вызывающих дальнейшую активацию микроглии. Комбинированный эффект этого — повреждение нейронов и потеря синапсов, что в конечном итоге ведет к когнитивному нарушению.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Sexton E, McLoughlin A, Williams DJ, et al. Systematic review and meta-analysis of the prevalence of cognitive impairment no dementia in the first year post-stroke. Eur Stroke J. 2019;4(2):160-171.  https://doi.org/10.1177/2396987318825484
  2. Melkas S, Jokinen H, Hietanen M, Erkinjuntti T. Poststroke cognitive impairment and dementia: prevalence, diagnosis, and treatment. Degener Neurol Neuromuscul Dis. 2014;4:21-27.  https://doi.org/10.2147/DNND.S37353
  3. Al-Qazzaz NK, Ali SH, Ahmad SA, et al. Cognitive impairment and memory dysfunction after a stroke diagnosis: a post-stroke memory assessment. Neuropsychiatr Dis Treat. 2014;10:1677-1691. https://doi.org/10.2147/ndt.s67184
  4. Lindén T, Skoog I, Fagerberg B, et al. Cognitive impairment and dementia 20 months after stroke. Neuroepidemiology. 2004;23(1-2):45-52.  https://doi.org/10.1159/000073974
  5. Rist PM, Chalmers J, Arima H, et al. Baseline cognitive function, recurrent stroke, and risk of dementia in patients with stroke. Stroke. 2013;44(7):1790-1795. https://doi.org/10.1161/STROKEAHA.111.680728
  6. Gutiérrez Pérez C, Sävborg M, Påhlman U, et al. High frequency of cognitive dysfunction before stroke among older people. Int J Geriatr Psychiatry. 2011;26(6):622-629.  https://doi.org/10.1002/gps.2573
  7. Douiri A, Rudd AG, Wolfe CD. Prevalence of poststroke cognitive impairment: South London Stroke Register 1995—2010. Stroke. 2013;44(1):138-145.  https://doi.org/10.1161/strokeaha.112.670844
  8. Jacquin A, Binquet C, Rouaud O, et al. Post-Stroke Cognitive Impairment: High Prevalence and Determining Factors in a Cohort of Mild Stroke. J Alzheimers Dis. 2014;40(4):1029-1038. https://doi.org/10.3233/JAD-131580
  9. Sachdev PS, Brodaty H, Valenzuela MJ, et al. Clinical determinants of dementia and mild cognitive impairment following ischaemic stroke: the Sydney Stroke Study. Dement Geriatr Cogn Disord. 2006;21(5-6):275-283.  https://doi.org/10.1159/000091434
  10. Srikanth VK, Anderson JF, Donnan GA, et al. Progressive dementia after first-ever stroke: a community-based follow-up study. Neurology. 2004;63(5):785-792.  https://doi.org/10.1212/01.wnl.0000137042.01774.33
  11. Yu KH, Cho SJ, Oh MS, et al. Cognitive impairment evaluated with Vascular Cognitive Impairment Harmonization Standards in a multicenter prospective stroke cohort in Korea. Stroke. 2013;44(3):786-788.  https://doi.org/10.1161/strokeaha.112.668343
  12. Tang WK, Chan SS, Chiu HF, et al. Frequency and clinical determinants of poststroke cognitive impairment in nondemented stroke patients. J Geriatr Psychiatry Neurol. 2006;19(2):65-71.  https://doi.org/10.1177/0891988706286230
  13. Petersen RC. Mild cognitive impairment. Contin Lifelong Learn Neurol. 2016;22(2 Dementia):404-418.  https://doi.org/10.1212/CON.0000000000000313
  14. Cumming TB, Brodtmann A, Darby D, Bernhardt J. The importance of cognition to quality of life after stroke. J Psychosom Res. 2014;77(5):374-379.  https://doi.org/10.1016/j.jpsychores.2014.08.009
  15. Rodríguez García PL, Rodríguez García D. Diagnosis of vascular cognitive impairment and its main categories. Neurologia. 2015;30(4):223-239.  https://doi.org/10.1016/j.nrl.2011.12.014
  16. Wollenweber FA, Därr S, Müller C, et al. Prevalence of Amyloid Positron Emission Tomographic Positivity in Poststroke Mild Cognitive Impairment. Stroke. 2016;47(10):2645-2648. https://doi.org/10.1161/STROKEAHA.116.013778
  17. Gorelick PB. Role of inflammation in cognitive impairment: results of observational epidemiological studies and clinical trials. Ann NY Acad Sci. 2010;1207:155-162.  https://doi.org/10.1111/j.1749-6632.2010.05726.x
  18. Alam A, Hana Z, Jin Z, Suen KC. Surgery, neuroinflammation and cognitive impairment. EBioMedicine. 2018;37:547-556.  https://doi.org/10.1016/j.ebiom.2018.10.021
  19. Gomez Perdiguero E, Klapproth K, Schulz C, et al. Tissue-resident macrophages originate from yolk-sac-derived erythro-myeloid progenitors. Nature. 2015;518(7540):547-551.  https://doi.org/10.1038/nature13989
  20. Kim JY, Park J, Chang JY, et al. Inflammation after Ischemic Stroke: The Role of Leukocytes and Glial Cells. Exp Neurobiol. 2016;25(5):241-251.  https://doi.org/10.5607/en.2016.25.5.241
  21. Hoeffel G, Ginhoux F. Fetal monocytes and the origins of tissue-resident macrophages. Cell Immunol. 2018;330:5-15.  https://doi.org/10.1016/j.cellimm.2018.01.001
  22. Stremmel C, Schuchert R, Wagner F, et al. Yolk sac macrophage progenitors traffic to the embryo during defined stages of development. Nat Commun. 2018;9(1):75.  https://doi.org/10.1038/s41467-017-02492-2
  23. Saijo K, Glass CK. Microglial cell origin and phenotypes in health and disease. Nat Rev Immunol. 2011;11(11):775-787.  https://doi.org/10.1038/nri3086
  24. Ritzel RM, Patel AR, Grenier JM, et al. Functional differences between microglia and monocytes after ischemic stroke. J Neuroinflammation. 2015;12:106.  https://doi.org/10.1186/s12974-015-0329-1
  25. Su EJ, Cao C, Fredriksson L, et al. Microglial-mediated PDGF-CC activation increases cerebrovascular permeability during ischemic stroke. Acta Neuropathol. 2017;134(4):585-604.  https://doi.org/10.1007/s00401-017-1749-z
  26. Zhou M, Wang CM, Yang WL, Wang P. Microglial CD14 activated by iNOS contributes to neuroinflammation in cerebral ischemia. Brain Res. 2013;1506:105-114.  https://doi.org/10.1016/j.brainres.2013.02.010
  27. Perego C, Fumagalli S, Zanier ER, et al. Macrophages are essential for maintaining a M2 protective response early after ischemic brain injury. Neurobiol Dis. 2016;96:284-293.  https://doi.org/10.1016/j.nbd.2016.09.017
  28. Wang J, Zhao H, Fan Z, et al. Long noncoding RNA H19 promotes neuroinflammation in ischemic stroke by driving histone deacetylase 1-dependent M1 microglial polarization. Stroke. 2017;48(8):2211-2221. https://doi.org/10.1161/STROKEAHA.117.017387
  29. Yuan J, Ge H, Liu W, et al. M2 microglia promotes neurogenesis and oligodendrogenesis from neural stem/progenitor cells via the PPARγ signaling pathway. Oncotarget. 2017;8(12):19855-19865. https://doi.org/10.18632/oncotarget.15774
  30. Shu ZM, Shu XD, Li HQ, et al. Ginkgolide B protects against ischemic stroke via modulating microglia polarization in mice. CNS Neurosci Ther. 2016;22(9):729-739.  https://doi.org/10.1111/cns.12577
  31. Franco R, Fernandez-Suarez D. Alternatively activated microglia and macrophages in the central nervous system. Prog Neurobiol. 2015;131:65-86.  https://doi.org/10.1016/j.pneurobio.2015.05.003
  32. Yu Z, Sun D, Feng J, et al. MSX3 switches microglia polarization and protects from inflammation-induced demyelination. J Neurosci. 2015; 35(16):6350-6365. https://doi.org/10.1523/jneurosci.2468-14.2015
  33. Appel SH, Zhao W, Beers DR, Henkel JS. The microglial-motoneuron dialogue in ALS. Acta Myol. 2011;30(1):4-8. 
  34. Xiong XY, Liu L, Yang QW. Functions and mechanisms of microglia/macrophages in neuroinflammation and neurogenesis after stroke. Prog Neurobiol. 2016;142:23-44.  https://doi.org/10.1016/j.pneurobio.2016.05.001
  35. Jolivel V, Bicker F, Biname F, et al. Perivascular microglia promote blood vessel disintegration in the ischemic penumbra. Acta Neuropathol. 2015; 129(2):279-295.  https://doi.org/10.1007/s00401-014-1372-1
  36. Anrather J, Iadecola C. Inflammation and stroke: an overview. Neurotherapeutics. 2016;13(4):661-670.  https://doi.org/10.1007/s13311-016-0483-x
  37. Rayasam A, Hsu M, Kijak JA, et al. Immune responses in stroke: how the immune system contributes to damage and healing after stroke and how this knowledge could be translated to better cures? Immunology. 2018;154(3):363-376.  https://doi.org/10.1111/imm.12918
  38. Iadecola C, Anrather J. The immunology of stroke: from mechanisms to translation. Nat Med. 2011;17(7):796-808.  https://doi.org/10.1038/nm.2399
  39. Maeda A, Fadeel B. Mitochondria released by cells undergoing TNF-alpha-induced necroptosis act as danger signals. Cell Death Dis. 2014; 5(7):e1312. https://doi.org/10.1038/cddis.2014.277
  40. Yang F, Wang Z, Wei X, et al. NLRP3 deficiency ameliorates neurovascular damage in experimental ischemic stroke. J Cereb Blood Flow Metab. 2014;34(4):660-667.  https://doi.org/10.1038/jcbfm.2013.242
  41. Lattanzi S, Brigo F, Trinka E, et al. NeutrophIL-to-lymphocyte ratio in acute cerebral hemorrhage: a system review. Transl Stroke Res. 2019; 10(2):137-145.  https://doi.org/10.1007/s12975-018-0649-4
  42. Bonaventura A, Montecucco F, Dallegri F, et al. Novel findings in neutrophil biology and their impact on cardiovascular disease. Cardiovasc Res. 2019;115(8):1266-1285. https://doi.org/10.1093/cvr/cvz084
  43. Dimasi D, Sun WY, Bonder CS. Neutrophil interactions with the vascular endothelium. Int Immunopharmacol. 2013;17(4):1167-1175. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2013.05.034
  44. Liesz A, Zhou W, Mracskó É, et al. Inhibition of lymphocyte trafficking shields the brain against deleterious neuroinflammation after stroke. Brain. 2011;134(Pt 3):704-720.  https://doi.org/10.1093/brain/awr008
  45. Kolaczkowska E, Kubes P. Neutrophil recruitment and function in health and inflammation. Nat Rev Immunol. 2013;13(3):159-175.  https://doi.org/10.1038/nri3399
  46. Kataoka H, Kim SW, Plesnila N. Leukocyteendothelium interactions during permanent focal cerebral ischemia in mice. J Cereb Blood Flow Metab. 2004;24(6):668-676.  https://doi.org/10.1097/01.WCB.0000117812.35136.5B
  47. Garcia-Bonilla L, Moore JM, Racchumi G, et al. Inducible nitric oxide synthase in neutrophils and endothelium contributes to ischemic brain injury in mice. J Immunol. 2014;193:2531-2537. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1400918
  48. Perez-de-Puig I, Miró-Mur F, Ferrer-Ferrer M, Gelpi E, Pedragosa J, Justicia C, Urra X, Chamorro A, Planas AM. Neutrophil recruitment to the brain in mouse and human ischemic stroke. Acta Neuropathol. 2015;129:239-257.  https://doi.org/10.1007/s00401-014-1381-0
  49. Herz J, Sabellek P, Lane TE, Gunzer M, Hermann DM, Doeppner TR. Role of Neutrophils in exacerbation of brain injury after focal cerebral ischemia in hyperlipidemic mice. Stroke. 2015;46:2916-2925. https://doi.org/10.1161/strokeaha.115.010620
  50. Hermann DM, Gunzer M. Contribution of polymorphonuclear neutrophils in the blood periphery to ischemic brain injury. Neurol Neuroimmunol Neuroinflamm. 2019;6:e570. https://doi.org/10.1212/nxi.0000000000000570
  51. Ji X, Wang L, Wu B, Han R, Han L, Wang T, Yang J, Ni C. Associations of MMP1, MMP2 and MMP3 genes polymorphism with coal workers’ pneumoconiosis in chinese han population. Int J Environ Res Public Health. 2015;12:13901-13912. https://doi.org/10.3390/ijerph121113901
  52. Lim TC, Spector M. Biomaterials for enhancing CNS repair. Transl Stroke Res. 2017;8:57-64.  https://doi.org/10.1007/s12975-016-0470-x
  53. Rosell A, Cuadrado E, Ortega-Aznar A, Hernandez-Guillamon M, Lo EH, Montaner J. MMP-9-positive neutrophil infiltration is associated to blood-brain barrier breakdown and basal lamina type IV collagen degradation during hemorrhagic transformation after human ischemic stroke. Stroke. 2008;39:1121-1126. https://doi.org/10.1161/strokeaha.107.500868
  54. Malone K, Amu S, Moore AC, Waeber C. Immunomodulatory therapeutic strategies in stroke. Front Pharmacol. 2019;10:630.  https://doi.org/10.3389/fphar.2019.00630
  55. Corps KN, Roth TL, McGavern DB. Inflammation and neuroprotection in traumatic brain injury. JAMA Neurol. 2015;72:355-362.  https://doi.org/10.1001/jamaneurol.2014.3558
  56. Döring Y, Drechsler M, Soehnlein O, Weber C. Neutrophils in atherosclerosis: from mice to man. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2015;35:288-295.  https://doi.org/10.1161/atvbaha.114.303564
  57. Kleinschnitz C, Schwab N, Kraft P, et al. Early detrimental T-cell effects in experimental cerebral ischemia are neither related to adaptive immunity nor thrombus formation. Blood. 2010;115(10):3835-3842. https://doi.org/10.1182/blood-2009-10-249078
  58. Saino O, Taguchi A, Nakagomi T, et al. Immunodeficiency reduces neural stem/progenitor cell apoptosis and enhances neurogenesis in the cerebral cortex after stroke. J Neurosci Res. 2010;88(11):2385-2397. https://doi.org/10.1002/jnr.22410
  59. Brait VH, Jackman KA, Walduck AK, et al. Mechanisms contributing to cerebral infarct size after stroke: gender, reperfusion, T lymphocytes, and Nox2-derived superoxide. J Cereb Blood Flow Metab. 2010;30(7):1306-1317. https://doi.org/10.1038/jcbfm.2010.14
  60. Chen Y, Bodhankar S, Murphy SJ, et al. Intrastriatal B-cell administration limits infarct size after stroke in B-cell deficient mice. Metab Brain Dis. 2012;27(4):487-493.  https://doi.org/10.1007/s11011-012-9317-7
  61. Ren X, Akiyoshi K, Dziennis S, et al. Regulatory B cells limit CNS inflammation and neurologic deficits in murine experimental stroke. J Neurosci. 2011;31(23):8556-8563. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.1623-11.2011
  62. Bodhankar S, Chen Y, Vandenbark AA, et al. IL-10-producing B-cells limit CNS inflammation and infarct volume in experimental stroke. Metab Brain Dis. 2013;28(3):375-386.  https://doi.org/10.1007/s11011-013-9413-3
  63. Doyle KP, Quach LN, Solé M, et al. B B-lymphocyte-mediated delayed cognitive impairment following stroke. J Neurosci. 2015;35(5):2133-2145. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.4098-14.2015
  64. Becker KJ, Tanzi P, Zierath D, Buckwalter MS. Antibodies to myelin basic protein are associated with cognitive decline after stroke. J Neuroimmunol. 2016;295-296:9-11.  https://doi.org/10.1016/j.jneuroim.2016.04.001
  65. Zhang J, Shi K, Li Z, et al. Organ- and cell-specific immune responses are associated with the outcomes of intracerebral hemorrhage. FASEB J. 2018;32(1):220-229.  https://doi.org/10.1096/fj.201700324R
  66. Askenase MH, Sansing LH. Stages of the inflammatory response in pathology and tissue repair after intracerebral hemorrhage. Semin Neurol. 2016;36(3):288-297.  https://doi.org/10.1055/s-0036-1582132
  67. Lan X, Han XN, Li Q, et al. Modulators of microglial activation and polarization after intracerebral haemorrhage. Nat Rev Neurol. 2017;13(7):420-433.  https://doi.org/10.1038/nrneurol.2017.69
  68. Narasimhalu K, Lee J, Leong YL, et al. Inflammatory markers and their association with post stroke cognitive decline. Int J Stroke. 2015;10(4):513-518.  https://doi.org/10.1111/ijs.12001
  69. Kliper E, Bashat DB, Bornstein NM, et al. Cognitive decline after stroke: relation to inflammatory biomarkers and hippocampal volume. Stroke. 2013;44(5):1433-1435. https://doi.org/10.1161/strokeaha.111.000536
  70. Rothenburg LS, Herrmann N, Swardfager W, et al. The relationship between inflammatory markers and post stroke cognitive impairment. J Geriatr Psychiatry Neurol. 2010;23(3):199-205.  https://doi.org/10.1177/0891988710373598
  71. Черкасова В.Г., Муравьев С.В., Чайников П.Н., Кулеш А.М., Вецлер М.В. Особенности патогенетической терапии остеоартроза крупных суставов в клинике спортивной медицины. Гений ортопедии. 2019;25(3):413-423.  https://doi.org/10.18019/1028-4427-2019-25-3-413-423
  72. Alexandrova ML, Danovska MP. Cognitive impairment one year after ischemic stroke: predictorsand dynamics of significant determinants. Turk J Med Sci. 2016;46(5):1366-1373. https://doi.org/10.3906/sag-1403-29

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.